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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Virulencia de aislados monospóricos de Isaria fumosorosea sobre inmaduros de Bemisia tabaci]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Entomopathogenic fungi are a promising alternative for the biological control of insect pests in agriculture. In this study, we evaluated the virulence of eight monosporic isolates native to Yucatan, using as a reference a monosporic isolate from a commercial strain of Isaria fumosorosea on eggs and nymphs of Bemisia tabaci. The dose-mortality bioassays were performed with four spore suspensions (1 x 10(4) to 1 x 10(7) conidia ml-1). We evaluated the mortality of eggs and nymphs and calculated the LC50 and LT50 for all isolates. Egg mortality at 7 days after inoculation of 1 x 10(7) conidia ml-1 ranged between 28.6 and 59.1%; the native monosporic isolates If-Hal M1 and If Tim M1 were the most virulent, causing 59.1 and 51.1% mortality, respectively. The mortality of the nymphs 12 days after inoculation of 1 x 10(7) conidia ml-1 ranged between 59.6 and 81%; the native monosporic isolates If-If-Tiz M1 and If-Hal M1 obtained the highest values with 81 and 70.5%, respectively. The median lethal concentration (LC50) was lower for the monosporic isolate of the commercial strain Pae-sin M1 with 1.4 x 10(5) conidia ml-1. Regarding mean lethal times (LT50), it was observed that the lowest ones were those of the monosporic isolate of the commercial strain Pae-sin M1 and of the native isolate If-Hal-M1 with 4.9 and 5 days, respectively. Two native monosporic isolates (If-Tim-M1 and If-Hal-M1) showed high enough virulence to be considered for a regional bio-pesticides production program in the Yucatan Peninsula.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Virulencia de aislados monosp&oacute;ricos de <i>Isaria fumosorosea</i> sobre inmaduros de <i>Bemisia tabaci*</i></b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Virulence of monosporic isolates of <i>Isaria fumosorosea</i> on immatures of <i>Bemisia tabaci</i></b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Esa&uacute; Ruiz S&aacute;nchez<sup>1</sup>, Wilberth Chan Cupul<sup>2&#167;</sup>, Jairo Crist&oacute;bal Alejo<sup>1</sup>, Jos&eacute; Mar&iacute;a Tun Su&aacute;rez<sup>1</sup>, Alfonzo P&eacute;rez Guti&eacute;rrez<sup>1</sup> y Joel Lara Reyna<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>Divisi&oacute;n de Estudios de Posgrado e Investigaci&oacute;n, Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal. Antigua Carretera M&eacute;rida&#45;Motul, Conkal, km 16.3. Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. C. P. 97345. Tel. 01 999 9124130 Ext.121</i> (<a href="mailto:esau_ruiz@hotmail.com">esau_ruiz@hotmail.com</a>); (<a href="mailto:jairoca54@hotmail.com">jairoca54@hotmail.com</a>); (<a href="mailto:tun@colpos.mx">tun@colpos.mx</a>); (<a href="mailto:pega51mx@yahoo.com.mx">pega51mx@yahoo.com.mx</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup><i>Laboratorio de Micromicetos, Instituto de Ecolog&iacute;a A. C. Carretera antigua a Coatepec 351, El Haya, Xalapa, Veracruz, M&eacute;xico. C. P. 91070. Tel. 01 228 8421800, Ext. 4404.</i> <i><sup>&#167;</sup>Autor para correspondencia:</i> <a href="mailto:wilberth.chan@posgrado.inecol.edu.mx">wilberth.chan@posgrado.inecol.edu.mx</a>.</font></p>      <p align="left"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3</i></sup><i>Colegio de Posgraduados. Campus Campeche. Carretera Haltunch&eacute;n&#45;Edzn&aacute;, km 17.5, Sihochac, Municipio de Champot&oacute;n, Campeche. C. P. 24450. Tel. 01 555 8046800,</i> Ext. 64706 (<a href="mailto:jlara@colpos.mx">jlara@colpos.mx</a>).</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">* Recibido: mayo de 2012    <br> 	Aceptado: enero de 2013</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos entomopat&oacute;genos son una alternativa promisoria para el control biol&oacute;gico de insectos plaga en la agricultura. En este trabajo se evalu&oacute; la virulencia de ocho aislados monosp&oacute;ricos nativos del estado de Yucat&aacute;n y se us&oacute; como referencia un aislado monosp&oacute;rico de una cepa comercial de <i>Isaria fumosorosea</i> sobre huevos y ninfas de <i>Bemisia tabaci</i>. Los bioensayos de dosis&#45;mortalidad se realizaron con cuatro suspensiones de esporas (1 x 10<sup>4</sup> a 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>). Se evalu&oacute; la mortalidad de huevos y ninfas y se calcul&oacute; la CL<sub>50</sub> y TL<sub>50</sub> para todos los aislados. La mortalidad de huevos a los 7 d&iacute;as posinoculaci&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> oscil&oacute; entre 28.6 y 59.1%; los aislados monosp&oacute;ricos nativos If&#45;Hal M1, If&#45;Tim M1 fueron los m&aacute;s virulentos ya que causaron 59.1 y 51.1% de mortalidad, respectivamente. La mortalidad en ninfas a los 12 d&iacute;as de posinoculaci&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>, oscil&oacute; entre 59.6 y 81%; los monosp&oacute;ricos nativos If&#45;Tiz M1 y If&#45;Hal M1 obtuvieron los valores m&aacute;s altos con 81 y 70.5%, respectivamente. La concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) m&aacute;s baja fue para el monosp&oacute;rico de la cepa comercial Paesin M1 con 1.4 x 10<sup>5</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>. Con respecto a los tiempos letales medios (TL<sub>50</sub>), se observ&oacute; que los m&aacute;s bajos fueron para el monosp&oacute;rico comercial Paesin M1 y el nativo If&#45;Hal M1 con 4.9 y 5 d&iacute;as, respectivamente. Dos aislados monosp&oacute;ricos nativos (If&#45;Tim M1 e If&#45;Hal M1) presentaron alta virulencia para ser considerados en un programa de producci&oacute;n de bioplaguicidas a escala regional en la pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> control biol&oacute;gico, hongo entomopat&oacute;geno, mosca blanca.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entomopathogenic fungi are a promising alternative for the biological control of insect pests in agriculture. In this study, we evaluated the virulence of eight monosporic isolates native to Yucatan, using as a reference a monosporic isolate from a commercial strain of <i>Isaria fumosorosea</i> on eggs and nymphs of <i>Bemisia tabaci.</i> The dose&#45;mortality bioassays were performed with four spore suspensions (1 x 10<sup>4</sup> to 1 x 10<sup>7</sup> conidia ml<sup>&#45;1</sup>). We evaluated the mortality of eggs and nymphs and calculated the LC<sub>50</sub> and LT<sub>50</sub> for all isolates. Egg mortality at 7 days after inoculation of 1 x 10<sup>7</sup> conidia ml<sup>&#45;1</sup> ranged between 28.6 and 59.1%; the native monosporic isolates If&#45;Hal M1 and If Tim M1 were the most virulent, causing 59.1 and 51.1% mortality, respectively. The mortality of the nymphs 12 days after inoculation of 1 x 10<sup>7</sup> conidia ml<sup>&#45;1</sup> ranged between 59.6 and 81%; the native monosporic isolates If&#45;If&#45;Tiz M1 and If&#45;Hal M1 obtained the highest values with 81 and 70.5%, respectively. The median lethal concentration (LC<sub>50</sub>) was lower for the monosporic isolate of the commercial strain Pae&#45;sin M1 with 1.4 x 10<sup>5</sup> conidia ml<sup>&#45;1</sup>. Regarding mean lethal times (LT<sub>50</sub>), it was observed that the lowest ones were those of the monosporic isolate of the commercial strain Pae&#45;sin M1 and of the native isolate If&#45;Hal&#45;M1 with 4.9 and 5 days, respectively. Two native monosporic isolates (If&#45;Tim&#45;M1 and If&#45;Hal&#45;M1) showed high enough virulence to be considered for a regional bio&#45;pesticides production program in the Yucatan Peninsula.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> biological control, entomopathogenic fungus, white fly.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mosquita blanca <i>Bemisia tabaci</i> (Gennadius) es una de las especies fit&oacute;fagas m&aacute;s da&ntilde;inas a nivel mundial, especialmente en regiones de clima c&aacute;lido. <i>Bemisia tabaci</i> afecta a una gran variedad de cultivos de importancia econ&oacute;mica, en particular las hortalizas de las familias solan&aacute;ceas, cucurbit&aacute;ceas y leguminosas (Collen <i>et al,</i> 2007; Cabanillas y Jones, 2009). Para el control de <i>B. tabaci</i> se ha usado desmesuradamente insecticidas qu&iacute;micos, con efectos perjudiciales, como la contaminaci&oacute;n ambiental y de alimentos, aparici&oacute;n de poblaciones resistentes de insectos, da&ntilde;os a la salud del hombre, desequilibrios en funcionamiento de redes tr&oacute;ficas, y el abatimiento de la biodiversidad y el equilibrio de los agroecosistemas (Mier <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El control biol&oacute;gico de insectos plaga mediante hongos entomopat&oacute;genos ofrece un m&eacute;todo alternativo para el control de las poblaciones de <i>B. tabaci</i> en los sistemas de producci&oacute;n agr&iacute;cola, esta estrategia ha sido integrado satisfactoriamente en los programas de manejo integrado de plagas (MIP) (Kim <i>et al,</i> 2011). El hongo entomopat&oacute;genos <i>Isaria fumosorosea</i> (Wise) Brown y Smith (Hypocreales: Clavicipitaceae) antes <i>Paecilomycesfumosoroseus</i> asignado al clado <i>Isaria</i> por Luangsa y colaboradores (2005), es una de las especies m&aacute;s promisorias para el control biol&oacute;gico de la mosquita blanca y otros insectos plaga (Scorsetti <i>et al,</i> 2008). <i>Isaria fumosorosea</i> se ha desarrollado exitosamente para el control biol&oacute;gico de <i>Plutella xylostella</i> (Lepidoptera: Plutellidae) (Ali <i>et al.,</i> 2010), <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Homoptera: Aleyrodidae) (Avery <i>et al,</i> 2004), <i>Tetranychus urticae</i> (Acari: Tetranychidae) (Kim <i>et al,</i> 2008) y <i>B. tabaci</i> (Hemiptera: Aleyrodidae) (Cabanillas y Jones, 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En estudios previos en la b&uacute;squeda agentes de control biol&oacute;gico de <i>B. tabaci,</i> Panyasiri <i>et al.</i> (2007) evaluaron la virulencia de varias especies de hongos entomopat&oacute;genos sobre ninfas de <i>B. tabaci,</i> encontrando el mayor porcentaje de mortalidad con <i>I. fumosorosea</i> (76.7%) al aplicar una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>. Scorsetti <i>et al.</i> (2008) evaluaron la virulencia de aislados f&uacute;ngicos del sureste de Argentina sobre ninfas de <i>B. tabaci,</i> destacando <i>I. fumosorosea</i> como el m&aacute;s patog&eacute;nico con 76.7% de mortalidad a los 7 d&iacute;as posinoculaci&oacute;n de una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>. En el sureste de China Zhu y Jun (2011) evaluaron la patogenicidad de diversas especies de hongos entomopat&oacute;genos en ninfas de <i>B. tabaci,</i> resultando la especie <i>I. fumosorosea</i> la m&aacute;s patog&eacute;nica con 97% de mortalidad a los 6 d&iacute;as de posinoculaci&oacute;n de una suspensi&oacute;n de 1x10<sup>8</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La b&uacute;squeda y evaluaci&oacute;n de aislamientos nativos de <i>I. fumosorosea</i> con potencial biocida sobre <i>B. tabaci,</i> adaptados a las condiciones locales es una de las actividades a considerar dentro del desarrollo de un insecticida microbiano para el manejo integrado de <i>B. tabaci</i> en regiones de inter&eacute;s. Los aislados f&uacute;ngicos obtenidos en campo de insectos micosados presentan un germoplasma propio con alta variabilidad intraespec&iacute;fica, debido a su amplio rango de hospederos, patogenicidad y caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y fisiol&oacute;gicas, por lo que un proceso de selecci&oacute;n puede ser llevado a cabo mediante la obtenci&oacute;n de cultivos monosp&oacute;ricos para seleccionar cepas con alta virulencia sobre <i>B. tabaci</i> (Mier <i>et al,</i> 2004; Ayala <i>et al,</i> 2005; Cortez, 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue evaluar la virulencia de aislados monosp&oacute;ricos de <i>I. fumosorosea</i> en estadios inmaduros de <i>B. tabaci.</i> La hip&oacute;tesis del presente trabajo establece que al menos un aislado monosp&oacute;rico nativo de <i>I. fumosorosea</i> es igual de virulento que el aislado comercial obtenido del producto Paesin (Agrobionsa<sup>&#174;</sup> M&eacute;xico).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nomenclatura de los aislamientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislamientos polisp&oacute;ricos originales de <i>I. fumosorosea</i> se obtuvieron de insectos micosados colectados en zonas hort&iacute;colas del estado de Yucat&aacute;n, M&eacute;xico (<a href="#c1">Cuadro 1</a>) y fueron mantenidos y conservados por el laboratorio de reproducci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos del Comit&eacute; Estatal de Sanidad Vegetal del estado de Yucat&aacute;n (CESVY). &Eacute;stos aislados polisp&oacute;ricos que originaron los monosp&oacute;ricos objetos de estudio del presente trabajo, se evaluaron y caracterizaron <i>in</i> <i>vitro</i> previamente por Chan <i>et al.</i> (2010). La identificaci&oacute;n de los hongos se realiz&oacute; mediante caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de acuerdo a Samson (1974) y Domsch <i>et al.</i> (1980). Dentro de los experimentos se incluy&oacute; una cepa de referencia comercialmente Paesin (Agrobionsa<sup>&#174;</sup> M&eacute;xico). Los aislamientos fueron reactivados y conservados en Sabouraud Dextrosa Agar (SDA) (Merck<sup>&#174;</sup>, Alemania) adicionado con 0.5 ppm de cloranfenicol (Lab. Sophia S. A. de C. V. M&eacute;xico).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v4n3/a4c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de cultivos monosp&oacute;ricos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos monosp&oacute;ricos se obtuvieron a partir de una suspensi&oacute;n de esporas de cada aislado original, considerado como polisp&oacute;rico; la suspensi&oacute;n de esporas se prepar&oacute; agregando 10 ml de agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s 5 &#956;1 de Tween 80 a las colonias polisp&oacute;ricas de 7 d&iacute;as establecidas en cajas de Petri. Las colonias se rasparon con esp&aacute;tula est&eacute;ril, los productos se filtraron a trav&eacute;s de una gasa esterilizada para separar las esporas del micelio y fragmentos del medio de cultivo (Gindin <i>et al,</i> 2000). La suspensi&oacute;n de esporas obtenida se ajust&oacute; a una concentraci&oacute;n de 100 conidios ml<sup>&#45;1</sup> empleando una c&aacute;mara de Neubauer<sup>&#174;</sup> (Marienfeld, Alemania). Se depositaron 200 &#956;l de esta suspensi&oacute;n en cajas de Petri con SDA vaciado en capa fina, al reverso de la caja de Petri se trazaron cuadros de 0.5 cm<sup>2</sup>, las cajas se incubaron a 25 &deg;C y se revisaron cada 12 h al microscopio compuesto 4 x&#45;40 x, para marcar con un punto el cuadrante donde se encontraba una sola espora con tubo germinativo, el cual se cort&oacute; y transfiri&oacute; a una caja nueva con SDA para su desarrollo (Ayala <i>et al.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Colonia de <i>Bemisia tabaci</i></b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estableci&oacute; una colonia de cr&iacute;a de <i>B. tabaci</i> en el invernadero de adaptaci&oacute;n del Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal, Yucat&aacute;n (ITC), se emplearon jaulas construidas con aluminio y malla anti&aacute;fidos de 1.2 x 1.2 x 1.2 m. Los adultos de <i>B. tabaci</i> se colectaron en cultivos de chile habanero <i>(Capsicum chinense</i> Jacq.) del &aacute;rea de producci&oacute;n del ITC. Los insectos fueron confinados con pl&aacute;ntulas de <i>C. chinense</i> de 30 d&iacute;as de edad, establecidas en macetas de pl&aacute;stico con Cosmopeat (Cosmocel<sup>&#174;</sup>, Canad&aacute;). Los adultos ovipositaron por dos d&iacute;as sobre plantas de <i>C. chinense</i> y fueron retirados para iniciar la colonia con los huevos ovipositados en las hojas. Una vez establecida la colonia, las plantas de <i>C. chinense</i> fueron sustituidas cada 30&#45;40 d&iacute;as para proveer nuevos hospederos a <i>B. tabaci.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de huevos y ninfas de <i>B. tabaci</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por Mu&ntilde;iz y Nombela (2001), se tomaron diez insectos adultos de la colonia de cr&iacute;a con un aspirador, se depositaron en una micro jaula de 1 cm de di&aacute;metro y se sujetaron en una hoja extendida de <i>C. chinense,</i> la microjaula con los adultos fueron retirados a las 24 h, los huevos ovipositados se emplearon de inmediato para los bioensayos respectivos. Para el caso de los bioensayos con ninfas, los huevos ovipositados se dejaron en las hojas por un periodo de 7&#45;8 d&iacute;as hasta obtener ninfas de segundo instar. &Uacute;nicamente se dejaron 30 huevos o ninfas por hoja como unidad experimental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bioensayos de patogenicidad</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para los bioensayos, &uacute;nicamente se emplearon dos cultivos monosp&oacute;ricos de cada aislamiento polisp&oacute;rico nativo denominados con las iniciales M1 y M2. Se us&oacute; como referencia un aislado monosp&oacute;rico de la cepa comercial Paesin con un porcentaje promedio de germinaci&oacute;n 12.1% h<sup>&#45;1</sup> (Chan <i>et al.,</i> 2010). De &eacute;stos cultivos se obtuvieron suspensiones de esporas como se describi&oacute; anteriormente (Ayala <i>et al,</i> 2005), las suspensiones de esporas fueron ajustadas a cuatro concentraciones 1 x 10<sup>4</sup>, 1 x 10<sup>5</sup>, 1 x 10<sup>6</sup> y 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> empleando una c&aacute;mara de Neubauer<sup>&#174;</sup>, la viabilidad de los conidios estuvo en un rango de 11.9 a 12.5% h<sup>&#45;1</sup> (Chan <i>et al,</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las suspensiones de esporas fueron inoculadas por inmersi&oacute;n de hojas de <i>C. chinense</i> que conten&iacute;an huevos o ninfas de <i>B. tabaci</i> durante un periodo de 15 segundos, el testigo se trat&oacute; con agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s Tween 80<sup>&#174;</sup> al 0.05% V/V. Las plantas con las hojas tratadas fueron encubadas bajo condiciones de laboratorio a 27&#177;3 &deg;C, 75&#177;8% de humedad relativa y fotoperiodo de 12 L: 12O, las evaluaciones de mortalidad en huevos y ninfas se llevaron a cabo diariamente por 7 y 12 d&iacute;as, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los inmaduros de <i>B. tabaci</i> muertos fueron contabilizados usando un microscopio estereosc&oacute;pico; se contabilizaron los huevos micosados, necrosados y no eclosionados (Gindin <i>et al.,</i> 2000); para el caso de las ninfas, se consideraron como muertas aqu&eacute;llas con cambios de coloraci&oacute;n, brillo, forma y crecimiento de micelio sobre &eacute;stas (Ruiz <i>et al,</i> 2011). Para confirmar la muerte de los inmaduros de <i>B. tabaci</i> por efecto de los conidios de <i>I. fumosorosea,</i> las hojas con huevos y ninfas muertas fueron lavadas con hipoclorito de sodio 2% y enjuagadas con agua destilada est&eacute;ril, para posteriormente colocarse en c&aacute;maras h&uacute;medas. Los huevos y ninfas se observaron diariamente hasta la aparici&oacute;n de micelio. Cabe mencionar que no en todos los casos se observ&oacute; la producci&oacute;n de micelio en los huevos y ninfas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de datos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar con cuatro repeticiones. Los resultados de mortalidad en huevos y ninfas bajo la concentraci&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> se analizaron con un an&aacute;lisis de varianza y comparaci&oacute;n de medias Tukey p&#8804; 0.05 empleando el programa GraphPad InStat (GraphPad Software Inc., 2000). Con los datos de mortalidad de las cuatro concentraciones de esporas se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) y el tiempo letal medio (TL<sub>50</sub>) de cada aislado monosp&oacute;ricos usando programa estad&iacute;stico SAS ver. 8 e para Windows (SAS Institute Inc., USA)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mortalidad en huevos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#f1">Figura 1</a> muestra el porcentaje de mortalidad en huevos de <i>B. tabaci</i> por efecto de la aplicaci&oacute;n de una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> de nueve aislados monosp&oacute;ricos de <i>I. fumosorosea.</i> Los aislados If&#45;Hal M1 (59.1%) y If&#45;Tim M1 (51.1%) fueron m&aacute;s virulentos que los aislados If&#45;Tiz M2 (33.2%) y If&#45;Tic M1 (28.6%); sin embargo, If&#45;Tiz M2 y If&#45;Tic M1 fueron estad&iacute;sticamente igual de virulentos que el resto de los aislados monosp&oacute;ricos evaluados.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v4n3/a4f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En <i>B. tabaci</i> se ha descrito que el estadio de huevo es uno de los menos susceptibles al ataque de hongos entomopat&oacute;genos; sin embargo, en este estudio algunos monosp&oacute;ricos de <i>I. fumosorosea</i> causaron porcentajes de mortalidad en huevos mayor a 50%, valores mucho m&aacute;s altos que los reportados por Lacey <i>et al.</i> (1999), quienes encontraron porcentajes de mortalidad menores a 20% al inocular una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>3</sup> conidios cm<sup>2</sup> de <i>I. fumosorosea</i> en huevos de <i>B. tabaci.</i> En otro estudio de patogenicidad, Espinel <i>et al.</i> (2009) observaron 50.5% de mortalidad en huevos de <i>B. tabaci</i> por efecto de la inoculaci&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> de <i>I. fumosorosea.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del presente estudio tambi&eacute;n sugieren que los monosp&oacute;ricos de <i>I. fumosorosea</i> sobresalientes, son m&aacute;s virulentos en huevos de <i>B. tabaci</i> que otras especies de hongos entomopat&oacute;genos como <i>Lecanicillium lecanii</i> que han mostrado un rango de 14 a 26% de mortalidad (Gindin <i>et al.,</i> 2000). Para el caso de <i>Metarhizium anisopliae</i> se han reportado tasas de mortalidad variables en huevos, por ejemplo Skrobek (2001) observ&oacute; valores de 33&#45;45 % y Ruiz <i>et al.</i> (2011) encontr&oacute; 9.9&#45;32.2%. Para el caso de otro hongo com&uacute;nmente usado en <i>B. tabaci,</i> como <i>Beauveria bassiana,</i> tambi&eacute;n se ha observado baja patogenicidad en huevos, por ejemplo Al&#45;Deghairi (2008) report&oacute; 5% de mortalidad, por su parte Espinel <i>et al.</i> (2009) reportaron 30% de mortalidad, ambos estudios emplearon una suspensi&oacute;n de conidios similar a la evaluada en el presente trabajo. La actividad ovicida de los aislados monosp&oacute;ricos de <i>I. fumosorosea</i> permitir&iacute;a una reducci&oacute;n de la poblaci&oacute;n inicial de la plaga lo que repercutir&iacute;a en obtener densidades poblacionales bajas y en consecuencia menores da&ntilde;os a los cultivos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mortalidad en ninfas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislados monosp&oacute;ricos If&#45;Tiz M1 y If&#45;Hal M1 causaron los porcentajes m&aacute;s altos de mortalidad con 81.0 y 70.5%, respectivamente, resultando estad&iacute;sticamente igual al aislamiento monosp&oacute;ricos de la cepa comercial Paesin M1 (70.6%). La buena actividad insecticida de <i>I. fumosorosea</i> en ninfas de <i>B. tabaci</i> ha sido previamente reportada. Por ejemplo, Scorsetti <i>et al.</i> (2008) encontraron mortalidades de ninfas <i>B. tabaci</i> de 76.6% por efecto de la inoculaci&oacute;n de 1x10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> de <i>I. fumosorosea.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Panyasiri <i>et al.</i> (2007) encontraron resultados similares al evaluar la patogenicidad de <i>I. fumosorosea</i> bajo condiciones controladas (30 &deg;C, 80&#45;85% HR), donde los porcentajes de mortalidad en ninfas oscilaron entre 36.7 a 76.7%. Es probable que los porcentajes de mortalidad aumenten si se incrementan las concentraciones de esporas. Al respecto, Saito y Sugiyama (2005) evaluaron la patogenicidad de aislados de <i>I. fumosorosea</i> en ninfas de <i>B. tabaci</i> aplicando una concentraci&oacute;n de 0.6 x 10<sup>8</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>, y encontraron una mortalidad promedio de 98%.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del presente trabajo confirman la patogenicidad de <i>I. fumosorosea</i> sobre inmaduros de <i>B. tabaci,</i> los cultivos monosp&oacute;ricos If&#45;Tiz M1 y If&#45;Hal M1 fueron igual de virulentos que los cultivos monosp&oacute;ricos de la cepa comercial Paesin; sin embargo, las cepas nativas tienen la ventaja de estar adaptadas a la regi&oacute;n de estudio y se esperar&iacute;a que bajo condiciones de campo su actividad fuera mayor que la actividad de la cepa comercial <a href="#f2">Figura 2</a>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v4n3/a4f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n letal medio (CL<sub>50</sub>) en ninfas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <a href="/img/revistas/remexca/v4n3/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a> muestra la concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) de los aislados monosp&oacute;ricos evaluados. Se consideran que los valores son significativamente diferentes cuando no se traslapan los intervalos de confianza (Cabanillas y Jones, 2009). El aislado comercial Paesin M1 fue m&aacute;s patog&eacute;nico al obtener la CL<sub>50</sub> m&aacute;s baja con 1.4 x 10<sup>5</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>; seguido del aislado If&#45;Tiz M1 con una CL<sub>50</sub> de 3.2 x 10<sup>5</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>. Existen varios reportes sobre la virulencia <i>de I. fumosorosea</i> en <i>B. tabaci</i> que pueden ser comparados con el presente trabajo por emplear protocolos similares; por ejemplo Hern&aacute;ndez y Garza (1994) reportaron una CL<sub>50</sub> de 4.3 x 10<sup>8</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> para el aislamiento PF2 de <i>I. fumosorosea</i> en ninfas de <i>B. tabaci,</i> valor substancialmente mayor a los valores observados en el presente estudio. Vidal <i>et al.</i> (1997) encontraron una CL<sub>50</sub> en rango de 2.6 x 10<sup>4</sup>a 2.3 x 10<sup>6</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> de <i>I. fumosorosea</i> sobre ninfas de <i>B. tabaci.</i> Por el contrario, Panyasiri <i>et al.</i> (2007) encontraron una CL<sub>50</sub> m&aacute;s baja (9.41 x 10<sup>4</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>) con una cepa de <i>I. fumosorosea</i> nativa de Tailandia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos autores mencionan que <i>I. fumosorosea</i> es un hongo con mayor especificidad hacia <i>B. tabaci,</i> ya que los valores obtenidos de CL<sub>50</sub> son menores comparado con las CL<sub>50</sub> de otros hongos entomopat&oacute;genos u otras especies de <i>Isaria.</i> En este contexto, Negasi <i>et al.</i> (1998) estudiando la patogenicidad de <i>Isariafarinosus</i> sobre ninfas de <i>B. tabaci,</i> encontr&oacute; una CL<sub>50</sub> de 3.1 x 10<sup>6</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tiempo letal medio (TL<sub>50</sub>) en ninfas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La virulencia de un determinado aislamiento no solo es indicada por su CL<sub>50</sub>, si no tambi&eacute;n por el tiempo en d&iacute;as requerido para causar 50% de mortalidad de las ninfas tratadas (TL<sub>50</sub>). El <a href="/img/revistas/remexca/v4n3/a4c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a> muestra el TL<sub>50</sub> de los aislados monosp&oacute;ricos sobre ninfas de <i>B. tabaci;</i> estad&iacute;sticamente el aislamiento comercial Paesin M1 y el monosp&oacute;rico If&#45;Hal M1, obtuvieron los valores m&aacute;s bajos con 4.6 y 5.0 d&iacute;as, respectivamente; el TL<sub>50</sub> del resto de los aislamientos oscil&oacute; entre 5.3 y 6.7 d&iacute;as. En estudios previos Zhu y Jun (2011) y Saito y Sugiyama (2005) reportaron valores de TL<sub>50</sub> de 4.4 y 4.1 d&iacute;as, respectivamente, al aplicar una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios ml<sup>&#45;1</sup> de <i>I. fumosorosea</i> sobre ninfas de <i>B. tabaci.</i> Por el contrario, Cabanillas y Jones (2009) encontraron un TL<sub>50</sub> m&aacute;s bajo, 3 d&iacute;as, al emplear un aislado de <i>I. fumosorosea</i> aplicando 1 000 esporas/ mm<sup>2</sup> sobre ninfas de <i>B. tabaci;</i> el resultado de este &uacute;ltimo estudio pudo ser favorecido por la reactivaci&oacute;n del hongo en un medio de cultivo suplementado con adultos de <i>B.</i> <i>tabaci.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislados monosp&oacute;ricos nativos de <i>I. fumosorosea</i> resultaron igual de virulentos que la cepa comercial estudiada. Los aislados If&#45;Hal M1 y If&#45;Tim M1 fueron los m&aacute;s virulentos en huevos. En ninfas el monosp&oacute;rico nativo If&#45;Hal M1 junto con If&#45;Tiz M1 resultaron los m&aacute;s virulentos. Los aislados monosp&oacute;ricos por ser cepas nativas adaptadas a las condiciones ambientales de la regi&oacute;n son potencialmente los candidatos id&oacute;neos para el desarrollo de bioplaguicidas a base de hongos entomopat&oacute;genos para el control biol&oacute;gico de <i>B. tabaci</i> en la pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al&#45;Deghairi, M. A. 2008. Bioassay evaluation of the entomopathogenic fungi, <i>Beauveria bassiana</i> Vuellemin against eggs and nymphs of <i>Bemisia tabaci</i> Gennadius (Homoptera: Aleyrodidae). Pakistan J. Biol. Sci. 11(12):1551&#45;1560.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785016&pid=S2007-0934201300030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ali, S.; Zhen, H. and Ren, S. 2010. Production of cuticle degrading enzymes by <i>Isaria fumosorosea</i> and their evaluation as a biocontrol agent against diamondback moth. J. Pest Sci. 83:361&#45;370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785018&pid=S2007-0934201300030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Avery, P. B.; Faull, J. and Simmonds, M. S. 2004. Effect of different photoperiods on the growth, infectivity and colonization of Trinidadian strains of <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> on the greenhouse whitefly, <i>Trialeurodes vaporariorum,</i> using a glass slide bioassay. J. Insect Sci. 4(38):1&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785020&pid=S2007-0934201300030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ayala, M. A.; Mier, T., S&aacute;nchez, R. y Toriello, C. 2005. Variabilidad intraespecifica del crecimiento de <i>Lecanicillium lecanii (=Verticillium lecanii)</i> por efecto de la temperatura. Rev. Mex. Micol. 20:93&#45;97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785022&pid=S2007-0934201300030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabanillas, E. H. and Jones, A. W. 2009. Effects of Temperature and culture media on vegetative growth of an entomopathogenic fungus <i>Isaria</i> sp. (Hypocreales: Clavicipitaceae) Naturally Affecting the Whitefly, <i>Bemisia tabaci</i> in Texas. Mycopathologia 167:263&#45;271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785024&pid=S2007-0934201300030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castellanos, M. J.; Cruz, C. R.; Aranda, E.; Mier, T. and Toriello, C. 2008. Relationship between protease and chitinase activity and the virulence of <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> in <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Hemiptera: Aleyrodidae). Rev. Mex. Micol. 28:71&#45;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785026&pid=S2007-0934201300030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chan, C. W.; Ruiz, S. E.; Crist&oacute;bal, A, J.; P&eacute;rez, G. A.; Mungu&iacute;a R. R. y Lara, R. J. 2010. Desarrollo <i>in vitro</i> de cuatro cepas nativas de <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> y su patogenicidad en estados inmaduros de mosquita blanca. Agrociencia 44:587&#45;597.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785028&pid=S2007-0934201300030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Collen, R. A.; Marks, S. G.; Bernard, D. R. and Gillespie, R. D. 2007. Combined effects of the entomopathogenic fungus, <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> Apopka&#45;97, and the generalist predator, <i>Dicyphus hesperus</i>, on whitefly populations. BioControl 52:669&#45;681.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785030&pid=S2007-0934201300030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cortez, M. H. 2007. Producci&oacute;n de <i>Lecanicillium (=Verticillium</i> ) <i>lecanii</i> en diferentes sustratos y patogenicidad. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 33(1):83&#45;87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785032&pid=S2007-0934201300030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domsch, K.H., W. Gams, and T.H. Anderson. 1980. Compendium of soil fungi. Volumen 1. Academic Press, London, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785034&pid=S2007-0934201300030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinel, C. C.; Torres, T. L. and Cotes, P. A. M. 2009. Effect of entomopathogenic fungi over development stages of <i>Bemisia tabaci</i> (Hemiptera: Aleyrodidae). Rev. Colom. Entomol. 35(1):18&#45;21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785036&pid=S2007-0934201300030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fatiha, L.; Ali, S.; Ren S. and Afzal, M. 2007. Biological characteristics and pathogenicity of <i>Verticillium lecanii</i> against <i>Bemisia tabaci</i> (Homoptera: Aleyrodidae) on eggplant. Pak. Entomol. 29(2):63&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785038&pid=S2007-0934201300030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gindin, G.; Geschtovt, N. U.; Raccah, B. and Barash, I. 2000. Pathogenicity of <i>Verticillium lecanii</i> to different developmental stages of the silverleaf whitefly, <i>Bemisia argentifolii</i>. Phytoparasitica 28(3):1&#45;11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785040&pid=S2007-0934201300030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GraphPad InStat. 2000. GraphPad Software. La Joya, California, USA. Software en CD.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785042&pid=S2007-0934201300030000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, J. S.; Ho, J. Y.; Ok, W. E. and Sung, P. J. 2011. Persistence of <i>Isaria fumosorosea</i> (Hypocreales: Cordycipitaceae) SFP&#45;198 Conidia in Corn Oil&#45;Based Suspension. Mycopathologia 171:67&#45;75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785044&pid=S2007-0934201300030000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, J. S.; Roh, J. Y.; Choi, J. Y.; Shin, S. C.; Jeon, M. J. and Je, Y. H. 2008. Insecticidal activity of<i> Paecilomyces fumosoroseus</i> SFP&#45;198 as a multi&#45;targeting biological control agent against the greenhouse whitefly and the two&#45;spotted spider mite. Int. J. In. Entomol. 17:181&#45;187.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785046&pid=S2007-0934201300030000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lacey, L. A.; Kirk, A. A.; Millar, L.; Mercadier, G. and Vidal, C. 1999. Ovicidal and larvicidal activity of conidia and blastospores of <i>Paecilomyces fumosoroseus (Deuteromycotina: Hyphomycetes)</i> against <i>Bemisia argentifolii</i> (Homoptera: Aleyrodidae) with a description of a bioassay system allowing prolonged survival of control insects. Biocontrol Sci. Technol. 9(1):9&#45;18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785048&pid=S2007-0934201300030000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Luangsa, A. J. J.; Hywel, J. N. L.; Manoch, L. and Samson, R. A. 2005. On the relationships of <i>Paecilomyces</i> sect. <i>Isarioidea</i> species. Mycol. Res. 109:581&#45;589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785050&pid=S2007-0934201300030000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mier, T.; Castellanos, M. J.; Garc&iacute;a, G. K.; Ayala, Z. M.; Fern&aacute;ndez, V. V. y Toriello, N. C. 2004. Valoraci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos para el control biol&oacute;gico de plagas agr&iacute;colas. Soc. Rur. Prod. Medio Amb. 5(8):57&#45;67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785052&pid=S2007-0934201300030000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mu&ntilde;&iacute;z, M. and Nombela, G. 2001. Differential variation in development of the B&#45; and Q&#45; biotypes of <i>Bemisia tabaci</i> on sweet pepper <i>Capsicum annum</i> L. at constant temperatures. Environ. Entomol. 30(4):720&#45;727.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785054&pid=S2007-0934201300030000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Negasi, A.; Parker, L. B. and Brownbridge, M. 1998. Screening and bioassay of entomopathogenic fungi for the control of silverleaf whitefly, <i>Bemisia argentifolli</i>. Int. J. Trop. Insect Sci. 18:37&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785056&pid=S2007-0934201300030000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Osuna, P. A. G.; Estrada, R. F. J.; Caro, M. P. H.; Galv&aacute;n, P. B. y C&aacute;rdenas, C. M. 2003. Virulencia de conidios a&eacute;reos y de prop&aacute;gulos de cultivo sumergido de <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> (Wise) Brown y Smith contra ninfas de <i>Bemisia</i> (Gennadius) spp. Rev. Mex. Fitopat. 21(3):292&#45;299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785058&pid=S2007-0934201300030000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Panyasiri, C.; Attathom, T. and Poehling, H. M. 2007. Pathogenicity of entomopathogenic fungi&#45;potential candidates to control insect pest on tomato under protected cultivation in Thailand. J. Plant Dis. Protect. 114(6):278&#45;287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785060&pid=S2007-0934201300030000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez, V. M. y Garza, E. 1994. Patogenicidad de <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> a mosquita blanca <i>Bemisia tabaci</i> (Genn.) (Homoptera, Aleyrodidae). XVII Congreso Nacional de Control Biol&oacute;gico. Oaxaca. Oax. M&eacute;xico, Octubre, 1994. Sociedad Mexicana de Control Biol&oacute;gico. 42&#45;43. pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785062&pid=S2007-0934201300030000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Quesada, M. E.; Maranhao, E. A. A.; Valverde, G. P. and Santiago, A. C. 2006. Selection of <i>Beauveria bassiana</i> isolates for control of the whiteflies <i>Bemisia tabaci</i> and <i>Trialeurodes vaporariorum</i> on the basis of their virulence, thermal requirements, and toxicogenic activity. Biological Control 36:274&#45;287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785064&pid=S2007-0934201300030000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruiz, S. E.; Chan, C. W.; P&eacute;rez, G. A.; Cristobal, A. J.; Uch, V. B. y Tun, S. J. Ma. 2011. Crecimiento, esporulaci&oacute;n y germinaci&oacute;n <i>in vitro</i> de cinco cepas de <i>Metarhizium</i> y su virulencia en huevos y ninfas de <i>Bemisia tabaci.</i> Rev. Mex. Micol. 33:9&#45;15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785066&pid=S2007-0934201300030000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saito, T. and Sugiyama, K. 2005. Pathogenicity of three Japanese strains of entomopathogenic fungi against the silverleaf whitefly, <i>Bemisia argentifolii.</i> Appl. Entomol Zool. 40(1):169&#45;172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785068&pid=S2007-0934201300030000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Samson, R. A. 1974. <i>Paecilomyces</i> and some allied hyphomycetes. Studies in Mycology, Baarn 6:1&#45;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785070&pid=S2007-0934201300030000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute. 2000. The SAS System for Windows 8e. Cary, NC. USA. Software en CD.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785072&pid=S2007-0934201300030000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scorsetti, A. C.; Humber, A. R. and De Gregorio, C. 2008. New records of entomopathogenic fungi infecting <i>Bemisia tabaci</i> and <i>Trialeurodes vaporariorum,</i> pests of horticultural crops, in Argentina. BioControl 53:787&#45;796.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785074&pid=S2007-0934201300030000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Skrobek, A. 2001. Investigations on the effect of entomopathogenic fungi on whiteflies. Dissertation, Institut f&uuml;r Pflanzenkrankheiten der Rheinischen Friedrich&#45;Wilhelms&#45;Universitat Bonn. Doktorw&uuml;rde der Agrarwissenschaften. 114 pp. &lt;&lt;<a href="http://hss.ulb.uni&#45;bonn.de/diss_online/landw_fak/2001/skrobek_anke/text.pdf" target="_blank">http://hss.ulb.uni&#45;bonn.de/diss_online/landw_fak/2001/skrobek_anke/text.pdf</a>&gt;&gt;. (consultado diciembre, 2010).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785076&pid=S2007-0934201300030000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vidal, C.; Fargues, J. and L. A. Lacey. 1997. Intraspecific variability of<i> Paecilomyces fumosoroseus:</i> effect of temperature on vegetative growth. J. Invert. Pathol. 70(1):18&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785078&pid=S2007-0934201300030000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhu, H. and Jun, K. 2011. Susceptibility of the tobacco whitefly, Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae) biotype Q to entomopathogenic fungi. Biocontrol Sci. Technol. 21(12):1471&#45;1483.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7785080&pid=S2007-0934201300030000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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