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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Incidencia y sintomatología de cinco virus en parcelas comerciales de chile seco en Aguascalientes, San Luis Potosí y Zacatecas, México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[World-wide the chili pepper crop is affected by more than 60 viral diseases, although very little is known about them in the area of dry pepper plantation in northern-central Mexico. Consequently, the aims of this work were to identify the presence of the virus and the associated symptoms in commercial dry pepper fields of the states of Zacatecas, San Luis Potosí, and Aguascalientes, Mexico. Mirasol and ancho pepper plants were sampled and the presence of symptoms such as dwarfing, chlorosis, leaf deformation, defoliation, vascular necrosis and joined branches, were recorded. Samples were analyzed using DAS-ELISA with the antisera of the tobacco mosaic virus (Tobacco mosaic virus: TMV), cucumber mosaic virus (Cucumber mosaic virus: CMV), potato virus Y (Potato virus Y: PVY), pepper mottle virus (Pepper mottle virus: PepMoV), and tobacco etch virus (Tobacco etch virus: TEV). These viruses were identified in pepper plants collected in dry pepper fields located in the three states mentioned earlier.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas de investigaci&oacute;n</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Incidencia y sintomatolog&iacute;a de cinco virus en parcelas comerciales de chile seco en Aguascalientes, San Luis Potos&iacute; y Zacatecas, M&eacute;xico*</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Incidence and symptomatology of five viruses in commercial dry chili pepper fields in Aguascalientes, San Luis Potos&iacute;, and Zacatecas, Mexico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rodolfo Vel&aacute;squez&#45;Valle<sup>1&sect;</sup>, Luis Roberto Reveles&#45;Torres<sup>2</sup> y Jaime Mena&#45;Covarrubias<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1 </i></sup><i>Programa de Fitopatolog&iacute;a, Campo Experimental Zacatecas, INIFAP. Carretera Zacatecas&#45;Fresnillo km 24.5. A. P. 98. C. P. 98500 Calera de V. R., Zacatecas, M&eacute;xico.</i><sup>&sect;</sup> Autor para correspondencia: <a href="mailto:velasquez.rodolfo@inifap.gob.mx">velasquez.rodolfo@inifap.gob.mx</a>.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Programa de Biolog&iacute;a Molecular, Campo Experimental Zacatecas, INIFAP. Carretera Zacatecas&#45;Fresnillo km 24.5. A. P. 98. C. P. 98500 Calera de V. R., Zacatecas, M&eacute;xico. </i>(<a href="mailto:reveles.roberto@inifap.gob.mx">reveles.roberto@inifap.gob.mx</a>)</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3</i></sup><i>Programa de Entomolog&iacute;a. Campo Experimental Zacatecas, INIFAP. Carretera Zacatecas&#45;Fresnillo km 24.5. A. P. 98. C. P. 98500 Calera de V. R., Zacatecas, M&eacute;xico. </i>(<a href="mailto:mena.jaime@inifap.gob.mx">mena.jaime@inifap.gob.mx</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: agosto de 2011    <br> 	Aceptado: enero de 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A nivel mundial el cultivo de chile es afectado por m&aacute;s de 60 enfermedades virales; sin embargo, poco se conoce acerca de ellas en el &aacute;rea productora de chile seco del norte centro de M&eacute;xico por lo que el objetivo del presente trabajo consisti&oacute; en detectar la presencia y sintomatolog&iacute;a de cinco virus en parcelas comerciales de chile seco en los estados mencionados. Plantas de chile de los tipos mirasol y ancho fueron muestreadas y se anot&oacute; la presencia de s&iacute;ntomas como enanismo, clorosis, deformaci&oacute;n de hojas, defoliaci&oacute;n, necrosis vascular y ramas unidas. Las muestras fueron analizadas mediante la t&eacute;cnica DAS&#45;ELISA empleando los antisueros para el virus del mosaico del tabaco <i>(Tobacco mosaic virus:</i> TMV), mosaico del pepino <i>(Cucumber mosaic virus:</i> CMV), Y de la papa <i>(Potato virus Y:</i> PVY), moteado del chile <i>(Pepper mottle virus:</i> PepMoV) y jaspeado del tabaco <i>(Tobacco etch virus:</i> TEV). Esos virus fueron identificados en plantas de chile colectadas en las parcelas comerciales de chile seco de los tres estados antes mencionados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> TEV, TMV, CMV, PepMoV, PVY, presencia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">World&#45;wide the chili pepper crop is affected by more than 60 viral diseases, although very little is known about them in the area of dry pepper plantation in northern&#45;central Mexico. Consequently, the aims of this work were to identify the presence of the virus and the associated symptoms in commercial dry pepper fields of the states of Zacatecas, San Luis Potos&iacute;, and Aguascalientes, Mexico. Mirasol and ancho pepper plants were sampled and the presence of symptoms such as dwarfing, chlorosis, leaf deformation, defoliation, vascular necrosis and joined branches, were recorded. Samples were analyzed using DAS&#45;ELISA with the antisera of the tobacco mosaic virus <i>(Tobacco mosaic virus:</i> TMV), cucumber mosaic virus <i>(Cucumber mosaic virus:</i> CMV), potato virus Y <i>(Potato virus Y:</i> PVY), pepper mottle virus <i>(Pepper mottle virus:</i> PepMoV), and tobacco etch virus <i>(Tobacco etch virus:</i> TEV). These viruses were identified in pepper plants collected in dry pepper fields located in the three states mentioned earlier.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> TEV, TMV, CMV, PepMoV, PVY, presence.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;rea productora de chile seco <i>(Capsicum annuum</i> L.) en el norte centro de M&eacute;xico comprende los estados de Zacatecas, San Luis Potos&iacute;, Aguascalientes y Durango; entre ellos sobresale Zacatecas con alrededor de 39 000 hect&aacute;reas cultivadas con esta hortaliza (Bravo <i>et al.</i>, 2010). La producci&oacute;n de chile seco en &eacute;sta regi&oacute;n se inicia desde febrero con el establecimiento de alm&aacute;cigos tradicionales y contin&uacute;a en las parcelas comerciales hasta finales de septiembre; este prolongado periodo de desarrollo permite que las plantas sean afectadas por un amplio n&uacute;mero de pat&oacute;genos entre los que destacan los virus (Vel&aacute;squez y Amador, 2009). A nivel mundial el chile es afectado por m&aacute;s de 60 virus, tanto de ARN como de ADN, que pueden causar diferentes sintomatolog&iacute;as dependiendo de la variabilidad existente en el pat&oacute;geno y en el hospedero y su interacci&oacute;n con el medio ambiente (Murphy y Warren, 2003); sin embargo, entre los virus de ARN destacan por su presencia global, el <i>Potato virus Y</i> (PVY: virus Y de la papa), <i>Cucumber mosaic virus</i> (CMV: virus del mosaico del pepino), <i>Tobacco mosaic virus</i> (TMV: virus del mosaico del tabaco), <i>Tobacco etch virus</i> (TEV: virus del jaspeado del <i>tabaco) y el Pepper mottle virus</i> (PepMoV: virus del moteado del chile) (Igwegbe y Ogungbade, 1985; Ku<sup>h</sup>n et al., 1989; Marco, 1993; Andrianifahanana et al., 1997). Estos virus han sido mencionados afectando al cultivo de chile en diversos estados de M&eacute;xico como Guanajuato, Michoac&aacute;n, Jalisco y Nayarit, entre otros donde las plantas infectadas exhib&iacute;an s&iacute;ntomas como mosaico foliar, distorsi&oacute;n de nervaduras, enanismo y reducci&oacute;n en rendimiento y calidad (Delgadillo <i>et al.,</i> 1993; P&eacute;rez <i>et al.,</i> 2009); sin embargo, la informaci&oacute;n acerca de la presencia de pat&oacute;genos virales en el cultivo de chile seco en los estados de Aguascalientes, San Luis Potos&iacute; y Zacatecas es escasa y fragmentada (Vel&aacute;squez&#45;Valle <i>et al. ,</i> 2008; Vel&aacute;squez&#45;Valle <i>et al.,</i> 2011), por lo que el objetivo del presente trabajo consisti&oacute; en detectar la presencia y sintomatolog&iacute;a de cinco virus en parcelas comerciales de chile seco en los estados muestreados</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio se llev&oacute; a cabo durante el ciclo de cultivo primavera verano 2010 en tres parcelas comerciales de chile seco ubicadas en los estados de Aguascalientes (chile tipo Ancho), San Luis Potos&iacute; (chile tipo Mirasol) y Zacatecas (chile tipo Mirasol) <a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para efectuar el muestreo de detecci&oacute;n de virus y s&iacute;ntomas se eligieron al azar 20 plantas (dos plantas en cada cama) de un total de 100 plantas previamente marcadas y distribuidas en 10 camas de siembra; se dej&oacute; una cama entre cada una de las utilizadas y la distancia entre las plantas seleccionadas para la detecci&oacute;n de virus dentro de cada cama fue variable pero no menor a 10 m entre ellas; por lo tanto, antes del primer muestreo se desconoc&iacute;a si una planta dada mostraba s&iacute;ntomas o era asintom&aacute;tica. En cada fecha de muestreo se registraron los s&iacute;ntomas presentes en esas plantas marcadas. Los muestreos se realizaron desde la etapa vegetativa (trasplante) hasta fructificaci&oacute;n (incluyendo la etapa de cosecha).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada planta muestreada se obtuvo una porci&oacute;n de follaje joven que se etiquet&oacute; debidamente y se coloc&oacute; en un contenedor a baja temperatura. Las muestras se almacenaron a &#45;20 &deg;C hasta su utilizaci&oacute;n, lo cual ocurr&iacute;a en un periodo de tres a cinco d&iacute;as despu&eacute;s del muestreo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identificaci&oacute;n de los virus presentes en el follaje colectado se realiz&oacute; por medio de la t&eacute;cnica serol&oacute;gica de inmunoabsorci&oacute;n ligada a enzimas en s&aacute;ndwich de doble anticuerpo (DAS &#45; ELISA) (Clark y Adams, 1977). Las celdas de las placas (Agdia Inc) se tapizaron en forma separada a partir de antisueros espec&iacute;ficos para las prote&iacute;nas de cubierta del <i>Tobacco mosaic virus</i> (TMV: virus del mosaico del tabaco) (Policlonal), <i>Cucumber mosaic virus</i> (CMV: virus del mosaico del pepino) (mezcla de monoclonales), <i>Potato Virus Y</i> (PVY: virus Y de la papa) (Monoclonal), <i>Pepper mottle virus</i> (PepMoV: virus del moteado del chile) y <i>Tobacco etch virus</i> (TEV: virus del jaspeado del tabaco) (Policlonal). A cada celda se le agregaron 100 <i>\xL</i> de la savia obtenida del tejido vegetal; en el proceso se le agreg&oacute; un volumen igual de conjugado IgG&#45;fosfatasa alcalina. Finalmente, se agregaron 100 (iLde sustrato PNP diluido en buffer de sustrato a cada celda de la placa, la cual se incub&oacute; en c&aacute;mara h&uacute;meda a temperatura ambiente y en oscuridad. Las lecturas de absorbancia (concentraci&oacute;n de un virus dado) se realizaron en un espectrofot&oacute;metro Plate Reader Mca. DAS Mod. A1 a una longitud de onda de 605 nm. Como criterio para determinar el l&iacute;mite de detecci&oacute;n se utiliz&oacute; el valor duplicado de la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (S) del testigo negativo; las muestras con valores superiores a ese umbral se consideraron positivas (P&eacute;rez&#45;Moreno <i>et al.</i>, 2008). Con los datos anteriores se calcul&oacute; la frecuencia de detecci&oacute;n de cada virus para cada fecha de muestreo y parcela y para obtener los valores promedio por parcela o estado o virus (n&uacute;mero de muestras positivas/n&uacute;mero de muestras totales x 100).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Virus detectados</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la mayor&iacute;a de las muestras de follaje obtenidas en las plantas de chile seco de tres parcelas comerciales en Zacatecas, San Luis Potos&iacute; y Aguascalientes se detectaron los virus del mosaico del tabaco (TMV), mosaico del pepino (CMV), Y de la papa (PVY), moteado del chile (PepMoV) y jaspeado del tabaco (TEV), independientemente del tipo de chile trasplantado o fecha de muestreo. Durante el estudio se colectaron y analizaron 184 muestras de follaje en las cuales el porcentaje de incidencia de TMV, CMV, PVY, PepMoV y TEV fue de 87.5, 51.6, 53.2, 53.2 y 60.8% respectivamente (<a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Sin embargo, la incidencia temporal de esos virus dentro de cada parcela es variable y pudiera reflejar el efecto de las condiciones ambientales o de manejo y presencia/abundancia de vectores por parte de los productores. La frecuencia de detecci&oacute;n promedio de &eacute;stos pat&oacute;genos fue superior en las parcelas de Zacatecas y San Luis Potos&iacute;, con excepci&oacute;n de la incidencia de PVY que result&oacute; m&aacute;s alta en la parcela de Aguascalientes que en la de Zacatecas. Es importante hacer notar que s&oacute;lo el TMV alcanz&oacute; una frecuencia de detecci&oacute;n de 100% en el muestreo del 15 de julio en la parcela de Aguascalientes mientras que este valor se alcanza en varias ocasiones por diferentes virus en las parcelas de San Luis Potos&iacute; y Zacatecas (<a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>); la menor incidencia de &eacute;stos pat&oacute;genos coincide con una fecha de trasplante relativamente temprana en Aguascalientes y m&aacute;s tard&iacute;a en las otras localidades, lo cual, podr&iacute;a haber afectado las poblaciones de vectores o la expresi&oacute;n de s&iacute;ntomas, algunos de las cuales pueden ser influenciadas por la temperatura ambiental (Murphy y Bowen, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de detecci&oacute;n de los virus es fluctuante, a&uacute;n dentro de una parcela; sin embargo, debe tomarse en cuenta que los valores de detecci&oacute;n se expresan sobre el n&uacute;mero de plantas muestreadas en cada fecha de muestreo y que, generalmente ese n&uacute;mero disminuy&oacute; hacia el final del ciclo por efecto de otras enfermedades como la marchitez o pudrici&oacute;n de la ra&iacute;z provocando que el porcentaje de detecci&oacute;n se incrementara como en los casos del CMV, PepMoV y TEV cuyo porcentaje de detecci&oacute;n pas&oacute; de 45, 15 y 10 a 100, 93 y 93% respectivamente entre el 20 de julio y 28 de septiembre en la parcela de chile Mirasol en Zacatecas (<a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). En adici&oacute;n a lo anterior se ha reportado la presencia de variantes de algunos de estos virus como en el caso de CMV (de Blas <i>et al.,</i> 1993), las cuales podr&iacute;an ocurrir en una &aacute;rea productora de chile extensa como la de Aguascalientes, San Luis Potos&iacute; y Zacatecas y no necesariamente podr&iacute;an haber sido detectadas por los antisueros empleados en este trabajo con lo que ocurrir&iacute;a un descenso en el porcentaje de detecci&oacute;n de algunos de los virus detectados en esta investigaci&oacute;n trabajo. Por otro lado, se debe considerar que las muestras de follaje para el an&aacute;lisis serol&oacute;gico se tomaron de las puntas de crecimiento de las plantas; por lo tanto a&uacute;n cuando cada muestreo se obten&iacute;an muestras de la misma planta, el punto de muestreo era diferente por lo que es probable que no todos los virus se transporten r&aacute;pidamente de un sitio de muestreo a otro con lo que tambi&eacute;n se reducir&iacute;an los porcentajes de detecci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La infecci&oacute;n simult&aacute;nea por dos o m&aacute;s virus en plantas de chile es un fen&oacute;meno com&uacute;nmente reportado a nivel mundial; en Venezuela se informa de infecciones simult&aacute;neas de hasta ocho virus (Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> , 2004; Murphy y Bowen, 2006); los resultados obtenidos en el presente trabajo indican que en todas las fechas de muestreo las infecciones individuales son las menos comunes; aunque en algunos casos se encuentran hasta 20% de las muestras; en cambio, la presencia de dos a cuatro virus por muestra es frecuente pero su proporci&oacute;n en cada fecha de muestreo es variable; aunque su rango de variaci&oacute;n, independientemente del n&uacute;mero de virus involucrado, oscila entre 5 y 66% (<a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de que existe poca informaci&oacute;n acerca de las interacciones virales m&aacute;s comunes infectando plantas de chile seco se ha reportado la asociaci&oacute;n entre PepMoV, PVY y TEV (Murphy y Zitter, 2003); Abdalla et al. (1991) mencionan la presencia de hasta siete virus en plantas de chile en infecciones mixtas destacando la incidencia de PepMov y CMV presentes en la mayor&iacute;a de las plantas; en el presente estudio se registraron asociaciones entre la mayor&iacute;a de los virus detectados pero estas var&iacute;an entre localidades y fechas de muestreo. Las asociaciones virales m&aacute;s frecuentes por localidad y fecha de muestreo se mencionan en el <a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>; sin embargo, las asociaciones dominantes rara vez superan 60% de incidencia como en el caso de la parcela de Zacatecas donde una interacci&oacute;n entre cuatro y cinco virus alcanza valores de incidencia de 63.1 y 66.7% respectivamente. Es importante mencionar que en forma frecuente se encontraron plantas que no expresaban s&iacute;ntomas (aparentemente sanas) a pesar de que el an&aacute;lisis de las muestras colectadas en estas plantas indicaba la presencia de uno o m&aacute;s de los virus incluidos en el trabajo; esta caracter&iacute;stica asintom&aacute;tica ocasionalmente se manten&iacute;a hasta por periodos cercanos o mayores a un mes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de plantas de chile asintom&aacute;ticas podr&iacute;a tratar de explicarse desde el punto de vista que como centro de origen de la especie <i>C. annuum</i> (Bosland, 2003), la diversidad gen&eacute;tica del chile en M&eacute;xico es considerable y pudiera estar influyendo para nulificar, atenuar o por lo menos retrasar la manifestaci&oacute;n de s&iacute;ntomas provocados por infecciones virales. Por otro lado, algunos s&iacute;ntomas reportados como de origen viral, como el ampollado de las hojas, parece ser m&aacute;s frecuente en las primeras etapas de desarrollo y desaparecer conforme avanza el ciclo de cultivo provocando que la planta se clasifique como aparentemente sana o asintom&aacute;tica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>S&iacute;ntomas asociados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios realizados en M&eacute;xico (Delgado, 1974) en la d&eacute;cada de 1970 indicaban la presencia de s&iacute;ntomas como clorosis, mosaico, marchitez, aborto de botones y enchinamiento en plantas de chile infectadas con TEV, CMV y TMV. La sintomatolog&iacute;a de posible origen viral registrada en las parcelas de chile seco de este trabajo concuerda parcialmente con la mencionada por Delgado (1974) e incluye enanismo, clorosis general o parcial, escaso desarrollo, mosaico, deformaciones de las hojas (ampollamiento, bordes ondulados o rizados, hojas lanceoladas y erectas, follaje de tama&ntilde;o reducido en las puntas de crecimiento y venas en zigzag), hojas de consistencia coriacea, ramas unidas aunque el n&uacute;mero de virus identificados por Delgado (1974) fue de tres (TEV, CMV y TMV) en tanto que en el presente trabajo se identificaron cinco virus incluyendo los previamente mencionados m&aacute;s el PepMov y PVY.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a su alta incidencia alcanzada en la parcela de Aguascalientes, es importante mencionar que en las plantas marcadas se manifest&oacute; una sintomatolog&iacute;a que inclu&iacute;a una decoloraci&oacute;n del &aacute;pice de la l&aacute;mina foliar que eventualmente se tornaba de color caf&eacute; y conclu&iacute;a con la muerte de la parte a&eacute;rea de la planta; al poco tiempo se presentan rebrotes que posteriormente manifiestan los mismos s&iacute;ntomas que la planta original; al realizar un corte longitudinal de la ra&iacute;z principal se observaba una decoloraci&oacute;n vascular; para distinguir esta sintomatolog&iacute;a se le asign&oacute; el nombre de "necrosis vascular". Es posible que en la expresi&oacute;n de esta sintomatolog&iacute;a se encuentren involucrados otros pat&oacute;genos subterr&aacute;neos, especialmente de origen fungoso.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la mayor&iacute;a de las plantas muestreadas se presentaban hasta dos s&iacute;ntomas a la vez, lo cual es independiente del tipo de chile, localidad o fecha de muestreo (<a href="/img/revistas/remexca/v3n2/a14c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tipo y severidad de los s&iacute;ntomas causados por virus dependen de varios factores como el o los virus que los causan, la raza de los mismos, condiciones ambientales y edad de la planta al momento de la infecci&oacute;n; m&aacute;s a&uacute;n, las infecciones mixtas pueden provocar s&iacute;ntomas diferentes a los expresados en infecciones individuales (Murphy y Bowen, 2003); como consecuencia de lo anterior la descripci&oacute;n de s&iacute;ntomas es frecuentemente vaga o restringida a ciertas condiciones de ambiente, metodolog&iacute;a o especie/tipo de chile que dificulta su comparaci&oacute;n. En este trabajo cada uno de los s&iacute;ntomas registrados se manifestaba en plantas cuyas muestras resultaron positivas para la mayor&iacute;a de los virus incluidos en las pruebas de DAS&#45;ELISA, por lo que el empleo de la sintomatolog&iacute;a como herramienta de diagn&oacute;stico viral en campo puede ser inconsistente. Por otro lado, se requiere investigaci&oacute;n adicional para separar e inocular los virus presentes a fin de clarificar los s&iacute;ntomas asociados con cada virus o sus posibles interacciones en l&iacute;neas de chile con un mayor grado de uniformidad gen&eacute;tica que minimice esta fuente de variaci&oacute;n.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es importante enfatizar que se detect&oacute; la presencia de TMV, CMV, PVY, PepMoV y TEV) se identificaron tambi&eacute;n en plantas aparentemente sanas y que otros virus (tanto de ARN como Curtovirus) pueden estar presentes por lo que la expresi&oacute;n de s&iacute;ntomas virales en plantas de chile seco puede ser un proceso de mayor complejidad que dificulte su comprensi&oacute;n inmediata.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Zacatecas y Aguascalientes se ha reportado la presencia en plantas de chile del <i>Beet mild curly top virus</i> (BMCTV, virus de la punta rizada del betabel) (Vel&aacute;squez&#45;Valle <i>et al.,</i> 2008), un Curtovirus transmitido por la chicharrita <i>Circulifer tenellus</i> Baker; la infecci&oacute;n por este virus tambi&eacute;n provoca amarillamiento y enanismo, lo cual complica la expresi&oacute;n y reconocimiento de s&iacute;ntomas en las plantas de chile.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se identific&oacute; a los cinco virus sometidos a detecci&oacute;n en plantas sintom&aacute;ticas y asintom&aacute;ticas colectadas en parcelas comerciales de chile seco de los tipos Ancho y Mirasol en los estados de Zacatecas, San Luis Potos&iacute; y Aguascalientes, M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sintomatolog&iacute;a asociada con las plantas positivas a uno o m&aacute;s de los virus mencionados incluy&oacute; enanismo, clorosis, deformaci&oacute;n de hojas (ampollado, bordes ondulados o rizados, hojas lanceoladas, de tama&ntilde;o reducido), defoliaci&oacute;n, necrosis foliar, ramas unidas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los virus mencionados tambi&eacute;n se identificaron en plantas de chile colectadas en esas parcelas y que no mostraban s&iacute;ntomas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abdalla, O. A.; Desjardins, P. R. and Dodds, J. A. 1991. Identification, disease incidence, and distribution of viruses infecting peppers in California. Plant Dis. 75:1019&#45;1023.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758983&pid=S2007-0934201200020001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Andrianifahanana, M.; Lovins, K.; Dute, R.; Sikora, E. and Murphy, J. F. 1997. Pathway for phloem&#45;dependent movement of pepper mottle potyvirus in the stem <i>of Capsicum annuum.</i> Phytopathology 87:892&#45;898.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758985&pid=S2007-0934201200020001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De Blas, C.; Carazo, G.; Castro, S. y Romero, J. 1993. Estudios epidemiol&oacute;gicos sobre el virus del mosaico del pepino en diferentes cultivos y provincias espa&ntilde;olas: identificaci&oacute;n serol&oacute;gica de los subgrupos DTL y ToRS. Bolet&iacute;n Sanidad Vegetal Plagas 19:345&#45;353.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758987&pid=S2007-0934201200020001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bosland, P. W. 2003. Introduction. <i>In:</i> compendium of pepper diseases. (Ed). Pernezny, K.; Roberts, P. D.; Murphy, J. F. and Goldberg, N. P. APS Press. St. Paul, MN, USA. 63 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758989&pid=S2007-0934201200020001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bravo, L. A. G.; Lara, H. A.; Lozano, G. J. y Espa&ntilde;a, L. M. P. 2010. Importancia del cultivo del chile. <i>In:</i> Memorias Primer Foro para Productores de Chile. Zacatecas, Zacatecas, M&eacute;xico. 186 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758991&pid=S2007-0934201200020001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clark, M. F. and Adams, A. N. 1977. Characteristics of the microplate method of enzyme&#45;linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. J. Gen. Virol. 34:475&#45;483.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758993&pid=S2007-0934201200020001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Delgadillo, S. F.; Ya&ntilde;ez, M. M. J.; Silva, V. S.; Ram&iacute;rez, A. A.; Armenta, I. C.; Garc&iacute;a, S. J. A.; Vel&aacute;squez, M. J.; Vega, A. P. y Macias, J. C. 1993. Detecci&oacute;n de virus en chile <i>(Capsicum annuum</i> L.) y jitomate <i>(Lycopersicon lycopersicon</i> (L.) Karst) en M&eacute;xico. Memorias. XX Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. 134 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758995&pid=S2007-0934201200020001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Delgado, S. S. 1974. Los virus que atacan el cultivo del chile en M&eacute;xico; sus implicaciones, identificaci&oacute;n, transmisi&oacute;n y medidas de combate. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 3:317&#45;325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758997&pid=S2007-0934201200020001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Igwegbe, E. C. K. and Ogungbade, O. K. 1985. Evaluation of pepper cultivars under greenhouse conditions for resistance to a defoliation strain of tobacco mosaic virus. Plant Dis. 69:899&#45;900.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758999&pid=S2007-0934201200020001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuhn, C. W.; Nutter, F. W. Jr. and Padgett, G. B. 1989. Multiple levels of resistance to tobacco etch virus in pepper. Phytopathology 79:814&#45;818.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759001&pid=S2007-0934201200020001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marco, S. 1993. Incidence of nonpersistently transmitted viruses in pepper sprayed with whitewash, oil, and insecticide, alone or combined. Plant Dis. 1119&#45;1122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759003&pid=S2007-0934201200020001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy, J. F. and Warren, C. E. 2003. Diseases caused by virus. <i>In:</i> compendium of pepper diseases. (Ed) Pernezny, K.; Roberts, P. D.; Murphy, J. F. and Goldberg, N. P. APS Press. St. Paul, MN, USA. 63 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759005&pid=S2007-0934201200020001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy, J. F. and Zitter, T. A. 2003. Pepper mottle virus. <i>In:</i> Compendium of pepper diseases. (Ed) Pernezny, K.; Roberts, P. D.; Murphy, J. F. and Goldberg, N. P. APS Press. St. Paul, MN, USA. 63 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759007&pid=S2007-0934201200020001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy, J. F. and Bowen, K. L. 2006. Synergistic disease in pepper caused by the mixed infection of <i>Cucumber mosaic virus</i> and <i>Pepper mottle virus.</i> Phytopathology 96:240&#45;247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759009&pid=S2007-0934201200020001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Moreno, L.; Santiago&#45;G&oacute;mez, D.; Rico&#45;Jaramillo, E.; Ram&iacute;rez&#45;Malag&oacute;n, R. y Mendoza&#45;Celed&oacute;n, B. 2008. Efecto de virus fitopat&oacute;genos sobre caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas y calidad del ajo <i>(Allium sativum</i> L.), en el estado de Guanajuato, M&eacute;xico. Rev. Mex. Fitopatol. 26:40&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759011&pid=S2007-0934201200020001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez, M. L.; Navarro, L. M. J. y Ram&iacute;rez, M. R. 2009. Identificaci&oacute;n de virus fitopat&oacute;genos en chile, en los estados de Guanajuato y Michoac&aacute;n, M&eacute;xico. Memorias. Sexta Convenci&oacute;n Mundial del Chile. 179 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759013&pid=S2007-0934201200020001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez, Y.; Rangel, E.; Centeno, F.; Mendoza, O. y Parra, A. 2004. Detecci&oacute;n de enfermedades virales afectando al piment&oacute;n en los municipios Iribarren, Jim&eacute;nez y Torres del estado Lara, Venezuela, utilizando la t&eacute;cnica ELISA. Rev. Fac. Agron. 21:105&#45;115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759015&pid=S2007-0934201200020001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vel&aacute;squez&#45;Valle, R.; Medina&#45;Aguilar, M. M. and Creamer, R. 2008. First report of infecting in Mexico. Plant Dis. 650.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759017&pid=S2007-0934201200020001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vel&aacute;squez, V. R. y Amador, R. M. D. 2009. Enfermedades bi&oacute;ticas del ajo y chile en Aguascalientes y Zacatecas. INIFAP&#45;Campo Experimental Zacatecas. Aguascalientes, Aguascalientes, M&eacute;xico. (Libro t&eacute;cnico N&uacute;m. 9). 181 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759019&pid=S2007-0934201200020001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vel&aacute;squez&#45;Valle, R.; Reveles&#45;Torres, L. R. y Mena&#45;Covarrubias, J. 2011. Incidencia de virus en parcelas comerciales de chile seco en el norte centro de M&eacute;xico. Memorias. Octava Convenci&oacute;n Mundial del Chile. 75&#45;81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7759021&pid=S2007-0934201200020001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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