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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Rompimiento de la dormancia en semillas y propagación in vitro de Cordia elaeagnoides A. DC.]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Guadalajara Centro Universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Cordia elaeagnoides A. DC. is a timber species of tropical deciduous forests, which from the difficulty of their seeds to germinate, the species has limitations to reproduce. In this context, a method was developed to break dormancy and asexually propagate it through axillary bud proliferation in vitro. The presence of healthy embryos in 1 100 lots of 11 seeds (100 seeds per lot) were evaluated; it was found that 39.45 % of them correspond to this condition. 260 ppm gibberellic acid were tested with 24, 48 and 72 immersion hours; the first one reached 96 % of germination. To establish in vitro propagation, embryo rescue was made in the Murashige and Skoog (MS) culture medium supplemented with 2 mg L-1 benzyladenine; 82 % germination was achieved. Seedlings were used for axillary bud proliferation, on which the MS and McCown's media growth regulators 2-isopentiladenina, kinetin and benzyladenine at doses of 1, 2 and 3 mgL-1 were evaluated; an average of 3.03 shoots per explant was obtained in both kinetin and benzyladenine. For in vitro rooting 3-indole butyric acid at doses of 2.5 and 5 mg L-1 were used, plus adenine in darkness or photoperiod; data revealed that any 3-indole butyric acid dose induces rooting. It is concluded that for the germination of Cordia elaeagnoides seeds gibberellic acid should be applied to remove dormancy and for its asexual propagation in vitro, kinetin and benzyladenine in the proportions previously indicated must be used.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&nbsp;</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Rompimiento de la dormancia en semillas y propagaci&oacute;n in vitro de Cordia elaeagnoides A. DC.</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Breaking of dormancy in seeds and in vitro propagation of Cordia elaeagnoides A. DC.</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Fernando Santacruz Ruvalcaba<sup>1</sup>, Jos&eacute; Juvencio Casta&ntilde;eda Nava<sup>1</sup>, Ana Mar&iacute;a Gaspar Peralta<sup>1</sup>, Nancy N&uacute;&ntilde;ez Sandoval<sup>1</sup> y Antonio Mora Santacruz<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias, Universidad de Guadalajara</i>. Correo&#45;e: <a href="mailto:srf22191@cucba.udg.mx">srf22191@cucba.udg.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 4 de abril de 2014;    <br> 	Fecha de aceptaci&oacute;n: 23 de junio de 2014.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cordia elaeagnoides</i> es una especie maderable de selvas bajas caducifolias, que por la dificultad de sus semillas para germinar, la especie tiene limitaciones para reproducirse. En este contexto, se desarroll&oacute; un m&eacute;todo para romper la dormancia y propagarla asexualmente por medio de proliferaci&oacute;n de yemas axilares in vitro. Se evalu&oacute; la presencia de embriones sanos en 1 100 semillas de 11 lotes (100 semillas por lote); se constat&oacute; que 39.45 % del total corresponden a esta condici&oacute;n. Se probaron 260 ppm de &aacute;cido giber&eacute;lico con inmersi&oacute;n durante 24, 48 y 72 h; la primera alcanz&oacute; 96 % de germinaci&oacute;n. Para establecer la propagaci&oacute;n in vitro, se hizo rescate de embriones en el medio de cultivo Murashige y Skoog (MS) adicionado con 2 mgL<sup>&#45;1</sup> de benciladenina; se logr&oacute; 82 % de germinaci&oacute;n. Las pl&aacute;ntulas obtenidas se utilizaron para la proliferaci&oacute;n de yemas axilares, sobre las cuales se evaluaron los medios MS y McCown's, y los reguladores de crecimiento 2&#45;isopentiladenina, cinetina y benciladenina en dosis de 1, 2 y 3 mgL<sup>&#45;1</sup>; se obtuvo un promedio de 3.03 brotes por explante tanto en cinetina como benciladenina. Para la rizog&eacute;nesis in vitro se utiliz&oacute; &aacute;cido 3&#45;indolbut&iacute;rico a dosis de 2.5 y 5 mgL<sup>&#45;1</sup>, m&aacute;s adenina en oscuridad o fotoperiodo; los datos revelaron que cualquier dosis del &aacute;cido 3&#45;indolbut&iacute;rico induce la rizog&eacute;nesis. Se concluye que para la germinaci&oacute;n de semillas de <i>Cordia elaeagnoides</i> es conveniente aplicar &aacute;cido giber&eacute;lico para eliminar la dormancia y para la propagaci&oacute;n asexual in vitro, cinetina y benciladenina en las proporciones indicadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: &Aacute;cido giber&eacute;lico, <i>Cordia elaeagnoides</i> A. DC., germinaci&oacute;n, proliferaci&oacute;n de yemas axilares, rescate de embriones, rizog&eacute;nesis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cordia elaeagnoides</i> A. DC. is a timber species of tropical deciduous forests, which from the difficulty of their seeds to germinate, the species has limitations to reproduce. In this context, a method was developed to break dormancy and asexually propagate it through axillary bud proliferation in vitro. The presence of healthy embryos in 1 100 lots of 11 seeds (100 seeds per lot) were evaluated; it was found that 39.45 % of them correspond to this condition. 260 ppm gibberellic acid were tested with 24, 48 and 72 immersion hours; the first one reached 96 % of germination. To establish in vitro propagation, embryo rescue was made in the Murashige and Skoog (MS) culture medium supplemented with 2 mg L&#45;1 benzyladenine; 82 % germination was achieved. Seedlings were used for axillary bud proliferation, on which the MS and McCown's media growth regulators 2&#45;isopentiladenina, kinetin and benzyladenine at doses of 1, 2 and 3 mgL&#45;1 were evaluated; an average of 3.03 shoots per explant was obtained in both kinetin and benzyladenine. For in vitro rooting 3&#45;indole butyric acid at doses of 2.5 and 5 mg L&#45;1 were used, plus adenine in darkness or photoperiod; data revealed that any 3&#45;indole butyric acid dose induces rooting. It is concluded that for the germination of Cordia elaeagnoides seeds gibberellic acid should be applied to remove dormancy and for its asexual propagation in vitro, kinetin and benzyladenine in the proportions previously indicated must be used.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: Gibberellic acid, <i>Cordia elaeagnoides</i> A. DC., germination, axillary bud proliferation, embryo rescue, rhizogenesis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las selvas bajas caducifolias re&uacute;nen una riqueza de especies considerable; habitan en ellas, por ejemplo, <i>Cordia alliodora</i> (Ruiz et Pav.) Oken, <i>Cordia elaeagnoides</i> A. DC., <i>Tabebuia rosea</i> (Bertol.) DC. y <i>Tabebuia palmeri</i> Rose. <i>C. elaeagnoides</i> es integrante de la familia Boraginaceae, misma que se caracteriza, entre otros rasgos, por presentar incompatibilidad gam&eacute;tica (Gibbs, 1986; Brys et al., 2008; Loha et al., 2009; Mc Mullen, 2012). A esta especie se le denomina de distintas maneras en funci&oacute;n de las regiones en las que crece: "cueramo" en Michoac&aacute;n, "bojote" en Guerrero, "barcino" en Jalisco y "anacahuite" en Oaxaca. Su distribuci&oacute;n en M&eacute;xico abarca desde Jalisco hasta Chiapas y tiene gran importancia en su ecosistema pues se le considera gregaria del dosel (Van Groenendael et al., 1996); por otro lado, es muy utilizada en la industria de la madera, ya que con ella se elabora una gran diversidad de productos tales como llaveros, joyas, m&aacute;scaras, cajas, muebles, instrumentos musicales, juegos de sal&oacute;n y art&iacute;culos de cocina (P&eacute;rez, 1993). <i>C. elaeagnoides</i> tiene problemas relacionados con el aborto de embriones, lo cual disminuye la germinaci&oacute;n en condiciones naturales, a lo cual habr&iacute;a de agregarse que sus semillas tambi&eacute;n pueden ser atacadas por roedores generalistas (Van Groenendael et al., 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas constituyen la unidad m&oacute;vil y de reproducci&oacute;n sexual de las plantas, y cumplen con la funci&oacute;n de multiplicar y perpetuar la especie (Doria, 2010) y permiten que esta llegue a nuevos sitios y microambientes (Taiz y Zeiger, 1998).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de que un cultivo sea exitoso es imprescindible considerar tanto la calidad de la semilla (Baskin y Baskin, 2014), como algunos factores ambientales (disponibilidad de agua, temperatura, luz, ox&iacute;geno y di&oacute;xido de carbono), ya que influyen en el porcentaje y la velocidad de germinaci&oacute;n, muchos de los cuales son m&aacute;s o menos espec&iacute;ficos para distintos taxa (Rodr&iacute;guez, 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La viabilidad de la semilla est&aacute; determinada por caracter&iacute;sticas gen&eacute;ticas de la planta progenitora, las condiciones clim&aacute;ticas en distintas etapas (durante la floraci&oacute;n, el desarrollo y la maduraci&oacute;n del fruto), el grado de madurez de la semilla en la cosecha y el manejo en su colecta (Gallo et al., 2012; Baskin y Baskin, 2014).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha observado que especies de plantas originarias de ambientes en donde se presentan con frecuencia heladas y/o sequ&iacute;as son m&aacute;s propensas a cierto tipo de latencia en comparaci&oacute;n con especies de ambientes benignos (Jurado y Flores, 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otro factor que influye considerablemente en la conservaci&oacute;n de la viabilidad de la semilla, es la calidad y cantidad de sustancias qu&iacute;micas contenidas en el embri&oacute;n (Doria, 2010)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido giber&eacute;lico (AG<sub>3</sub>) activa el crecimiento vegetativo del embri&oacute;n durante la germinaci&oacute;n y promueve la producci&oacute;n o secreci&oacute;n de enzimas hidrol&iacute;ticas principalmente &#945;&#45;amilasa, enzima involucrada en la solubilizaci&oacute;n de las reservas del endospermo (Salinas et al., 2002). El almid&oacute;n y las prote&iacute;nas son desdobladas por varias enzimas; los az&uacute;cares, amino&aacute;cidos y otros productos son transportados para el crecimiento del embri&oacute;n (Ta&iacute;z y Zeiger, 1998).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo <i>in vitro</i> permite propagar vegetales de manera asexual, y por lo tanto, multiplicar masivamente a las especies. Los reguladores de crecimiento m&aacute;s utilizados en la formaci&oacute;n de brotes son benciladenina, cinetina y bencilaminopurina (del grupo de las citocininas) y la inducci&oacute;n puede provenir de callo, nudos o meristemos apicales (Phulwaria y Shekhawat, 2013). Se han documentado casos de rizog&eacute;nesis dentro de la familia Boraginaceae al aplicar &aacute;cido indol&#45;3&#45;ac&eacute;tico, &aacute;cido indol&#45;3&#45;but&iacute;rico y &aacute;cido naftalenac&eacute;tico, reguladores que var&iacute;an en cuanto a la eficiencia en funci&oacute;n del tax&oacute;n (Edson et al., 1996; Martin, 2003; Schuler et al., 2005; Phulwaria y Shekhawat, 2013).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a que <i>Cordia elaeagnoides</i> en la regi&oacute;n Costa del estado de Jalisco produce muchas semillas con aborto de embriones y presenta dificultad en la germinaci&oacute;n de semillas, se plante&oacute; como objetivo del presente trabajo, desarrollar una t&eacute;cnica para romper la dormancia y propagar asexualmente la especie por medio de proliferaci&oacute;n de yemas axilares in vitro.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recolecci&oacute;n de semillas</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas de <i>C. elaeagnoides</i> se colectaron en Tomatl&aacute;n, Jalisco, M&eacute;xico (19&#176;56'3'' N y 105&#176;14'8''O), a 50 msnm. Se eligieron veinte ejemplares sanos, de buena altura, fuste limpio y amplia masa foliar, con flores que mantuvieran color caf&eacute; (indicio que los frutos est&aacute;n en el mejor momento); se almacenaron en costales y cada muestra se numer&oacute; en funci&oacute;n del &aacute;rbol del que fue tomada (<a href="#f1">figuras 1a</a>, <a href="#f1">c</a>). Se traslad&oacute; la semilla al Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales del Departamento de Producci&oacute;n Agr&iacute;cola del Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias (CUCBA) para su limpieza, pruebas de germinaci&oacute;n y cultivo <i>in vitro</i>.</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1" id="f"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a href="/img/revistas/remcf/v5n25/a7f1a.jpg" target="_blank"><img src="/img/revistas/remcf/v5n25/a7f1b.jpg">    <br>     Haga clic para agrandar</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Identificaci&oacute;n de embriones sanos</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para seleccionar semillas con embriones sanos se compararon dos m&eacute;todos: 1) la prueba de corte en 11 lotes con un total 100 semillas evaluadas por lote. Se parti&oacute; la testa de la semilla con una tijera; se observ&oacute; el color y la textura del endospermo y se verific&oacute; que el embri&oacute;n estuviera bien desarrollado. Se contabiliz&oacute; el n&uacute;mero de semillas con embriones sanos por lote. 2) la t&eacute;cnica de columna densim&eacute;trica, para determinar por medio del peso, si las semillas estaban en buenas condiciones o eran semillas inviables para aplicarla se utiliz&oacute; una m&aacute;quina que consta de un cilindro de metacrilato transparente con un separador neum&aacute;tico de semillas, que por medio de inyecci&oacute;n de aire, separa las semillas de menor peso (inviables) hacia un recipiente al que suben; y las que tienen un mayor peso quedan en la parte inferior de este cilindro. Se contabiliz&oacute; el porcentaje de semillas sanas y las inviables, para establecer un comparativo entre estos dos m&eacute;todos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tratamientos de semillas con &aacute;cido giber&eacute;lico</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se prepar&oacute; una diluci&oacute;n de &aacute;cido giber&eacute;lico (AG<sub>3</sub>) a 260 ppm en la que se colocaron 30 semillas de cada uno de 20 lotes, con tiempos de inmersi&oacute;n de 24, 48 y 72 h; se contabiliz&oacute; el n&uacute;mero de semillas germinadas de acuerdo al tiempo de inmersi&oacute;n en dichos tratamientos, comparando con un testigo sin tratamiento. Las semillas fueron sembradas en charolas germinadoras, como sustrato se utiliz&oacute; una mezcla de musgo canadiense y vermicomposta en una proporci&oacute;n de 40:60 respectivamente. Todas las charolas fueron trasladadas a un invernadero a una temperatura media de 30 &#176;C, en donde se regaron diariamente. Las evaluaciones de la germinaci&oacute;n se realizaron a los 7, 14, 21 y 28 d&iacute;as.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Proliferaci&oacute;n de yemas axilares <i>in vitro</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el establecimiento in vitro de <i>Cordia eleagnoides</i> fue necesario el rescate de embriones cig&oacute;ticos. Las semillas se desinfectaron en una soluci&oacute;n de hipoclorito de sodio al 3 % por un periodo de 10 min. Se enjuagaron con agua est&eacute;ril y se dejaron en remojo por 24 h. Para la extracci&oacute;n del embri&oacute;n se utiliz&oacute; un microscopio estereosc&oacute;pico Carl Zeiss Stemi DR 1040; se elimin&oacute; la testa y los embriones se colocaron en el medio de cultivo MS (Murashige y Skoog, 1962) adicionado con 2 mgL<sup>&#45;1</sup> de benciladenina (BA), 8 gL<sup>&#45;1</sup> de agar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando se obtuvieron los brotes, se desarroll&oacute; un experimento con un arreglo trifactorial (3x3x2); las variables fueron los reguladores de crecimiento 2&#45;isopentiladenina (2ip), benciladenina (BA) y cinetina (KIN), cada uno con tres concentraciones (1, 2 y 3 mgL<sup>&#45;1</sup>) y en dos diferentes medios basales, MS y McCown (Lloyd y McCown, 1980).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La elaboraci&oacute;n de los medios de cultivo se realiz&oacute; de la siguiente manera: los medios basales de los medios referidos fueron suplementados con vitaminas L2 (Phillips y Collins, 1979), 3 % de sacarosa y, para solidificar el medio, se aplicaron 8 gL<sup>&#45;1</sup> de Phytagel&#174; (Sigma Chemical Co. Cat. A&#45;1296). Se emplearon frascos de vidrio de alimento infantil de 100 mL de capacidad como contenedores, a los cuales se les adicionaron 25 mL del medio de cultivo respectivo. Se hicieron cinco repeticiones por tratamiento (un frasco con un brote se consider&oacute; como una repetici&oacute;n). La evaluaci&oacute;n del n&uacute;mero de brotes generados se llev&oacute; acabo a los 45 d&iacute;as de iniciado el experimento. Ambos sustratos se ajustaron a un pH 5.8, previo a la esterilizaci&oacute;n en autoclave (121 &#176;C a 1.2 kg cm<sup>&#45;2</sup> de presi&oacute;n durante 15 min). La incubaci&oacute;n del material vegetal en los experimentos fue a 27 &#177; 2 &#176;C con un fotoperiodo de 16 h de luz fluorescente a 1 500 lux (25 mmol s<sup>&#45;1</sup> m<sup>&#45;2</sup>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Inducci&oacute;n de rizog&eacute;nesis y elongaci&oacute;n de tallos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la inducci&oacute;n de ra&iacute;ces se estableci&oacute; un ensayo con un dise&ntilde;o en arreglo trifactorial 3x2x2, en el cual se utiliz&oacute; el &aacute;cido indol3but&iacute;rico en tres diferentes concentraciones (0, 2.5 y 5 mgL<sup>&#45;1</sup>), la presencia o ausencia de adenina (40 mgL<sup>&#45;1</sup>), fotoperiodo (16 h luz/8 h oscuridad) y oscuridad durante las 24 h. Los tratamientos que requer&iacute;an de oscuridad se cubrieron completamente con papel aluminio. El medio utilizado fue McCown y como gelificante 3 gL<sup>&#45;1</sup> de Phytagel&#174;. La incubaci&oacute;n del material vegetal en los experimentos se realiz&oacute; a una temperatura de 27 &#177; 2 &#176;C. Cada tratamiento cont&oacute; con cinco repeticiones y fueron evaluados a los 45 d&iacute;as.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">An&aacute;lisis estad&iacute;stico&#9;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico de la propagaci&oacute;n asexual mediante el cultivo <i>in vitro</i> de <i>Cordia elaeagnoides</i> se utiliz&oacute; el software Statgraphics Plus 4.0&#174;. Se realizaron los an&aacute;lisis de varianza para cada uno de los experimentos mediante los cuales se evaluaron las variables de respuesta correspondientes, adem&aacute;s de realizar la comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias mediante la prueba de diferencias m&iacute;nimas significativas (LSD).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Identificaci&oacute;n de embriones sanos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de embriones sanos fue bajo; en la prueba que se realiz&oacute; por corte en la semilla, fueron 39.45 % en promedio y 60.55 % estaban da&ntilde;ados (<a href="#f1">Figura 1b</a>); con la separaci&oacute;n por columna densim&eacute;trica se obtuvieron 33.45 % sanos y 66.55 % da&ntilde;ados; no hubo grandes diferencias entre las dos t&eacute;cnicas, sin embargo por el m&eacute;todo manual se contabiliz&oacute; un mayor n&uacute;mero de embriones sanos (<a href="#c1">Cuadro 1</a>), lo que puede atribuirse a un error de observaci&oacute;n, ya que es dif&iacute;cil determinar si est&aacute;n enteros y completamente desarrollados. La t&eacute;cnica de la columna densim&eacute;trica se perfila como una prueba r&aacute;pida y confiable. Los conteos son importantes, ya que permiten observar tendencias en la sanidad de semillas.</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1" id="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">Cuadro 1. Comparaci&oacute;n de dos m&eacute;todos para determinar el porcentaje de semillas de Cordia elaeagnoides A. DC. con embriones sanos en 11 lotes.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a href="/img/revistas/remcf/v5n25/a7c1a.jpg" target="_blank"><img src="/img/revistas/remcf/v5n25/a7c1b.jpg">    <br> 	Haga clic para agrandar</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Determinaci&oacute;n de tratamientos de semillas con AG<sub>3</sub> para la germinaci&oacute;n</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el tratamiento que consider&oacute; 3 tiempos de imbibici&oacute;n y una dosis de 260 ppm de AG<sub>3</sub> hubo respuestas de germinaci&oacute;n variables; las semillas de los lotes 13, 17 y 19 tuvieron los mejores resultados (Cuadro 2); la germinaci&oacute;n <i>C. elaeagnoides</i> fue beneficiada por la ruptura de la dormancia, como efecto del AG<sub>3</sub>; al comparar los tres tiempos, el &oacute;ptimo fue el correspondiente al lote 13 (24 h de imbibici&oacute;n en 260 ppm de AG<sub>3</sub>), ya que de &eacute;l germin&oacute; 96.6 % de las semillas. La activaci&oacute;n del embri&oacute;n generalmente se debe a la estimulaci&oacute;n enzim&aacute;tica mediada por el AG<sub>3</sub>; Salinas et al. (2002) indican que este &aacute;cido promueve la s&iacute;ntesis de algunas enzimas, entre las cuales destacan la &#945;&#45;amilasa y la dextrina l&iacute;mite, la &#945; y &#946; glucosidasas, las endo&#45;&#946; gluconasas y las endoxilasas, lo que permite la movilizaci&oacute;n de hidratos de carbono para el crecimiento y desarrollo del embri&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante las pruebas de germinaci&oacute;n de las semillas de <i>Cordia elaeagnoides</i> se observ&oacute; en la mayor parte de los lotes estudiados que no tuvieron AG<sub>3</sub> no se estimul&oacute; dicha respuesta. Los lotes de semillas 17, 19 y 13 (<a href="#c2">Cuadro 2</a>) con tratamiento de imbibici&oacute;n de 24 h y 260 ppm de AG<sub>3</sub> fueron los que alcanzaron m&aacute;s altos porcentajes de germinaci&oacute;n y de ellos sobresali&oacute; el 13. Se reconocen limitaciones en la obtenci&oacute;n de semillas completas y la germinaci&oacute;n de ellas en especies de la familia Boraginaceae, lo que parece responder a diversos des&oacute;rdenes morfol&oacute;gicos o fisiol&oacute;gicos, problema que est&aacute; relacionado con la distilia, que es una reacci&oacute;n de incompatibilidad que seg&uacute;n Brys et al. (2008) y Mc Mullen (2012) afecta a muchas especies del g&eacute;nero <i>Cordia</i>.</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2" id="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">Cuadro 2. Rompimiento de la dormancia en semillas de Cordia elaeagnoides A. DC. mediante tratamientos de inmersi&oacute;n en &aacute;cido giber&eacute;lico (AG3).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a href="/img/revistas/remcf/v5n25/a7c2a.jpg" target="_blank"><img src="/img/revistas/remcf/v5n25/a7c2b.jpg">    <br> 	Haga clic para agrandar</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Proliferaci&oacute;n de yemas axilares en brotes de <i>Cordia elaeagnoides</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La propagaci&oacute;n <i>in vitro</i> de la especie se inici&oacute; con el establecimiento a partir del rescate de embriones cig&oacute;ticos de la semilla; los resultados obtenidos con esta t&eacute;cnica fueron satisfactorios, pues del total de los embriones rescatados se obtuvo 82 % de germinaci&oacute;n. A los 2 d&iacute;as posteriores al establecimiento, se inici&oacute; el proceso de germinaci&oacute;n con el despliegue de los cotiledones (Figura 1d). Despu&eacute;s de siete d&iacute;as de iniciado el cultivo, el desarrollo de la planta era &oacute;ptimo, incluso presentaron indicios radiculares. A los 30 d&iacute;as los problemas oxidativos comenzaron a presentarse en la mayor&iacute;a de las plantas desarrolladas. La t&eacute;cnica de rescate de embriones ha sido utilizada anteriormente exitosamente en <i>Persea americana</i> Mill, en un programa para la multiplicaci&oacute;n vegetativa con el fin de llevar a cabo mejoramiento gen&eacute;tico. Los embriones maduros e inmaduros fueron extra&iacute;dos y cultivados en medio MS a la mitad de su concentraci&oacute;n y se les adicion&oacute; 0.5 mgL<sup>&#45;1</sup> de 6&#45;bencil amino purina y la misma cantidad de &aacute;cido giber&eacute;lico (Rodr&iacute;guez et al., 1999). <i>Pinus maximartinezii</i> Rzedowski tambi&eacute;n ha sido propagada de esta forma, con el prop&oacute;sito de conservar y expandir a esta especie en peligro de extinci&oacute;n (Ojeda et al., 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez que se corrobor&oacute; la viabilidad de las semillas y la sanidad de los embriones, se eliminaron los compuestos fen&oacute;licos (su abundante producci&oacute;n se observ&oacute; en la germinaci&oacute;n en papel absorbente), lo que se logra mec&aacute;nicamente, al raspar la testa; este procedimiento ayuda a evitar la oxidaci&oacute;n del medio de cultivo y a eliminar la dureza de la cubierta seminal. Se pudo advertir que, a pesar de que la testa se raspara casi en su totalidad, no hubo respuesta germinativa; esto puede indicar que la latencia f&iacute;sica y la presencia de compuestos fen&oacute;licos no son el &uacute;nico obst&aacute;culo que enfrentan las semillas de <i>C. elaeagnoides</i>. Habr&iacute;a de suponerse que existen otros inhibidores de la germinaci&oacute;n, como pudiera ser el &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA), que protege a la planta en escenarios de estr&eacute;s al inhibir la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas y de &aacute;cidos nucleicos e inducir la abscisi&oacute;n y la senescencia; adem&aacute;s afecta las membranas y mantiene el nivel de otras hormonas y controla el almacenamiento de prote&iacute;nas de reserva (Zhang et al., 2012); se recomienda realizar un an&aacute;lisis de concentraci&oacute;n de ABA en las semillas de <i>C. elaeagnoides</i> para determinar su participaci&oacute;n en este proceso.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de 45 d&iacute;as no hubo significancia en la producci&oacute;n de brotes por el tipo de medio (p= 0.1714), ni por la cantidad de regulador (p= 0.0714); en el caso del regulador utilizado hubo alta significancia (p=0.0004), al realizar una comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias con ayuda de la prueba de Diferencias M&iacute;nimas Significativas (LSD). La mayor estimulaci&oacute;n de brotes pasado este lapso la ejercieron los tratamientos en presencia del regulador de crecimiento KIN y BA, con una eficiencia superior de hasta 1,5 veces m&aacute;s que 2ip (<a href="#c3">Cuadro 3</a>) (<a href="#f1">Figura 1f</a>). Con respecto a la concentraci&oacute;n, aunque en la prueba de an&aacute;lisis de varianza no se muestra una diferencia, se confirma cierta tendencia positiva al generar un n&uacute;mero de brotes m&aacute;s alto y una menor oxidaci&oacute;n de los tejidos cuando son utilizadas concentraciones m&aacute;s bajas (1 mgL<sup>&#45;1</sup>). Esto ha sido mencionado por Balla et al. (2002) quienes explican que la adici&oacute;n de citocininas tiene un efecto represor de la dominancia apical, lo que provoca la proliferaci&oacute;n de brotes por medio de la estimulaci&oacute;n de las yemas axilares. Los tejidos oxidados fueron muy notorios conforme el trascurso del tiempo, en particular aquellas estructuras con el regulador 2ip y en la mayor concentraci&oacute;n 3 mgL<sup>&#45;1</sup>, adem&aacute;s de generar callo pubescente en la parte basal (<a href="#f1">Figura 1g</a>).</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3" id="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">Cuadro 3. Comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias de Diferencias M&iacute;nimas Significativas para el n&uacute;mero de brotes de Cordia elaeagnoides A. DC. a los 45 d&iacute;as.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remcf/v5n25/a7c3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fue estrictamente necesario adicionar reguladores de crecimiento para inducir los brotes en <i>C. elaeagnoides</i>, lo que difiere con lo consignado por Tacoronte et al. (2004), quienes propagaron otra especie maderable tropical, <i>Swietenia macrophylla</i> King, por medio de yemas axilares y con la mejor respuesta en ausencia de reguladores de crecimiento. En <i>Arnebia hispidissima</i> (Lehm.) A. DC., especie que pertenece tambi&eacute;n a la familia Boraginaceae, el uso de los reguladores KIN y BAP es favorable para la producci&oacute;n de brotes (Phulwaria y Shekhawat, 2013).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque estad&iacute;sticamente no se confirm&oacute; significancia con respecto a los medios basales, los cultivos en el medio MS comenzaron a generar un mayor n&uacute;mero de brotes en un principio, pero en los an&aacute;lisis posteriores, estos brotes se redujeron por el aumento en la oxidaci&oacute;n, y mostraron un ligero amarillamiento. En el medio McCown, por el contrario, los cultivos manifestaron un n&uacute;mero inferior de brotes, pero la oxidaci&oacute;n fue menor y presentan una coloraci&oacute;n muy favorable. Cualitativamente se mostr&oacute; una estrecha relaci&oacute;n entre el tipo de medio de cultivo utilizado y el regulador adicionado, de lo que result&oacute; ser m&aacute;s eficiente la utilizaci&oacute;n de BA para el medio MS y KIN para el medio McCown.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La oxidaci&oacute;n puede deberse principalmente por la acumulaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos y principalmente al etileno. Tambi&eacute;n a cierta sensibilidad a los reguladores de crecimiento, pues fue m&aacute;s notoria en aquellos que presentaban una mayor concentraci&oacute;n de dichos compuestos (Basail et al., 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schuler et al. (2005) demostraron que <i>Cordia alliodora</i> presenta una tasa de p&eacute;rdida muy alta en el cultivo de tejidos vegetativos y la catalogaron como una especie recalcitrante para el cultivo in vitro. <i>C. elaeagnoides</i> tambi&eacute;n podr&iacute;a considerarse dentro de este tipo de especies por la tasa de p&eacute;rdida ocasionada por la oxidaci&oacute;n y acumulaci&oacute;n de etileno, lo cual fue dif&iacute;cil controlar y caus&oacute; detrimento considerable a los brotes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Inducci&oacute;n de rizog&eacute;nesis y elongaci&oacute;n de tallos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de transcurridos 45 d&iacute;as del establecimiento, dos factores tuvieron alta significancia para estimulaci&oacute;n de ra&iacute;ces: la concentraci&oacute;n del regulador (p=0.0001) y la presencia o ausencia de luz para inducci&oacute;n del n&uacute;mero de las mismas (p=0.0000). La utilizaci&oacute;n de 1500 lux con un fotoper&iacute;odo de 16 h luz y 8 h oscuridad fue el mejor tratamiento para generar ra&iacute;ces (1.43 ra&iacute;ces por explante a los 45 d&iacute;as).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al realizar la comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias mediante la prueba LSD para la inducci&oacute;n de ra&iacute;ces, se encontr&oacute; que la mayor estimulaci&oacute;n de rizog&eacute;nesis despu&eacute;s de los 45 d&iacute;as (<a href="#f1">Figura 1e</a>), la ejerc&iacute;an los tratamientos en presencia de &aacute;cido indol&#45;3 but&iacute;rico en concentraciones de 2.5 y 5 mgL<sup>&#45;1</sup> (<a href="#c4">Cuadro 4</a>). Las auxinas est&aacute;n involucradas en casi todos los aspectos del crecimiento y desarrollo de la planta, desde el estado embrionario hasta el estado reproductivo. Una de sus funciones es la elongaci&oacute;n de los tallos por medio de la estimulaci&oacute;n de la divisi&oacute;n celular y tambi&eacute;n la formaci&oacute;n del sistema radicular (Phulwaria y Shekhawat, 2013). Por ello su aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena resulta ser esencial en diferentes especies para inducci&oacute;n de rizog&eacute;nesis, como sucede con <i>C. elaeagnoides</i>, pues est&aacute; estrechamente emparentada con <i>Cordia alliodora</i>; Schuler et al. (2005) intentaron su enraizamiento solamente con la adici&oacute;n de sacarosa (15 gL<sup>&#45;1</sup> L<sup>&#45;1</sup>) y carb&oacute;n activado (2 gL<sup>&#45;1</sup>), y no lo lograron. Por el contrario, Tacoronte et al. (2004) obtuvieron el enraizamiento de <i>Swietenia macrophylla</i> por medio de un balance entre auxinas y citocininas (8. 9 mgL<sup>&#45;1</sup> de &aacute;cido indol 3&#45;but&iacute;rico (AIB), 2.2 mgL<sup>&#45;1</sup> de &aacute;cido naftalenac&eacute;tico (ANA), 4.0 mgL<sup>&#45;1</sup> de KIN).</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4" id="c4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">Cuadro 4. Comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias de Diferencias M&iacute;nimas Significativas para el n&uacute;mero de ra&iacute;ces de <i>Cordia elaeagnoides</i> A. DC. estimulados a los 45 d&iacute;as.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remcf/v5n25/a7c4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de transcurrido el periodo indicado se observ&oacute; una tasa de p&eacute;rdida de tejidos muy alta, todo debido a la excesiva producci&oacute;n de etileno derivada de la acci&oacute;n del &aacute;cido indolac&eacute;tico como otras auxinas sint&eacute;ticas (Zhao y Hasenstein, 2009). Muchos de los efectos de las auxinas se deben a la coparticipaci&oacute;n con el etileno al inhibir su producci&oacute;n; en este caso la actividad de las auxinas se afect&oacute;, por lo que se recomienda adicionar agentes antioxidantes al medio de cultivo para el enraizamiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La utilizaci&oacute;n de 1 500 lux fue altamente significativa (P=0.0001) para la elongaci&oacute;n de los tallos, lo que aument&oacute; 0.7 cm en promedio, mientras que en etiolaci&oacute;n (sin iluminaci&oacute;n) s&oacute;lo aumentaron 0.3 cm. La ausencia de luz prepara a los explantes para el enraizamiento por medio de la estimulaci&oacute;n de la producci&oacute;n de auxinas, por lo que la aplicaci&oacute;n de t&eacute;cnicas como la etiolaci&oacute;n permite iniciar el proceso de rizog&eacute;nesis (Castro y S&aacute;nchez, 2010). La presencia de luz conserva un mayor n&uacute;mero de brotes y, por el contrario, la etiolaci&oacute;n genera una alta tasa de p&eacute;rdida de los tejidos, en primera instancia debido a la baja tasa de fotos&iacute;ntesis, por lo que los tejidos se comienzan a tornar amarillentos y posteriormente mueren. El segundo efecto negativo de la etiolaci&oacute;n fue la estimulaci&oacute;n de producci&oacute;n de etileno, por lo que la abscisi&oacute;n y muerte de los brotes era cada vez mayor conforme el transcurso del tiempo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se recomienda experimentar con diferentes periodos de etiolaci&oacute;n, que favorezcan mejores resultados y observar la elongaci&oacute;n de los tallos, ya que en el experimento aqu&iacute; descrito no fue posible por la p&eacute;rdida de la mayor&iacute;a de los explantes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo anteriormente expuesto en el presente trabajo se considera que <i>C. elaeagnoides</i> amerita ser estudiada m&aacute;s a detalle en la biolog&iacute;a de la reproducci&oacute;n para tener mayor conocimiento de sus limitaciones en la germinaci&oacute;n y viabilidad de la semilla, ya que es un &aacute;rbol de inter&eacute;s maderable de las selvas bajas caducifolias de la vertiente del Pac&iacute;fico de M&eacute;xico.</font>	</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La selecci&oacute;n de semilla en <i>C. elaeagnoides</i> con embriones sanos es importante para asegurar un porcentaje alto de germinaci&oacute;n, misma que se favorece con per&iacute;odos de inmersi&oacute;n de la semilla en &aacute;cido giber&eacute;lico (AG<sub>3</sub>) por 24 h, preferentemente. La propagaci&oacute;n in vitro es factible en la especie, a partir del rescate de embriones cig&oacute;ticos, y la proliferaci&oacute;n de brotes a partir de yemas axilares con la adici&oacute;n de las citocininas, cinetina o benciladenina y la inducci&oacute;n de ra&iacute;ces con la presencia de la auxina &aacute;cido indol3but&iacute;rico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Balla, J., J. Bla&#382;kov&aacute;, V. Reinnov and S. Prochhv&aacute;a. 2002. Involvement of auxin and cytokinins in initiation of growth of isolated peabuds. Plant Growth Regulation 38: 149&#150;156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971875&pid=S2007-1132201400050000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Basail, M., R. G. Kosky, V. Medero, E. Otero, M. Torres, M. Cabrera, J. L&oacute;pez, M. Garc&iacute;a, A. Santos, A. Rayas, J. Ventura, M. Bauta, M. &Aacute;lvarez, E. P&aacute;z, Y. Beovidez, J. Albert, A. Espinosa y J. Garc&iacute;a. 2006. Influencia de reguladores e inhibidores del crecimiento en la multiplicaci&oacute;n de brotes axilares del cultivar h&iacute;brido &#8216;FHIA&#45;21' (AAAB) en sistema de inmersi&oacute;n temporal. Biotecnolog&iacute;a Vegetal 6: 23 &#150; 28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971877&pid=S2007-1132201400050000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baskin, C. C. and J. M. Baskin. 2014. Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. Academic Press. San Diego, CA, USA. 1600 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971879&pid=S2007-1132201400050000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brys, R., H. Jacquemyn, M. Hermy and T. Beeckman. 2008. Pollen deposition rates and the functioning of distyly in the perennial <i>Pulmonaria officinalis</i> (Boraginaceae). Plant Systematics and Evolution 273:1&#150;12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971881&pid=S2007-1132201400050000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castro, R. D. y G. A. S&aacute;nchez R. 2010. Propagaci&oacute;n clonal in vitro de Eucalyptus pellita F. Muell a partir de &aacute;rboles plus. Temas Agrarios 15: 34 &#45; 43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971883&pid=S2007-1132201400050000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doria, J. 2010. Generalidades sobre las semillas: su producci&oacute;n, conservaci&oacute;n y almacenamiento. Cultivos Tropicales 31 (1): 74&#45;85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971885&pid=S2007-1132201400050000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Edson, J. L., A. D. Leege&#45;Brusven, R. L. Everetl and D. L. Wenny. 1996. Minimizing growth regulators in shoot culture of an endangered plant, <i>Hackelia venusta</i> (Boraginaceae). In vitro Cellular &amp; Developmental Biology 32: 267&#45;271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971887&pid=S2007-1132201400050000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gallo, C., J. M. Enrico, R. Craviotto y M. Arango. 2012. Variabilidad de la viabilidad y vigor de lotes de semillas de soja con presencia de simientes verdes pertenecientes a cultivares de distintos grupos de maduraci&oacute;n producidos en dos fechas de siembra. Revista de Investigaciones Agropecuarias 38: 133&#45;140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971889&pid=S2007-1132201400050000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gibbs, P. E. 1986. Do homomorphic and heteromorphic self&#45;incompatibility systems have the same sporophytic mechanism? Plant Systematics and Evolution 154: 285&#45;323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971891&pid=S2007-1132201400050000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jurado, E. and J. Flores. 2005. Is seed dormancy under environmental control or bound to plant traits? Journal of Vegetation Science 16: 559&#45;564.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971893&pid=S2007-1132201400050000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lloyd, G. and B. H. McCown. 1980. Commercially&#45;feasible micropropagation of Mountain Laurel (<i>Kalmia latifolia</i>) by shoot tip culture. Procedings International Plant Propagators Society 30: 421&#45;427.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971895&pid=S2007-1132201400050000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Loha, A., M. Tigabu and A. Fries. 2009. Genetic variation among and within populations of <i>Cordia africana</i> in seed size and germination responses to constant temperatures. Euphytica 165: 189&#45;196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971897&pid=S2007-1132201400050000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martin, K. P. 2003. Rapid <i>in vitro</i> multiplication and ex vitro rooting of <i>Rotula aquatica</i> Lour., a rare rhoeophytic woody medicinal plant. Plant Cell Reports 21: 415&#150;420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971899&pid=S2007-1132201400050000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mc Mullen, C. K. 2012. Pollination of heterostylous G&aacute;lapagos native, Cordia lutea (Boraginaceae). Plant Systematics and Evolution 298: 569&#45;579.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971901&pid=S2007-1132201400050000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15: 473&#45;497.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971903&pid=S2007-1132201400050000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ojeda Z., M. C., H. L. Olvera, L. M. Ramos, M. J. Star, T. Cepeda, P. Alf&eacute;rez, L. I. Donjuan, E. O. S&aacute;enz, R. S&aacute;enz y E. C. Cerda. 2006. Multiplicaci&oacute;n in vitro del Pi&ntilde;&oacute;n Azul <i>Pinus maximartinezii</i> (Rzedowski). Phyton 75: 109&#45;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971905&pid=S2007-1132201400050000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Orantes G., C., M. A. P&eacute;rez F., T. M. Rioja P. y E. R. Garrido R. 2013. Viabilidad y germinaci&oacute;n de semillas de tres especies arb&oacute;reas nativas de la selva tropical, Chiapas, M&eacute;xico. Polibot&aacute;nica 36: 117&#45;127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971907&pid=S2007-1132201400050000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez O., C. P. 1993. Anatom&iacute;a de la madera de ocho especies con importancia en las artesan&iacute;as del estado de Michoac&aacute;n. Acta Bot&aacute;nica Mexicana 23: 103&#45;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971909&pid=S2007-1132201400050000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phillips, G. C. and G. B. Collins. 1979. In vitro tissue culture of selected legumes and plant regeneration from callus cultures of red clover. Crop Science 19:59&#45;64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971911&pid=S2007-1132201400050000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phulwaria, M. and N. S. Shekhawat. 2013. An efficient in vitro shoot regeneration from immature in florescence and ex vitro rooting of <i>Arnebia hispidissima</i> (Lehm). DC. &#45; A red dye (Alkannin) yielding plant. Physiology Molecular Biology of Plants 19(3): 435&#150;441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971913&pid=S2007-1132201400050000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez E., M. R. 2008. Influencia de la temperatura en la germinaci&oacute;n de semillas de <i>Caesalpinia spinosa</i> (Molina) Kuntze &#171;taya&#187; de cuatro localidades del Departamento La Libertad, Per&uacute;. Arnaldoa 15: 87 &#150; 100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971915&pid=S2007-1132201400050000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez, N. N., M. Capote y V. Zamora. 1999. Cultivo <i>in vitro</i> del aguacatero (<i>Persea americana</i> Mill.). Revista Chapingo Serie Horticultura 5: 231&#45;237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971917&pid=S2007-1132201400050000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salinas, A. R., A. M. Yoldjian, M. L. Dietrich, R. M. Craviotto y V. Bisaro. 2002. Comportamiento de glicinina, &#946;&#45;conglicinina y &#945;&#45;amilasa en semillas de soja deterioradas y no deterioradas. Pesquisa Agropecu&aacute;ria Brasileira 37: 1175&#45;1181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971919&pid=S2007-1132201400050000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schuler G., I., S. Baquero O., D. Gaona T., E. Vega G., J. Rodr&iacute;guez R., C. Ram&iacute;rez S., V. Nieto R. y E. Hodson J. 2005. Propagaci&oacute;n <i>in vitro</i> de material seleccionado de <i>Tabebuia rosea</i> (Bertol.) DC. (Ocobo) y Cordia alliodora (Ruiz &amp; Pav.) Oken (Nogal Cafetero). Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a 6: 39&#45;50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971921&pid=S2007-1132201400050000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tacoronte, M., M. Vielma, A. Mora y C. Valecillos. 2004. Propagaci&oacute;n <i>in vitro</i> de caoba (<i>Swietenia macrophylla</i> King) a partir de yemas axilares. Acta Cient&iacute;fica Venezolana 55: 7&#45;12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971923&pid=S2007-1132201400050000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taiz, L. and E. Zeiger. 1998. Plant physiology. Sinauer Associates, Inc. Suderland, MA, USA. 792 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971925&pid=S2007-1132201400050000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Van Groenendael, J. M., S. H. Bullock and L. A. P&eacute;rez J. 1996. Aspects of the population biology of the gregarious tree <i>Cordia elaeagnoides</i> in a Mexican tropical deciduous forest. Journal of Tropical Ecology 12: 11&#45;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971927&pid=S2007-1132201400050000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhang, L., Y. Hu, S. Yan, H. Li, S. He, M. Huang and L. Li. 2012. ABA&#45;mediated inhibition of seed germination is associated with ribosomal DNA chromatin condensation, decreased transcription, and ribosomal RNA gene hypoacetylation. Plant Molecular Biology 79:285&#150;293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971929&pid=S2007-1132201400050000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhao, Y. and K. H. Hasenstein. 2009. Primary root growth regulation: the role of auxin and ethylene antagonists. Plant. Growth Regululation 28: 309&#150;320.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7971931&pid=S2007-1132201400050000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remcf/v5n25/a7i1.jpg"></font></p>      ]]></body><back>
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