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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We review recent progress for control of Rhipicephalus (Boophilus) microplus and R. (B.) annulatus. Outbreak infestations in the U.S. have reached alarming levels, due to increased populations of deer and other ungulates serving as alternative hosts. GIS mapping of infestations and deer habitat aids in utilizing methods and equipment designed for acaricide treatment of wild ungulates. Investigations include deer immunology, tick molecular genetics, acaricide resistance, and host-parasite interactions with deer or cattle, ticks, and pathogens. Acaricide resistance is widespread in Mexico and U.S. dipping vats depend on organophosphate (OP) inhibition of acetylcholinesterase (AChE). Three cDNAs putatively encoding acetylcholinesterases (AChE, E.C. 3.1.1.7) in R. (B.) microplus were expressed in the baculovirus system and exhibited Km values for acetylthiocholine of approx. 5, 50, or 90 / M, for rBmAChE1, rBmAChE2, and rBmAChE3, respectively. The rBmAChEs exhibited substrate preference for acetylthiocholine over butyrylthiocholine, and inhibition by eserine, paraoxon, and the AChE-specific inhibitor, BW284C51, confirming biochemical identification as AChEs. Expression of specific mutations from OP-resistant strains exhibited decreased sensitivity of rBmAChE1 and rBmAChE3 to OP inhibition. Each of the BmAChEs was expressed in synganglion as indicated by qRT-PCR. Multiple transcripts from individual ticks for each of the BmAChEs suggested alternative splicing or gene duplication. Quantitative real time PCR with genomic DNA supported the gene duplication hypothesis. Long dsRNA specific for BmAChEl, BmAChE2, and BmAChE3 was introduced by microinjection of unfed adult females and subsequent gene silencing was monitored by qRT-PCR and phenotypic effects. Specific physiological roles for BmAChE1, BmAChE2, and BmAChE3 remain to be elucidated.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Revisiones</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Nuevos enfoques para el control de <i>Rhipicephalus (Boophilus)</i></b> <b><i>microplus</i></b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Novel Approaches for control of <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus</i></b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Kevin B. Temeyer<sup>a</sup>, Andrew C. Chen<sup>a</sup>, Ronald B. Davey<sup>b</sup>, Felix D. Guerrero<sup>a</sup>, J.M. Howell<sup>a</sup>, Diane M. Kammlah<sup>a</sup>, Andrew Y. Li<sup>a</sup>, Kimberley H. Lohmeyer<sup>a</sup>, Pia U. Olafson<sup>a</sup>, Adalberto A. Perez de Leon<sup>a</sup>, Pamela L. Phillips<sup>a</sup>, Joe M. Pound<sup>a</sup>, and J.B. Welch<sup>a</sup></b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>a</i></sup> <i>U.S. Livestock Insects Research Laboratory, Agricultural Research Service, U.S. Department of Agriculture, 2700 Fredericksburg Road, Kerrville, Texas 78028 U.S.A. Telephone: 1&#45;830&#45;792&#45;0330.</i> <a href="mailto:kevin.temeyer@ars.usda.gov">kevin.temeyer@ars.usda.gov</a>. Correspondencia al primer autor.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>b</i></sup> <i>Cattle Fever Tick Research Laboratory, Agricultural Research Service, U.S. Department of Agriculture, Moore Air Base, Bldg 6419, Edinburg, Texas U.S.A.78541.</i></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta revisi&oacute;n describe avances cient&iacute;ficos enfocados al control de garrapatas de fiebre bovina (GFB), <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus</i> y R. (B.) <i>annulatus.</i> Evidencia epidemiol&oacute;gica indica que brotes de GFB en los EE.UU. han alcanzado niveles alarmantes debido al aumento de la poblaci&oacute;n del venado cola blanca (VCB) y otras especies de ungulados salvajes que son hospedadores alternativos. Investigaciones avanzadas incluyen estudios sobre: inmunolog&iacute;a en el VCB, gen&eacute;tica molecular de GFB, resistencia a los acaricidas, e interacciones del sistema hospedador&#45;par&aacute;sito&#45;garrapata. La utilidad del ba&ntilde;o garrapaticida con organofosforados (OP) en los EE.UU. depende de la inhibici&oacute;n de la acetilcolinesterasa (AChE). Tres cADNs que codifican acetilcolinesterasas (AChE, EC 3.1.1.7) en R. (B.) <i>microplus</i> se expresaron en un sistema de baculovirus y mostraron valores de <i>Km</i> para acetiltiocolina de aproximadamente 5, 50, y 90 /tM para rBmAChEl, rBmAChE2, y rBmAChE3, respectivamente. Los rBmAChEs prefirieron acetiltiocolina sobre butiriltiocolina como substrato, y se inhibieron con eserina, paraox&oacute;n, y el inhibidor espec&iacute;fico de AChE, BW284C51, asi confirmando su identidad bioqu&iacute;mica como AChE. La expresi&oacute;n de mutaciones espec&iacute;ficas en cepas resistentes a OP disminuyer&oacute;n la susceptibilidad de rBmAChEl y rBmAChE3 a inhibici&oacute;n con OP. Resultados por qRT&#45;PCR indicaron que <i>BmAChEs</i> son expresados en singanglion. M&uacute;ltiples transcripciones observadas en GFB para los <i>BmAChEs</i> sugiere el empalme alternativo o duplicaci&oacute;n g&eacute;netica. Resultados por qRT&#45;PCR con ADN gen&oacute;mico respaldo la hip&oacute;tesis de duplicaci&oacute;n g&eacute;netica. Mol&eacute;culas largas de dsARN espec&iacute;ficas para rBmAChEs fueron introducidas en hembras adultas ayunadas por microinyecci&oacute;n y la silenciaci&oacute;n de genes monitoreada por qRT&#45;PCR y efectos fenot&iacute;picos. Los roles espec&iacute;ficos para los rBmAChEs quedan por dilucidarse.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Acetilcolinesterasa, Organofosforados, Resistencia acaricidas.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">We review recent progress for control of <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus</i> and <i>R. (B.) annulatus.</i> Outbreak infestations in the U.S. have reached alarming levels, due to increased populations of deer and other ungulates serving as alternative hosts. GIS mapping of infestations and deer habitat aids in utilizing methods and equipment designed for acaricide treatment of wild ungulates. Investigations include deer immunology, tick molecular genetics, acaricide resistance, and host&#45;parasite interactions with deer or cattle, ticks, and pathogens. Acaricide resistance is widespread in Mexico and U.S. dipping vats depend on organophosphate (OP) inhibition of acetylcholinesterase (AChE). Three cDNAs putatively encoding acetylcholinesterases (AChE, E.C. 3.1.1.7) in <i>R. (B.) microplus</i> were expressed in the baculovirus system and exhibited <i>K</i><sub>m</sub> values for acetylthiocholine of approx. 5, 50, or 90 / <i>M,</i> for rBmAChE1, rBmAChE2, and rBmAChE3, respectively. The rBmAChEs exhibited substrate preference for acetylthiocholine over butyrylthiocholine, and inhibition by eserine, paraoxon, and the AChE&#45;specific inhibitor, BW284C51, confirming biochemical identification as AChEs. Expression of specific mutations from OP&#45;resistant strains exhibited decreased sensitivity of rBmAChE1 and rBmAChE3 to OP inhibition. Each of the <i>BmAChE</i>s was expressed in synganglion as indicated by qRT&#45;PCR. Multiple transcripts from individual ticks for each of the <i>BmAChE</i>s suggested alternative splicing or gene duplication. Quantitative real time PCR with genomic DNA supported the gene duplication hypothesis. Long dsRNA specific for <i>BmAChEl, BmAChE2,</i> and <i>BmAChE3</i> was introduced by microinjection of unfed adult females and subsequent gene silencing was monitored by qRT&#45;PCR and phenotypic effects. Specific physiological roles for BmAChE1, BmAChE2, and BmAChE3 remain to be elucidated.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Acetylcholinesterase, Organophosphate, Acaricide resistance.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCION</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las garrapatas del ganado <i>Rhipicephalus</i> <i>(Boophilus) microplus</i> y <i>R. (B.) annulatus,</i> fueron introducidas al nuevo mundo con el ganado y&nbsp; caballos a principios del siglo XVI. Estas&nbsp; garrapatas se establecieron a lo largo del sur de Estados Unidos y California, pero recibieron poca atenci&oacute;n hasta que el ganado transportado del estado de Texas los llev&oacute; hasta cruzar la l&iacute;nea de congelaci&oacute;n en donde el ganado residente nunca hab&iacute;a estado expuesto a las enfermedades transmitidas por garrapatas como la anaplasmosis y babesiasis. La mortalidad en el ganado residente en las &aacute;reas reci&eacute;n ocupadas por el ganado proveniente del estado de Texas, alcanz&oacute; cifras hasta de un 90 %, lo cual ocasion&oacute; un gran esc&aacute;ndalo (y la violencia asociada) y la concomitante prohibici&oacute;n de cruzar muchas fronteras con otros estados del ganado proveniente del estado de Texas. En 1893 se descubri&oacute; que las garrapatas son responsables de la dispersi&oacute;n de la "Fiebre de Texas". Se dise&ntilde;&oacute; una estrategia para erradicar a las garrapatas mediante un programa nacional de erradicaci&oacute;n que fue iniciado en 1906. A finales de 1937, s&oacute;lo 12,000 de las originales 700,000 millas cuadradas permanec&iacute;an infestadas. El estado de Florida fue la excepci&oacute;n, ya que se encontr&oacute; que el venado cola blanca tambi&eacute;n estaba infestado por garrapatas. Colectar los venados silvestres y tratar las garrapatas no era factible; por esta raz&oacute;n los oficiales decidieron despoblar a los venados. Entre 1939 y 1941 un total de 20,000 venados fueron sacrificados y los Estados Unidos fueron declarados libres de las garrapatas de la fiebre de Texas<sup>(1)</sup>. Desde 1961 no ha habido brotes de la fiebre de Texas en los Estados Unidos, excepto aqu&eacute;llos en la zona de cuarentena y &aacute;reas adyacentes al sur de Texas.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los Estados Unidos se protegen contra la reintroducci&oacute;n de garrapatas <i>Boophilus</i> por el Programa de Erradicaci&oacute;n de la Garrapata de la Fiebre del Ganado (CFTEP), el cual consiste en la inspecci&oacute;n, tratamiento y cuarentena de animales y ranchos infestados que son supervisados por la Rama de Servicios Veterinarios de los Servicios de Inspecci&oacute;n en Salud Animal y Vegetal del Departamento de Agricultura de los Estados Unidos (USDA&#45;APHIS, VS), el cual mantiene una zona de cuarentena permanente a lo largo de la frontera con M&eacute;xico. Esta zona cuarentenaria permanente var&iacute;a en amplitud que va de 200 yardas a las 35 millas en diferentes puntos a lo largo de la frontera. Cada a&ntilde;o se importan de M&eacute;xico &#45;en donde <i>R. (B) microplus y R. (B.) annulatus</i> son end&eacute;micas&#45;, aproximadamente un mill&oacute;n de cabezas por los Estados Unidos. Los animales presentados para importaci&oacute;n deben ser tratados con acaricida, y sometidos a un ba&ntilde;o de inmersi&oacute;n conteniendo coumafos al 0.3% (ingrediente activo) e inspeccionados manualmente para verificar la presencia/ausencia de garrapatas. Si una sola garrapata es encontrada, se rechaza el hato entero. Despu&eacute;s de un periodo obligado de espera de 10 d&iacute;as, los animales pueden ser presentados nuevamente para poder ser importados, pero si durante la segunda inspecci&oacute;n se encuentran garrapatas nuevamente, se cancela la entrada a los ganaderos reincidentes de manera permanente. Los brotes de garrapatas de la fiebre del ganado en los Estados Unidos es causa de cuarentena obligada de los ranchos infestados con tratamiento e inspecci&oacute;n del ganado hasta erradicar a las garrapatas. Los centros de investigaci&oacute;n: Knipling&#45;Bushland U.S. Livestock Insects Research Laboratory (Kerrville, TX) y el Cattle Fever Tick Research Laboratory (CFTRL) (Edinburg, TX), proporcionan el apoyo en las actividades de investigaci&oacute;n para el Programa de Erradicaci&oacute;n de la Garrapata de la Fiebre del Ganado.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hay un creciente cuerpo de evidencias que indican la relaci&oacute;n entre las garrapatas de la fiebre del ganado y diferentes ungulados silvestres localizados en el estado de Texas. La primera evidencia de esta relaci&oacute;n ocurri&oacute; a finales de los a&ntilde;os treinta y a principios de los cuarenta del siglo pasado en el estado de Florid, cuando se encontraron venados cola blanca infestando venados cola blanca, lo cual condujo al sacrificio de 20,000 animales<sup>(1)</sup>. Desde finales de los sesenta los reportes de venados infestados con garrapatas se han venido incrementando a lo largo de la zona cuarentenaria permanente, paralelamente con el incremento excesivo de la poblaci&oacute;n de venados en el sur de Texas durante los pasados 40 a&ntilde;os. La poblaci&oacute;n de venados en Texas fue estimada recientemente en 3.8 millones de animales<sup>(2)</sup>. Adicionalmente ha habido un incremento enorme en el n&uacute;mero de especies de ungulados ex&oacute;ticos que est&aacute;n siendo introducidos cerca de la zona cuarentenaria permanente. El ant&iacute;lope Nilgai, que es nativo de la India es un primer ejemplo. Se estima que hay 30,000 de estos animales habitando el sur de Texas y el norte de M&eacute;xico, en donde se han encontrado ocasionalmente infestados por garrapatas. El elk americano que habita la zona cuarentenaria fue encontrado infestado con garrapatas a principios de los a&ntilde;os noventa y de nuevo en el a&ntilde;o 2003. El gamo y el venado Rojo que habita en la zona cuarentenaria se ha encontrado infestado en el 2007, y los venados axis se encontraron infestados en el 2008.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios llevados a cabo en el CFTRL demostraron que el venado es capaz de servir como hospedador alternativo de la garrapata <i>R. (B.) microplus,</i> aunque produce 12.5 veces menos garrapatas por animal que el ganado bovino. Las garrapatas colectadas de venados pesan tambi&eacute;n significativamente menos que las colectadas de ganado bovino y producen significativamente menos huevos con una tasa menor de eclosi&oacute;n que las garrapatas del ganado; con base en las observaciones diarias durante las infestaciones en venados y bovinos se muestra que los venados son muy agresivos para removerse las garrapatas que pueden alcanzar aun antes de que estas logren la repleci&oacute;n total. Los estudios concluyeron que aunque los venados no producen los n&uacute;meros tan altos de garrapatas producidos por los bovinos, estos poseen una capacidad de dispersar un n&uacute;mero de garrapatas suficiente para producir un gran brote en &aacute;reas en donde no hab&iacute;a garrapatas previamente establecidas, y que tambi&eacute;n puedan mantener infestados de garrapatas los potreros en descanso de ganado<sup>(3,4)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Retos de los programas de erradicaci&oacute;n</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente, el CFTEP est&aacute; muy cerca de una situaci&oacute;n de crisis. Ha habido un n&uacute;mero record de ranchos infestados reportados en 2009, lo que ampl&iacute;a aun m&aacute;s la preocupante tendencia de los a&ntilde;os recientes. Desde Julio del 2008, 894,219 acres (3619 Km<sup>2</sup>) en el sur de Texas han sido cuarentenados temporalmente debido a las infestaciones por garrapatas fuera de la zona de cuarentena permanente. En 1973, hubo 170 ranchos infestados por garrapatas detectados en Texas. Entre el primero de octubre del 2007 al 30 de septiembre del 2008, hubo 132 ranchos infestados<sup>(5)</sup>, y en el periodo del primero de octubre del 2008 al 31 de agosto de 2009 ha habido infestaciones identificadas en 144 ranchos en Texas, 60 de ellas dentro de la zona de cuarentena permanente (&aacute;rea sistem&aacute;tica) y 84 fuera de ella (&aacute;rea libre), el segundo n&uacute;mero m&aacute;s alto de infestaciones desde que se complet&oacute; el programa de erradicaci&oacute;n durante 1943. Se cree que existen varios factores responsables de esta tendencia, incluyendo el incremento de las poblaciones de venados y ungulados capaces de servir como reservorios alternativos de <i>Boophilus microplus<sup>(6)</sup>.</i> El uso de Sistemas de Informaci&oacute;n Geogr&aacute;fica (GIS) para el mapeo espacio temporal de nuevas infestaciones es de gran ayuda para dilucidar el grado de infestaci&oacute;n de los focos, la identificaci&oacute;n de ranchos adyacentes que est&aacute;n sujetos a inspecci&oacute;n y cuarentena, la planeaci&oacute;n de los esfuerzos de control y subsecuentemente la evaluaci&oacute;n de la efectividad en el control.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha probado que el venado cola blanca y otros ungulados, parecen ser factores importantes en el mantenimiento de las poblaciones de garrapatas en ranchos infestados en los cuales el ganado ha sido evacuado como una opci&oacute;n aprobada de erradicaci&oacute;n. El movimiento de venados y otros ungulados entre ranchos son m&aacute;s dif&iacute;ciles de limitar que el movimiento de ganado infestado que representa una amenaza a las propiedades vecinas. El desarrollo de la metodolog&iacute;a de mapeo GIS para identificar el h&aacute;bitat de los venados a trav&eacute;s del an&aacute;lisis de im&aacute;genes satelitales est&aacute; en curso. Se utiliz&oacute; el sistema de im&aacute;genes satelitales para desarrollar los mapas de predicci&oacute;n de los h&aacute;bitats del venado en el condado de Zapata, en Texas basado en la vegetaci&oacute;n, para el monitoreo del clima, disponibilidad de agua y refugio. Estos mapas son superpuestos con mapas basados en avistamiento de venados y otros par&aacute;metros del h&aacute;bitat para predecir los corredores de los venados. El conocimiento de los corredores de los venados nos va a permitir el rompimiento de las rutas de viaje mediante cercas o la colocaci&oacute;n efectiva de instrumentos dise&ntilde;ados espec&iacute;ficamente para el tratamiento de venados y otros ungulados. Por otro lado, el conocimiento del h&aacute;bitat de los venados dentro de las zonas de pastizales puede ser utilizado para predecir la efectividad del descanso de la pradera como un medio para la erradicaci&oacute;n de garrapatas en ranchos infestados. El muestreo de campo de garrapatas y la determinaci&oacute;n de la preferencia de h&aacute;bitats mediante el monitoreo, son componentes importantes necesarios para la validaci&oacute;n del mapeo de im&aacute;genes satelitales, actualmente bajo evaluaci&oacute;n en nuestro laboratorio.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para reducir el impacto que la fauna silvestre de ungulados nativos y ex&oacute;ticos est&aacute; teniendo en el CFTEP, los Servicios de Investigaci&oacute;n para la Agricultura (ARS) del Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, ha realizado un gran esfuerzo para desarrollar m&eacute;todos para el tratamiento pasivo de estos animales con acaricidas, como un medio para reducir o eliminar las garrapatas. Una tecnolog&iacute;a que ha sido desarrollada por el ARS para el control de garrapatas en venados cola blanca silvestres y otros ungulados ex&oacute;ticos, es una tecnolog&iacute;a de control sist&eacute;mica usando ma&iacute;z impregnado con ivermectinas. Los estudios han demostrado que los venados cola blanca, consumen una libra de ma&iacute;z medicado por cada 100 libras de peso, lo que resulta en una concentraci&oacute;n de ivermectina de 30,000 ppm en el suero del venado. Estudios previos han mostrado que un nivel de por lo menos 10,000 ppm de ivermectina s&eacute;rica es suficiente para matar el 100 % de las garrapatas que se alimentan sobre el animal<sup>(7)</sup>. El uso de esta tecnolog&iacute;a ha eliminado exitosamente las infestaciones en un rancho de 6,500 acres con un hato de elk y en uno de 40,000 acres con venado cola blanca, en el cual el descanso del pastizal y los ba&ntilde;os de inmersi&oacute;n no han tenido &eacute;xito para eliminar las infestaciones por garrapatas. Otras tecnolog&iacute;as desarrolladas incluyen el comedero y autoaplicador de acaricidas para los venados<sup>(8&#45;10)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este instrumento redujo las poblaciones de garrapatas en venados en el noreste de los Estados Unidos en una amplia &aacute;rea de estudio con el fin de reducir la enfermedad de Lyme<sup>(11&#45;21)</sup>. El concepto usado para el comedero a nivel del piso, de cuatro postes, fue modificado para producir uno elevado de dos postes, que fue dise&ntilde;ado por ser un instrumento ligero para la aplicaci&oacute;n t&oacute;pica en los comederos ya existentes para el suministro de prote&iacute;nas y utilizados para alimentar venados cola blanca en el sur de Texas. Posteriormente, se han desarrollado nuevos rodillos aplicadores que requieren menos mantenimiento para mejorar la aplicaci&oacute;n de pesticidas (Patente en tr&aacute;mite). En adici&oacute;n a estas innovaciones, se ha desarrollado e incorporado a estos instrumentos manipulado por un microprocesador capaz de identificar y colocar o remover los collares de venados individualmente<sup>(22)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resistencia a los acaricidas</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La resistencia a los acaricidas est&aacute; ampliamente distribuida en M&eacute;xico y el organofosforado coumafos, es el &uacute;nico acaricida autorizado para el uso en ba&ntilde;os garrapaticidas en CFTEP. Brotes en los Estados Unidos provocados por cepas de garrapatas <i>R. (B.) microplus</i> resistentes a organofosforados (OP) o piretroides (Pyr), fueron descubiertos por primera vez en 2004<sup>(23,24)</sup>. Al 31 de agosto del 2009, han ocurrido otros siete brotes adicionales de cepas de garrapatas moderada o altamente resistentes a los piretroides, pero no se han reportado brotes de garrapatas resistentes a OP. Estudios de laboratorio utilizando la cepa "San Rom&aacute;n" resistentes a OP fueron realizados para comprobar la capacidad de larvas ninfas y adultas para sobrevivir la inmersi&oacute;n en varias concentraciones de coumafos. Resultados de estos estudios indicaron que un solo ba&ntilde;o de garrapatas resistentes a OP, con coumafos al 0.6% (de ingrediente activo) no produjo el nivel de control requerido por el CFTEP, necesit&aacute;ndose m&uacute;ltiples ba&ntilde;os para alcanzar el nivel requerido de control<sup>(25&#45;27)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La insensibilidad de la acetilcolinesterasa (AChE, EC 3.1.1.7) se considera como uno de los principales mecanismos de resistencia a los OP, tanto en garrapatas como insectos<sup>(28&#45;31)</sup>. Dentro de la &uacute;ltima d&eacute;cada, se han descrito tres diferentes cDNAs, <i>BmAChE1, BmAChE2,</i> y <i>BmAChE3;</i> como secuencias presuntamente codificantes de acetilcolinesterasas en <i>R. (B.) microplus<sup>(32&#45;34)</sup>.</i> De &eacute;stas, con base en la expresi&oacute;n de la prote&iacute;na recombinante y la verificaci&oacute;n bioqu&iacute;mica, s&oacute;lo se ha establecido la identidad de la <i>BmAChE3</i> como una acetilcolinesterasa<sup>(35)</sup>. Una mutaci&oacute;n (R86Q) en <i>BmAChE3 que</i> provoca una disminuci&oacute;n aproximada de 20 veces la sensibilidad a la inhibici&oacute;n por OP, se ha presentado con mayor frecuencia en cepas de laboratorio resistentes, pero no pareci&oacute; ser suficiente por si sola para producir resistencia fenot&iacute;pica en cepas de garrapatas del laboratorio.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferencias en los valores de <i>K</i><sub>m</sub> indicaron un incremento en la actividad del sustrato (Acetiltiocolina, ASCh) en la mutante R86Q. Una disminuci&oacute;n en la tasa de inhibici&oacute;n enzim&aacute;tica por Paraox&oacute;n en la cepa mutante, fue reflejada en la disminuci&oacute;n de los valores <i>k1</i> y <i>k2.</i> El tipo silvestre de la enzima fue fosforilada 19.2 veces m&aacute;s r&aacute;pido que la cepa mutante R86Q. Cinco mutaciones adicionales en <i>BmAChE</i> parecieron correlacionar con el estatus de resistencia de las cepas de laboratorio, altas frecuencias genot&iacute;picas en cepas resistentes a organofosforados y bajas frecuencias en cepas susceptibles; sin embargo, la expresi&oacute;n en baculovirus de las construcciones, exhibieron poca actividad enzim&aacute;tica, por lo que no fue posible la caracterizaci&oacute;n de las propiedades bioqu&iacute;micas<sup>(36)</sup>. La b&uacute;squeda de mutaciones asociadas con la resistencia a OP y el desarrollo de ensayos para la genotipificaci&oacute;n para cada una de las mutaciones en <i>BmAChE3</i> revel&oacute; una asociaci&oacute;n entre la substituci&oacute;n R86Q en <i>BmAChE3</i> y el fenotipo insensible a los OP en cepas mexicanas de <i>R.(B.) microplus</i> de laboratorio y de campo<sup>(36,37)</sup>. Estudios similares de genotipificaci&oacute;n revelaron una aparente asociaci&oacute;n de las mutaciones P157S, Q488R, W571R, y W571F con la resistencia fenot&iacute;pica (Temeyer, datos no publicados).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se expresaron, construcciones recombinantes de <i>BmAChE1</i> de cepas de laboratorio sensibles a OP (Deutch5) y resistentes a OP (Tux11), as&iacute; como una construcci&oacute;n de <i>rBmAChE2.</i> La construcci&oacute;n <i>rBmAChE3,</i> SR&#45;BC26, ha sido previamente caracterizada como resistente a OP<sup>(35)</sup>. Las construcciones recombinantes de BmAChE1, BmAChE2, y BmAChE3, fueron fuertemente inhibidas por sulfato de eserin y por el inhibidor espec&iacute;fico de acetilcolinesterasas BW284C51.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se muestra en el <a href="/img/revistas/rmcp/v3s1/a5c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>, cada una de las <i>rBmAChEs</i> demostraron una fuerte preferencia por la acetiltiocolina (ASCh) comparada con la butiriltiocolina (BuSCh), seg&uacute;n los valores de la tasa comparativa de hidr&oacute;lisis del sustrato a una concentraci&oacute;n 1 mM, y por comparaci&oacute;n de los &iacute;ndices de <i>V</i><sub>max</sub><i>/K</i><sub>m</sub> para los dos sustratos, consistentes con su identificaci&oacute;n como acetilcolinesterasas (EC 3.1.1.7). El valor de la constante <i>K</i><sub>m</sub> para el construido rBmAChE1 de la cepa tux11 (resistente a OP) fue particularmente elevado para la butiriltiocolina (BuSCh), pero no para la acetiltiocolina (ASCh), indicando un incremento sustancial en la especificidad del sustrato comparado con el construido de la cepa Deutch5 (susceptible a OP). Los valores de V<sub>max</sub> fueron significativamente m&aacute;s elevados para la AChE que para la BuSCh, lo cual refleja la preferencia por el sustrato. El construido de la cepa Tux11 fue significativamente m&aacute;s resistente a la inhibici&oacute;n que cualquiera de los construidos analizados. Con base en esto concluimos que las construcciones rBmAChE1, rBmAChE2 y rBmAChE1 rBmAChE3, son propiamente identificadas como acetilcolinesterasas con base en su preferencia por el sustrato, sensibilidad a los inhibidores de acetilcolinesterasas y propiedades bioqu&iacute;micas generales.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La secuencia de amino&aacute;cidos de los construidos de rBmAChE fueron comparados con las secuencias enlistadas en el GenBank para identificar substituciones. Las frecuencias de las substituciones de amino&aacute;cidos presentes en Tux11, pero no en la cepa Deutch5 fueron determinadas por la secuenciaci&oacute;n del cDNA de transcritos independientes de <i>BmAChE</i> de cepas susceptibles a organofosforados (OP), (OP&#45;S) o resistentes (OP&#45;R). Las substituciones D188G, E196G, V331A y F390S, estuvieron presentes con mayor frecuencia en la secuencia del gen <i>BmAChEI</i> de las cepas resistentes a OP, que en los transcritos de las cepas susceptibles, lo cual nuevamente sugiere una asociaci&oacute;n con la resistencia a los OP (Temeyer, datos no publicados).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determinaron los fenotipos bioqu&iacute;micos AChE&#45;OP&#45;R/S individuales de garrapatas adultas<sup>(38,39)</sup>, con el fin de encontrar una correlaci&oacute;n entre las diferencias de los genotipos y sus fenotipos bioqu&iacute;micos. El singangli&oacute;n de garrapatas adultas fue dividido en dos, la mitad se utiliz&oacute; para la determinaci&oacute;n bioqu&iacute;mica de la actividad de AChE y la otra mitad fue conservada en RNALater para el an&aacute;lisis gen&eacute;tico posterior. Se extrajo el RNA total de cada una de las muestras de singangli&oacute;n preservadas en RANLater, y se utiliz&oacute; para la construcci&oacute;n de su cDNA y posterior secuenciaci&oacute;n. Fue una sorpresa la obtenci&oacute;n de m&aacute;s de dos transcritos para cada una de las <i>BmAChE</i>s, lo cual sugiere rearreglos alternativos de los transcritos, o la presencia de m&aacute;s de dos alelos para cada uno de los genes de <i>BmAChE.</i> La secuenciaci&oacute;n posterior del DNA gen&oacute;mico para BmACh1 encontr&oacute; un intr&oacute;n de 664 bp en la posici&oacute;n 16634 en s&oacute;lo uno de los alelos, lo cual sugiere una duplicaci&oacute;n del gen asociado con la p&eacute;rdida/ganancia del intr&oacute;n (Temeyer, datos no publicados).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; el ensayo de PCR cuantitativo en tiempo real (QRT&#45;PCR), para determinar la expresi&oacute;n relativa de los RNA mensajeros de <i>BmAChEI, BmAChE2,</i> y <i>BmAChE3</i> en larvas individuales y en el singangli&oacute;n de garrapatas adultas. El singangli&oacute;n de garrapatas adultas fue seccionado y colocado en RNALater a 4 &deg;C por 24 h y posteriormente congelado hasta su uso. Se extrajo RNA total a partir de larvas sin alimentar, congeladas o del singangli&oacute;n de garrapatas adultas usando TriReagent (Sigma Chemical Co., St. Louis MO). La primera cadena de cDNA fue sintetizada usando Trasncriptasa Reversa SuperScript III, con un oligo (dT24V) iniciador. QRT&#45;PCR se utiliz&oacute; para evaluar la expresi&oacute;n relativa de los genes <i>BmAChEI, BmAChE2,</i> y <i>BmAChE3</i> en larvas individuales o en el singangli&oacute;n de hembras adultas aplicando un programa con las siguientes condiciones: 2 min at 95 &deg;C para activar la DNA polimerasa, seguido de 40 ciclos de 20 s a 95&deg; C, 1 min a 57 &deg;C, y un min a 72 &deg;C. La expresi&oacute;n relativa en larvas fue 1:1.6:1.9 comparado con 1.2:3.6:1 en el singangli&oacute;n de garrapatas adultas para los genes <i>BmA ChE1 :BmA ChE2:BmA ChE3,</i> respectivamente, lo cual sugiere que la expresi&oacute;n es regulada de manera individual.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; la t&eacute;cnica de Interferencia de RNA (RNAi) para silenciar cada una de las <i>BmAChE</i>s, individualmente &oacute; combinadas inyectando garrapatas hembras adultas sin alimentar. Se utiliz&oacute; el gen de la &#946;&#45;actina de <i>R. (B.) microplus</i> como un gen interno de referencia para la normalizaci&oacute;n y como control positivo de silenciamiento. Se microinyect&oacute; RNA de doble cadena (dsRNA) de las regiones codificantes del gen de <i>BmAChE,</i> o de &#946;&#45;actina (100&#45;400 ng dsRNA en 50&#45;300 nL de soluci&oacute;n salina amortiguadora de fosfatos, (PBS) en el hemocele en un grupo de 35 garrapatas hembras adultas sin alimentar. Para la microinyecci&oacute;n se utilizaron agujas capilares montadas en jeringas Hamilton de 10 <i>&#956;</i>l acopladas a un dispensador automatizado. Los grupos control incluyeron garrapatas no inyectadas e inyectadas solo con PBS. Se cruzaron machos sin inyectar con las hembras de los grupos experimentales y se colocaron en c&aacute;maras colocadas en los lomos de bovinos mantenidos en aislamiento. Las garrapatas fueron removidas y disectadas en diferentes tiempos posteriores a la inyecci&oacute;n para monitorear los cambios en los niveles de expresi&oacute;n de los mRNA. Los tejidos disectados fueron almacenados en RNALater y congelados hasta su uso. Para determinar los efectos fenot&iacute;picos del silenciamiento de la AChE El tiempo de ingurgitamiento se determinaron los pesos de las hembras ingurgitadas y de la masa de huevos y la tasa de eclosi&oacute;n, y se utiliz&oacute; el QRT&#45;PCR para evaluar los niveles de expresi&oacute;n de los mRNA. Los resultados demostraron que el 93 a 96 % de silenciamiento del gen de los transcritos de la &#946;&#45;actina se llev&oacute; a cabo a las 48 h postinyecci&oacute;n, con 70 % de mortalidad antes del desprendimiento; los sobrevivientes pesaron el 37 % del peso de los controles y no ovipositaron. La inyecci&oacute;n del RNA de doble cadena de solo uno de los genes de <i>BmAChE</i> no produjo un silenciamiento medible de los transcritos de <i>BmAChE</i> del singangli&oacute;n dentro de las 48 hrs y las hembras adultas ingurgitadas no mostraron ning&uacute;n par&aacute;metro biom&eacute;trico diferente del de los controles. En contraste, la inyecci&oacute;n con dsRNA de los tres genes <i>BmAChE's</i> produjo el 50 % de mortalidad en las garrapatas antes del desprendimiento. Los resultados se interpretaron como la complementaci&oacute;n funcional del silenciamiento de <i>BmAChE's in vivo.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos obtenidos sin importar las caracter&iacute;sticas bioqu&iacute;micas de las tres <i>BmAChE's,</i> sugieren que cada una de las colinesterasas juegan de manera individual un papel vital e importante en la fisiolog&iacute;a de la garrapat, y la presencia de las mutaciones, pueden ser importantes en m&aacute;s de uno de los genes en ausencia de resistencia metab&oacute;lica (en condiciones naturales), para poder producir una resistencia fenot&iacute;pica a los OP. La barrera del ba&ntilde;o de inmersi&oacute;n en coumafos, para prevenir la reentrada de la garrapata del ganado a los Estados Unidos, fallar&aacute; si los niveles de resistencia se incrementan. Es claro que las acetilcolinesterasas de <i>R. (B.) microplus</i> poseen m&uacute;ltiples rutas posibles para la generaci&oacute;n de resistencia; sin embargo el papel fisiol&oacute;gico espec&iacute;fico que juegan cada uno de estos genes, de manera individual, todav&iacute;a es un misterio por resolver. Estos blancos vitales pueden presentar nuevas oportunidades para dise&ntilde;ar ensayos de interferencia prometedores.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Futuros prospectos para el control de la garrapata de la fiebre del ganado</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente se investigan opciones de control alterno que incluyen: i) el desarrollo de vacunas contra garrapatas y <i>Babesia sp.</i> del ganado y de otras especies hospedadoras, II) nuevos acaricidas y excipientes y iii) la expansi&oacute;n de recursos de origen gen&oacute;mico disponibles para <i>R. (B.) microplus.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>R. (B.) microplus,</i> una garrapata de un solo hospedador, debe sortear la presi&oacute;n de la respuesta inmune que resulta de alimentarse en todos los estadios sobre un solo hospedador. Un parasitismo exitoso requiere de un mecanismo de evasi&oacute;n que perdure entre 21 a 24 d&iacute;as. La naturaleza antihemost&aacute;tica, anti&#45;inflamatoria e inmunosupresora de su saliva ha sido ampliamente documentada en varias especies de garrapatas ixodidas<sup>(40,41)</sup>, as&iacute; como en el transcriptoma/sialoma de las gl&aacute;ndulas salivales de <i>I. scapularis, I. pacificus, A. variegatum y R. appendiculatus,</i> que han llevado a encontrar un conjunto notable de mol&eacute;culas producidas en el tejido y que ayudan en el proceso de alimentaci&oacute;n de las garrapatas exitoso<sup>(42&#45;45)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Santos <i>et al <sup>(46)</sup></i> brevemente, publicaron transcritos expresados en las gl&aacute;ndulas salivares de hembras adultas de r&aacute;pida ingurgitaci&oacute;n de <i>R. (Boophilus) microplus.</i> En nuestros esfuerzos por describir secuencias durante la alimentaci&oacute;n temprana (1&#45;2 d&iacute;as sobre el hospedador) o tard&iacute;a (4&#45;5 d&iacute;as sobre el hospedador) de la hembra adulta de <i>R. (Boophilus) microplus,</i> se secuenci&oacute; una biblioteca de cDNA de tejido de gl&aacute;ndula salival representativas de estos dos periodos en particular. Se encontraron siete transcritos de la biblioteca construida a partir de tejidos de gl&aacute;ndulas del estadio de alimentaci&oacute;n temprano, que mostraron una significante similitud con metaloproteasas descritas en las garrapatas <i>I. scapularis<sup>(47)</sup>, I. pacificus<sup>(43)</sup>, I. ricinus</i> y recientemente <i>Haemophysalis longicornis.</i> Se determin&oacute; la secuencia completa de estos cinco transcritos y se analiz&oacute; el perfil de expresi&oacute;n en varios estadios de desarrollo de <i>R. (B.) microplus.</i> Adem&aacute;s se est&aacute;n caracterizando a profundidad cuatro transcritos que muestran una significativa similitud en la secuencia con una prote&iacute;na similar a la prote&iacute;na Kunitz, implicada en la inhibici&oacute;n de la coagulaci&oacute;n en el proceso de alimentaci&oacute;n de las garrapatas<sup>(48,49)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hip&oacute;tesis a probar ser&aacute; que el venado adquiere resistencia inmunol&oacute;gica a las garrapatas del ganado como resultado de las exposiciones repetidas. La generaci&oacute;n de este conocimiento es esencial para evaluar la respuesta inmune protectora en venados, con el fin de seleccionar las vacunas y adyuvantes apropiados para experimentos futuros de vacunaci&oacute;n. La segunda hip&oacute;tesis, es que la hembra adulta de la garrapata adquiere a la <i>Babesia bovis</i> del venado cola blanca y lo transmite de manera transov&aacute;rica a la progenie larval<sup>(50,51)</sup>, la cual es capaz de infectar a los hospedadores bovinos nunca antes expuestos. Se est&aacute; en el proceso de identificar y caracterizar a nuevos inmun&oacute;genos blanco expresados por <i>B. bovis.</i> Se identificar&aacute;n ant&iacute;genos expresados en garrapatas y etapas par&aacute;sitas del par&aacute;sito en el hospedador mam&iacute;fero, en los que se pueda predecir la capacidad de ser utilizados como blancos del sistema inmune de los bovinos. La respuesta inmune en contra de las formas recombinantes ser&aacute;n probadas en estudios de inmunizaci&oacute;n. Adem&aacute;s, se ha dise&ntilde;ado un sistema de Adsorci&oacute;n en L&iacute;nea Reversa (RLB) que ser&aacute; probado para determinar la presencia de DNA de <i>Babesia sp.</i> <sup>(53)</sup> en garrapatas del ganado encontradas en brotes de infestaciones en M&eacute;xico y en los Estados Unidos. Se probar&aacute; la hip&oacute;tesis de que el nivel de exposici&oacute;n del ganado a la <i>Babesia</i> se puede determinar usando este ensayo. Los datos obtenidos en la prevalencia de estos pat&oacute;genos ser&aacute;n de gran ayuda para que el CFTEP, determine hacia donde pueden dirigirse los recursos para que sean m&aacute;s eficientes.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las investigaciones dirigidas hacia la elucidaci&oacute;n del genoma completo de <i>R. (B.) microplus</i> siguen vigentes. Actualmente se han secuenciado 650 millones de bp, lo que comprende aproximadamente 9 % del geno ma total estimado en 7.1 mil millones de pares de bases. Cromosomas artificiales bacterianos (BACs) est&aacute;n siendo secuenciados, y en este momento se han revelado grandes &aacute;reas de secuencias de DNA repetitivo (Guerrero, datos no publicados). Se han identificado aproximadamente 15,000 regiones codificantes de genes y se le han asignado una funci&oacute;n putativa a 5,600 de ellos. Se han identificado prote&iacute;nas espec&iacute;ficas de las membranas celulares del intestino y ovario de las garrapatas, como candidatos potenciales de las vacunas y se han iniciado ensayos de interferencia de RNA.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, hemos desarrollado ensayos para resistencia a los acaricidas<sup>(54,55)</sup> y se est&aacute;n realizando estudios para desarrollar y probar nuevos acaricidas qu&iacute;micos y nuevos m&eacute;todos para suministrarlos, incluyendo formulaciones con sinergistas y formulaciones de liberaci&oacute;n lenta, incluyendo microesferas inyectables<sup>(56&#45;60)</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Financiado por USDA, Proyecto CRIS No. 6205&#45; 32000&#45;026&#45;00D; Titulado: Biolog&iacute;a Molecular de <i>Boophilus microplus.</i></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Graham OH, Hourrigan JL. Eradication programs for the arthropod parasites of livestock. J Med Entomol 1977;13:629&#45;65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140877&pid=S2007-1124201200050000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. McDonald, J.S. and K. V. Miller. A history of white&#45;tailed deer restocking in the United States. 1878&#45;2004. Quality Deer Management Association, Watkinsville, GA. 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140879&pid=S2007-1124201200050000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Cooksey LM, Davey RB, Ahrens EH, George JE. Suitability of white&#45;tailed deer as hosts for cattle fever ticks (Acari: Ixodidae). J Med Entomol 1989; 26:155158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140881&pid=S2007-1124201200050000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Davey RB. Failure of white&#45;tailed deer, <i>Odocoileus virginianus</i> L. to sustain a population of cattle ticks, <i>Boophilus annulatus</i> (Say), through successive generations. J Parasitol 1990;76:356&#45;359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140883&pid=S2007-1124201200050000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Hillman B. News Release: Good news, bad news for cattle fever tick eradication effort. Texas Animal Health Commission, April, 2009 &#91;on line&#93;. <a href="http://www.tahc.state.tx.us/news/pr/2009/2009Apr_FeverTickQuarantineNews.pdf" target="_blank">(<u>www.tahc.state.tx.us/news/pr/2009/2009Apr FeverTic kQuarantineNews. pdf</u>)</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140885&pid=S2007-1124201200050000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. George JE, Pound JM, Kammlah D, Lohmeyer KH. Presumptive evidence for the role of white&#45;tailed deer in the epidemiology of <i>Rhipicephalus (Boophilus) annulatus</i> and <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus</i> (Acari: Ixodidae). In: Proc VI Inter Seminar Anim Parasitol, September 3&#45;5, Veracruz, M&eacute;xico. 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140886&pid=S2007-1124201200050000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Pound JM, Miller JA, George JE, Oehler DD, Harmel DE. Systemic treatment of white&#45;tailed deer with ivermectin&#45;medicated bait to control free&#45;living populations of lone star ticks (Acari: Ixodidae). J Med Entomol 1996;33:385&#45;394.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140888&pid=S2007-1124201200050000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Pound JM, Miller JA, LeMeilleur CA. Device and method for its use as an aid in control of ticks and other ectoparasites on wildlife. U.S. Patent #5,367,983 dated 29 November 1994 assigned to The United States of America as represented by the Secretary of Agriculture, Washington, DC. 1994.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140890&pid=S2007-1124201200050000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Pound JM, Miller <i>JA,</i> George JE, Lemeilleur CA. The '4&#45;Poster' Passive Topical Treatment device to apply acaricide for controlling ticks (Acari: Ixodidae) feeding on White&#45;Tailed deer. J Med Entomol 2000;37: 588594.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140892&pid=S2007-1124201200050000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Pound JM, Miller JA, George JE. Efficacy of amitraz applied to white&#45;tailed deer by the '4&#45;poster' topical treatment device in controlling free&#45;living lone star ticks (Acari: Ixodidae). J Med Entomol 2000;37:878&#45;884.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140894&pid=S2007-1124201200050000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Fish D, Childs JE. Community&#45;based prevention of Lyme disease and other tick&#45;borne diseases through topical application of acaricide to White&#45;tailed deer: Background and rationale. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:355&#45;356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140896&pid=S2007-1124201200050000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Pound JM, Miller JA, George JE, Fish D. The United States Department of Agriculture northeast area&#45;wide tick control project: history and protocol. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:365&#45;370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140898&pid=S2007-1124201200050000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Stafford KC 3<sup>rd</sup>, Denicola AJ, Pound JM, Miller JA, George JE. Topical treatment of white&#45;tailed deer with an acaricide for the control of <i>Ixodes scapularis</i> (Acari: Ixodidae) in a Connecticut Lyme borreliosis hyperendemic community. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:371&#45;379.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140900&pid=S2007-1124201200050000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Daniels TJ, Falco RC, McHugh EE, Vellozzi J, Boccia T, Denicola AJ, Pound JM, Miller JA, George JE, Fish D. Acaricidal treatment of white&#45;tailed deer to control <i>Ixodes scapularis</i> (Acari: Ixodidae) in a New York Lyme disease&#45;endemic community. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:381&#45;387.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140902&pid=S2007-1124201200050000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Schulze TL, Jordan RA, Hung RW, Schulze CJ. Effectiveness of the 4&#45;Poster passive topical treatment device in the control of <i>Ixodes scapularis</i> and <i>Amblyomma americanum</i> (Acari: Ixodidae) in New Jersey. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:389&#45;400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140904&pid=S2007-1124201200050000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Miller NJ, Thomas WA, Mather TN. Evaluating a deer&#45;targeted acaricide applicator for area&#45;wide suppression of Blacklegged ticks, <i>Ixodes scapularis</i> (Acari: Ixodidae), in Rhode Island. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:401&#45;406.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140906&pid=S2007-1124201200050000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Carroll JF, Hill DE, Allen PC, Young KW, Miramontes E,&nbsp;Kramer M, Pound JM, Miller JA, George JE. The impact of 4&#45;poster deer self&#45;treatment devices at three locations in Maryland. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:407&#45;416.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140908&pid=S2007-1124201200050000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Carroll JF, Pound JM, Miller JA, Kramer M. Sustained control of Gibson Island, Maryland, populations of <i>Ixodes scapularis</i> and <i>Amblyoma americanum</i> (Acari: Ixodidae) by community&#45;administered 4&#45;poster deer self&#45;treatment bait stations. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:417&#45;421.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140910&pid=S2007-1124201200050000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Brei B, Brownstein JS, George JE, Pound JM, Miller JA, Daniels TJ, Falco RC, Stafford KC 3<sup>rd</sup>, Schulze TL, Mather TN, Carroll JF, Fish D. Evaluation of the United States Department of Agriculture Northeast Area&#45;wide Tick Control Project by meta&#45;analysis. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:423&#45;430.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140912&pid=S2007-1124201200050000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Hoen AG, Rollend LG, Papero MA, Carroll JF, Daniels TJ, Mather TN, Schulze TL, Stafford KC, Fish D. Effects of tick control by acaricide self&#45;treatment of White&#45;tailed deer on host&#45;seeking tick infection prevalence and entomologic risk for <i>Ixodes scapularis&#45;</i>borne pathogens. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:431&#45;438.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140914&pid=S2007-1124201200050000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Pound JM, Miller JA, George JE, Fish D, Carroll JF, Schulze TL, Daniels TJ, Falco RC, Stafford KC, Mather TN. The United States Department of Agriculture northeast area&#45;wide tick control project: summary and conclusions. Vector Borne Zoonotic Dis 2009;9:439&#45;448.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140916&pid=S2007-1124201200050000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Pound JM, LeMeilleur CA. Device and method for application of collars to animals. U.S. Patent #5,881,672 dated 16 March 1999 assigned to The United States of America as represented by the Secretary of Agriculture, Washington, DC. 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140918&pid=S2007-1124201200050000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Miller R, Davey RB, George JE. First report of permethrin&#45;resistant <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae) within the United States. J Med Entomol 2005; 44:308&#45;315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140920&pid=S2007-1124201200050000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Miller R, Davey RB, George JE. First report of organophosphate&#45;resistant <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae) within the United States. J Med Entomol 2005;45:912&#45;917.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140922&pid=S2007-1124201200050000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Davey, RB, George JE. Efficacy of coumaphos applied as a dip for control of an organophosphorus&#45;resistant strain of <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae) on cattle. J Econ Entomol 1999;92:1384&#45;1391.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140924&pid=S2007-1124201200050000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Davey RB, George JE, Miller RJ. Efficacy of various concentrations of coumaphos to control adult, nymphal, and larval stages of an organophosphate&#45;resistant strain of <i>Boophilus microplus</i> on infested cattle. Am J Vet Res 2003;64:684&#45;689.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140926&pid=S2007-1124201200050000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Davey RB, George JE, Miller RJ. Control of an organophosphate&#45;resistant strain of <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae) infested on cattle after a series of dips in coumaphos applied at different treatment intervals. J Med Entomol 2004;41:524&#45;428.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140928&pid=S2007-1124201200050000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Fournier D. Mutations of acetylcholinesterase which confer insecticide resistance in insect populations. Chem Biol Interact 2005;157:257&#45;261.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140930&pid=S2007-1124201200050000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Villatte F, Ziliani P, Marcel V, Menozzi P, Fournier D. A high number of mutations may provide insecticide&#45;resistance in insect acetlcholinesterase. Pestic Biochem Physiol 2000;67:95&#45;102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140932&pid=S2007-1124201200050000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Li AY, Davey RB, Miller RJ, George JE. Resistance to coumaphos and diazinon in <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae) and evidence for the involvement of an oxidative detoxification mechanism. J Med Entomol 2003; 40:482&#45;490.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140934&pid=S2007-1124201200050000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Li AY, Pruett JH, Davey RB, George JE. Toxicological and biochemical characterization of coumaphos resistance in the San Roman strain of <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae). Pestic Biochem Physiol 2005;81:145&#45;153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140936&pid=S2007-1124201200050000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Baxter GD, Barker SC. Acetylcholinesterase cDNA of the cattle tick, <i>Boophilus microplus:</i> characterization and role in organophosphate resistance. Insect Biochem Mol Biol 1998;28:581&#45;589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140938&pid=S2007-1124201200050000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Hernandez R, He H, Chen AC, Ivy GW, George JE, Wagner GG. Cloning and sequencing of a putative acetylcholinesterase from <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae). J Med Entomol 1999;36:764&#45;770.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140940&pid=S2007-1124201200050000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Temeyer KB, Davey RB, Chen AC. Identification of a third <i>Boophilus microplus</i> (Acari:Ixodidae) cDNA presumptively encoding an acetylcholinesterase. J Med Entomol 2004;41:259&#45;268.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140942&pid=S2007-1124201200050000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Temeyer KB, Pruett JH, Untalan PM, Chen AC. Baculovirus expression of <i>BmAChE3,</i> a cDNA encoding an acetylcholinesterase of <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae). J Med Entomol 2006:43:707&#45;712.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140944&pid=S2007-1124201200050000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Temeyer KB, Pruett JH, Olafson PU, Chen AC. R86Q, a mutation in <i>BmAChE3</i> yielding a <i>Rhipicephalus microplus</i> organophosphate&#45;insensitive acetylcholinesterase. J Med Entomol 2007;44:1013&#45;1018.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140946&pid=S2007-1124201200050000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Temeyer KB, Olafson PU, Miller RJ. Genotyping mutations in <i>BmAChE3:</i> a survey of organophosphate&#45;resistant and &#45;susceptible strains of <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus.</i> J Med Entomol 2009 &#91;in press&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140948&pid=S2007-1124201200050000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Pruett JH. Comparative inhibition kinetics for acetylcholinesterase extracted from organophosphate resistant and susceptible strains of <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae). J Econ Entomol 2002;95:1239&#45;1244.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140950&pid=S2007-1124201200050000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. Pruett JH Jr, Pound JM. Biochemical diagnosis of organophosphate&#45;insensitivity&nbsp;with neural acetylcholinesterase extracted by sonication from the adult tick synganglion. Vet Parasitol 2006;135:355&#45;363.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140952&pid=S2007-1124201200050000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Gillespie RD, Mbow ML, Titus RG. The immunomodulatory factors of bloodfeeding arthropod saliva. Parasite Immunol 2000;22:319&#45;331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140954&pid=S2007-1124201200050000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. Ribeiro JM, Francischetti IM. Role of arthropod saliva in blood feeding: sialome and post sialome perspectives. Annu Rev Entomol 2003;48:73&#45;88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140956&pid=S2007-1124201200050000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. Valenzuela JG, Francischetti IM., Pham VM, Garfield MK, Mather .N, Ribeiro JMC. Exploring the sialome of the tick <i>Ixodes scapularis.</i> J Exp Biol 2002; 205:28432864.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140958&pid=S2007-1124201200050000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. Francischetti IM, My Pham V, Mans BJ, Andersen JF, Mather TN, Lane RS, Ribeiro JM. The transcriptome of the salivary glands of the female western black&#45;legged tick <i>Ixodes pacificus</i> (Acari: Ixodidae). Insect Biochem Mol Biol 2005;35:1142&#45;1161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140960&pid=S2007-1124201200050000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44. Nene V, Lee D, Quackenbush J, Skilton R, Mwaura S, Gardner MJ, Bishop R. AvGI, an index of genes transcribed in the salivary glands of the ixodid tick, <i>Amblyomma variegatum.</i> Int J Parasitol 2002;32:1447&#45; 1456.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140962&pid=S2007-1124201200050000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">45. Nene V, Lee D, Kang'a S, Skilton R, Shah T, de Villiers E, Mwaura S, Taylor D, Quackenbush J, Bishop R. Genes transcribed in the salivary glands of female <i>Rhipicephalus appendiculatus</i> ticks infected with <i>Theileria parva.</i> Ins Biochem Mol Biol 2004;34:1117&#45; 1128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140964&pid=S2007-1124201200050000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46. Santos IK, Valenzuela JG, Ribeiro JM, de Castro M, Costa JN, Costa AM, da Silva ER, Neto OB, Rocha C, Daffre S, Ferreira BR, da Silva JS, Szab&oacute; MP, Bechara GH. Gene discovery in <i>Boophilus microplus,</i> the cattle tick: the transcriptomes of ovaries, salivary glands, and hemocytes. Ann N Y Acad Sci 2004;1026:242&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140966&pid=S2007-1124201200050000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">47. ER, Neto OB, Rocha C, Daffre S, Ferreira BR, da Silva JS, Szab&oacute; MP, Bechara GH.Francischetti IMB, Mather TN, Ribeiro MC. Cloning of a salivary gland metalloprotease and characterization of gelatinase and fibrin(ogen)lytic activities in the saliva of the Lyme disease tick vector <i>Ixodes scapularis.</i> Biochem Biophys Res Commun 2003;305:869&#45;875.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140968&pid=S2007-1124201200050000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">48. Maritz&#45;Olivier C, Stutzer C, Jongejan F, Neitz AWH, Gaspar ARM. Tick anti&#45;hemostatics: targets for future vaccines and therapeutics. Trends Parasitol 2007;23:397&#45;407.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140970&pid=S2007-1124201200050000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">49. Corral&#45;Rodriguez MA, Macedo&#45;Ribeiro S, Pereira PJB, Fuentes&#45;Prior P. Tick&#45;derived Kunitz&#45;type inhibitors as antihemostatic factors. Insect Biochem Mol Biol 2009;39:579&#45;595.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140972&pid=S2007-1124201200050000500049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">50. Howell JM, Ueti MW, Palmer GH, Scoles GA, Knowles DP. Persistently infected calves as reservoirs for acquisition and transovarial transmission of <i>Babesia bovis</i> by <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus.</i> J Clin Microbiol 2007; 45:3155&#45;3159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140974&pid=S2007-1124201200050000500050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">51. Howell JM, Ueti MW, Palmer GH, Scoles GA, Knowles DP. Transovarial transmission efficiency of <i>Babesia bovis</i> tick stages acquired by <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus</i> during acute infection. J Clin Microbiol 2007;45:426&#45;431.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140976&pid=S2007-1124201200050000500051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">52. Brayton KA, Lau AOT, Herndon DR, Hannick L, Kappmeyer LS, Berens SJ, Bidwell SL, <i>et al.</i> Genome sequence of <i>Babesia bovis</i> and comparative analysis of apicomplexan hemoprotozoa. PLoS Pathogens 2007;3:1401&#45;1413.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140978&pid=S2007-1124201200050000500052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">53. Laughery JM, Lau AOT, White SN, Howell JM, Suarez CE. <i>Babesia bovis:</i> transcriptional analysis of rRNA gene unit expression. Exp Parasitol 2009. &#91;in press&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140980&pid=S2007-1124201200050000500053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">54. Chen AC, He H, Temeyer KB, Jones S, Green P, Barker SC. A survey of <i>Rhipicephalus microplus</i> populations for mutations associated with pyrethroid resistance. J Econ Entomol 2009;102:373&#45;380.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140982&pid=S2007-1124201200050000500054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">55. Li AY, Davey RB, Miller RJ, George JE. Detection and characterization of amitraz resistance in the southern cattle tick, <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae). J Med Entomol 2004;41:193&#45;200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140984&pid=S2007-1124201200050000500055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">56. Barre N, Li AY, Miller RJ, Gaia H, Delathiere J&#45;M, Davey RB, George JE. <i>In vitro</i> and <i>in vivo</i> evaluation of deltamethrin and amitraz mixtures for the control of <i>Rhipicephalus (Boophilus) microplus</i> (Acari: Ixodidae) in New Caledonia. Vet Parasitol 2008,155:110&#45;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140986&pid=S2007-1124201200050000500056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">57. Davey, RB, Miller RJ, George JE, Klavons JA. Efficacy of a single doramectin injection against adult female <i>Boophilus microplus</i> (Acari: Ixodidae) in the final stages of engorgement before detachment. J Med Entomol 2007;44:277&#45;282.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8140988&pid=S2007-1124201200050000500057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">58. Lohmeyer KH, Miller JA, Pound JM, Klavons JA. A sustained release gel formulation of doramectin for control of lone star ticks (Acari: Ixodidae) and horn flies (Diptera: Muscidae) on cattle. 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