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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this project was to detect the presence of Listeria monocytogenes, Salmonella and Yersinia enterocolitica in Mexican and imported beef steaks purchased at supermarkets in three cities of Mexico. Prior to testing beef products, detection limits using PCR-based methods were conducted from both pure bacterial cultures as well as inoculated beef. A total of 90 samples, half of Mexican and half of imported origin, were collected in this study. Overall, a total of 27.78 % of samples tested via PCR were positive for L. monocytogenes, 8.89 % for Salmonella and 28.89 % for Y. enterocolitica, respectively. None of the imported samples tested positive for Salmonella. Mexican samples had a higher Listeria, Yersinia, and Salmonella presence than imported samples, indicating a possible health risk to consumers purchasing this type of product. These results emphasize the need to implement the mandatory use of preventive and control programs, Sanitation Standard Operating Procedures (SSOPs) and HACCP in the Mexican meat industry.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas de investigaci&oacute;n</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Detecci&oacute;n de <i>Listeria monocytogenes, Salmonella</i> y <i>Yersinia enterocolitica</i> en carne de res en puntos de venta en M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Detection of <i>Listeria monocytogenes, Salmonella</i> and <i>Yersinia enterocolitica</i> in beef at points of sale in Mexico</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Maria Salud Rubio Lozano<sup>a</sup>, Jos&eacute; Fernando Mart&iacute;nez Bruno<sup>a</sup>, Rigoberto Hern&aacute;ndez Castro<sup>a</sup>, Cynthia Bonilla Contreras<sup>a</sup>, Rub&eacute;n Danilo M&eacute;ndez Medina<sup>a</sup>, Jos&eacute; Fernando N&uacute;&ntilde;ez Espinosa<sup>a</sup>, Alejandro Echeverry<sup>b</sup>, Mindy M. Brashears<sup>b</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>a</i></sup> <i>Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico (UNAM). Centro de Ense&ntilde;anza Pr&aacute;ctica, Investigaci&oacute;n en Producci&oacute;n y Salud Animal. Av Cruz Blanca No. 486. Colonia San Miguel Topilejo, Delegaci&oacute;n Tlalpan. 04500. M&eacute;xico, DF. Tel.: +52&#45;55&#45;8480810; fax: +52&#45;55&#45;8480514;</i> <a href="mailto:msalud@unam.mx">msalud@unam.mx</a>. <i>Correspondencia al primer autor.</i></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>b</i></sup> <i>Department of Animal and Food Sciences, Texas Tech University, USA.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 21 de junio de 2011.    <br> 	Aceptado el 15 de noviembre de 2011.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo fue detectar la presencia de <i>Listeria monocytogenes, Salmonella</i> y <i>Yersinia enterocolitica</i> en carne de res, mexicana e importada, adquirida en supermercados en tres ciudades de M&eacute;xico. Antes de analizar los productos c&aacute;rnicos, se estim&oacute; el l&iacute;mite de detecci&oacute;n usando m&eacute;todos basados en reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), tanto de cultivos bacterianos puros como de carne inoculada. Un total de 90 muestras, mitad mexicanas y mitad importadas, fueron recolectadas en este estudio. Un total de 27.78 % muestras analizadas por PCR fueron positivas a <i>L. monocytogenes,</i> 8.89 % a <i>Salmonella</i> y 28.89 % a <i>Y. enterocolitica.</i> Ninguna de las muestras importadas fue positiva a <i>Salmonella.</i> Las muestras mexicanas presentaron mayor &iacute;ndice de <i>Listeria, Yersinia</i> y <i>Salmonella</i> que las muestras de carne importada, lo que indica un posible riesgo de salud para los consumidores que adquieren este tipo de producto. Estos resultados enfatizan la necesidad de implementar de forma obligatoria programas de prevenci&oacute;n y control, Procedimientos Operativos Estandarizados de Sanitizaci&oacute;n (POE's&#45; SSOP's en ingl&eacute;s) y An&aacute;lisis de Peligros y Puntos de Control Cr&iacute;ticos (APPCC&#45; HACCP en ingl&eacute;s) en la industria c&aacute;rnica mexicana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: <i>Listeria, Salmonella, Yersinia,</i> Carne de res, PCR, M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of this project was to detect the presence of <i>Listeria monocytogenes, Salmonella</i> and <i>Yersinia enterocolitica</i> in Mexican and imported beef steaks purchased at supermarkets in three cities of Mexico. Prior to testing beef products, detection limits using PCR&#45;based methods were conducted from both pure bacterial cultures as well as inoculated beef. A total of 90 samples, half of Mexican and half of imported origin, were collected in this study. Overall, a total of 27.78 % of samples tested via PCR were positive for <i>L. monocytogenes,</i> 8.89 % for <i>Salmonella</i> and 28.89 % for <i>Y. enterocolitica,</i> respectively. None of the imported samples tested positive for <i>Salmonella.</i> Mexican samples had a higher <i>Listeria, Yersinia,</i> and <i>Salmonella</i> presence than imported samples, indicating a possible health risk to consumers purchasing this type of product. These results emphasize the need to implement the mandatory use of preventive and control programs, Sanitation Standard Operating Procedures (SSOPs) and HACCP in the Mexican meat industry.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: <i>Listeria, Salmonella, Yersinia,</i> Beef, PCR, Mexico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico existen muchas variantes en las condiciones sanitarias de la carne de res; estas condiciones son dependientes del desarrollo econ&oacute;mico de la industria en las diversas regiones geogr&aacute;ficas del pa&iacute;s. La regi&oacute;n norte de M&eacute;xico, que incluye los estados de Chihuahua y Nuevo Le&oacute;n, ha mostrado tener un gran desarrollo econ&oacute;mico e industrial en comparaci&oacute;n con los estados localizados en el centro y sur. Este desarrollo ha tenido como consecuencia un impacto en las condiciones higi&eacute;nicas de los rastros y de los puntos de venta y por lo tanto, en la presencia y desarrollo de pat&oacute;genos en la carne. En M&eacute;xico, se ha informado con anterioridad de la presencia de bacterias como: <i>Listeria, Salmonella, Yersinia</i> y <i>Staphylococcus,</i> entre otros agentes causantes de enfermedades transmitidas por alimentos, en donde la carne y sus derivados act&uacute;an como veh&iacute;culos potenciales para la transmisi&oacute;n de estos pat&oacute;genos<sup>(1,2,3,4)</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los an&aacute;lisis microbiol&oacute;gicos convencionales son laboriosos debido al tiempo que se requiere para obtener resultados, ya que dependen de pruebas est&aacute;ndar para aislar y confirmar diversos pat&oacute;genos en la carne. Sin embargo, debido a las caracter&iacute;sticas de la PCR (especificidad, sensibilidad, velocidad, l&iacute;mite de detecci&oacute;n y selectividad) se ha incrementado el uso de esta tecnolog&iacute;a para estandarizaci&oacute;n y validaci&oacute;n como prueba de diagn&oacute;stico para detectar pat&oacute;genos<sup>(5,6,7)</sup>. La detecci&oacute;n oportuna y confiable de varios pat&oacute;genos bacterianos en cualquier fase de la cadena c&aacute;rnica, es un paso importante hacia su control, monitoreo y prevenci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo fue determinar la presencia de <i>Listeria monocytogenes, Salmonella</i> y <i>Yersinia enterocolitica</i> mediante PCR en carne mexicana e importada vendida en supermercados en tres ciudades de M&eacute;xico: Nuevo Le&oacute;n (norte), Ciudad de M&eacute;xico (centro) y Tabasco (sur), representando las principales regiones econ&oacute;micas del pa&iacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de validar los l&iacute;mites de detecci&oacute;n de los m&eacute;todos utilizados en este trabajo, se llev&oacute; a cabo un estudio inicial de inoculaci&oacute;n de productos c&aacute;rnicos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas usadas en este trabajo fueron <i>L. monocytogenes</i> LNA 102/99 FDA1OMS, <i>Salmonella</i> Typhimurium A TIC 14579 y <i>Y. enterocolitica</i> ENCB&#45;0752. Las cepas se conservaron y almacenaron a &#45;80 &deg;C en infusi&oacute;n cerebro coraz&oacute;n (BHI) y glicerol al 50%. Antes de cada prueba se determin&oacute; la viabilidad y la pureza. Una colonia representativa de cada una fue inoculada en agar selectivo que contiene polimixina&#45;acriflavina&#45;litio cloro&#45;ceftazidima&#45;esculina&#45;manitol (PALCAM) para <i>L. monocytogenes,</i> agar bismuto sulfito (BSA) para <i>Salmonella</i> y agar cefsulodina&#45;irgas&aacute;n&#45;novobiocina (CIN) para <i>Y. enterocolitica,</i> respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para validar los l&iacute;mites de detecci&oacute;n de <i>Salmonella</i> y <i>L. monocytogenes</i> en este estudio, 25 g de carn e de res fu eron tom ados aleatoriamente y colocados en 225 ml de caldo lactosa. Para <i>Y. enterocolitica</i> se colocaron 10 g de carne en 90 ml de caldo de enriquecimiento sel ectivo para <i>Yersinia</i> (YSB). Todas las muestras fueron homogeneizadas por 3 min (diluci&oacute;n primaria) y finalmente inoculadas con cada uno de los microorganismos<sup>(8,9)</sup>. Cada diluci&oacute;n tuvo una fase de enriquecimiento de acuerdo con la Norma Oficial Mexicana<sup>(10,11)</sup>. Al final del enriquecimiento, se hicieron diluciones decimales (hasta 10<sup>&#45;10</sup>) para determinar el l&iacute;mite m&iacute;nimo de detecci&oacute;n de UFC por PCR. Las diluciones se incubaron a 37 &deg;C por 24 h y la relaci&oacute;n correcta entre el n&uacute;mero de UFCs y sus diluciones correspondientes se midi&oacute; a 3.0 x 10<sup>7</sup>, 1.0 x 10<sup>6</sup> y 1.8 x 10<sup>7</sup> UFC/g para <i>L. monocytogenes, Salmonella</i> Typhimurium y <i>Y. enterocolitica,</i> respectivamente. El ADN se extrajo mediante el m&eacute;todo previamente descrito por Millar <i>et al<sup>(12)</sup>.</i> Se us&oacute; el siguiente programa de amplificaci&oacute;n: 1 paso a 94 &deg;C/5 min, 35 ciclos de 60 seg a 94 &deg;C (desnaturalizaci&oacute;n), 60 seg a 56 &deg;C (alineaci&oacute;n), 80 seg a 72 &deg;C (extensi&oacute;n) y 8 min a 72 &deg;C (extensi&oacute;n final).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una colonia t&iacute;pica de cada microorganismo se incub&oacute; en 10 ml de caldo tripticasa soya (TSB) a 37 &deg;C por 24 h. El ADN se extrajo por el m&eacute;todo Silhavy<sup>(13)</sup>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los iniciadores Mar1 y Mar2, 5'&#45;GGGCTTTATCCATAAAATA&#45;3' y 5'&#45;TTGGAAGAACCTTGATTA&#45;3', que amplifican un fragmento de 453 bp del gen <i>iap</i><sup>(14)</sup>, se usaron para <i>L. monocytogenes.</i> Para <i>Salmonella</i> Typhimurium se usaron los iniciadores 139 y 141 (5'&#45;CAGTGGTGTCATATCATTGCC&#45;3' y 5'&#45;GTAAGAAGGTGCTTATACATC&#45;3'), que generan un fragmento de 284 bp del gen invA<sup>(6,15)</sup>, y para la detecci&oacute;n de <i>Y. enterocolitica</i> se usaron los iniciadores 5'CTATTGGTTATGCGCAAAGC&#45;3' y 5'&#45;TGCAAGTGGGTTGAATTGCA&#45;3 ', que amplifican un fragmento de 354 bp del gen <i>ail,</i> exclusivos para serotipos patog&eacute;nicos<sup>(16)</sup>.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se us&oacute; ADN de <i>L. monocytogenes</i> puro y <i>S.</i> Typhimurium a una concentraci&oacute;n de 0.26 ng/&#956;l, <i>S.</i> Typhimurium a 0.4 ng/&#956;l y <i>Y. enterocolitica</i> a 0.4 ng/&#956;l. Se realizaron diluciones dobles para determinar la cantidad m&iacute;nima detectable de ADN gen&oacute;mico. Cuando se estableci&oacute; el l&iacute;mite de detecci&oacute;n de ADN puro, se determin&oacute; su equivalencia a un n&uacute;mero de genomas<sup>(17)</sup> y genomas 0.2, 0.4 y 0.16 para <i>L. monocytogenes, Salmonella</i> y <i>Y. enterocolitica,</i> respectivamente. La PCR se realiz&oacute; con 1 ciclo de 94 &deg;C/5 min, 30 ciclos a 94 &deg;C/30 seg (desnaturalizaci&oacute;n), 30 seg a 56 &deg;C (alineamiento), 30 seg a 72 &deg;C (extensi&oacute;n) y 5 min a 72 &deg;C (extensi&oacute;n final). En cuanto a <i>L. monocytogenes,</i> la temperatura en la fase de alineamiento fue de 50 &deg;C. En todas las pruebas, los productos amplificados se evaluaron en un gel de agarosa al 2% usando el digesto <i>Mspl</i> de pBR322 como marcador de peso molecular. Para todos los experimentos, el agua est&eacute;ril y el ADN gen&oacute;mico de cada organismo se usaron como controles negativos y positivos, respectivamente.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se inocul&oacute; individualmente una colonia t&iacute;pica de cada microorganismo en 10 ml de caldo Luria&#45;Bertani (LB) y se incub&oacute; a 37 &deg;C/24 h. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n, se tomaron 0.5 ml de cada cultivo y se crecieron en 9.5 ml de LB, repitiendo la incubaci&oacute;n cada 4 h. Los niveles de concentraci&oacute;n inicial fueron: 3.0 x 10<sup>7</sup>, 5.0 x 10<sup>6</sup> y 2.0 x 10<sup>8</sup> UFC/ml para <i>L. monocytogenes, S.</i> Typhimurium y <i>Y. enterocolitica,</i> respectivamente. Se prepararon diluciones decimales sucesivas (hasta 10<sup>&#45;10</sup>). Las condiciones para PCR fueron: 1 ciclo a 94 &deg;C/5 min, 30 ciclos de 40 seg a 94 &deg;C (desnaturalizaci&oacute;n), 45 seg a 56 &deg;C (alineamiento), 60 seg a 72 &deg;C (extensi&oacute;n) y 5 min a 72 &deg;C (extensi&oacute;n final).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio se llev&oacute; a cabo en tres ciudades de M&eacute;xico: Monterrey (norte: estado de Nuevo Le&oacute;n), Villahermosa (sur: estado de Tabasco), y Ciudad de M&eacute;xico (centro: Distrito Federal). Para este estudio se obtuvieron 90 muestras de carne de res (25 0 g) de supermercados asociados con la Asociaci&oacute;n Nacional de Tiendas y Autoservicio y Departamentales (ANTAD)<sup>(1)</sup> y de Wal&#45;Mart de M&eacute;xico S.A de C.V. Un total de 30 muestras de carne procedentes del norte, 20 del centro y 40 del sur. De &eacute;stas, 50 % fueron nacionales (producido en M&eacute;xico) y 50 fueron importadas. Las muestras de carne se colectaron 12 h antes del procesamiento y se mantuvieron a 4 &deg;C hasta que se realiz&oacute; la prueba microbiana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n del ADN bacteriano de muestras de carne de res obtenidas de vendedores y supermercados se llev&oacute; a cabo como se describi&oacute; anteriormente. Las condiciones de la PCR fueron similares a las mencionadas previamente para cada microorganismo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <a href="/img/revistas/rmcp/v4n1/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a> presenta el porcentaje de muestras de carne positivo a pat&oacute;genos por ciudad. La prueba de PCR demostr&oacute; la presencia de ADN de <i>L. monocytogenes, S.</i> Typhimurium y <i>Y. enterocolitica</i> en carne de supermercados de los estados de Nuevo Le&oacute;n, Tabasco y Ciudad de M&eacute;xico. El porcentaje total de ocurrencia de estos pat&oacute;genos en las muestras de carne fue 27.78 % para <i>L. monocytogenes,</i> 8.89 % para <i>Salmonella</i> y 28.89 % para <i>Y. enterocolitica.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Monterrey, ninguna de las muestras importadas result&oacute; positiva para alguno de los pat&oacute;genos; sin embargo, 26.7, 3.3 y 6.7 % de las muestras de carne mexicana result&oacute; positiva p ara <i>Listeria, Salmonella</i> y <i>Yersinia,</i> respectivamente. En aquellas muestras obtenidas en la Ciudad de M&eacute;xico, la presencia de <i>Listeria</i> fue mayor en muestras importadas (n=8; 17.5 %) que en aquellas de origen mexicano (n=4; 10 %). Por otro lado, en la Ciudad de M&eacute;xico, no se detect&oacute; <i>Salmonella</i> en muestras importadas, mientras que 2.5 % de las muestras mexicanas resultaron positivas a este pat&oacute;geno. Se detect&oacute; <i>Yersinia</i> en 12.5 % (n=5) de las muestras importadas y en 27.5 % (n=11) de las muestras de origen mexicano. La mayor presencia de <i>Listeria</i> se detect&oacute; en muestras mexicanas de Tabasco, con 25 % (n=5). En Tabasco, ninguna de las muestras importadas result&oacute; positiva a <i>Salmonella,</i> pero 30 % de las muestras mexicanas fueron positivas a este pat&oacute;geno. En contraste, de las muestras obtenidas en Tabasco, 30 % de las importadas fueron positivas a <i>Yersinia,</i> mientras que &uacute;nicamente 10 % de las mexicanas resultaron positivas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de <i>L. monocytogenes,</i> el porcentaje total de detecci&oacute;n fue similar al encontrado por Manzano <i>et al<sup>(14)</sup></i> en muestras comerciales italianas, en donde los autores detectaron al pat&oacute;geno en 25 % de la carne molida<sup>(14)</sup>. Sin embargo, Pen g y Shelef<sup>(18)</sup> sol am en te encontraron 15 % de la carne molida, procedente de supermercados de Estados Unidos de Am&eacute;rica, contaminada con este microorganismo. En el presente estudio, se encontr&oacute; un porcentaje menor de <i>L. monocytogenes</i> que el 35 % informado por Gonz&aacute;lez <i>et</i> aX<sup>19)</sup> en cortes New York vendidos en Nuevo Le&oacute;n, M&eacute;xico. Frat&aacute;mico<sup>(20)</sup> y Peng<sup>(18)</sup> detectaron la presencia de 6.5 y 10.0 % de <i>Salmonella,</i> respectivamente, en carne molida vendida en supermercados de Estados Unidos de Am&eacute;rica, encontrando en total 8.89 % de muestras positivas a este pat&oacute;geno. R&iacute;os <i>et al<sup>(21)</sup></i> informaron de 10.0 % de contaminaci&oacute;n por <i>Salmonella</i> en cortes New York vendidos en el estado de Nuevo Le&oacute;n, M&eacute;xico, un poco m&aacute;s alta que el porcentaje de muestras positivas encontradas en este estudio en el mismo Estado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La detecci&oacute;n de <i>Y. enterocolitica</i> por medio de PCR en carne de res no ha sido com&uacute;nmente reportada en la mayor&iacute;a de los estudios, porque generalmente se hab&iacute;a enfocado a productos de cerdo<sup>(22)</sup>. Sin embargo, Vishnubhatla <i>et al<sup>(23)</sup></i> encontraron este agente pat&oacute;geno en 31 % de las muestras de carne molida. En Finlandia<sup>(24)</sup> detectaron 25 % de contaminaci&oacute;n con <i>Y. enterocolitica</i> en carne molida. En el presente estudio se obtuvieron resultados similares a los publicados por Fredriksson <i>et al<sup>(24)</sup>,</i> al sumar un total de 28.89 % de muestras positivas a <i>Y. enterocolitca.</i> En Tabasco, se encontr&oacute; el porcentaje m&aacute;s alto de los tres pat&oacute;genos al ser comparados con otras ciudades. <i>L. monocytogenes</i> se encontr&oacute; m&aacute;s frecuentemente en el norte, comparado con las otras dos enterobacterias. La Ciudad de M&eacute;xico mostr&oacute; tener el porcentaje m&aacute;s bajo de muestras positivas a <i>Salmonella,</i> pero el porcentaje m&aacute;s alto para <i>Y. enterocolitica.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se puede observar en estos resultados, la carne importada fue la menos contaminada en comparaci&oacute;n con la de origen mexicano, indicando que el uso obligatorio de HACCP, como requisito de United States Department of Agriculture&#45;Food Safety and Inspection Service (USDA&#45;FSIS), es efectivo para la disminuci&oacute;n de la contaminaci&oacute;n por pat&oacute;genos en la canal bovina<sup>(25,26)</sup>. En M&eacute;xico, en contraste con Estados Unidos de Am&eacute;rica, el uso de programas pre&#45;requeridos e implementaci&oacute;n del sistema HACCP para reducir cargas pat&oacute;genas en la canal bovina, no es obligatorio y solamente es usado por algunos rastros como iniciativa propia. El porcentaje de contaminaci&oacute;n por <i>L. monocytogenes</i> y <i>Y. enterocolitica</i> fue m&aacute;s alto que el de <i>Salmonella,</i> posiblemente debido a las condiciones bajo las cuales los pat&oacute;genos mencionados sobreviven, crecen y se desarrollan <sup>(27,28)</sup>. En el caso de <i>L. monocytogenes,</i> &eacute;sta penetra a la carne al ser manipulada o al entrar en contacto con maquinaria, herramienta o superficies de trabajo contaminadas<sup>(29,30,31,32)</sup>. La detecci&oacute;n de <i>L. monocytogenes, Salmonella</i> y <i>Yersinia enterocolitica</i> en bistecs vendidos en tiendas de menudeo y supermercados, indica el riesgo potencial para la salud de los consumidores. Estos resultados tambi&eacute;n se&ntilde;alan la necesidad de implementaci&oacute;n obligatoria de programas preventivos como SSOPs y HACCP en la industria c&aacute;rnica de M&eacute;xico.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo se realiz&oacute; gracias al financiamiento del Programa de Apoyo a Proyectos de Investigaci&oacute;n e Innovaci&oacute;n Tecnol&oacute;gica (PAPIIT IN206401) de la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. ANTAD. Asociaci&oacute;n Nacional de Tiendas de Autoservicio y Departamentales &#91;en l&iacute;nea&#93;. <a href="http://~.antad.org.mx" target="_blank">http://~.antad.org.mx</a> lCasociados.html. 2002. Consultado 15 Sep, 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143052&pid=S2007-1124201300010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Castaneda, PE, Diaz AE, Hernandez AL, Jaramillo ACJ. Identification and typing of Yersinia enterocolitica biotypes and serotypes isolated. Rev laude Publica 2001;(35):380&#45; 384.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143054&pid=S2007-1124201300010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Estrada GT, Lopez Sc, Zamarripa AB, Thompson MR, Gutierrez CL, Mancera MA, Escobar GA. Prevalence of Escherichia coli and Salmonella spp. in street&#45;vended food of open markets (tianguis) and general hygienic and trading practices in Mexico City. Epidemiol Infect 2004;(132):1181&#45;1184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143056&pid=S2007-1124201300010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Rivera BM, Shackelford lD, Arthur TM, Westmoreland KE, Bellinger G, Rossman M, Reagan JO, Koohmaraie M. Prevalence of Escherichia coli O157:H7, Listeria monocytogenes, and Salmonella in two geographically distant commercial beef processing plants in the United States. J Food Prot 2004;(67):295&#45;302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143058&pid=S2007-1124201300010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Li Y, Mustapha A. Development of a polymerase chain reaction assay to detect enteric bacteria in ground beef. Food Microbiol 2004;(21):369&#45;375</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143060&pid=S2007-1124201300010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Malorny B, Tassios PT, Radstrom P, Cook N, Wagner M, Hoorfar J. Standardization of diagnostic PCR for the detection of foodborne pathogens. Int J Food Microbiol 2003;(83):39&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143061&pid=S2007-1124201300010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Olsen JE. DNA&#45;based methods for detection of food&#45;borne bacterial pathogens. Food Res Int 2000;(33):257&#45;266.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143063&pid=S2007-1124201300010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Gasanov U, Hughes D, Hansbro PM. Methods for the isolation and identification of Listeria spp. and Listeria monocytogenes: a review. FEMS Microbiol Rev 2005;(29):851&#45;875.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143065&pid=S2007-1124201300010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Lantz PG, Knutsson R, Blixt Y, Al Soud WA, Borch E, Radstrom P. Detection of pathogenic Yersinia enterocolitica in enrichment media and pork by a multiplex PCR: a study of sample preparation and PCR&#45;inhibitory components. Int J Food Microbiol 1998;(45):93&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143067&pid=S2007-1124201300010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. NOM&#45;114&#45;SSA1&#45;1994 Norma Oficial Mexicana Bienes y Servicios. M&eacute;todo para la determinaci&oacute;n de Salmonella en alimentos. Mexico, SSA (Ed.). 1994.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143069&pid=S2007-1124201300010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. NOM&#45;143&#45;SSA1&#45;1995. Norma Oficial Mexicana Bienes y Servicios. M&eacute;todo de prueba microbiol&oacute;gico para alimentos. Determinaci&oacute;n de Listeria monocytogenes. Mexico, SSA (Ed.). 1995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143071&pid=S2007-1124201300010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Millar BC, Jiru X, Moore JE, Earle JA. A simple and sensitive method to extract bacterial, yeast and fungal DNA from blood culture material. J Microbiol Methods 2000;(42):139&#45;147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143073&pid=S2007-1124201300010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Silhavy TJ, Berman, ML, Enquist LW. Experiments with gene fusions. NY, USA. Cold Spring Harbor Laboratory Press; 1984.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143075&pid=S2007-1124201300010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Marisa M, Luca C, Pierino F, Carlo C, Giuseppe C. A simple and fast PCR protocol to detect <i>Listeria monocytogenes</i> from meat. J Sci Food Agr 1997;(74):25&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143077&pid=S2007-1124201300010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Rahn K, De Grandis SA, Clarke RC, McEwen SA, Galan JE, Ginocchio C, Curtiss R, Gyles CL. Amplification of an invA gene sequence of Salmonella typhimurium by polymerase chain reaction as a specific method of detection of Salmonella. Mol Cell Probes 1992;(6):271&#45;279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143079&pid=S2007-1124201300010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Fenwick SG, Murray A. Detection of pathogenic Yersinia enterocolitica by polymerase chain reaction. Lancet 1991;(337):496&#45;497.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143081&pid=S2007-1124201300010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Sambrook J. Molecular Cloning: A laboratory manual. 3rd ed., NY, USA: Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143083&pid=S2007-1124201300010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Peng H, Shelef LA. Automated simultaneous detection of low levels of listeriae and salmonellae in foods. Int J Food Microbiol 2001;(63):225&#45;233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143085&pid=S2007-1124201300010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Gonzalez K, Martinez VI, Mata TV, Espinosa MA, Alvarez OG, Morales LA. Detecci&oacute;n molecular de Listeria monocytogenes en carne de res. Congreso Nacional de Microbiolog&iacute;a. Rev Fac Salud Pub Nut. &#91;en l&iacute;nea&#93;. <a href="http://www.respyn.uanl.mx/especiales/ee&#45;5&#45;2004/cartel_deteccionJuany/02.htm" target="_blank">http://www.respyn.uanl.mx/especiales/ee&#45;5&#45;2004/cartel_deteccionJuany/02.htm</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143087&pid=S2007-1124201300010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Fratamico P.M. Comparison of culture, polymerase chain reaction (PCR), TaqMan Salmonella, and Transia Card Salmonella assays for detection of Salmonella spp. in naturally&#45;contaminated ground chicken, ground turkey, and ground beef. Mol Cell Probes 2003;(17):215&#45;221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143089&pid=S2007-1124201300010000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. R&iacute;os LJM, Mart&iacute;nez VI, Mata TVL, Espinoza MA, Alvarez OG, Morales LA. Uso de la prueba molecular de PCR para la detecci&oacute;n de Salmonella spp. en carne de bovino. Congreso de Inocuidad Alimentaria. Rev Fac Salud P&uacute;b Nut. &#91;en l&iacute;nea&#93;. <a href="http://www.respyn.uanl.mx/especiales/ee&#45;5&#45;2004/cartel_deteccion_juany/01.htm" target="_blank">http://www.respyn.uanl.mx/especiales/ee&#45;5&#45;2004/cartel_deteccion_juany/01.htm</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143091&pid=S2007-1124201300010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Thisted LS, Danielsson TML. Identification and characterization of pathogenic Yersinia enterocolitica isolates by PCR and pulsed&#45;field gel electrophoresis. Appl Environ Microbiol 2005;(71):3674&#45;3681.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143093&pid=S2007-1124201300010000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Vishnubhatla A, Oberst RD, Fung DY, Wonglumsom W, Hays MP, Nagaraja TG. Evaluation of a 5'&#45;nuclease (TaqMan) assay for the detection of virulent strains of Yersinia enterocolitica in raw meat and tofu samples. J Food Prot 2001;(64):355&#45;360.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143095&pid=S2007-1124201300010000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Fredriksson AM, Hielm S, Korkeala H. High prevalence of yadA&#45;positive Yersinia enterocolitica in pig tongues and minced meat at the retail level in Finland. J Food Prot 1999;(62):123&#45;127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143097&pid=S2007-1124201300010000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Bacon RT, Belk KE, Sofos JN, Clayton RP, Reagan, JO, Smith, GC. Microbial populations on animal hides and beef carcasses at different stages of slaughter in plants employing multiple&#45;sequential interventions for decontamination. J Food Prot 2000;(63):1080&#45;1086.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143099&pid=S2007-1124201300010000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. United States Department of Agriculture, F.S.I.S. Pathogen reduction: hazard analysis and critical control point (HACCP) systems, final rule. Regist F. editor. 1996;(61):38805&#45;38989.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143101&pid=S2007-1124201300010000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Chmielewski RAN, Frank JF. Biofilm formation and control in food processing facilities. Compr Rev Food Sci Food lafety 2003;(2):22&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143103&pid=S2007-1124201300010000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Farber JM, Peterkin PI. Listeria monocytogenes, a food&#45;borne pathogen. Microbiol Rev 1991;(55):476&#45;511.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143105&pid=S2007-1124201300010000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Allan JT, Yan Z, Kornacki JL. Surface material, temperature, and soil effects on the survival of selected foodborne pathogens in the presence of condensate. J Food Prot 2004;(67):2666&#45;2670.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143107&pid=S2007-1124201300010000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Holah JT, Taylor JH, Dawson DJ, Hall KE. Biocide use in the food industry and the disinfectant resistance of persistent strains of Listeria monocytogenes and Escherichia coli. Symp Ser Soc Appl Microbiol 2002;111S&#45;120S.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143109&pid=S2007-1124201300010000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Kerr KG, Birkenhead D, Seale K, Major J, Hawkey PM. Prevalence of Listeria spp on the hands of food workers. J Food Prot 1993;(56):525&#45;527.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143111&pid=S2007-1124201300010000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Somers EB, Wong AC. Efficacy of two cleaning and sanitizing combinations on Listeria monocytogenes biofilms formed at low temperature on a variety of materials in the presence of ready&#45;to&#45;eat meat residue. J Food Prot 2004;(67):2218&#45;2229.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8143113&pid=S2007-1124201300010000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NOTA</b></font></p> 	         ]]></body>
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