Extracto de Lysiloma acapulcensis en la digestibilidad y fermentación ruminal de una dieta para ovinos

Lysiloma acapulcensis extract on digestibility and ruminal fermentarion of a diet for sheep

¹Agustín Olmedo Juárez, ^2*Rolando Rojo Rubio, ²Javier Arece García, ³Abdel Zeidan Mohamed Salem, ³Ernesto Morales Almaraz, ¹Benito Albarrán Portillo, ⁴Héctor Aarón Lee Rangel, ¹José Fernando Vázquez Armijo

¹ Centro Universitario UAEM-Temascaltepec, Universidad Autónoma del Estado de México, km 67.5 Carretera Federal Toluca-Tejupilco, Estado de México, 51300 Temascaltepec, Estado de México, México

³ Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autónoma del Estado de México, Toluca, México

⁴ Facultad de Agronomía, Universidad Autónoma de San Luis Potosí, México

Recibido el 09 de junio de 2014
Aceptado el 11 de noviembre de 2014

RESUMEN

Se evaluó in vitro e in vivo el valor nutricional de una dieta basal para ovinos adicionada con diferentes niveles de taninos condensados libres de Lysiloma acapulcensis (TCL) (T₀ = 0; T₁ = 2.5; T₂ = 5.0 y T₃ = 7.5 g d^-1). In vitro se determinó la cinética de degradación del sustrato mediante la técnica de producción de gas e in vivo la concentración de N-NH₃ y población de protozoarios ruminales. Los datos se analizaron mediante diseño completamente al azar y cuadrado latino, respectivamente. La tasa máxima de gas producido hasta alcanzar la asíntota (fase b) fue menor (p < 0.05) en el T₁ mientras que en la tasa fraccional de gas producido (%/h; fase c) los tratamientos T₂ y T₃ fueron los que presentaron los valores más bajos (p < 0.05). El contenido de ácidos grasos de cadena corta (AGCC) y la energía metabolizable (EM), se redujo en los tratamientos que contenían TCL (p < 0.05). La digestibilidad aparente in vivo de la proteína cruda (DAPC) fue mayor en T₂ (79.4 %, p < 0.05). La concentración de N-NH₃ mostró un comportamiento cuadrático (p < 0.05) durante las primeras horas postpandriales. La población de protozoarios fue mayor (p < 0.5) en los animales que recibieron TCL. La adición TCL mejoró la DAPC, aumentaron los niveles de N-NH₃ y disminuyeron los AGCC y la EM, estimulando el crecimiento de protozoarios ruminales.

Palabras clave: Digestibilidad, nutrientes, cinética de fermentación ruminal, taninos condensados libres, ovinos.

ABSTRACT

The nutritional value of a basal diet for sheep supplemented with different levels of free condensed tannins (FCT) from Lysiloma acapulcensis (T₀ = 0; T₁ = 2.5; T₂ = 5.0 y T₃ = 7.5 g d^-1) was evaluated in vitro and in vivo. The degradation kinetics of the substrate was determined in vitro using the technique of gas production, while the concentration of N-NH₃ and the population of ruminal protozoa were established in vivo. Data was analyzed with a completely randomized and a Latin square design, respectively. The maximum rate of gas produced to the asymptote (phase b) was lower (p < 0.05) in treatment T₁, while treatments T₂ and T₃ showed the lowest values (p < 0.05). The short-chain fatty acid content (SCFAC) and the metabolizable energy (ME) were reduced in the treatments containing FCTL (p < 0.05). The apparent digestibility of raw protein (ADRP) in vivo was greater in T₂ (79.4 %, p < 0.05). The concentration of N-NH₃ showed a quadratic behavior (p < 0.05) during the first postprandial hours. The protozoa population was greater (p < 0.5) in the animals receiving FCT. The addition of FCT improves ADRP, increases the levels of N-NH₃ and decreases AGCC and ME, stimulating the growth of ruminal protozoa.

Key words: Digestibility, nutrients, ruminal fermentation kinetics, free condensed tannins, sheep.

INTRODUCCIÓN

El uso de aditivos en la producción de rumiantes es un tema ampliamente estudiado, se utilizan para mejorar el metabolismo de los nutrientes. Dentro de los más comunes se encuentran los ionoforos, antibióticos, enzimas y extractos de plantas ricas en taninos (Cardozo et al. 2004, Busquet et al. 2005). El uso de extractos vegetales, ha tenido un creciente interés en los últimos años, debido a que son compuestos químicos naturales de plantas, que se les atribuyen diferentes propiedades benéficas en la nutrición y salud animal; ejemplo de ellos, son los taninos condensados (TC), que mejoran la eficiencia de utilización de la proteina, al convertirla en proteina de sobrepaso e incrementar el pool de proteina metabolizable en el intestino delgado (Hervás et al. 2003, Min et al. 2003); así como su actividad antihelmíntica en nematodos gastrointestinales (NGI) de ovinos y caprinos (Ademóla y El off 2011, Olmedo et al. 2013).

Desde el punto de vista metabolico, se ha observado que los TC reducen la degradación de los carbohidratos estructurales al disminuir la población de bacterias celulolíticas (Makkar et al. 1995). Estudios in vitro han demostrado que los taninos en concentraciones superiores a 7 % en la dieta, tienen efecto defaunador, lo que provoca deficiencias en el aprovechamiento de la proteina metabolizable a nivel intestinal (Hess et al. 2003a, Cardozo et al. 2004, López et al. 2004). El principal factor que tienen los TC en el rumen es formar complejos con las proteínas de los alimentos, bacterias y protozoarios; se ha encontrado que concentraciones superiores a 50 g de TC kg^-1 MS en el rumen, puede disminuir la concentración de nitrógeno amoniacal (N-NH₃), ya que secuestran los compuestos nitrogenados, lo que reduce la actividad proteolítica de las bacterias ruminales (Hess et al. 2003b, Min et al. 2003). En este sentido, debido al contenido de TC en las leguminosas arbóreas, resulta importante evaluarlas a pesar de que se han hecho investigaciones en géneros como Leucaena y Lysiloma; sin embargo, los resultados son contradictorios debido a factores como la dosis de TC, estado fisiológico de la planta y de los animales, por tal motivo en esta investigación el objetivo fue evaluar el efecto de los TCL del extracto de Lysiloma acapulcensis, en diferentes dosis en ensayos in vitro e in vivo, sobre la cinética de degradación del sustrato, digestibilidad, concentración de N-NH₃ y la población de protozoarios ruminales en ovinos.

MATERIALES Y MÉTODOS

El estudio se realizó en el laboratorio de bromatologia y en el área metabolica de la unidad experimental del Centro Universitario UAEM - Temas-caltepec, que se encuentra a una altura sobre el nivel del mar de 1 740 m, con clima cálido sub-húmedo y presencia de lluvias en verano (Aw) (García 1981).

Colección del material vegetal y preparación de los extractos de Lysiloma acapulcensis

Las muestras del material vegetal (hojas tiernas y maduras) se colectaron en la zona sur poniente del Estado de México, en el Municipio del Tejupilco, que tiene selva baja subperennifolia; el muestreo se realizó en siete sitios, tomando en cada uno siete árboles para realizar una muestra compuesta. Las hojas se colectaron por la mañana y se depositaron en una hielera, para luego trasladarlas al laboratorio (FAO 2000). Las hojas se secaron en una estufa de aire forzado a 45 °C por cinco días, para luego molerlas y mezclar 10 g en 100 mL de agua destilada e incubar a temperatura ambiente por 48 h (Salem et al. 2006), para luego eliminar el contenido de humedad por liofiIización (LifofiIizadora LABCONCO de 2.5 L), para obtener el extracto de los compuestos secundarios de las hojas.

Análisis químico proximal (AQP) y determinación de taninos condensados

A las muestras liofilizadas de Lysiloma acapulcensis, se les realizó análisis (g kg^-1) de materia orgánica (MO: 945.9), proteina cruda (PC: 177.0) (AOAC, 1990), fibra detergente neutro (FDN: 607.3), fibra detergente ácido (FDA: 500.8) (Van Soest et al. 1991), concentración (g kg^-1 MS) de taninos condesados totales (TCT: 187.8)) (López et al. 2004), usando como patrón interno L. acapulcensis, taninos condensados libres (TCL: 116.3) (Porter et al. 1986) y la purificación de taninos condensados adheridos a la proteína (TCP: 67.8) y a la fibra (TCF: 3.7), se realizó con un Sephadex LH-20 (Hedqvist et al. 2000).

Tratamientos

Se expresaron en g d^-1 de TCL kg^-1 MS, los cuales fueron: control (T₀ = 0), dosis baja (T₁ = 2.5), dosis media (T₂ = 5.0) y dosis alta T₃ = 7.5. En el experimento in vitro las dosis se ajustaron al sustrato que se incubó, se dosificaron en forma liofilizada diluyéndose en agua destilada, previo a ello se prepararon tres soluciones madre. Para el ensayo in vivo, el extracto fue aplicado de forma liofilizada al rumen de los ovinos (T₁: 2.5 g, T₂: 5.0 g y T₃: 7.5 g de extracto liofiIizado kg^-1 de MS), dosificado en tres tiempos (7:00, 13:00 y 19:00 h) según su concentración por tratamiento, antes de ofrecer el alimento a libre acceso. Para ambos ensayos se utilizó una dieta base para ovinos en crecimiento (NRC,2007), la cual estuvo integrada por los siguientes ingredientes: rastrojo de maíz (15.00 %), heno de avena (15.00 %), grano de maíz molido (40.65 %), salvado de trigo (12.00 %), pasta de soya (5.00 %), melaza (10.36 %), Urea (0.50 %) y premezcla de sales minerales (1.49 %), cuya composición especifica fue: fósforo (9.66 %), sodio (2.73 %), potasio (15.33 %), magnesio (2.63 %), azufre (8 %), cobalto (3.66 ppm), yodo (15.33 ppm), hierro (1 733.33 ppm), manganeso (566.66 ppm) y selenio (19.33 ppm). Con un contenido de proteína cruda de 15.06 % y energía metabolizable (Mcal kg^-1 MS) de 2.59.

Experimento in vitro

Se realizó mediante la técnica de producción de gas (Theodorou et al. 1994). El líquido ruminal se obtuvo del rumen de cuatro ovinos fistulados (60 ± 3 kg de PV, un año de edad), alimentados con la dieta base. Una vez colectado el líquido, se llevó al laboratorio, el cual se mantuvo bajo gasificación constante con C0₂, a temperatura de 39°C. En botellas de vidrio (160 mL), se les depositó 1.002 g de la dieta base (sustrato) para luego añadirles 10 mL de líquido ruminal y 90 mL de solución buffer, para luego incubar a 39 °C y registrar el gas producido con la ayuda de un transductor de presión (Extech, Modelo 407910). Para cada tratamiento, se utilizaron 12 botellas y la producción de gas fue monitoreado a las 2, 4, 6, 8, 10, 12, 15, 19, 24, 48, 72 y 96 h, usando tres botellas sin substrato como blancos para corregir el gas producido a partir del contenido ruminal. Al finalizar la lectura de la hora 96 en cada incubación, el residuo de cada botella se filtró con la ayuda de papel filtro Whatman 541 y de ésta manera determinar por gravimetría la degradabilidad in vitro de la materia seca (DIVMS) y materia orgánica (DIVMO). Para cuantificar la cinética de degradación del sustrato, todas las lecturas de producción de gas se ajustaron al siguiente modelo (France et al. 2000):

Donde: A= volumen total de gas producido en el tiempo t, b= máxima producción de gas producido hasta alcanzar la asíntota (mL g^-1 MS), c = tasa fraccional de producción de gas (%/ h^-1) y L= fase lag (h).

Para el cálculo de la energía metabolizable (EM) se utilizó el modelo de Menke y Steingass (1988):

Donde: EM= energía metabolizable (MJ kg^-1 MS), PG= gas producido en la hora 24. PC= proteína cruda. Para determinar el contenido de ácidos grasos de cadena corta (AGCC), se usó la fórmula de Getachew et al. (2002):

Donde: PG24 es producción de gas acumulado a las 24 h de incubación.

Experimento in vivo

En este ensayo se determinó la digestibilidad aparente de la materia seca (DAMS), materia orgánica (DAMO), proteína cruda (DAPC), fibra detergente neutro (DAFDN), fibra detergente acido (DAFDA), concentración de nitrógeno amoniacal y población de protozoarios ruminales. Se utilizaron cuatro ovinos fistulados, los cuales se alimentaron a libre acceso con la dieta base. Los ovinos se alojaron en jaulas metabólicas durante 60 d, que se dividieron en cuatro periodos de 15 d, de los cuales 10 fueron para adaptación a la dieta y 5 de colecta de datos, en los primeros periodos se colectaron las heces cada 12 h, colocando arneses individuales a los animales. Del total de heces producidas por cada animal se obtuvo una muestra de la que se tomaron 20 g para determinar la MS, MO, PC (AOAC, 1990); FDN, FDA (Van Soest et al. 1991) para calcular la digestibilidad in vivo de los nutrientes, con la siguiente la ecuación propuesta (Me Donald et al. 2006).

Diseño experimental y análisis estadístico

En el experimento in vitro se utilizó un diseño de bloques completos al azar, considerando la incubación como criterio de bloqueo, con el siguiente modelo estadístico:

Y_ij = µ + T_i + B_j + E_ij

Donde: Y_ij = variable respuesta, p= media general, T_i = efecto del tratamiento, B_j = efecto del bloque y E_ijk = error experimental.

El experimento in vivo se analizó bajo un diseño de cuadro latino con el siguiente modelo estadístico:

Y_ijk = µ + P_i + A_j + T_k + E_ijk

Donde: Y_ijk = variable respuesta, P_i = efecto del periodo, A_j = efecto del animal, T_k = efecto de los tratamientos y E_ijk = error experimental.

Toda la información se analizó con el paquete estadístico SAS (2006), cuando hubo diferencias entre tratamientos, la comparación de medias se realizó con la prueba de Tukey (p = 0.05), mientras que en el ensayo in vivo se realizó análisis de contrastes ortogonales (Steely Torrie 1988).

Experimento in vitro

Parámetros de fermentación y cinética de degradación. El tratamiento T₁ fue el que menor volumen produjo de gas (p < 0.05, 412.25 mL g^—1 MS), mientras que la tasa fraccional de producción de gas (parámetro c) fue mayor (p < 0.05) en los tratamientos T_O y T₁, al compararlos con los tratamientos T₂ y T₃. En la fase Lag no se observó efecto (p > 0.05) de las dosis de extracto de L. acapulcensis. La síntesis de AGCC, fue mayor (p < 0.05) en la dieta sin extracto (T₀) con 2.97 mmol L^—1 de líquido ruminal. La producción de gas en la hora 24 fue mayor (p < 0.05) en el tratamiento control (267.91 mL g ^-1 MS) y en la hora 48 el tratamiento que presentó menor producción de gas fue el T₁ (Tabla 1) El total del gas producido a las 96 h de fermentación fue mayor en el T₂. No se encontraron diferencias (p > 0.05) entre tratamientos sobre la degradabilidad de la materia orgánica.

Ensayo in vivo

Digestibilidad aparente de los nutrientes. En la Tabla 2 se observan diferencias significativas (p < 0.05) en la digestibilidad aparente de la proteína cruda. Se aprecia un efecto cuadrático, observándose la mayor digestibilidad en la dosis de 5.0 g de TCL con 79.40 g kg^-1 de MS.

Nitrógeno amoniacal (N-NH₃). En la Tabla 3 se observó un efecto cuadrático (p < 0.05) en la hora cero, siendo el tratamiento de 7.5 g d^-1 de TCL (T₃) que tuvo la más baja concentración (9.25 mg dL^-1 de líquido ruminal). A las 4 y 20 h se observaron efectos lineales (p < 0.05), en el tratamiento control (0.0 g de TCL) con 4.67 mg dL^-1 de líquido ruminal, respectivamente.

Protozoarios. En la Tabla 4 se muestran los resultados de la concentración de protozoarios ruminales en diferentes tiempos. Se observó un efecto lineal (p < 0.05), en los tiempos 0, 4, 8 y 12 h y un efecto cuadrático (P<0.05) en la hora 24, encontrándose efectos estimulatorios con las tres dosis de TCL.

DISCUSIÓN

Parámetros de fermentación y cinética de degradación.

De acuerdo a los resultados obtenidos, se encontró que las diferentes dosis del extracto no tuvieron efecto en la degradabilidad in vitro de la materia seca y orgánica, respuesta que puede estar relacionada con la cantidad de TCL utilizados en los tratamientos (Tabla 1), las cuales se consideran bajas para tener una interferencia sobre la degradabilidad de la fracción potencialmente digestible del sustrato (Camacho et al. 2010). Efectos negativo, se han observado cuando la ingestión de taninos condesados totales supera los 50 g kg^-1 de MS (Hervás et al. 2003). El no encontrar efecto de los taninos condensados libres utilizados se puede deber a que no formaron complejos con el grupo carboxilo de los carbohidratos estructurales, debido a su baja concentración en rumen. Lo cual es favorable, ya que no interfiere con la microbiota ruminai en la síntesis enzimática responsable de la degradación de la fracción potencialmente digestible. Por el contrario McSweeney et al. (2001) han encontrado que extractos con alto contenido de taninos condensados (>6 % kg ¹ MS) tiene efecto negativo sobre la degradación de la MS y MO.

La producción de gas a las 72 h (Figura 1), fue mayor en el tratamiento sin extracto (T₀), lo que significa que estas dosis tienen un efecto negativo sobre la producción de gas acumulado. Algunas investigaciones han encontrado que diferentes extractos disminuyen la concentración de bacterias productoras de metano con efecto protector de la proteína (Hess et al. 2003, Wina et al. 2005). En el presente estudio los tratamientos con TC disminuyeron la concentración de AGCC, al respecto Cardozo et al. (2004) en un estudio con diferentes dosis de extractos de Yucca schidigera, Allium sativa y Cinnamonum cassia, encontraron efectos positivos en el contenido de AGCC; fenómeno que puede relacionarse con la cantidad y tipo de componentes moleculares de estos extractos. Mientras que Busquet et al. (2005) encontraron que dosis mayores de 3 000 mg L^-1, disminuyen la concentración de AGCC. En el presente estudio las dosis del extracto de L. acapulcensis fueron menores, pero tienen mayor cantidad de taninos condensados totales, por lo que se infiere que tienen mayor afinidad de adherencia sobre las partículas de los alimentos y microorganismos ruminales (Van Soest et al. 1991). En lo que se refiere, al contenido de EM los resultados obtenidos, en este ensayo, presentaron un efecto similar a los AGCC, lo cual se puede deber al efecto de los TCL (Tabla 1) sobre el secuestro de los carbohidratos, en específico en las fracciones de fibra; los cuales forman complejos que podrían presentar mayor resistencia a la degradabilidad por las enzimas de los microorganismos ruminales. Lo que genera una menor producción de AGCC, como ocurrió en el presente estudio con el extracto de TCL en las dosis evaluadas (Tabla 1), por lo que se infiere que dietas con TCL pueden afectar la energía disponible para el animal en forma de AGV de cadena corta. Sin embargo, no se debe obviar que a mayor cantidad de gas acumulado, se tendrá mayor disponibilidad de energía, aunque también se producen productos inservibles como CH₄ y CO₂ (Van Soest 1982), que contribuyen a la ineficiencia energética en el metabolismo de los nutrientes en la dieta de los rumiantes.

El efecto de los TC sobre la digestibilidad de la proteina se debe a la capacidad que tienen los TCL para interactuar con el grupo amino de los aminoácidos que constituyen las proteínas (McSweeney et al. 2001), formando complejos estables en pH neutros, pero inestables en pH ácidos, con efecto positivo en la digestibilidad de los compuestos nitrogenados en concentraciones mayores de 50 g kg^-1 MS. Aunque el efecto de los taninos varía de acuerdo al estado fisiológico del animal y la estructura química del tanino (Provenza et al. 1990, Hagerman y Butler 1991). En este estudio, se encontró un aumento en la digestibilidad de la proteina cruda con la dosis de 5 g de TCL (Tabla 2), debido a la probable formación de complejos tanino-proteína, que previno el ataque de los microorganismos ruminales, lo cual puede ser benéfico para el aprovechamiento de la proteina a nivel duodenal (Mueller-Harvey 2006). Los resultados de este estudio muestran que la dosis de 5 g de TCL mejoran la digestibilidad de la proteina, lo que se relaciona con la dieta balanceada en forma isóproteica proporcionada a los ovinos. Al respecto, Waghorn (2008) encontró que dietas con exceso de proteina pueden reducir la degradación, sin limitar la disponibilidad de aminoácidos para la absorción. En contra parte, cuando las concentraciones de proteína en la dieta están por debajo de los requerimientos del animal, los TC son perjudiciales para el metabolismo de las proteínas (Camacho et al. 2010).

Nitrógeno amoniacal (N-NH₃)

Los efectos cuadráticos encontrados en este estudio (Tabla 3) demuestran la disparidad de cambios que tienen los taninos condensados, lo que podría estar relacionado con la capacidad que tienen los microorganismos de adaptase a los TC (Min et al. 2005). En este estudio se observó mayor concentración de N-NH₃ en el tiempo cero con la dosis de 7.5 g d_-1 de TCL (Tabla 3) (T₃; 9.25 mg dL^-1). Algunos autores indican que los efectos principales que tienen los taninos condesados libres en el rumen de ovinos, incluyen una reducción en la proteólisis de la proteína del alimento y una perdida subsecuente en la concentración de nitrógeno amoniacal en el fluido ruminal, lo cual nutricionalmente es benéfico parta el animal, debido al efecto de secuestro que tienen los taninos sobre la proteína en el rumen (Min et al. 2003, Waghorn 2008).

Protozoarios

Los efectos estimulatorios de la población de protozoos (Tabla 4), probablemente se deban a las dosis utilizadas. En contraste McSweeney et al. (2001) reportaron efectos defaunadores de algunas plantas utilizadas en la alimentación de rumiantes, que contenían taninos, saponinas y alcaloides. Sin embargo la defaunación de extractos de ciertas plantas han mostrado efectos variables, debido a que se reporta un efecto positivo al eliminar la población de protozoarios del rumen (Newbold et al. 1997), mientras que en otros autores reportan un aumentó en la concentración ruminal de protozoarios (McSweeney et al. 2001, Galindo et al. 2000). Lo cual depende de la naturaleza de los metabolitos secundarios y la concentración (Makkar et al. 1995). Los efectos estimulatorios de las dosis de TCL de ésta investigación podrían estar relacionados con la afinidad que tienen los TC, con las células bacterianas, principalmente con las celulolíticas y proteoliticas; fenómeno que puede explicar el incremento de la población de protozoarios en el líquido ruminal del presente estudio (Min et al. 2005). Al respecto Hess et al. (2003b) mencionan que Arachis pintoi a dosis de 2.9 g de TC kg^-1 MS tuvo efectos estimulatorios de protozoarios ruminales, similar a lo obtenido en el presente estudio con las dosis de L. acapulcensis.

CONCLUSIONES

La adición de 5.0 g de taninos condensados libres por día mejora la digestibilidad de la proteína cruda y aumenta los niveles de N-NH₃. Las tres dosis del extracto disminuyen la ácidos grasos de cadena corta y la energía metabolizable, además de que estimulan el crecimiento de los protozoarios ruminales, por lo que podrían utilizarse como aditivo para ovinos en fase de crecimiento. Sin embargo, se requiere realizar estudios posteriores con las dosis de 5.0 y 7.5 g de TCL, sobre parámetros productivos.

Ademola 10, Eloff JN (2011) Anthelminthic activity of acetone extract and fractions of Veronia amygdalina against Haemonchus contortus eggs and larvae. Tropical Animal Health and Production 43: 521-527.         [ Links ]

AOAC (Association of Official Analytical Chemists) (1997) Official Methods of Analysis, 16th edition. AOAC, Arlington, VA, USA.         [ Links ]

Busquet M, Calsamiglia S, Ferret A,Kamel C (2005) Screening for effects of plant extracts and active compounds of plants on dairy cattle rumen microbial fermentation in a continuous culture system. Animal Feed Science and Technology 124: 597-613.         [ Links ]

Camacho LM, Rojo R, Salem AZM, Provenza FD, Mendoza GD, Aviles F, et al. (2010) Effect of season on chemical composition and in situ degradability in cows and in adapted and unadapted goats of three Mexican browse species. Animal Feed Science and Technology 155: 206-212.         [ Links ]

Cardozo PW, Calsamiglia S, Ferret A, Kamel C (2004) Effects of natural plant extracts on ruminal protein degradation and fermentation profiles in continuous culture. Journal of Animal Science 82: 3230-3236.         [ Links ]

Food and Agriculture Organization (2000) www.fao.org. Fecha de consulta 29 de enero de 2015.

France J, Dijkstra J, Dhanoa MS, Lopez S, Bannink A (2000) Estimating the extent of degradation of ruminant feeds from a description of their gas production profiles observed in vitro: derivation of models and other mathematical considerations. British Journal of Nutrition 83: 143-150.         [ Links ]

Garcia ME (1986) Apuntes de climatología. 5 Edición. Enriqueta García de Miranda, México, D.F. 155 p.         [ Links ]

Getachew G, Makkar HPS, Becker K (2002) Tropical browses: contents of phenolic compounds, in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acid and in vitro gas production. Journal of Agricultural Science 139: 341-352.         [ Links ]

Hagerman AE, ButlerL G (1991) Tannins and lignins. In: G.A. Rosenthal and M. R. Berenbaum (Ed.) Herbivores: Their Interactions with Secondary Plant Metabolites. Vol. I: The Chemical Participants. Academic Press, New York. pp: 355-388.         [ Links ]

Hedqvist H, Mueller-Harvey I, Reed JD, Krueger CG, Murphy M (2000) Characterization of tannins and in vitro protein digestibility of several Lotus corniculatus varieties. Animal Feed Science and Technology 87: 41-56.         [ Links ]

Hervás G, Frutos P, Giráldez FJ, Mantecón AR, Alvarez Del Pino MC (2003) Effect of different doses of quebracho tannins extract on rumen fermentation in ewes. Animal Feed Science and Technology 109: 65-78.         [ Links ]

Hess HD, Monsalve L M, Lascano CE, Carulla JE, Díaz TE, Kreuzer M (2003a) Supplementation of a tropical grass diet with forage legumes and Sapindus saponaria fruits: effects on in vitro ruminal nitrogen turnover and methanogenesis. Australian Journal of Agricultural Research 54: 703-713.         [ Links ]

Hess HD, Kreuzer M, Diaz TE, Lascano CE, Carulla JE, Soliva CR (2003b) Saponins rich tropical fruits affect fermentation and methanogenesis in faunated and defaunated rumen fluid. Animal Feed Science and Technology 109: 79-94.         [ Links ]

López J, Tejada I, Vázquez C, De Dios G, Shimada A (2004) Condensed tannins in humid tropical fodder crops and their in vitro biological activity. Journal of the Science of Food and Agriculture 84: 295-299.         [ Links ]

McDonald P, Edwards RA, Greenhalgh JFD, Morgan CA (2006) Nutrición animal. 6th Edición. Prentice Hall. Zaragoza, España. 587 p.         [ Links ]

McCollough H (1967) The determination of ammonia in whole blood: a direct colorimetric method. Clinical Chemistry Acta 17: 297-304.         [ Links ]

McSweeney CS, Palmer B, McNeill DM, Krause DO (2001) Microbial interactions with tannins: nutritional consequences for ruminants. Animal Feed Science Technology 91: 83-93.         [ Links ]

Makkar HPS, Bliimmel M, BeckerK (1995) In vitro effects of and interactions between tannins and saponins and fate of tannins in the rumen. Journal of the Science of Food and Agriculture 69: 481-493.         [ Links ]

Menke KH, Steingass H (1988) Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analyses and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research and Development 28: 7-55.         [ Links ]

Min BR, Barry TN, Attwood GT, McNabb WC (2003) The effect of condensed tannins on the nutrition and health of ruminants fed fresh temperateforages: a review. Animal Feed Science and Technology 106: 3-19.         [ Links ]

Min BR, Attwood GT, McNabb WC, Molan AL, Barry TN (2005) The effect of condensed tannins from Lotus corniculatuson the proteolytic activities and growth of rumen bacteria. Animal Feed Science and Technology 21: 45-58.         [ Links ]

Mueller-Harvey I (2006) Unravelling the conundrum of tannins in animal nutrition and health. Journal Science Food Agricultural 86: 2010-2037.         [ Links ]

Newbold, JD, Bott TL, Kaplan LA, Sweeney BW, Vannote RL (1997) Organic matter dynamics in White Clay Creek, Pennsylvania, USA. Journal of the North American Benthological Society 16: 46-50.         [ Links ]

NRC (2007) Nutrient requirements of small ruminants, sheep, goats, cervids, and New World camelids. Animal Nutrition Series. The National Academy Press. Washington, DC, USA. 362 p.         [ Links ]

Olmedo JA, Rojo R, Arece J, Salem AZM, Morales E, Aviles F (2013) In vitro anthelmintic activity of crude aqueous extracts of Pithecellobium dulce and Lysiloma acapulcensis against gastrointestinal nematodes in small ruminants. Journal of Animal Science 91: 53-54.         [ Links ]

Porter LJ, Hrstich LN, Chan BG (1986) The conversion of procyanidins and prodelphinidins to cyanidin and delhpinidin. Phytochemistry 25: 223-230.         [ Links ]

Provenza FD, Burritt EA, Clausen TP, Bryant JP, Reichardt PB, Distel RA (1990) Conditioned flavor aversion: A mechanism for goats to avoid condensed tannins in black brush. American Naturalist 136: 810-828.         [ Links ]

Salem AZM, Salem MZM, El-Adawy MM, Robinson PH (2006) Nutritive evaluations of some browse tree foliages during the dry season: secondary compounds, feed intake and in vivo digestibility in sheep and goat. Animal Feed Science and Technology 127: 251-267.         [ Links ]

SAS Institute (2006) SAS User's Guide: Statistics. Ver 9.0. SAS Institute. Cary, N.C. USA. 956 p.         [ Links ]

Steel RGD, Torrie JH (1988) Bioestadística: Principios y procedimientos. McGraw-Hill. México. 622 p.         [ Links ]

Theodorou MK, Williams BA, Dhanoa MS, McAllan AB, France J (1994) A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology 48: 185-197.         [ Links ]

Van Soest PJ (1982) Nutritional Ecology of the Ruminant. Comstock, Cornell Univ. Press, New York, NY. 488 p.         [ Links ]

Van Soest PJ, Robertson JB, Lewis BA (1991) Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and non-starch carbohydrates in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science 74: 583- 597.         [ Links ]

Wina E, Muetzel S, Hoffmann E, Makkar HPS, Becker K (2005) Saponins containing methanol extract of Sapindus rarak affect microbial fermentation, microbial activity and microbial community structure "in vitro". Animal Feed Science and Technology 121: 159-174.         [ Links ]

Waghorn GC (2008) Beneficial and detrimental effects of dietary condensed tannins for sustainable sheep and goat production-progress and challenges. Animal Feed Science and Technology 147: 116-139.         [ Links ]