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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Distribución viral en plantas de cebolla (Allium cepa L.) asintomáticas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Using the DAS-ELISA method, the distribution of Onion yellow dwarf virus (OYDV), Garlic common latent virus (GarCLV), Shallot latent virus (SLV), Leek yellow stripe virus (LYSV), Tobacco etch virus (TEV) and tomato spotted wilt virus (TSWV) in the leaves, psdeudo-stem and the inflorescence of symptomless onion plants collected at different times in 2010, was studied in three locations in the State of Zacatecas, Mexico.We recorded the presence ofthese viruses in the oigans just mentioned, although it was frequently detected mixed infections in single leaves where the most common interactions involved two, three or four viruses. There was no trend relating the viral presence with the analyzed vegetal organs or the leaf age; however, infections with only one virus appear to be less common in middle-aged leaves.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas de investigaci&oacute;n</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Distribuci&oacute;n viral en plantas de cebolla (<i>Allium cepa</i> L.) asintom&aacute;ticas*</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Viral distribution on asymptomatic onion (<i>Allium cepa</i> L.) plants</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rodolfo Vel&aacute;squez&#45;Valle<sup>1&#167;</sup>, Manuel Reveles&#45;Hern&aacute;ndez<sup>1</sup> y Mario Domingo Amador&#45;Ram&iacute;rez<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>Campo Experimental Zacatecas&#45; INIFAP. Carretera Zacatecas&#45; Fresnillo, km 24.5. Calera de V. R., Zacatecas, M&eacute;xico. C. P. 98500. Tel. 01 478 9850199.</i> (<a href="mailto:reveles.manuel@inifap.gob.mx">reveles.manuel@inifap.gob.mx</a>). <sup><i>&#167;</i></sup><i>Autor para correspondencia:</i> <a href="mailto:velasquez.rodolfo@inifap.gob.mx">velasquez.rodolfo@inifap.gob.mx</a>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: enero de 2012    <br> 	Aceptado: agosto de 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estudi&oacute; por medio de DAS&#45; ELISA la distribuci&oacute;n del <i>Onion yellow dwarf virus</i> (OYDV, virus del enanismo amarillo de la cebolla), <i>Garlic common latent virus</i> (GarCLV, virus latente com&uacute;n del ajo), <i>Shallot latent v irus</i> (SLV, virus latente del chalote), <i>Leek yellow stripe virus</i> (LYSV: virus de la franja amarilla del puerro), <i>Tobacco etch virus</i> (TEV, virus del jaspeado del tabaco) y <i>Tomato spotted wilt virus</i> (TSWV, virus de la marchitez manchada del jitomate) en hojas, psdeudotallo e inflorescencia de plantas de cebolla asintom&aacute;ticas colectadas en diferentes &eacute;pocas de 2010 en tres localidades del estado de Zacatecas, M&eacute;xico. Se registr&oacute; la presencia de esos virus en los &oacute;rganos mencionados aunque result&oacute; frecuente detectar infecciones mezcladas en hojas individuales donde las interacciones m&aacute;s comunes involucraban dos, tres y cuatro virus. No se encontr&oacute; una tendencia que relacione la presencia viral con los &oacute;rganos vegetales analizados o con la edad de las hojas; sin embargo, las infecciones con un solo virus parecen ser menos frecuentes en las hojas de edad intermedia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> cebolla, incidencia, infecciones mezcladas, virus.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Using the DAS&#45;ELISA method, the distribution of <i>Onion yellow dwarf virus</i> (OYDV), <i>Garlic common latent virus</i> (GarCLV), <i>Shallot latent virus</i> (SLV), <i>Leek yellow stripe virus</i> (LYSV), <i>Tobacco etch virus</i> (TEV) and <i>tomato spotted wilt virus</i> (TSWV) in the leaves, psdeudo&#45;stem and the inflorescence of symptomless onion plants collected at different times in 2010, was studied in three locations in the State of Zacatecas, Mexico.We recorded the presence ofthese viruses in the oigans just mentioned, although it was frequently detected mixed infections in single leaves where the most common interactions involved two, three or four viruses. There was no trend relating the viral presence with the analyzed vegetal organs or the leaf age; however, infections with only one virus appear to be less common in middle&#45;aged leaves.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> incidence, mixed infections, onion, virus.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El movimiento y distribuci&oacute;n de virus a trav&eacute;s de las plantas puede llevarse a cabo lentamente desde el sitio de inoculaci&oacute;n, de c&eacute;lula a c&eacute;lula, a trav&eacute;s de los plasmodesmos modificados por las prote&iacute;nas de movimiento del agente viral o de manera m&aacute;s r&aacute;pida (cent&iacute;metros/hora) desde las c&eacute;lulas epidemiales a las c&eacute;lulas del mes&oacute;filo para posteriormente alcanzar los tejidos vasculares, generalmente el floema: o en forma masiva hacia los tejidos de crecimiento r&aacute;pido; sin embargo, la distribuci&oacute;n final del o los virus en los tejidos u &oacute;rganos de una planta puede no ser uniforme y es influenciada por el virus, el hospedero y la interacci&oacute;n entre ambos (Agrios, 1970; Matthews, 1992; Carrington <i>et al.,</i> 1996; Scholthof, 2005; Stange, 2006). La distribuci&oacute;n de part&iacute;culas virales en &oacute;rganos de una misma planta ha sido documentada en plantas de chile <i>(Capsicum annuum</i> L.) infectadas con el virus del mosaico del pepino <i>(Cucumber mosaic virus)</i> (Dufour <i>et al.,</i> 1989) o papa <i>(Solanum tuberosum</i> L.) infectada con el virus del enrollamiento de la hoja <i>(Potato leafroll virus)</i> (Barker y Harrison, 2008). En M&eacute;xico la distribuci&oacute;n de virus en las hojas y dientes de ajo <i>(Allium sativum</i> L.), una planta de la misma familia bot&aacute;nica que la cebolla, fue estudiada previamente por Ram&iacute;rez&#45;Malag&oacute;n <i>et al.</i> (2006). La informaci&oacute;n acerca de la distribuci&oacute;n de pat&oacute;genos virales dentro de una planta puede ayudar a dise&ntilde;ar esquemas precisos de muestreo en estudios epidemiol&oacute;gicos o de biolog&iacute;a molecular as&iacute; que el objetivo del trabajo consisti&oacute; en determinar la distribuci&oacute;n de diferentes agentes virales en los &oacute;rganos a&eacute;reos de plantas de cebolla.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se colectaron al azar plantas adultas asintom&aacute;ticas de dos materiales criollos y un h&iacute;brido de cebolla en los municipios de Villa de Cos (localidades El Huizache y Pivote) y P&aacute;nuco (localidad SanAntonio del Cipr&eacute;s) en el estado de Zacatecas, M&eacute;xico en tres diferentes &eacute;pocas de muestreo durante 2010 (<a href="#c1">Cuadro 1</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c1.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la presencia de virus, las hojas de cada planta se numeraron y seccionaron progresivamente, iniciando con la m&aacute;s antigua o m&aacute;s cercana a la l&iacute;nea del suelo y terminando con la hoja desplegada m&aacute;s joven. Adem&aacute;s se obtuvo una muestra del pseudotallo y en una localidad (Villa de Cos&#45; Pivote) se incluyeron plantas con inflorescencias. Cada submuestra se someti&oacute; a la prueba de absorbancia DAS&#45;ELISA para los antisueros del <i>Onion yellow dwarf virus</i> (OYDV, virus del enanismo amarillo de la cebolla), <i>Leek yellow stripe virus</i> (LYSV, virus de la franja amarilla del puerro), <i>Shallot latent virus</i> (SLV, virus latente del shallot), <i>Garlic common latent virus</i> (GarCLV, virus latente com&uacute;n del ajo), <i>Tomato spotted wilt virus</i> (TSWV, virus de la marchitez manchada del jitomate) y <i>Tobacco etch virus</i> (TEV, virus del jaspeado del tabaco), seg&uacute;n la disponibilidad de los antisueros en cada &eacute;poca de muestreo y siguiendo las instrucciones de uso proporcionadas por el fabricante (AGDIA Inc.).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La lectura de absorbancia se realiz&oacute; en un espectofot&oacute;metro Plate Reader Mca. DAS Mod. A1 a una longitud de onda de 405 nm para todos los virus con excepci&oacute;n de SLV en donde la longitud de onda fue de 650 nm. Como criterio para determinar el &uacute;mbral de detecci&oacute;n se utiliz&oacute; el valor duplicado de la desviaci&oacute;n st&aacute;ndar (S) del testigo negativo; las muestras con valores superiores a ese umbral de detecci&oacute;n se consideraron positivas de acuerdo a los propuesto por P&eacute;rez&#45;Moreno <i>et al.</i>, 2007).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos permitieron identificar virus pertenecientes a las familias <i>Potyviridae</i> (OYDV, LYSV y TEV), <i>Carlavirus</i> (GarCLV y SLV) y <i>Tospoviridae</i> (TSWV) en diferentes &oacute;rganos de plantas asintom&aacute;ticas de cebolla. Estos virus se encontraban presentes en las tres &eacute;pocas de muestreo durante 2010, lo cual podr&iacute;a indicar una alta disponibilidad de in&oacute;culo y vectores en los alm&aacute;cigos y/o parcelas comerciales de cebolla en Zacatecas. Debe considerarse que en la entidad los alm&aacute;cigos y parcelas comerciales de cebolla se establecen desde diciembre cuando el cultivo de ajo ya se encuentra establecido en el campo y que ambos cultivos comparten algunos de los virus detectados en el estudio as&iacute; como sus vectores por lo que cabe la posibilidad de que tanto el ajo como la cebolla act&uacute;en simult&aacute;neamente como reservorios de virus y albergue de vectores comunes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">a) Villa de Cos, Zacatecas (localidad Pivote) mayo de 2010</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analizaron cinco plantas de cebolla tipo criollo colectadas en mayo de 2010. En ellas el n&uacute;mero de hojas por planta variaba desde cinco hasta ocho haciendo un total de 32 hojas colectadas y analizadas la incidencia de OYDV, LYSV, TEV, GarCLV y SLV fue de 100, 100, 28.1, 15.6 y 31.2% respectivamente (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El porcentaje de infecci&oacute;n por dos, tres, cuatro y cinco virus por hoja fue de 40.6, 46.9, 9.3 y 3.1% respectivamente. El n&uacute;mero de agentes virales (AV) identificados por hoja vari&oacute; desde uno hasta cinco.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La hoja con menor promedio de AV identificados (1.4), correspondi&oacute; a la de edad m&aacute;s avanzada; por el contrario, el promedio de AV m&aacute;s elevado se registr&oacute; en las hojas cinco y siete ubicadas en el tercio m&aacute;s joven de las plantas (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). En los pseudotallos se identificaron los mismos AV que en las hojas aunque solamente OYDV y LYSV se encontraron presentes en todos los pseudotallos de las cinco plantas analizadas mientras que SLV, GarCLV y TEV se registraron en 60, 40 y 40% de los pseudotallos analizados respectivamente. En las inflorescencias se identificaron los mismos AV que en los otros &oacute;rganos de la planta pero destaca la presencia de LYSV en cuatro de las cinco inflorescencias; los otros AV identificados (OYDV, GarCLV, SLV y TEV) en la estructura floral se encontraron en forma aislada o en infecciones mixtas. En todas las inflorescencias se registraron infecciones mezcladas desde dos hasta cinco AV.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">b) Villa de Cos, Zacatecas (localidad: Huizache) agosto de 2010</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se colectaron y analizaron cuatro plantas del tipo criollo en las cuales el n&uacute;mero de hojas variaba de seis a nueve por lo que se utilizaron 30 hojas para su an&aacute;lisis serol&oacute;gico. La incidencia de OYDV, LYSV, TEV, GarCLV y SLV en esas hojas fue de 60.0, 73.3, 86.7, 80.0 y 16.7% respectivamente (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). En esta localidad el porcentaje de infecciones foliares individuales o mixtas para uno, dos, tres, cuatro o cinco AV result&oacute; de 3.3, 6.6, 43.3, 30.0 y 10% respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se hace evidente una tendencia respecto al n&uacute;mero de AV presentes en las hojas aunque alcanza su mayor promedio en la octava hoja (una de las m&aacute;s j&oacute;venes) donde se registra un promedio de 4.5 AV por hoja (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). En todos los pseudotallos se registraron infecciones mezcladas de tres o m&aacute;s AV; en el 100% de estos pseudotallos se identific&oacute; al OYDV, TEV y LYSV mientras que GarCLV y SLV se identificaron s&oacute;lo 75 y 25% de los pseudotallos analizados respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">c) P&aacute;nuco, Zacatecas (localidad: San Antonio del Cipr&eacute;s) octubre de 2010</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se colectaron y analizaron cinco plantas de cebolla de la variedad Carta Blanca, en las cuales el n&uacute;mero de hojas vari&oacute; de seis a nueve por lo que se analizaron por DAS&#45; ELISA un total de 39 hojas. Se identific&oacute; al OYDV, LYSV, GarCLV, SLV y TSWV en el 69.2, 100.0, 84.6, 17.9 y 74.3% de las hojas analizadas respectivamente (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El porcentaje de infecciones foliares individuales o mixtas para uno, dos, tres, cuatro o cinco AV fue de 15.4, 7.6, 10.2, 48.7 y 17.9% respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero de AV identificados por hoja vari&oacute; desde uno hasta cinco, sin embargo, el promedio de AV presentes por hoja fue menor en la hoja m&aacute;s antigua as&iacute; como en la m&aacute;s joven con 1.4 y 1.5 AV por hoja respectivamente pero es necesario considerar que el promedio de AV en la hoja m&aacute;s joven es producto de s&oacute;lo dos datos. Por el contrario la hoja con un mayor promedio de agentes virales result&oacute; la cuarta con 3.6AV (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Se registraron infecciones mezcladas de dos a cuatro AV en los cinco pseudotallos analizados, sin embargo, solamente OYDV y LYSV se encontraban presentes en todos los pseudotallos analizados; GarCLV y TSWV se encontraron en el 40 y 20% de estos &oacute;rganos respectivamente, mientras que SLV no se detect&oacute; en ninguno de los pseudotallos de esta muestra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los virus mencionados, con excepci&oacute;n del TSWV que se analiz&oacute; s&oacute;lo en el &uacute;ltimo muestreo y del TEV que no se analiz&oacute; en ese mismo muestreo, se encontraron presentes en todas las fechas o lugares de muestreo, en uno o m&aacute;s de los &oacute;rganos de las plantas. Sin embargo, su incidencia result&oacute; variable como en el caso de GarCLV cuyos valores van desde 15.6 hasta 84.6% o se conservan en niveles medios a altos como en el caso de OYDV y LYSV cuyos valores fluct&uacute;an entre 60 y 100% y de 73.3 a 100% respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ocurrencia de SLV es menor; sus valores de incidencia fluct&uacute;an entre 16.7 y 31.2% (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). La fluctuaci&oacute;n en los valores de incidencia viral para cada fecha/lugar de muestreo podr&iacute;an reflejar las diferencias en ambientes de desarrollo del cultivo, desde la producci&oacute;n de pl&aacute;ntula hasta el establecimiento y manejo de la parcela comercial, considerando tambi&eacute;n las posibles diferencias en los genotipos de las plantas de cebolla muestreadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia de TSWV en una localidad/ fecha de muestreo result&oacute; 74.3%, la cual parece elevada en comparaci&oacute;n con la registrada para otros virus como SLV cuya incidencia m&aacute;xima fue 31.2% (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>); esta reducida incidencia de SLV concuerda con la encontrada en otros estudios realizados en plantas de ajo (Vel&aacute;squez&#45;Valle <i>et al.,</i> 2010). Es importante destacar que este puede ser el primer reporte de TSWV en plantas de cebolla asintom&aacute;ticas en Zacatecas, M&eacute;xico; este virus ya hab&iacute;a sido reportado afectando plantas de cebolla en el estado norteamericano de Georgia (Mullis <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En otras regiones productoras de ajo, incluyendo los estados de Guanajuato y Zacatecas, M&eacute;xico, las infecciones m&uacute;ltiples de plantas de ajo por la mayor&iacute;a de los virus aqu&iacute; mencionados (principalmente <i>Potyvirus</i> y <i>Carlavirus)</i> son frecuentes (Fajardo <i>et al.</i>, 2001; P&eacute;rez&#45;Moreno <i>et al.</i>, 2007; Vel&aacute;squez&#45;Valle <i>et al.,</i> 2010) en el presente trabajo solamente en el muestreo realizado en el municipio de Villa de Cos (localidad: Pivote) en mayo se encontraron hojas donde no se identific&oacute; ninguno de los virus analizados (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>), lo cual no significa necesariamente que no estuvieran presentes sino que posiblemente los valores de absorbancia registrados no superaron el umbral de detecci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque los porcentajes de hojas infectadas con diferente n&uacute;mero de AV cambian entre cada localidad, en la mayor&iacute;a de las hojas analizadas en este trabajo se identificaron infecciones m&uacute;ltiples en las cuales se encontraban involucrados entre dos y cuatro AV. El porcentaje de hojas infectadas con solamente un AV fue 15.6 y 21.9% en las localidades de San Antonio del Cipr&eacute;s y Huizache, respectivamente que parecen ser superiores al 4.2% registrado en la localidad Pivote (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se detectaron uno o m&aacute;s AV en 99 de las 101 hojas analizadas; sin embargo, las hojas con tres, cuatro y dos AV resultaron las m&aacute;s frecuentes (32.3, 30.3 y 18.2% de las hojas analizadas respectivamente); por el contrario, las hojas con uno y cinco AV resultaron las menos frecuentes (14.1 y 5.0% respectivamente) (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c7.jpg" target="_blank">Cuadro 7</a>). Estos resultados concuerdan parcialmente con los obtenidos en ajo en Zacatecas (Vel&aacute;squez&#45;Valle <i>et al.,</i> 2010) quienes reportan muestras con dos (45.0%), tres (33.0%), cuatro (20.0%) y cinco (1.6%) de algunos de los AV que se reportan en este trabajo. La distribuci&oacute;n de estos pat&oacute;genos en las hojas de las plantas de acuerdo con el n&uacute;mero de AV involucrados o con la edad de la hoja no presenta una tendencia (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c7.jpg" target="_blank">Cuadro 7</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es posible que la concentraci&oacute;n de AV se vea afectada por una reducida o limitada actividad fotosint&eacute;tica en las hojas j&oacute;venes o adultas pero se requiere analizar un mayor n&uacute;mero de hojas para descartar o apoyar el efecto de la edad de la hoja sobre el n&uacute;mero de AV presentes.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De manera general se puede decir que el n&uacute;mero de hojas presente en una planta de cebolla indica su edad; en el trabajo actual, las plantas con m&aacute;s de seis o m&aacute;s hojas presentaban de cuatro a cinco AV, por el contrario, solamente se detectaron dos AV cuando la planta presentaba solamente cinco hojas (<a href="/img/revistas/remexca/v3n7/a11c8.jpg" target="_blank">Cuadro 8</a>); esto puede ser explicado por lo menos parcialmente, ya que una planta con m&aacute;s hojas tiene un mayor tiempo y superficie de exposici&oacute;n a vectores que una planta con menos hojas tiempo de exposici&oacute;n a vectores.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, la incidencia generalizada de uno o m&aacute;s AV en la mayor&iacute;a de las hojas analizadas en el presente estudio contrasta con los resultados obtenidos por Ram&iacute;rez&#45;Malag&oacute;n <i>et al.</i> (2006) quienes se&ntilde;alan que la distribuci&oacute;n de potyvirus es irregular en hojas provenientes de plantas infectadas de ajo aunque el OYDV y LYSV fueron consistentemente detectados en todas las hojas de algunas plantas, no obstante, es fundamental enfatizar que en este trabajo se utilizaron plantas de cebolla, a diferencia del estudio de Ram&iacute;rez&#45;Malag&oacute;n <i>et al.</i> (2006) donde se emplearon plantas de ajo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados anteriores pueden contribuir al avance del conocimiento de las interacciones entre algunos virus y plantas de cebolla pero se requiere de un mayor esfuerzo y apoyo para incrementar tanto el n&uacute;mero de plantas analizadas como el n&uacute;mero de agentes virales a identificar e incluir otros h&iacute;bridos o variedades de cebolla.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se identificaron los virus del enanismo amarillo de la cebolla <i>(Onionyellow dwarfvirus:</i> OYDV), de la franja amarilla del puerro <i>(Leekyellow stripe virus:</i> LYSV), latente del chalote <i>(Shallot latent virus:</i> SLV), latente com&uacute;n del ajo <i>(Garlic common latent virus:</i> GarCLV), de la marchitez manchada del jitomate <i>(Tomato spottes wilt virus:</i> TSWV) y jaspeado del tabaco <i>(Tobacco etch virus:</i> TEV) en plantas de cebolla asintom&aacute;ticas muestreadas en los municipios de Villa de Cos y Panuco en el estado de Zacatecas, M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se registr&oacute; la presencia de los virus mencionados en las hojas, pseudotallo e inflorescencia de plantas de cebolla colectadas en diferentes &eacute;pocas del a&ntilde;o en dos regiones del mencionado estado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El fen&oacute;meno de infecciones mezcladas (m&aacute;s de un virus) result&oacute; frecuente en hojas, pseudotallo e inflorescencia de las plantas de cebolla muestreadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se encontr&oacute; una tendencia que defina la distribuci&oacute;n viral dentro de una planta de cebolla.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Agrios, G. N. 1970. Plant pathology. Academic Press, INC. London, Great Britain. 629 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771240&pid=S2007-0934201200070001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barker, H. and Harrison, B. D. 2008. Restricted distribution of potato leafroll virus antigen in resistant potato genotypes and its effect on transmission ofthe virus by aphids. Ann. Appl. Biol. 109:595&#45;604.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771242&pid=S2007-0934201200070001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carrington, J. C.; Kasschau, K. D.; Mahajan, S. K. and Schaad, M. C. 1996. Cell&#45;to&#45;cell and longdistance transport of viruses in plants. The Plant Cell 8:1669&#45;1681.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771244&pid=S2007-0934201200070001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dufour, O.; Palloix, A.; Selassie, K. G.; Pochard, E. and Marchoux, G. 1989. The distribution of cucumber mosaic virus in resistant and susceptible plants of pepper. Canadian J. Botan. 67:655&#45;660.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771246&pid=S2007-0934201200070001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fajardo, T. V. M.; Nishijima, M.; Buso, J. A.; Torres, A. C.; &Aacute;vila, A. C. and Resende, R. O. 2001. Garlic viral complex: identification of <i>potyviruses</i> and <i>carlavirus</i> in central Brazil. Fitopatol. Brasileira 26:619&#45;626.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771248&pid=S2007-0934201200070001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matthews, R. E. F. 1992. Fundamentals of plant virology. Academic Press, INC. London, Great Britain. 403 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771250&pid=S2007-0934201200070001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mullis, S. W.; Langston, D. B. J.; Gitaitis, R. D.; Sherwood, J. L.; Casinos, A. C.; Riley, D. G.; Sparks, A. N.; Torrance, R. L. and Cook, M. J. 2004. First report of Vidalia onion <i>(Allium cepa)</i> naturally infected with tomato spotted wilt virus and Iris yellow spot virus (family Bunyaviridae, Genus Tospovirus) in Georgia. Plant Dis. 88:1285.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771252&pid=S2007-0934201200070001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Moreno, L.; C&oacute;rdova&#45;Rosales, Z. V.; Rico&#45;Jaramillo, E.; Ram&iacute;rez&#45;Malag&oacute;n, R.; Barboza&#45;Corona, E.; Zu&ntilde;iga&#45;Zu&ntilde;iga, J.; Ruiz&#45;Castro, S. y Silva&#45;Rosales, L. 2007. Identificaci&oacute;n de v&iacute;rus fitopat&oacute;genos en ajo <i>(Allium sativum</i> L.), en el estado de Guanajuato, M&eacute;xico. Rev. Mex. Fitopatol. 25:11&#45;17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771254&pid=S2007-0934201200070001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ram&iacute;rez&#45;Malag&oacute;n, R.; P&eacute;rez&#45;Moreno, L.; Borodanenko, A.; Salinas&#45;Gonz&aacute;lez, G. J. and Ochoa&#45;Alejo, N. 2006. Differential organ infection studies, potyvirus elimination and field performance of virus&#45;free garlic plants produced by tissue culture. Plant Cell. Tissue Organ Culture 86:103&#45;110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771256&pid=S2007-0934201200070001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scholthof, H. B. 2005. Plant virus transport: motions of functional equivalence. Trends Plant Sci. 10:376&#45;382.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771258&pid=S2007-0934201200070001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stange, C. 2006. Interacci&oacute;n planta&#45; virus durante el proceso infectivo. Ciencia e Investigaci&oacute;n Agraria 33:3&#45;21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771260&pid=S2007-0934201200070001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vel&aacute;squez&#45;Valle, R.; Chew&#45;Madinaveitia, I. Y.; Amador&#45;Ram&iacute;rez, M. D. y Reveles&#45;Hern&aacute;ndez, M. 2010. Presencia de virus en el cultivo de ajo <i>(Allium sativum</i> L.) en Zacatecas, M&eacute;xico. Rev. Mex. Fitopatol. 28:135&#45;143.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7771262&pid=S2007-0934201200070001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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