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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias pecuarias]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Hormona luteinizante y actividad ovárica en respuesta a kisspeptina-10 y su asociación con IGF-1 y leptina en becerras pre-púberes]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Luteinizing hormone and ovarian activity in response to kisspeptin-10 and its association with IGF-1 and leptin in prepubertal heifers]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We evaluated the effect of kisspeptin-10 (Kiss-10) administered repeatedly on the release of LH and ovarian activity in prepubertal heifers. We also assessed the association of serum IGF-1 and leptin with these effects. Fourteen Holstein or Brown Swiss by Zebu female calves (11.2 ± 0.2 mo old, 187.4 ± 6.3 kg) were randomly assigned to receive every 2 h for three days an i.v. application of Kiss-10 (Kisspeptin-10; 5 pg/kg of body weight, n= 7) or saline solution (control, n= 7). Blood was collected every 15 min for 0-6, 24-30 and 72-78 h, and every 2 h until 84 h. Each application of Kiss-10 was followed by an increase of LH whose magnitude (area under the curve) decreased (P<0.05) over time. Kiss-10 induced a preovulatory surge of LH and corpus luteum formation in 28.5 % of the calves. Ovulating calves had the highest (P<0.05) serum concentrations of 1Gf-1 and the lowest (P<0.05) leptin. During 63 post-treatment days, no changes were detected in follicular waves attributable to treatments (P&gt;0.05) and heifers did not show cyclic ovarian activity. The conclusion is that Kiss-10 given repeatedly to prepubertal heifers is sufficient to evoke consistent increases of LH, to induce ovulation and luteal activity in animals with high IGF-1 and low leptin in peripheral blood but it is insufficient to establish regular estrous cyclicity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Hormona luteinizante y actividad ov&aacute;rica en respuesta a kisspeptina&#45;10 y su asociaci&oacute;n con IGF&#45;1 y leptina en becerras pre&#45;p&uacute;beres</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Luteinizing hormone and ovarian activity in response to kisspeptin&#45;10 and its association with IGF&#45;1 and leptin in prepubertal heifers</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rub&eacute;n Santos Echeverr&iacute;a<sup>a,b</sup>, Ren&eacute; Carlos Calder&oacute;n Robles<sup>c</sup>, H&eacute;ctor Raymundo Vera &Aacute;vila<sup>d</sup>, Gerardo Perera&#45;Mar&iacute;n<sup>a</sup>, Jes&uacute;s Alejandro Arregu&iacute;n Ar&eacute;valo<sup>e</sup>, Terry M. Nett<sup>e</sup>, Carlos Guillermo Guti&eacute;rrez Aguilar<sup>a</sup>, Alejandro Villa&#45;Godoy<sup>a</sup></b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>a</i></sup><i> Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. Circuito Exterior S/N, Cub&iacute;culo 2314, Ciudad Universitaria, 04510 Coyoac&aacute;n, M&eacute;xico, DF. Tel. 52 55 56 22 59 80. </i><a href="mailto:aavillagodoy@gmail.com">aavillagodoy@gmail.com</a>.<i> Correspondencia al &uacute;ltimo autor.</i></font></p>              <p align="justify"><i><font face="verdana" size="2"><sup>b</sup> Campo Experimental Iguala, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP), Iguala, Guerrero, M&eacute;xico.</font></i></p>              <p align="justify"><i><font face="verdana" size="2"><sup>c</sup> Campo Experimental San Martinito, INIFAP. Tlahuapan, Puebla, M&eacute;xico.</font></i></p>              <p align="justify"><i><font face="verdana" size="2"><sup>d</sup> CENID Fisiolog&iacute;a y Mejoramiento Animal, INIFAP. Ajuchitl&aacute;n, Quer&eacute;taro, M&eacute;xico.</font></i></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>e</i></sup><i> Departamento de Ciencias Biom&eacute;dicas, Universidad Estatal de Colorado, Fort Collins, Colorado, USA.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 24 de septiembre de 2013.    <br>     Aceptado el 26 de noviembre de 2013.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; el efecto de la kisspeptina&#45;10 (Kiss&#45;10), administrada repetidamente, sobre la liberaci&oacute;n de LH y la actividad ov&aacute;rica en becerras pre&#45;p&uacute;beres. Asimismo, se determin&oacute; la asociaci&oacute;n de IGF&#45;1 y leptina s&eacute;ricas con dichos efectos. Catorce (14) becerras Holstein o Suizo Pardo por Ceb&uacute; (11.2&plusmn;0.2 meses de edad; 187.4&plusmn;6.3 kg de peso), se asignaron aleatoriamente para recibir cada dos horas, durante tres d&iacute;as una aplicaci&oacute;n i.v. de Kiss&#45;10 (Kisspeptina&#45;10; 5 pg/kg de peso; n=7) o soluci&oacute;n salina fisiol&oacute;gica (Testigo, n=7). Se colect&oacute; sangre cada 15 min de las 0&#45;6, 24&#45;30 y 72&#45;78 h, y cada 2 h hasta las 84 h. Cada aplicaci&oacute;n de Kiss&#45;10 fue seguida de un incremento de LH, cuya magnitud (&aacute;rea bajo la curva) disminuy&oacute; (<i>P&lt;</i>0.05) con el tiempo. La Kiss&#45;10 indujo una oleada preovulatoria de LH y formaci&oacute;n de cuerpo l&uacute;teo en 28.5 % de las becerras, mismas que presentaron las mayores (<i>P&lt;</i>0.05) concentraciones s&eacute;ricas de IGF&#45;1 y las menores (<i>P&lt;</i>0.05) de leptina. Durante 63 d&iacute;as postratamiento no se detectaron cambios en las ondas foliculares atribuibles a Kiss&#45;10 (<i>P&gt;</i>0.05), y ninguna becerra manifest&oacute; actividad ov&aacute;rica c&iacute;clica. Se concluye que la Kiss&#45;10 administrada repetidamente a becerras pre&#45;p&uacute;beres es un est&iacute;mulo suficiente para evocar incrementos consistentes de LH, para inducir la ovulaci&oacute;n y actividad l&uacute;tea en animales con concentraciones s&eacute;ricas elevadas de IGF&#45;1 y bajas de leptina, pero no para inducir la ciclicidad estral.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>Becerras pre&#45;p&uacute;beres, Kisspeptina, IGF&#45;1, Leptina, Hormona luteinizante. </font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">We evaluated the effect of kisspeptin&#45;10 (Kiss&#45;10) administered repeatedly on the release of LH and ovarian activity in prepubertal heifers. We also assessed the association of serum IGF&#45;1 and leptin with these effects. Fourteen Holstein or Brown Swiss by Zebu female calves (11.2 &plusmn; 0.2 mo old, 187.4 &plusmn; 6.3 kg) were randomly assigned to receive every 2 h for three days an i.v. application of Kiss&#45;10 (Kisspeptin&#45;10; 5 pg/kg of body weight, n= 7) or saline solution (control, n= 7). Blood was collected every 15 min for 0&#45;6, 24&#45;30 and 72&#45;78 h, and every 2 h until 84 h. Each application of Kiss&#45;10 was followed by an increase of LH whose magnitude (area under the curve) decreased (<i>P&lt;</i>0.05) over time. Kiss&#45;10 induced a preovulatory surge of LH and corpus luteum formation in 28.5 % of the calves. Ovulating calves had the highest (<i>P&lt;</i>0.05) serum concentrations of 1Gf&#45;1 and the lowest (<i>P&lt;</i>0.05) leptin. During 63 post&#45;treatment days, no changes were detected in follicular waves attributable to treatments (<i>P&gt;</i>0.05) and heifers did not show cyclic ovarian activity. The conclusion is that Kiss&#45;10 given repeatedly to prepubertal heifers is sufficient to evoke consistent increases of LH, to induce ovulation and luteal activity in animals with high IGF&#45;1 and low leptin in peripheral blood but it is insufficient to establish regular estrous cyclicity.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords: </b>Prepubertal heifers, Kisspeptin, IGF&#45;1, Leptin, Luteinizing hormone.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pubertad representa una condici&oacute;n cr&iacute;tica en el desarrollo de los mam&iacute;feros y en la rentabilidad de las unidades de producci&oacute;n pecuaria<sup>(1)</sup>. El inicio de este proceso reproductivo es precedido por un aumento en la frecuencia de pulsos de la hormona luteinizante (LH), en respuesta a un incremento en la secreci&oacute;n puls&aacute;til de la hormona liberadora de gonadotropinas (GnRH)<sup>(2)</sup>. La LH act&uacute;a en los ovarios estimulando el desarrollo terminal de los fol&iacute;culos y el incremento en la s&iacute;ntesis y secreci&oacute;n de estr&oacute;genos, los cuales a su vez son responsables de inducir el estro y la ovulaci&oacute;n<sup>(2)</sup>. El cambio en el patr&oacute;n de secreci&oacute;n puls&aacute;til de la GnRH es el componente clave para iniciar la pubertad<sup>(3)</sup>. Este cambio a su vez se deriva de la modificaci&oacute;n funcional del "pulsador biol&oacute;gico", el generador hipotal&aacute;mico de pulsos de GnRH, cuya regulaci&oacute;n neural y no neural es compleja y no ha sido dilucidada por completo<sup>(4)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La kisspeptina o metastina es una familia de p&eacute;ptidos hipotal&aacute;micos (Kiss&#45;54, &#45;14, &#45;13 y &#45;10; denominados de acuerdo al n&uacute;mero de amino&aacute;cidos que los componen), altamente conservada en mam&iacute;feros<sup>(5)</sup>, que est&aacute; involucrada en la regulaci&oacute;n de las neuronas de GnRH<sup>(6)</sup>. La administraci&oacute;n de kisspeptina, ya sea en forma sist&eacute;mica<sup>(7)</sup> o central<sup>(8,9,10)</sup>, induce la liberaci&oacute;n de GnRH e indirectamente de las gonadotropinas hipofisiarias<sup>(8,11)</sup>, por lo que podr&iacute;a tener aplicaciones potenciales para manipular la reproducci&oacute;n.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En bovinos, la informaci&oacute;n disponible acerca de la participaci&oacute;n de la kisspeptina en la activaci&oacute;n puberal del eje reproductivo es limitada. En becerras pre&#45;p&uacute;beres, de las razas Holstein, Negra Japonesa y de las de cruzas de Holstein y Suizo por Ceb&uacute;, la administraci&oacute;n de un bolo i.v. de Kiss&#45;10 (5 pg/kg de peso) indujo un incremento transitorio en la liberaci&oacute;n de LH y de la hormona fol&iacute;culo estimulante (FSH)<sup>(12&#45;15)</sup>. La respuesta a Kiss&#45;10 a esta dosis y v&iacute;a de administraci&oacute;n aumenta con la edad en becerras de 4 a 11 meses<sup>(14)</sup>, lo cual permite sugerir que los animales adquieren una mayor sensibilidad a la kisspeptina a medida que se acercan a la pubertad. Asimismo, en becerras de 7 a 11 meses de edad, se demostr&oacute; que la magnitud y duraci&oacute;n de la respuesta de LH y FSH no aumenta al incrementar la dosis de Kiss&#45;10 de 5 a 50 pg/kg de peso<sup>(15)</sup>. En los estudios previos tambi&eacute;n se observ&oacute;<sup>(14,15)</sup> que la mayor respuesta de LH y FSH a Kiss&#45;10 coi nci de con u n a elevada concentraci&oacute;n circulante del factor de crecimiento parecido a la insulina (IGF&#45;1) y una concentraci&oacute;n de leptina decreciente. Por lo tanto, es posible que la leptina est&eacute; involucrada en acciones pre&#45;sensibilizadoras, mientras que el IGF&#45;1 podr&iacute;a estar modulando los efectos de la Kiss&#45;10 sobre el eje reproductivo de las becerras<sup>(14)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En experimentos realizados para tratar de adelantar la pubertad, al administrar GnRH en becerras, imitando la liberaci&oacute;n puls&aacute;til de la GnRH end&oacute;gena, se logr&oacute; inducir la formaci&oacute;n de cuerpo l&uacute;teo en 28 y 33 % de las becerras pero no la actividad c&iacute;clica ovulatoria<sup>(16,17)</sup>. Existen evidencias de que la Kiss&#45;10 administrada en forma repetida induce la apertura vaginal en ratas pre&#45;p&uacute;beres<sup>(9,10)</sup>, as&iacute; como la ovulaci&oacute;n y formaci&oacute;n de cuerpos l&uacute;teos en corderas pr&oacute;ximas a la pubertad<sup>(18)</sup>, en una elevada proporci&oacute;n de animales (&gt;60 %). Por lo anterior, el objetivo del presente estudio fue determinar los efectos de la Ki ss&#45;10, administrada repetidamente, sobre la liberaci&oacute;n de LH, la funci&oacute;n l&uacute;tea y el desarrollo folicular ov&aacute;rico en becerras pre&#45;p&uacute;beres; asimismo se determin&oacute; la asociaci&oacute;n de IGF&#45;1 y leptina s&eacute;ricas con dichos efectos.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">     Todos los procedimientos empleados en este experimento fueron aprobados por el Subcomit&eacute; Institucional para el Cuidado y Uso de Animales en Experimentaci&oacute;n (SICUAE) del programa de Posgrado en Ciencias de la Producci&oacute;n y de la Salud Animal de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, UNAM. El estudio se realiz&oacute; en un sitio experimental dependiente del INIFAP, ubicado en Hueytamalco, Pue. El sitio se encuentra a 19&deg; 51' 03" N y 97&deg; 12' 48" O, a 500 msnm. El clima es subtropical h&uacute;medo semic&aacute;lido Af(c), con temperatura promedio anual de 20.8 &deg;C<sup>(19)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Tratamientos</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se usaron 14 becerras pre&#45;p&uacute;beres de 11 a 13 meses de edad y 187.4 &plusmn; 6.26 kg de peso (media &plusmn; eem), resultantes de la cruza de animales Suizo Pardo o Holstein por Ceb&uacute;. Las becerras se agruparon por genotipo, edad y peso, y de acuerdo a estos criterios, se asignaron aleatoriamente para recibir Kiss&#45;10 (Kisspeptina&#45;10; 5 pg/kg de peso, i.v., cada dos horas durante tres d&iacute;as; n=7) o soluci&oacute;n salina fisiol&oacute;gica (SSF; Testigo; n=7). En el presente estudio se aplic&oacute; Kiss&#45;10 bovina<sup>(6)</sup> cuya secuencia pept&iacute;dica es YNWNSFGLRY&#45;NH2, con &gt;95 % de pureza (Proimmune, Oxford, UK). Tanto SSF como Kiss&#45;10 fueron administrados a trav&eacute;s de un cat&eacute;ter insertado en una de las venas yugulares, el cual a su vez se utiliz&oacute; para obtener muestras de sangre de acuerdo al esquem a que se describe en la secci&oacute;n correspondiente. Antes de su aplicaci&oacute;n, la Kiss&#45;10 fue diluida en SSF (1:125). El volumen total aplicado por becerra en el grupo Kiss&#45;10 se us&oacute; como referencia para establecer el volumen de SSF que se aplic&oacute; en las becerras de dicho grupo.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Manejo general</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las becerras se alojaron por pares en corrales de 4 x 6 m, con piso de cemento, &aacute;rea techada (4 x 3 m), comederos y bebederos. Para su adaptaci&oacute;n al manejo y a la rutina de muestreo sangu&iacute;neo, las becerras se introdujeron a los corrales dos meses antes de la administraci&oacute;n de tratamientos y durante este periodo se sometieron a sujeci&oacute;n con reata (2 h/d&iacute;a), cepillado de pelo y acostumbramiento a la presencia de personas. La alimentaci&oacute;n consisti&oacute; en forraje picado a libertad (heno de avena; 94.82 % MS, 8.13 % PC y 2.3 Mcal de EM/kg), 4 kg de alimento concentrado al d&iacute;a (94.49 % MS, 17.97 % PC y 2.5 Mcal de EM/kg), sales mineral es y agua a libertad. El periodo experimental concluy&oacute; 63 d&iacute;as despu&eacute;s de finalizados los tratamientos.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Determinaci&oacute;n de medidas corporales</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El peso vivo de los animales se registr&oacute; cada 14 d&iacute;as desde su llegada a los corrales de experimentaci&oacute;n y hasta el final del estudio; a partir de estos registros se determin&oacute; la ganancia diaria promedio de peso (GDP) previa al inicio del periodo experimental. Un d&iacute;a antes de la aplicaci&oacute;n de tratamientos, a cada becerra se le determin&oacute; la altura a la cruz, condici&oacute;n corporal (CC), grosor de la grasa dorsal y profundidad del m&uacute;sculo <i>Longissimus dorsi.</i> La altura a la cruz fue la distancia vertical entre el piso y la uni&oacute;n escapular. La CC fue calificada de manera independiente por tres personas<sup>(20)</sup> (escala de 1 a 5 puntos, 1=emaciado y 5=obeso) y el promedio de estas calificaciones se us&oacute; como variable de respuesta. El grosor de la grasa dorsal y la profundidad del m&uacute;sculo <i>Longissimus dorsi</i> (medidos entre la 12va y la 13va costilla) se determinaron mediante ultrasonograf&iacute;a<sup>(21)</sup>, utilizando para ello un aparato Kaixin 5000 y transductor lineal de 3.5 MHz (Xuzhou Kaixin Electronic Instruments Co., Xuzhou, Jiangsu, China).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Muestreo sangu&iacute;neo</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cada tercer d&iacute;a desde dos semanas antes de iniciar el estudio y hasta finalizarlo, se obtuvieron muestras de sangre por punci&oacute;n de la vena cox&iacute;gea y colecci&oacute;n en tubos "vacutainer". Las muestras se procesaron para obtenci&oacute;n de suero (refrigeraci&oacute;n por 3 h y posterior centrifugaci&oacute;n a 1,500 xg por 15 min). El suero se congel&oacute; a &#45;20 &deg;C hasta determinar por radioinmunoan&aacute;lisis (RIA) la concentraci&oacute;n de progesterona (P4). La concentraci&oacute;n de P4 se utiliz&oacute; como indicador de actividad l&uacute;tea (P4; valores &plusmn; 1 ng/ml) y confirmaci&oacute;n del estado pre&#45;puberal (P4; valores &lt; 1 ng/ml) de las becerras.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adicionalmente y una hora antes de iniciar los tratamientos correspondientes, a cada becerra se le insert&oacute; un cat&eacute;ter est&eacute;ril de pl&aacute;stico en una de las venas yugulares (Sonda Kortex calibre 5 FR y longitud 90 cm; Cat&aacute;logo K&#45;733; Trokar S.A de C.V). Para ello, la zona peri&#45;yugular (5x5 cm ) fu e previ am en te rasu rada y anestesiada (lidoca&iacute;na al 2 %, 2 mg/cm<sup>2</sup>). A trav&eacute;s del cat&eacute;ter, se colect&oacute; sangre cada 15 min en los periodos: 0 a 6 h, 24 a 30 h, y 72 a 78 h de iniciados los tratamientos, as&iacute; como cada 2 h entre muestreos intensivos, y al terminar estos hasta las 84 h. Las primeras muestras se obtuvieron inmediatamente antes de cada administraci&oacute;n de Kiss&#45;10 o SSF. El suero de estas muestras se obtuvo y almacen&oacute; como se indic&oacute; anteriormente.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Ultrasonograf&iacute;a de ovarios y detecci&oacute;n de signos de estro</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada becerra se obtuvieron im&aacute;genes ultrasonogr&aacute;ficas de los ovarios el d&iacute;a previo al inicio de los tratamientos y, despu&eacute;s de terminados estos cada tercer d&iacute;a hasta el d&iacute;a 63 (transductor intra&#45;rectal de 7.5 MHz para equipo Kaixin 500). A partir de estos registros se identific&oacute; la presencia de cuerpo l&uacute;teo (CL) y se obtuvo el di&aacute;metro de los dos fol&iacute;culos de mayor tama&ntilde;o, as&iacute; como el n&uacute;mero de fol&iacute;culos mayores a 5 mm<sup>(22)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde dos meses antes de iniciar el estudio y hasta su final, se llev&oacute; a cabo una supervisi&oacute;n para identificar a las becerras que presentaran conducta de estro (dos periodos de observaci&oacute;n/ d&iacute;a en un corral comunal; 0700 a 0800 y 1900 a 2000 h).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Medici&oacute;n de hormonas</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La LH se determin&oacute; mediante RIA en todas las muestras obtenidas entre las 0 y 84 h con relaci&oacute;n a la aplicaci&oacute;n de tratamientos. El RIA para LH fue en fase l&iacute;quida de 120 h de incubaci&oacute;n a 4&deg; C, siguiendo el procedimiento descrito por Arrieta <i>et al<sup>(23)</sup>.</i> La hormona USDA&#45;bLH (AFP11743B) se utiliz&oacute; como trazador incorporando Na<sup>125</sup>I mediante el m&eacute;todo del Iodo&#45;gen y como curva patr&oacute;n a dosis desde 0.01 hasta 10 ng por tubo. El primer anticuerpo generado en conejo correspondi&oacute; a la hormona NIDDK&#45;oLH&#45;26 (anti&#45;oLH&#45;26) validado en bovinos por Perera&#45;Mar&iacute;n <i>et al</i><sup>(24)</sup> a una diluci&oacute;n final de 1:400,000. La separaci&oacute;n de la fracci&oacute;n unida de la fracci&oacute;n libre se realiz&oacute; con un segundo anticuerpo contra IgG de conejo generado en burro (diluci&oacute;n 1:80). En tres ensayos la cantidad m&iacute;nima detectable fue 0.03 ng/ml y los coeficientes de variaci&oacute;n (CV) intra&#45;e inter&#45;ensayo fueron 6.73 y 6.57 %, respectivamente. El IGF&#45;1 y la leptina se determinaron en muestras obtenidas a las 0, 24, 48 y 72 h de iniciados los tratamientos. El IGF&#45;1 se cuanti fi c&oacute; mediante un ensayo inmunoabsorbente (IGF&#45;1 ELISA&reg;, ALPCO Diagnostics, Salem, NH); la sensibilidad del ensayo fue de 5.86 ng/ml y el CV intra&#45;ensayo fue 0.57 %. La leptina se analiz&oacute; mediante RIA con un estuche comercial multiespecies de fase l&iacute;quida (XL&#45;85K, Linco Research Inc, St. Charles, MO)<sup>(25)</sup>, con una sensibilidad de 1.0 ng/ml y un CV intra&#45;ensayo de 3.8 %. La progesterona se cuantific&oacute; mediante RIA con un estuche comercial de fase s&oacute;lida (PROG&#45;CTRIA&reg;, Cisbio Bioassay, Sorgues, France) cuya sensibilidad fue de 0.15 ng/ml, con un CV intra&#45;ensayo de 8.8 %.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Variables de respuesta</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; el &aacute;rea bajo la curva (AUC) de cada incremento en las concentraciones s&eacute;ricas de LH provocado por la administraci&oacute;n de Kiss&#45;10 y, en paralelo, durante periodos similares del pulso end&oacute;geno de LH de mayor tama&ntilde;o en becerras del grupo testigo. Se consideraron como incrementos de LH inducidos por la administraci&oacute;n de Kiss&#45;10 o pulsos end&oacute;genos en el grupo testigo, cuando al menos en dos muestras consecutivas la concentraci&oacute;n de LH fue mayor al promedio m&aacute;s dos desviaciones est&aacute;ndar de las concentraciones de la hormona a las 0, 2 y 4 h de iniciados los tratamientos. El AUC se calcul&oacute; como la suma de las concentraciones de LH consideradas como incrementos asociados a la administraci&oacute;n de Kiss&#45;10, o a un pulso end&oacute;geno en el grupo testigo. Para ambos grupos se determin&oacute; la frecuencia de incrementos de LH s&eacute;rica, durante cada uno de los periodos de muestreo intensivo de 6 h (frecuencia=n&uacute;mero de incrementos durante el periodo). A partir de las concentraciones de LH determinadas en las muestras colectadas cada dos horas (0 a 84 h), se identific&oacute; a las becerras que presentaron una oleada preovulatoria de LH (incremento de LH mayor a la media + 2 DE en dos o m&aacute;s muestras consecutivas). La presentaci&oacute;n de ovu l aci on es se determin&oacute; mediante la identificaci&oacute;n ultrasonogr&aacute;fica de CL, coincidente con un incremento de P4 (&plusmn; 1 ng/ml). Con base en los registros ultrasonogr&aacute;ficos de los ovarios se caracterizaron las ondas de desarrollo folicular durante el periodo experimental<sup>(26)</sup>, estimando su n&uacute;mero y duraci&oacute;n.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La comparaci&oacute;n entre grupos experimentales de los valores al inicio del estudio para peso vivo, ganancia diaria promedio (GDP) de peso pre&#45;tratamientos, altura a la cruz, CC, grosor de grasa dorsal, profundidad del m&uacute;sculo <i>L.</i> <i>dorsi,</i> total de fol&iacute;culos <u>&gt;</u> 5 mm, di&aacute;metro del fol&iacute;culo mayor y del segundo en tama&ntilde;o, concentraciones s&eacute;ricas de leptina e IGF&#45;1, se realiz&oacute; mediante la prueba "t" de Student. En el caso de variables de respuesta que se registraron en varias ocasiones durante el periodo experimental, la comparaci&oacute;n fue mediante ANDEVA para un dise&ntilde;o de mediciones repetidas (concentraciones s&eacute;ricas de LH, leptina e IGF&#45;1, AUC de incrementos de LH, duraci&oacute;n de ondas foliculares y di&aacute;metros m&aacute;ximos de los fol&iacute;culos dominantes). A su vez, las respuestas binomiales se compararon por Ji cuadrada (presentaci&oacute;n de oleada preovulatoria de LH y presentaci&oacute;n de CL). Por otra parte, con el fin de determinar el grado de asociaci&oacute;n entre variables corporales y de actividad ov&aacute;rica y endocrina al inicio el periodo experimental, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n lineal m&uacute;ltiple. En todos los casos se utiliz&oacute; el paquete estad&iacute;stico SAS<sup>(27)</sup> con sus procedimientos para modelos lineales generales (PROC&#45;GLM) o para an&aacute;lisis de frecuencias (PROC&#45;FREQ) y, en su caso, la separaci&oacute;n de medias por el procedimiento de medias de cuadrados m&iacute;nimos (LSMEANS).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">     Tres semanas despu&eacute;s del inicio de la aplicaci&oacute;n de los tratamientos, una becerra del grupo Kisspeptina&#45;10 se retir&oacute; del estudio por haber padecido una enfermedad infecciosa, por lo que no existieron datos de este animal relacionados con las variables de respuesta asociadas a las ondas de desarrollo folicular pos&#45;tratamiento; en los an&aacute;lisis de respuesta hormonal a Kiss&#45;10 s&iacute; fue contabilizada.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al inicio del estudio, las becerras en los dos grupos experimentales fueron homog&eacute;neas en cuanto a medidas corporales, estado ov&aacute;rico y concentraci&oacute;n s&eacute;rica de leptina e IGF&#45;1 (<a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5t1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>; <i>P&gt;</i>0.05). La GDP registrada en los dos meses previos a la administraci&oacute;n de los tratamientos tambi&eacute;n fue similar entre grupos, con una media general de 0.79 &plusmn; 0.12 kg/d&iacute;a.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La administraci&oacute;n repetida de Kiss&#45;10 provoc&oacute; incrementos sucesivos de LH (<a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1&#45;A</a>). Con cada aplicaci&oacute;n de Kiss&#45;10, el AUC del incremento de LH disminuy&oacute; gradualmente en las primeras tres aplicaciones y despu&eacute;s se mantuvo relativamente estable (<a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1&#45;B</a>). Comparado con el AUC de los pulsos end&oacute;genos en el grupo testigo, el AUC del incremento de LH en respuesta a Kiss&#45;10 fue 7.07, 4.95 y 3.20 veces mayor en las tres primeras aplicaciones del neurop&eacute;ptido (<i>P&lt;</i>0.01; <a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1&#45;B</a>). A partir de las 26 h de iniciados los tratamientos, el AUC del incremento de LH provocado por la Kiss&#45;10 fue similar en magnitud comparado con el AUC de los pulsos end&oacute;genos de LH en el grupo testigo (<i>P&gt;</i>0.05; <a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1&#45;B</a>).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El promedio del AUC durante el periodo de 0 a 6 h de iniciados los tratamientos (<a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5t2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>) fue mayor para el grupo en que se administr&oacute; Kiss&#45;10 (<i>P&lt;</i>0.05; AUC 9 veces mayor en Kisspeptina&#45;10 <i>vs</i> testigo), pero no difiri&oacute; entre grupos experimentales en los periodos de 24 a 30 h y de 72 a 78 h. A trav&eacute;s de estos tres periodos el valor promedio de AUC present&oacute; una disminuci&oacute;n progresiva en el grupo Kisspeptina&#45;10 (<i>P&lt;</i>0.05). En contraste, esta variable present&oacute; un incremento en el grupo testigo durante el periodo de 24 a 30 h con respecto al de 0 a 6 h; posteriormente el AUC de LH se mantuvo. Una vez retirados los tratamientos (periodo 72 a 78 h), el n&uacute;mero y la amplitud de los pulsos de LH fue similar (<i>P&gt;</i>0.05) entre grupos experimentales.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La Kiss&#45;10 indujo una oleada preovulatoria de LH seguida de formaci&oacute;n de un CL en 28.5 % de las becerras tratadas, mientras que en el grupo testigo ninguna becerra la present&oacute;. La oleada preovulatoria inici&oacute; 48 &plusmn; 5.65 h despu&eacute;s de la primera aplicaci&oacute;n de Kiss&#45;10 y tuvo una duraci&oacute;n de 8.0 &plusmn; 2.82 h. De acuerdo a los niveles s&eacute;ricos de P4, la actividad l&uacute;tea (concentraci&oacute;n &plusmn; 1 ng/ml) en dichas becerras inici&oacute; seis d&iacute;as despu&eacute;s de la primera aplicaci&oacute;n de Ki ss&#45;10 y los dos CL permanecieron funcionales durante 4 y 12 d&iacute;as; posteriormente las concentraciones de progesterona volvieron a ser inferiores a 1 ng/ml, lo cual se mantuvo hasta el final del estudio; es decir que despu&eacute;s de ovular, las becerras volvieron a un estado similar al prepuberal.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ninguna de las becerras en ambos grupos experimentales present&oacute; signos conductuales de estro o actividad c&iacute;clica estral durante el periodo experimental. En los 63 d&iacute;as pos&#45;tratamiento, el n&uacute;mero y duraci&oacute;n de las ondas de desarrollo folicular, as&iacute; como el di&aacute;metro m&aacute;ximo de los fol&iacute;culos dominantes fue similar entre grupos experimentales (<i>P&gt;</i>0.05; <a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). En este intervalo, la duraci&oacute;n de las ondas de desarrollo folicular y el di&aacute;metro m&aacute;ximo del fol&iacute;culo dominante aumentaron a partir de la 6<sup>a</sup> y 5<sup>a</sup> onda en los grupos testigo y Kisspeptina&#45;10, respectivamente (<i>P&lt;</i>0.05).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n repetida de Kiss&#45;10 no modific&oacute; (<i>P&gt;</i>0.05) las concentraciones s&eacute;ricas de IGF&#45;1 y leptina, pero las becerras que ovularon en respuesta a Kiss&#45;10 presentaron concentraciones s&eacute;ri cas de IGF&#45;1 mayores a las de sus compa&ntilde;eras de grupo (<i>P&lt;</i>0.05; <a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f3.jpg" target="_blank">Figura 3&#45;A</a>), lo cual no ocurri&oacute; con las concentraciones s&eacute;ricas de leptina (<a href="/img/revistas/rmcp/v5n2/a5f3.jpg" target="_blank">Figura 3&#45;B</a>), las cuales no variaron durante el per&iacute;odo de muestreo; por el contrario, las dos becerras que ovularon fueron de las que presentaron concentraciones de leptina m&aacute;s bajas (<i>P&lt;</i>0.05).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones s&eacute;ricas de IGF&#45;1 al inicio del periodo experimental se correlacionaron positivamente (<i>P&lt;</i>0.05) con el peso corporal <i>(r=</i> 0.70), la condici&oacute;n corporal <i>(r=</i> 0.58) y la altura a la cruz de las becerras <i>(r=</i> 0.78). Por su parte, las concentraciones circulantes de leptina s&oacute;lo se correlacionaron con la edad de las becerras <i>(r=</i> 0.62; <i>P&lt;</i>0.05). Los valores al inicio del periodo experimental de grosor de grasa dorsal, profundidad del m&uacute;sculo <i>L. dorsi</i> y de variables relacionadas con poblaciones de fol&iacute;culos ov&aacute;ricos, no se correlacionaron con los de las concentraciones s&eacute;ricas de IGF&#45;1 o de leptina (<i>P&gt;</i>0.05); a su vez, las concentraciones s&eacute;ricas de estas hormonas no se correlacionaron entre s&iacute; (<i>P&gt;</i>0.05).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En becerras pre&#45;p&uacute;beres, la Kiss&#45;10 administrada en forma repetida provoc&oacute; incrementos sucesivos de LH, mismos que disminuyeron en amplitud con el tiempo. De acuerdo con lo que se hipotetiz&oacute;, la Kiss&#45;10 aplicada repetidamente ser&iacute;a capaz de inducir la ovulaci&oacute;n, sin embargo, en el presente estudio esto solo ocurri&oacute; en las becerras que presentaron elevadas concentraciones circulantes de IGF&#45;1 y bajas concentraciones de leptina durante el per&iacute;odo de muestreo. La Kiss&#45;10 no indujo el establecimiento de actividad c&iacute;clica ovulatoria o estral, ni afect&oacute; el desarrollo folicular ov&aacute;rico despu&eacute;s del tratamiento, por lo que puede considerarse que su efecto fue transitorio.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La Kiss&#45;10 administrada en un protocolo de aplicaciones repetidas provoc&oacute; un aumento en la frecuencia y magnitud de incrementos de LH de manera similar a lo que ocurre durante la pubertad. Por lo anterior, es factible proponer a este neurop&eacute;ptido como una herramienta potencial para la manipulaci&oacute;n del eje reproductivo en becerras pre&#45;p&uacute;beres como se ha sugerido en ratas<sup>(9,10)</sup> y borregas<sup>(18)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio, la magnitud del incremento de LH inducido por cada aplicaci&oacute;n de Kiss&#45;10 disminuy&oacute; gradualmente con el tiempo hasta llegar a equipararse con la magnitud de los incrementos de LH asociados a pulsos end&oacute;genos en el grupo testigo. Una disminuci&oacute;n similar en la magnitud de incrementos de LH fue encontrada por McLeod <i>et al<sup>(16)</sup></i> despu&eacute;s de utilizar un esquema de administraci&oacute;n de GnRH similar al de Kiss&#45;10 empleado en el presente trabajo en becerras pre&#45;p&uacute;beres. Los autores citados, observaron que l as becerras presentaron periodos alternados de mayor y menor respuesta a la GnRH ex&oacute;gena, atribuyendo este efecto a la modulaci&oacute;n de la sensibilidad de la respuesta hipofisiaria a GnRH ejercida por esteroides ov&aacute;ricos y no a una desensibilizaci&oacute;n progresiva por efecto de la administraci&oacute;n repetida de la neurohormona. El est&iacute;mulo en la secreci&oacute;n de LH asociado con la administraci&oacute;n de Kiss&#45;10, representa un efecto indirecto mediado por la GnRH liberada a nivel hipotal&aacute;mico en respuesta al neurop&eacute;ptido<sup>(11)</sup>. En este sentido, no se puede descartar como explicaci&oacute;n de la disminuci&oacute;n en la magnitud de la respuesta de LH ante aplicaciones repetidas de Kiss&#45;10 a una posible desensibilizaci&oacute;n de las neuronas GnRH&#45;&eacute;rgicas, ya que se ha demostrado que estas neuronas pueden pasar por periodos refractarios al neurop&eacute;ptido en ratones juveniles y pre&#45;p&uacute;beres<sup>(28)</sup>, en los que se observ&oacute; adem&aacute;s que el porcentaje de neuronas de GnRH despolarizadas y la duraci&oacute;n del periodo de despolarizaci&oacute;n en respuesta a Kiss&#45;10, fueron menores en animales pre&#45;p&uacute;beres que en los de mayor edad.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, la disminuci&oacute;n de los incrementos de LH inducidos por la administraci&oacute;n intermitente de Kiss&#45;10 puede ser consecuencia del incremento en la frecuencia de secreci&oacute;n de LH con respecto a la del periodo pre&#45;tratamiento, de manera similar a lo que ocurre en el proestro en animales con actividad c&iacute;clica ovulatoria, cuyo estradiol disminuye en amplitud pero no en frecuencia de los pulsos de LH<sup>(29)</sup>. Independientemente de lo anterior, en borregas adultas la administraci&oacute;n i.v. de Kiss&#45;10 en forma intermitente induce un incremento de GnRH y LH similar entre aplicaciones<sup>(7)</sup>, como lo ha sido tambi&eacute;n para LH en corderas cercanas a la pubertad<sup>(18,30)</sup>, cabras en diestro<sup>(31)</sup> y ratas macho que han cursado por la pubertad<sup>(32)</sup>. Los resultados citados y los del presente estudio, constituyen evidencias indirectas de una diferenciada sensibilidad a Kiss&#45;10 a nivel de las neuronas GnRH entre animales pre y peri&#45;puberales, fen&oacute;meno que fue confirmado para algunos roedores<sup>(28,33)</sup> y monos Rhesus<sup>(34)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La Kiss&#45;10 indujo una oleada preovulatoria de LH y la formaci&oacute;n de un CL funcional en 28 % de las becerras. Un resultado similar se observ&oacute; en becerras de 12 a 14 meses de edad tratadas con GnRH<sup>(17)</sup> por la misma v&iacute;a, frecuencia y duraci&oacute;n del tratamiento que en el presente experimento. En becerras de menor edad, un tratamiento de GnRH similar al se&ntilde;alado indujo una oleada preovulatoria de LH en 75 % de los animales, de los cuales solo el 25 % form&oacute; un CL de corta duraci&oacute;n<sup>(16)</sup>. Por tanto, se propone que la respuesta del hipot&aacute;lamo a Kiss&#45;10 y de la hip&oacute;fisis a GnRH ex&oacute;genas var&iacute;a en funci&oacute;n de la edad de los animales. En apoyo a lo mencionado, en borregas pre&#45;p&uacute;beres en etapas cercanas al inicio de la pubertad, la Kiss&#45;10<sup>(18)</sup> y la GnRH<sup>(35)</sup> administradas cada hora por 1 y 10&nbsp;d&iacute;as respectivamente, indujeron una oleada de LH y la funci&oacute;n l&uacute;tea en m&aacute;s del 60 % de el l as. De igual manera, en ratas que aproximadamente se encontraban a ocho d&iacute;as del inicio de la pubertad, un tratamiento de Kiss&#45;10 cada 12 h por seis d&iacute;as adelant&oacute; la apertura vaginal en 74 % de ellas<sup>(9)</sup>. Estos estudios ponen en evidencia la estrecha asociaci&oacute;n que parece existir entre el grado de desarrollo corporal y la proporci&oacute;n de hembras que manifiestan una oleada preovulatoria de LH y la subsecuente funci&oacute;n l&uacute;tea, en respuesta a un tratamiento intermitente de Kiss&#45;10 o GnRH.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un estudio previo con becerras de 4, 7 y 11 meses de edad, se inform&oacute; que las becerras de 11&nbsp;meses en comparaci&oacute;n de las de menor edad, presentaron la mayor respuesta de LH a un bolo i.v. de Kiss&#45;10, lo cual coincidi&oacute; con mayores concentraciones de IGF&#45;1 y estradiol y las menores concentraciones de leptina<sup>(14)</sup>. En el presente estudio, las becerras que presentaron una oleada de LH y formaci&oacute;n de CL en respuesta a Kiss&#45;10 presentaron un comportamiento similar en cuanto a IGF&#45;1 y leptina; por lo tanto, la IGF&#45;1 y estradiol podr&iacute;an modular positivamente los efectos de la kisspeptina en la actividad del eje gonadal, ya que, aparentemente, se requieren concentraciones end&oacute;genas relativamente elevadas de dichas hormonas como se&ntilde;al indicadora de desarrollo som&aacute;tico, mientras que los efectos se&ntilde;alizadores de la leptina, si es que se ejercen en becerras, pudieron haber ocurrido mediante incrementos en edades m&aacute;s tempranas, como fue documentado por nuestro grupo en un trabajo anterior<sup>(14)</sup>, donde se determin&oacute; que las becerras de 4 y 7 meses de edad tuvieron niveles circulantes de leptina mayores que las de 11 meses de edad; mientras que otros autores no encontraron una asociaci&oacute;n consistente entre los niveles de leptina y el inicio de la pubertad en vaquillas<sup>(36,37)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el estudio que aqu&iacute; se informa, todas las becerras presentaron una liberaci&oacute;n puls&aacute;til de LH de caracter&iacute;sticas similares en respuesta a la administraci&oacute;n intermitente de Kiss&#45;10 durante las primeras 30 h de tratamiento. Por tanto, la oleada de LH y la subsecuente funci&oacute;n l&uacute;tea observada en algunas becerras tratadas con Kiss&#45;10 podr&iacute;an explicarse, en parte, por un mayor est&iacute;mulo a la actividad esteroidog&eacute;nica inducida por las gonadotropinas hipofisiarias, en sinergia con un elevado nivel sangu&iacute;neo de IGF&#45;1<sup>(38)</sup>, retroalimentando con ello positivamente al componente hipot&aacute;lamo&#45;hip&oacute;fisis. Es pertinente mencionar que las borregas y ratas con signos de pubertad en respuesta a la administraci&oacute;n repetida de Kiss&#45;10<sup>(9,10,18)</sup>, cursaron tambi&eacute;n por intervalos de aumentos en las concentraciones sangu&iacute;neas de estradiol. As&iacute; mismo, en otro estudio se puntualiz&oacute; que la Kiss&#45;10 administrada en forma continua a borregas adultas, indujo una oleada de LH s&oacute;lo en aqu&eacute;llas que respondieron al tratamiento con una elevaci&oacute;n de estradiol<sup>(39)</sup>. Estos resultados son sugerentes de que en asociaci&oacute;n con el desarrollo som&aacute;tico, el cual podr&iacute;a ser evidenciado indirectamente por IGF&#45;1, la Kiss&#45;10 evoca una respuesta ovulatoria a trav&eacute;s de la promoci&oacute;n de una mayor actividad esteroidog&eacute;nica inducida por la actividad GnRH/ LH. En el presente estudio no se cuantific&oacute; el estradiol circulante, pero considerando la informaci&oacute;n existente en la literatura no se puede ignorar la posible interacci&oacute;n entre IGF1 y estradiol en el inicio de la pubertad.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, a nivel del sistema nervioso central, el IGF&#45;1 y el estradiol interact&uacute;an en m&uacute;ltiples procesos de maduraci&oacute;n neural<sup>(38,40)</sup>, entre los que destacan: plasticidad sin&aacute;ptica en las neuronas GnRH<sup>(41)</sup>, expresi&oacute;n de kisspeptinaen el n&uacute;cleo anteroventral periventricular<sup>(42)</sup> y secreci&oacute;n de GnRH y LH<sup>(43,44)</sup>; procesos que tienen lugar en regiones hipotal&aacute;micas en cargadas de regular la liberaci&oacute;n de LH en forma de oleada<sup>(42)</sup> al menos en roedores, lo cual podr&iacute;a ser un condicionamiento neural en preparaci&oacute;n al eventual inicio de la pubertad. En un estudio efectuado en vaquillas productoras de carne con diferente tasa de crecimiento, se puso de manifiesto el incremento de IGF&#45;1 en sangre durante el desarrollo som&aacute;tico precedente al inicio de la pubertad<sup>(45)</sup>. En el presente trabajo, el IGF&#45;1 se asoci&oacute; positivamente con variables relacionadas con el crecimiento corporal, proporcionando apoyo al concepto de que el IGF&#45;1 es la se&ntilde;al de origen som&aacute;tico que inicia eventos de maduraci&oacute;n neuroendocrina conducentes a la pubertad, incluyendo acciones directas o indirectas en la regulaci&oacute;n de la secreci&oacute;n de la kisspeptina hipotal&aacute;mica o los efectos de la Kiss&#45;10 en la secreci&oacute;n de GnRH/ LH. Otras evidencias a favor de dicho concepto se refieren a que el IGF&#45;1 administrado a monas Rhesus durante la adolescencia, disminuye la sensibilidad de la LH a la retroalimentaci&oacute;n negativa de los estr&oacute;genos<sup>(46)</sup>. Por otro lado, tambi&eacute;n en monas Rhesus en fase puberal se demostr&oacute; que el estradiol es indispensable para evocar un aumento de GnRH en respuesta a Kiss&#45;10<sup>(47)</sup>. Por tanto, el IGF&#45;1 y estradiol parecen promover a nivel central una mayor sensibilidad del hipot&aacute;lamo a la kisspeptina, con lo cual se podr&iacute;a inducir un cambio de retroalimentaci&oacute;n negativo a positivo del estradiol en la secreci&oacute;n de LH, y consecuentemente la ovulaci&oacute;n.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con relaci&oacute;n a leptina, se ha reportado en vaquillas que los niveles de &eacute;sta aumentan en las semanas pr&oacute;ximas a la pubertad<sup>(48)</sup>, sin embargo, se ha determinado que sus efectos son permisivos mas no inductivos para el inicio de la misma, pues la leptina ex&oacute;gena no fue suficiente est&iacute;mulo para aumentar la LH y adelantar la pubertad en vaquillas<sup>(49,50)</sup>. Adem&aacute;s, en ratas con niveles suprimidos de leptina mediante restricci&oacute;n alimenticia<sup>(9,10)</sup> o mediante la aplicaci&oacute;n de anticuerpo contra leptina<sup>(9)</sup>, la Kiss&#45;10 indujo un mayor incremento de LH comparado con los testigos que mostraron niveles normales de leptina. Por otro lado, la supresi&oacute;n de leptina por restricciones de la dieta, indujo la pubertad en 60 % de las ratas tratadas con Kiss&#45;10 en comparaci&oacute;n de las ratas con niveles normales de leptina (0 %)<sup>(10)</sup>. Lo anterior, nos permite proponer que antes del inicio de la pubertad la leptina alcanza una concentraci&oacute;n umbral que posteriormente declina antes de la primera ovulaci&oacute;n; en seguida el IGF&#45;1 aumenta en sangre y se mantiene elevado, se&ntilde;alizando positivamente al hipot&aacute;lamo, quien responde con un aumento en la frecuencia puls&aacute;til de kisspeptina y de GnRH, ocasionando aumentos sincr&oacute;nicos de las gonadotropinas hipofisiarias, lo que a su vez evocar&iacute;a el aumento de actividad folicular, un incremento del estradiol circulante, la presentaci&oacute;n de la oleada preovulatoria de LH y con el l o el desencadenamiento de la pubertad.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En t&eacute;rminos pr&aacute;cticos, el tratamiento de Kiss&#45;10 fue transitorio y sin repercusi&oacute;n posterior, ya que luego de retirar el tratamiento tanto la secreci&oacute;n de LH como el desarrollo de las ondas foliculares fueron similares a los del grupo testigo. En ambos grupos experimentales, el desarrollo folicular postratamiento sigui&oacute; un comportamiento caracter&iacute;stico de las vaquillas en crecimiento, es decir hubo un aumento asociado con la edad<sup>(51,52)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES E IMPLICACIONES</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">     Se concluye que la Kiss&#45;10 administrada repetidamente a becerras pre&#45;p&uacute;beres es un est&iacute;mulo suficiente para evocar incrementos consistentes de LH, para inducir la ovulaci&oacute;n y actividad l&uacute;tea en animales con concentraciones s&eacute;ricas elevadas de IGF&#45;1 y bajas de leptina, pero no para inducir la ciclicidad estral. Una implicaci&oacute;n es que factores diferentes a los aqu&iacute; evaluados, que est&aacute;n presentes o ausentes en la becerra pre&#45;p&uacute;ber, determinan los efectos de la kisspeptina en la respuesta ovulatoria y subsecuente actividad ov&aacute;rica c&iacute;clica.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta informaci&oacute;n es parte del proyecto de investigaci&oacute;n del programa de estudios de Doctorado del primer autor (FMVZ&#45;UNAM). Se agradece a la UNAM, CONACyT e INIFAP por los apoyos econ&oacute;micos proporcionados al primer autor para el desarrollo de sus actividades acad&eacute;micas y de investigaci&oacute;n. Se agradece a la MVZ Clara Murcia Mej&iacute;a, por la cuantificaci&oacute;n de hormonas.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Patterson DJ, Perry RC, Kiracofe GH, Bellows RA, Staigmiller RB, Corah LR. Management considerations in heifer development and puberty. J Anim Sci 1992;70:4018&#45;4035.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173320&pid=S2007-1124201400020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Williams GL, Amstalden M. Understanding postpartum anestrus and puberty in the beef. Proc Appl Reprod Strategies in Beef Cattle 2010. San Antonio, TX. &#91;on line&#93; <a href="http://www.appliedreprostrategies.com/2010/January/pdfs/Gary_Williams.pdf" target="_blank">http://www.appliedreprostrategies.com/2010/January/pdfs/Gary_Williams.pdf</a>. Accesed May, 2013.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173322&pid=S2007-1124201400020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Ebling JP. The neuroendocrine timing of puberty. Reproduction 2005;129(6):675&#45;683.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173324&pid=S2007-1124201400020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Moenter SM, DeFazio AR, Pitts GR, Nunemaker CS. Mechanisms underlying episodic gonadotropin&#45;releasing hormone secretion. Front Neuroendocrinol 2003;24(2):79&#45;97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173326&pid=S2007-1124201400020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Roa J, Aguilar E, Dieguez C, Pinilla L, Tena&#45;Sempere M. New <i>frontiers</i> in Kisspeptin/GPR54 physiology as fundamental gatekeepers of reproductive function. Front Neuroendocrinol 2008;29:48&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173328&pid=S2007-1124201400020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Oakley AE, Clifton DK, Steiner RA. Kisspeptin signaling in the brain. Endocr Rev 2009;30:713&#45;743.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173330&pid=S2007-1124201400020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Caraty A, Smith JT, Lomet D, Said SB, Morrissey A, Cognie J, <i>et al.</i> Kisspeptin synchronizes preovulatory surges in cyclical ewes and causes ovulation in seasonally acyclic ewes. Endocrinology 2007;148:5258&#45;5267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173332&pid=S2007-1124201400020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Messager S, Chatzidaki EE, Ma D, Hendrick AG, Zahn D, Dixon J, Thresher RR, <i>et al.</i> Kisspeptin directly stimulates gonadotropin&#45;releasing hormone release via G proteincoupled receptor 54. PNAS 2005;102:1761&#45;1766.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173334&pid=S2007-1124201400020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Navarro VM, Fern&aacute;ndez&#45;Fern&aacute;ndez R, Castellano JM, Roa J, Mayen A, Barreiro ML, <i>et al.</i> Advanced vaginal opening and precocious activation of the reproductive axis by KiSS&#45;1 peptide, the endogenous ligand of GPR54. J Physiol 2004;561:379&#45;386.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173336&pid=S2007-1124201400020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Castellano J, Navarro V, Fernandez&#45;Fernandez R, Nogueiras R, Tovar S, Roa J, <i>et al.</i> Changes in hypothalamic KiSS&#45;1 system and restoration of pubertal activation of the reproductive axis by kisspeptin in undernutrition. Endocrinology 2005;146:3917&#45;3925.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173338&pid=S2007-1124201400020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Arreguin&#45;Arevalo JA, Lents CA, Farmieri TA, Nett TM, Clay CM. KiSS&#45;1 peptide induces release of LH by a direct effect on the hypothalamus of ovariectomized ewes. Anim Reprod Sci 2007;10:265&#45;275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173340&pid=S2007-1124201400020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Kadokawa H, Matsui M, Hayashi K, Matsunaga N, Kawashima C, Shimizu T, <i>et al.</i> Peripheral administration of kisspeptin&#45;10 increases plasma concentrations of GH as well as LH in prepubertal Holstein heifers. J Endocrinol 2008;196:331&#45;334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173342&pid=S2007-1124201400020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Ezzat&#45;Ahmed A, Saito H, Sawada T, Yaegashi T, Yamashita T, Hirata T&#45;I, <i>et al.</i> Characteristics of the stimulatory effect of kisspeptin&#45;10 on the secretion of luteinizing hormone, follicle&#45;stimulating hormone and growth hormone in prepubertal male and female cattle. J Reprod Dev 2009;55:650&#45;654.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173344&pid=S2007-1124201400020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Alamilla RM. Respuesta de LH, FSH y GH a una aplicaci&oacute;n de kisspeptina en becerras prep&uacute;beres de diferentes edades y su asociaci&oacute;n con las concentraciones circulantes de leptina, IGF&#45;1 y estradiol &#91;tesis maestr&iacute;a&#93;. M&eacute;xico, DF: Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico; 2013.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173346&pid=S2007-1124201400020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Santos ER, Calder&oacute;n RRC, Rosete FVJ, Arregu&iacute;n AJA, Vera AHR, Guti&eacute;rrez ACG, <i>et al.</i> Efecto de dos dosis de kisspeptina&#45;10 (Kiss&#45;10) en la liberaci&oacute;n de LH y FSH y su asociaci&oacute;n con la composici&oacute;n corporal y leptina s&eacute;rica en becerras prep&uacute;beres &#91;resumen&#93;. Reuni&oacute;n Nacional de Investigaci&oacute;n Pecuaria. 2011:113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173348&pid=S2007-1124201400020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. McLeod BJ, Peters AR, Haresign W, Lamming GE. Plasma LH and FSH responses and ovarian activity in prepubertal heifers treated with repeated injections of low doses of GnRH for 72 h. J Reprod Fert 1985:74:589&#45;595.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173350&pid=S2007-1124201400020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Skaggs CL, Able BV, Stevenson JS. Pulsatile or continuous infusion of luteinizing hormone&#45;releasing hormone and hormonal concentrations in prepubertal beef heifers. J Anim Sci 1986;62:1034&#45;1048.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173352&pid=S2007-1124201400020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Redmond RS, Macedo GG, Velez IC, Caraty A, Williams GL, Amstalden M. Kisspeptin activates the hypothalamic&#45;adenohypophyseal&#45; gonadal axis in prepubertal ewe lambs. Reproduction 2011;141:541&#45;548.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173354&pid=S2007-1124201400020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Garc&iacute;a E. Modificaciones al Sistema de Clasificaci&oacute;n clim&aacute;tica de Koopen. 4th ed., Instituto de Geograf&iacute;a, UNAM, M&eacute;xico, 194; 1988.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173356&pid=S2007-1124201400020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Wildman EE, Jones GM, Wagner PE, Bowman RL, Troutt HF, Lesch TN. A dairy cow body condition scoring system and its relationship to selected production characteristics. JDS 1982;65:495&#45;501.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173358&pid=S2007-1124201400020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Williams AR. Ultrasound applications in beef cattle carcass research &amp; management. J Anim Sci 2002;80(Suppl 2):183&#45;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173360&pid=S2007-1124201400020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Calder&oacute;n RRC, Villa&#45;Godoy A, Lagunes LJ, Fajersson P. Desarrollo folicular en vaquillas ceb&uacute; y suizo pardo perip&uacute;beres en condiciones tropicales. T&eacute;c Pecu M&eacute;x 2000;38:163&#45;175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173362&pid=S2007-1124201400020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Arrieta E, Porras A, Gonz&aacute;lez&#45;Padilla E, Murcia C, Rojas S, Perera&#45;Mar&iacute;n G. Ovine serum and pituitary isoforms of luteinising hormone during the luteal phase. Reprod Fert Dev 2006;18:485&#45;495.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173364&pid=S2007-1124201400020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Perera&#45;Mar&iacute;n G, Murcia C, Rojas S, Hern&aacute;ndez&#45;Cer&oacute;n J, Gonz&aacute;lez&#45;Padilla E. Pattern of circulating luteinizing hormone isoforms during the estrous and luteal phases in Holstein heifers. Anim Reprod Sci 2005;86:53&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173366&pid=S2007-1124201400020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Delavaud C, Ferlay A, Faulconnier Y, Bocquier F, Kann G, Chilliard Y. Plasma leptin concentration in adult cattle: effects of breed, adiposity, feeding level, and meal intake. 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Statistical Analysis System Institute Inc, Cary, NC, USA. 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173372&pid=S2007-1124201400020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Han SK, Gottsch ML, Lee KJ, Popa SM, Smith JT, Jakawich SK, <i>et al.</i> Activation of gonadotropin&#45;releasing hormone neurons by kisspeptin as a neuroendocrine switch for the onset of puberty. 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Wang J, Sun L, Zhang T, Zhou H, Lou Y. Effect of peripheral administration of kisspeptin&#45;10 on dynamic LH secretion in prepubertal ewes. AJAS 2012;25;785&#45;788.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173378&pid=S2007-1124201400020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Hashizume T, Saito H, Sawada T, Yaegashi T, Ezzat AA, Sawai K, <i>et al.</i> Characteristics of stimulation of gonadotropin secretion by kisspeptin&#45;10 in female goats. Anim Reprod Sci 2010:118:37&#45;41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173380&pid=S2007-1124201400020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Tovar S, V&aacute;zquez MJ, Navarro VM, Fern&aacute;ndez&#45;Fern&aacute;ndez R, Castellano JM, Vigo E <i>et al.</i> Effects of single or repeated intravenous administration of kisspeptin upon dynamic LH secretion in conscious male rats. 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Endocrinology 2004;145:4565&#45;4574.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173384&pid=S2007-1124201400020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Shahab M, Mastronardi C, Seminara SB, Crowley WF, Ojeda SR, Plan TM. Increased hypothalamic GPR54 signaling: a potential mechanism for initiation of puberty in primates. PNAS 2005;102:2129&#45;2134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173386&pid=S2007-1124201400020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Pirl KG, Adams TE. Induction of precocious puberty in ewe lambs by pulsatile administration of GnRH. J Reprod Fert 1987;80:355&#45;359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173388&pid=S2007-1124201400020000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Zulu VCh, Nakao T, Sawamuka Y. Insulin&#45;growth like factor I as a possible hormonal mediator nutritional regulation of reproduction in cattle. J Vet Med Sci 2002;64(8):657&#45;665.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173390&pid=S2007-1124201400020000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Block SS, Smith JM, Ehrhardt RA, Diaz MC, Rhoads RP, Van Amburgh ME Boisclair YR. Nutritional and developmental regulation of plasm leptin in dairy cattle. J Dairy Sci 2003;86:3206&#45;3214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173392&pid=S2007-1124201400020000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Chelikani PK, Ambrose DJ, Keisler DH, Kennelly JJ. Effects of dietary energy and protein density on plasma concentration of leptin and metabolic hormones in dairy heifers. J Dairy Sci 2009;92:1430&#45;1441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173394&pid=S2007-1124201400020000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. S&eacute;bert ME, Lomet D, Ben Sa&iuml;d S, Monget P, Briant C, Scaramuzzi RJ, <i>et al.</i> Insights into the mechanism by which kisspeptin stimulates a preovulatory LH surge and ovulation in seasonally acyclic ewes: Potential role of estradiol. Dom Anim Endo 2010;38:289&#45;298.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173396&pid=S2007-1124201400020000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Mendez, P, Azcoitia I, Garcia&#45;Segura LM. Interdependence of oestrogen and insulin&#45;like growth factor&#45;I in the brain: potential for analysing neuroprotective mechanisms. J Endocrinol 2005;185:11&#45;17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173398&pid=S2007-1124201400020000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. DiVall SA, Williams TR, Carver SE, Koch L, Br&uuml;ning JC, Kahn R, <i>et al.</i> Divergent roles of growth factors in the GnRH regulation of puberty in mice. JCI 2010;120:2900&#45;2909.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173400&pid=S2007-1124201400020000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. Hiney JK, Srivastava VK, Pine MD, Dees WL. Insulin&#45;like growth factor&#45;I activates KiSS&#45;1 gene expression in the brain of the prepubertal female rat. Endocrinology 2009;150:376&#45;384.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173402&pid=S2007-1124201400020000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. Hiney JK, Srivastava V, Nyberg CL, Ojeda SR, Dees WL. Insulin&#45;like growth factor&#45;I of peripheral origin acts centrally to accelerate the initiation of female puberty. Endocrinology 1996;137:3717&#45;3727.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173404&pid=S2007-1124201400020000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44. Hiney JK, Srivastava V, Dearth RK, Dees WL. Influence of estradiol on insulin&#45;like growth factor&#45;1&#45;induced luteinizing hormone secretion. 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Dom Anim Endocrinol 1996;13:325&#45;338.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8173408&pid=S2007-1124201400020000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46. Wilson ME. IGF&#45;I administration advances the decrease in hypersensitivity to oestradiol negative feedback inhibition of serum LH in adolescent female rhesus monkeys. 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