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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Contribución de fósforo al mejoramiento de calidad en Lilium y la relación con Glomus fasciculatum y Bacillus subtilis]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Lilium sp. is among the most important species in the production of cut-flowers in Mexico, but its cultivation is based on the use of significant amounts of chemical fertilizers, so it is desirable to minimize the impact on the ecosystem without compromising the product quality. This study was conducted to evaluate the main effects and interactions of phosphorus, Glomus fasciculatum and Bacillus subtilis, on the commercial quality of flowers of Lilium oriental hybrid Showwinner under greenhouse conditions. In two consecutive cycles between 2007 and 2008, 12treatments inafactorial arrangement 2*3*2 were studied using analysis of variance, comparing treatment means with the test of least significant difference (LSD, p = 0.05) and main component analysis. G. fasciculatum, 22 µg ml-¹ of phosphorus and B. subtilis were positively correlated with root dry weight, plant height, stem dry weight, petal width, flower diameter, flower dry weight, life of the flower, flowering time and concentration in the stems of zinc (Zn), copper (Cu), potassium (K), nitrogen (N), phosphorus (P) and calcium (Ca). These results show that the rhizosphere microorganisms used, may interact positively to promote growth and development of the plant and improve the quality of Lilium sp. with 22 µg ml-1 of phosphorus.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Contribuci&oacute;n de f&oacute;sforo al mejoramiento de calidad en <i>Lilium</i> y la relaci&oacute;n con <i>Glomus fasciculatum</i> y <i>Bacillus subtilis*</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Phosphorus contribution to improving quality in <i>Lilium</i> and its relationship with <i>Glomus fasciculatum</i> and <i>Bacillus subtilis</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mart&iacute;n Rub&iacute; Arriaga<sup>1&sect;</sup>, Andr&eacute;s Gonz&aacute;lez Huerta<sup>1</sup>, V&iacute;ctor Olalde Portugal<sup>2</sup>, Basilio Gabriel Reyes Reyes<sup>3</sup>, Ana Mar&iacute;a Castillo Gonz&aacute;lez<sup>4</sup>, Delfina de Jes&uacute;s P&eacute;rez L&oacute;pez<sup>1</sup> y Luis Isaac Aguilera G&oacute;mez<sup>5</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Centro de Investigaci&oacute;n y Estudios Avanzados en Fitomejoramiento. UAEMEX. El Cerrillo Piedras Blancas, Toluca, Estado de M&eacute;xico C. P. 50200. Tel. 01 722 2965518. Ext. 148 </i>(<a href="mailto:agonzalezh@uaemex.mx">agonzalezh@uaemex.mx</a>), (<a href="mailto:djperezl@uaemex.mx">djperezl@uaemex.mx</a>). <sup>&sect;</sup>Autor para correspondencia: <a href="mailto:mrubia@uaemex.mx">mrubia@uaemex.mx</a>.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup><i> Departamento de Biotecnolog&iacute;a y Bioqu&iacute;mica. CINVESTAV&#45;IPN. Unidad Irapuato. Libramiento norte, carretera Irapuato&#45;Le&oacute;n, km 9.6. Irapuato, Guanajuato. C. P. 36500. Tel. 01 462 6239647. </i>(<a href="mailto:v_olalde@yahoo.com.mx">v_olalde@yahoo.com.mx</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3 </i></sup><i>Instituto de Ciencias Agropecuarias y Rurales (ICAR), UAEMEX. Carretera Toluca&#45;Atlacomulco, km 14.5. Toluca, Estado de M&eacute;xico. C. P. 50200. Tel. 01 722 2965552. </i>(<a href="mailto:b_gabrielrr@yahoo.com.mx">b_gabrielrr@yahoo.com.mx</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>4 </i></sup><i>Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Carretera M&eacute;xico&#45;Texcoco, km 36.5. C. P. 56230. Tel. 01 595 9521500. Ext. 6211. </i>(<a href="mailto:anasofiacasg@hotmail.com">anasofiacasg@hotmail.com</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>5 </i></sup><i>Facultad de Ciencias. UAEMEX. Tel. 01 722 2965556. Ext. 121. </i>(<a href="mailto:luishalc@mailcity.com">luishalc@mailcity.com</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">*Recibido: marzo de 2011    <br> 	Aceptado: noviembre de 2011</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Lilium</i> sp. se ubica entre las especies de mayor importancia en la producci&oacute;n de flores de corte en M&eacute;xico, pero su cultivo se basa en la utilizaci&oacute;n de cantidades importantes de fertilizantes qu&iacute;micos, por lo que es deseable minimizar el impacto sobre el ecosistema sin disminuir la calidad del producto. Este estudio se realiz&oacute; con el objetivo de evaluar los efectos principales y las interacciones de f&oacute;sforo, <i>Glomus fasciculatum y Bacillus subtilis,</i> sobre la calidad comercial de flores <i>de Lilium</i> h&iacute;brido oriental Showwinner en condiciones de invernadero. En dos ciclos consecutivos entre 2007 y 2008 se estudiaron 12 tratamientos bajo un arreglo factorial 2*3*2 aplicando an&aacute;lisis de varianza, comparaci&oacute;n de medias de tratamientos con la prueba de la diferencia m&iacute;nima significativa (DMS, <i>p=</i> 0.05) y an&aacute;lisis de componentes principales. <i>G. fasciculatum,</i> 22 &micro;gml<sup>&#45;1</sup> de f&oacute;sforo y <i>B. subtilis</i> tuvieron correlaci&oacute;n positiva con peso seco de ra&iacute;z, altura de la planta, peso seco deltallo, ancho de p&eacute;talo, di&aacute;metro de la flor, peso seco de la flor, vida de la flor, per&iacute;odo de floraci&oacute;n y concentraci&oacute;n en los tallos de zinc (Zn), cobre (Cu), potasio (K), nitr&oacute;geno (N), f&oacute;sforo (P) y calcio (Ca). Estos resultados muestran que los microorganismos riz&oacute;sfericos utilizados, pueden interactuar positivamente para promover el crecimiento y el desarrollo de la planta y mejorar la calidad de <i>Lilium</i> sp. con 22 &micro;g ml<sup>&#45;1</sup> de f&oacute;sforo.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Bacillus subtilis, Glomus fasciculatum, Lilium,</i> calidad de flor.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Lilium</i> sp. is among the most important species in the production of cut&#45;flowers in Mexico, but its cultivation is based on the use of significant amounts of chemical fertilizers, so it is desirable to minimize the impact on the ecosystem without compromising the product quality. This study was conducted to evaluate the main effects and interactions of phosphorus, <i>Glomus fasciculatum</i> and <i>Bacillus subtilis,</i> on the commercial quality of flowers of <i>Lilium</i> oriental hybrid Showwinner under greenhouse conditions. In two consecutive cycles between 2007 and 2008, 12treatments inafactorial arrangement 2*3*2 were studied using analysis of variance, comparing treatment means with the test of least significant difference (LSD, p = 0.05) and main component analysis. <i>G. fasciculatum,</i> 22 &micro;g ml&#45;<sup>1</sup> of phosphorus and <i>B. subtilis</i> were positively correlated with root dry weight, plant height, stem dry weight, petal width, flower diameter, flower dry weight, life of the flower, flowering time and concentration in the stems of zinc (Zn), copper (Cu), potassium (K), nitrogen (N), phosphorus (P) and calcium (Ca). These results show that the rhizosphere microorganisms used, may interact positively to promote growth and development of the plant and improve the quality <i>of Lilium</i> sp. with 22 <i>&micro;g</i> ml<sup>&#45;1</sup> of phosphorus.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Bacillus subtilis, Glomus fasciculatum, Lilium,</i> flower quality.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <i>Lilium</i> es apreciado por la belleza de su extensa gama de colores y formas, vida prolongada en florero y por su utilidad en ramos, floreros, composiciones florales y jardines, por lo que se ha incrementado la demanda. La calidad de sus bulbos y las nuevas variedades y colores que el mercado ofrece, aunado a su f&aacute;cil manejo y bajas exigencias en requerimientos ambientales, han permitido su amplio cultivo en pa&iacute;ses como M&eacute;xico, Argentina, Chile y China, entre otros (&Aacute;lvarez&#45;S&aacute;nchez <i>et al.,</i> 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los nutrientes del bulbo y las ra&iacute;ces de <i>Lilium</i> son insuficientes para obtener flor de alta calidad comercial, lo que hace necesario el uso de programas de nutrici&oacute;n intensiva, pero existen pocos estudios sobre nutrici&oacute;n en esta especie y las recomendaciones de fertilizaci&oacute;n, en su mayor&iacute;a qu&iacute;mica, son limitadas y contradictorias (Ortega&#45;Blu <i>et al.,</i> 2006). La fertilizaci&oacute;n inadecuada altera los componentes f&iacute;sicos, qu&iacute;micos y biol&oacute;gicos de los suelos e incrementa los costos de producci&oacute;n (Betancourt&#45;Olvera et al., 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una alternativa tecnol&oacute;gica para contrarrestar dicho problema es el uso de microorganismos que act&uacute;en coordinadamente con la interfase suelo&#45;ra&iacute;z (Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo, 2004), como las rizobacterias promotoras del crecimiento de la planta (PGPR) y los hongos simbi&oacute;ticos formadores de micorrizas (HMA), que act&uacute;an sin&eacute;rgicamente con las plantas e inciden en la absorci&oacute;n de nutrimentos (Artursson <i>et al.,</i> 2006), el metabolismo secundario (Maier <i>et al. ,</i> 2000), en la arquitectura de la ra&iacute;z (Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo, 2004) y por tanto en el crecimiento, en el rendimiento y en la calidad de la flor (Scagel y Schreiner, 2006; C&aacute;rdenas&#45;Flores <i>et al.,</i> 2007). La coinoculaci&oacute;n documentada con PGPR y HMA en especies ornamentales es escasa, a&uacute;n cuando se ha detectado mayor producci&oacute;n y calidad de flor, reducci&oacute;n en los d&iacute;as a cosecha e incrementos en materia seca y en los niveles de absorci&oacute;n de nutrientes (C&aacute;rdenas&#45;Flores <i>et al.,</i> 2007; Rub&iacute;&#45;Arteaga et al., 2009).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La asociaci&oacute;n hongo micorr&iacute;zico&#45;rizobacteria&#45;Lilium abre perspectivas de gran inter&eacute;s ya que podr&iacute;a plantearse un modelo relacionado con la combinaci&oacute;n &oacute;ptima de HMA, PGPR y fertilizaci&oacute;n con f&oacute;sforo, as&iacute; como la interacci&oacute;n de dichos factores con las variables registradas, las cuales podr&iacute;an evaluarse e interpretarse con la t&eacute;cnica multivariada descrita por S&aacute;nchez (1995) y aplicada por Gonz&aacute;lez&#45;Huerta <i>et al.</i> (2007). El objetivo del presente trabajo fue analizar los efectos del f&oacute;sforo, de <i>Bacillus subtilis</i> y de <i>Glomus fasciculatum,</i> as&iacute; como sus interacciones sobre la calidad comercial de flores de <i>Lilium</i> h&iacute;brido oriental Showwinner.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se desarroll&oacute; en invernadero de agosto 2007 a enero 2008 y de mayo a octubre de 2008, en el municipio de Coatepec Harinas, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico; ubicado a una altitud de 2 169 m. La temperatura promedio d&iacute;a/noche fue de 35&deg;C/10&deg;C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contenedores de pl&aacute;stico se plantaron bulbos vernalizados, importados de Holanda, calibre 16/18 de <i>Lilium</i> h&iacute;brido oriental Showwinner, lavados y desinfectados previamente con CloraminaTal 2% durante 5 min y enjuagados con agua est&eacute;ril. Como sustrato se utiliz&oacute; unamezcla 1:1 de suelo con arenader&iacute;o, con pH de 5.9, 2.1% de materia org&aacute;nica y 18.4 <i>&micro;g</i> ml <sup>&#45;1</sup>de P, esterilizado a una presi&oacute;n de 120 kg cm&#45;<sup>2</sup> por una hora en tres d&iacute;as consecutivos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n micorr&iacute;zica se realiz&oacute; al plantar el bulbo. Se utilizaron 100 g de in&oacute;culo constituido de un suelo limoso con 73 esporas g<sup>&#45;1</sup> de <i>Glomus fasciculatum</i> y fragmentos de ra&iacute;z con 50% de colonizaci&oacute;n. En cada contenedor se colocaron 250 g de sustrato y se aplicaron 50 g de in&oacute;culo; del bulbo se retiraron las ra&iacute;ces primarias para evitar la presencia de hongos micorr&iacute;zicos nativos, se plant&oacute; a 10 cm de la superficie y se cubri&oacute; con 500 g de sustrato; el resto del inoculo se deposit&oacute; al nivel donde se emite el sistema radical secundario, finalmente se adicionaron 250 g del sustrato.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La rizobacteria se aplic&oacute; 30 d&iacute;as despu&eacute;s de la plantaci&oacute;n utilizando 1 ml de una suspensi&oacute;n con l*10<sup>7</sup> ufc ml<sup>&#45;1</sup> de <i>B. subtilis BEB&#45;lSbs</i> (BS&#45;13) (absorbancia 0.1 a 535 nm) por contenedor, donada por el laboratorio de Bioqu&iacute;mica Ecol&oacute;gicadel Centro de Investigaci&oacute;n y Estudios Avanzados (CINVESTAV) del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional (IPN), Unidad Irapuato. Las plantas fueron regadas con 100 ml de agua destilada cada cuatro d&iacute;as a partir de la plantaci&oacute;n y fertilizadas semanalmente con 200 ml por maceta de la soluci&oacute;n nutritiva Long Ashton (LANS), modificada en f&oacute;sforo seg&uacute;n el tratamiento (Hewitt, 1966).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los 12 tratamientos fueron evaluados en un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, con arreglo factorial 2*32. En el factor A se consideraron plantas con y sin <i>G. fasciculatum,</i> en el factor B se evaluaron 0, 22 y 44 <i>\ig</i> ml<sup>&#45;1</sup> de f&oacute;sforo en LANS y en el factor C se incluyeron plantas con y sin <i>B. sub ti lis.</i> Para altura de planta y di&aacute;metro del tallo se utilizaron 10 unidades experimentales por tratamiento y cada contenedor con una planta fue una unidad experimental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables evaluadas fueron altura de planta (cm), di&aacute;metro de tallo (mm), d&iacute;as a antesis (siete repeticiones), per&iacute;odo de floraci&oacute;n (10 repeticiones), vida de la flor (15 repeticiones), di&aacute;metro de la flor (cm, 10 repeticiones), ancho de p&eacute;talo (cm, 30 repeticiones), colonizaci&oacute;n de ra&iacute;z por <i>G. fasciculatum</i> &#91;se determin&oacute; en porcentaje en una muestra de ra&iacute;ces constituida por tres unidades experimentales por tratamiento (Phillips y Hayman, 1970)&#93;. Al final del experimento se cuantific&oacute; <i>B. Subtilis</i> Beb&#45;13, para lo cual se muestre&oacute; suelo de la riz&oacute;sfera, realiz&aacute;ndose diluciones decimales seriadas hasta 10&#45;<sup>7</sup> y se sembraron por la t&eacute;cnica de dispersi&oacute;n en la superficie en cajas de petri, que conten&iacute;an papa dextrosa agar y se incubaron a 37 &deg;C por 48 h para cuantificar las ufc.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; en tres repeticiones por tratamiento la concentraci&oacute;n en ppm de P, K, Ca, Mg, Fe, Cu, Zn, Mn y B en la parte a&eacute;rea vegetativa (Alc&aacute;ntar y Sandoval, 1999); el N se determin&oacute; con el m&eacute;todo micro Kjeldahl, con un espectro fot&oacute;metro de esfera X&#45;Rite modelo SP 62, se obtuvieron los valores de tres repeticiones portratamiento de cromatividad (c) y &aacute;ngulo Hue o matiz (h) para determinar el color de la flor (Kabelka et al., 2004). La tasa fotosint&eacute;tica estimada en tres repeticiones portratamiento, se registr&oacute; en (imol m&#45;<sup>2</sup> s<sup>&#45;1</sup> con el sistema port&aacute;til (SPF) LI&#45;6400 (LI&#45;COR), a 115 d&iacute;as de la plantaci&oacute;n. A 170 d&iacute;as de plantado el bulbo, despu&eacute;s de secarse a 75 &deg;C por 72 h en un horno de circulaci&oacute;n forzada (R&iacute;os Rocha, modelo HSCF), se determinaron los pesos secos en ra&iacute;z, parte a&eacute;rea vegetativa y flores, se registraron en g, empleando siete repeticiones por tratamiento.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza y a la comparaci&oacute;n de medias con la prueba de la diferencia m&iacute;nima significativa (DMS) a un nivel de significancia del 5%. Los datos de colonizaci&oacute;n (%) se transformaron a arc sen <i>&#8730;%</i> y los de macroelementos a ppm. Adem&aacute;s se us&oacute; el an&aacute;lisis de componentes principales, que emplea varianzas y correlaciones aproximadas; los tratamientos fueron asignados a las hileras y las variables a las columnas. El an&aacute;lisis de componentes principales se gener&oacute; con el programa desarrollado por S&aacute;nchez (1995), y la gr&aacute;fica del biplot se edit&oacute; desde Excel (Rub&iacute;&#45;Arriaga <i>et al.</i>, 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Indicadores de crecimiento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La promoci&oacute;n del crecimiento originada por <i>G. fasciculatum,</i> coincide con los resultados de Anushri <i>et al.</i> (2002); Rub&iacute;&#45;Arriaga <i>et al.</i> (2009), quienes se&ntilde;alaron que los hongos HMA favorecen el crecimiento en <i>Lilium</i> sp. El mayor peso seco de ra&iacute;z, reflejado por un incremento de 48% en las plantas inoculadas con G<i>. fasciculatum</i> (<a href="/img/revistas/remexca/v3n1/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>), ratificalo se&ntilde;alado acerca del incremento que los hongos HMA provocan en el sistema radical de las plantas y que en conjunto con el abundante micelio intra y extraradical que desarrollan, circunda la ra&iacute;z y constituye un enlace entre las plantas y el suelo, donde act&uacute;an como una extensi&oacute;n de la superficie radical, que provoca un marcado incremento en los procesos de absorci&oacute;n y translocaci&oacute;n de agua, nutrientes como P, N, Mg, Ca y micronutrientes (Azc&oacute;n <i>et al.,</i> 2008), as&iacute; como de reguladores de crecimiento (Artursson <i>et al.,</i> 2006); por lo que con la micorrizaci&oacute;n resulta factible la sustituci&oacute;n, al menos parcial del aporte de nutrientes en forma de fertilizantes minerales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto mostrado por <i>B. subtilis</i> sobre altura de la planta coincide con lo reportado por C&aacute;rdenas&#45;Flores <i>et al.</i> (2007), quienes demostraron la capacidad de promoci&oacute;n de crecimiento de <i>B. subtilis</i> BEB&#45;13, en <i>Tagetes erecta</i> L, por su participaci&oacute;n en la s&iacute;ntesis de mol&eacute;culas como auxinas y secreci&oacute;n de peque&ntilde;os p&eacute;ptidos de actividad de aminasa ACC (Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo, 2004). La significancia estad&iacute;stica que se observ&oacute; en las variables de crecimiento para a&ntilde;os (<a href="/img/revistas/remexca/v3n1/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), indica un comportamiento diferencial entre ciclos, atribuido a las condiciones ambientales que se presentaron. Marulanda <i>et al.</i> (2009) se&ntilde;alaron un efecto directo de la humedad, la temperatura y la luminosidad entre otros factores sobre el funcionamiento de los microorganismos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Esfuerzo reproductivo y calidad de la flor</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los efectos de <i>G. fasciculatum</i> sobre ancho de p&eacute;talo, peso seco, color y vida de la flor (PE, PF, CH, VF) (<a href="/img/revistas/remexca/v3n1/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>) concuerdan con Scagel y Schreiner (2006) en <i>Zantedeschia</i> inoculados con HMA, quienes encontraron un incremento en la calidad de las flores atribuible a la capacidad de los HMA para modificar la arquitectura del sistema radical a trav&eacute;s del desarrollo de hifas en el suelo, favoreciendo la transferencia de elementos minerales y agua a las plantas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La expansi&oacute;n del micelio externo del hongo permite la captaci&oacute;n m&aacute;s all&aacute; de la zona de agotamiento que se crea alrededor de las ra&iacute;ces, por la propia absorci&oacute;n de la planta, adem&aacute;s de favorecer el desdoblamiento de las substancias de reserva presentes en el bulbo. Aboul&#45;Nasr, (1996) establece que es fundamental considerar los cambios que los HMA ejercen sobre la actividad fotosint&eacute;tica. En el presente trabajo las plantas inoculadas alcanzaron una tasa fotosint&eacute;tica 17.38% superior al de las plantas no inoculadas. Marulanda <i>et al.</i> (2009) se&ntilde;alaron que es importante considerar el est&iacute;mulo en la s&iacute;ntesis de hormonas que estos micosimbiontes originan.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>B. subtilis</i> disminuy&oacute; en dos d&iacute;as la antesis de las plantas inoculadas (<a href="/img/revistas/remexca/v3n1/a9c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), lo que significa una menor estancia en invernadero y menos aplicaci&oacute;n de productos qu&iacute;micos, que se traducen en menores costos de producci&oacute;n y menor da&ntilde;o al ambiente. Las plantas inoculadas presentaron un peso seco de la flor 7.3% mayor que el de las no inoculadas. El color basado en el &aacute;ngulo hue fue 24.69% superior al control y la vida de la flor fue 9%mayor. Efecto que puede atribuirse a su modo de acci&oacute;n, el cual plantea que probablemente m&aacute;s de un mecanismo est&aacute; involucrado en la asociaci&oacute;n planta&#45;microorganismo, para operar simult&aacute;neamente o en sucesi&oacute;n en el aumento en la incorporaci&oacute;n de aguay nutrientes, como f&oacute;sforo por diferentes v&iacute;as o mecanismos (Artursson <i>et al.,</i> 2006) o para suministrar sustancias activas de crecimiento (Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo, 2004).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La calidad se mejor&oacute; por diferentes v&iacute;as, el mayor valor en ancho de p&eacute;talo y di&aacute;metro de la flor reflejan mayor vistosidad de la flor cuando &eacute;sta se encuentra totalmente abierta y el incremento en peso seco responde a un mayor tama&ntilde;o de flor. El valor superior del &aacute;ngulo Hue indica una mayor intensidad del color rosa, debido a una mayor concentraci&oacute;n de antocianinas (Schwinn y Davies, 2004). La mayor vida de la flor se traduce en mayor tiempo en que la flor presenta buenas condiciones. Estas modificaciones pueden significar que la inoculaci&oacute;n con <i>G. fasciculatum</i> y <i>B. subtilis</i> genera ventajas en la comercializaci&oacute;n de <i>Lilium,</i> al constituirse en caracter&iacute;sticas esenciales para alcanzar la satisfacci&oacute;n del consumidor y el &eacute;xito comercial.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n nutrimental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La significancia estad&iacute;stica detectada en los elementos nutritivos analizados correspondiente a a&ntilde;os (<a href="/img/revistas/remexca/v3n1/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), se puede atribuir a las condiciones ambientales imperantes en cada ciclo de cultivo. Chang <i>et al.</i> (2010) sugirieron que &eacute;stos ejercen un efecto directo sobre el crecimiento y desarrollo de las plantas en respuesta a una interacci&oacute;n genotipo ambiente, que afecta la variaci&oacute;n en la absorci&oacute;n, traslocaci&oacute;n y aprovechamiento de nutrimentos, aunado esto a un posible efecto de la vernalizaci&oacute;n, que se someten los bulbos previa a la comercializaci&oacute;n, que pudo presentar variaciones entre ciclos, pues los bulbos cada ciclo son importados de Holanda.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto diferencial que presentaron las fuentes de inoculaci&oacute;n sobre este par&aacute;metro, puede relacionarse con la variabilidad en funciones de ambos microorganismos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Ca, Mg, Fe, Mn y B las plantas inoculadas con <i>G. fasciculatum</i> mostraron significancia estad&iacute;stica, pero &eacute;stas presentaron menor concentraci&oacute;n que aquellas sin inocular, resultados que podr&iacute;an atribuirse a un mayor consumo de estos elementos en las plantas inoculadas en las etapas de crecimiento vegetativo y esfuerzo reproductivo, al participar de manera directa en procesos relacionados con calidad de corte y vida de la flor. Chang y Miller (2004) se&ntilde;alaron que en <i>Lilium</i> la demanda nutrimental se acent&uacute;a con la aparici&oacute;n del bot&oacute;n floral, momento en que se realiz&oacute; el an&aacute;lisis nutrimental en el presente trabajo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El calcio juega un papel preponderante en la vida de la flor de <i>Lilium.</i> Chang y Miller (2004); &Aacute;lvarez&#45;S&aacute;nchez <i>et al.</i> (2008), indicaron que promueve significativamente la mayor producci&oacute;n de materia seca. En el presente estudio las plantas inoculadas presentaron mayor peso seco en ra&iacute;z, tallo y flores que las plantas testigo, debido a la mayor velocidad que las plantas aprovechan el N, aumentando as&iacute; la actividad fotosint&eacute;tica y con ello la producci&oacute;n de az&uacute;cares. Las plantas inoculadas presentaron una tasa fotosint&eacute;tica superior 17.38% a las plantas no inoculadas, debido a su mayor altura, que significa un mayor n&uacute;mero de hojas, para realizar fotos&iacute;ntesis, para producir, traslocar y acumular carbohidratos de reserva durante el crecimiento y que estar&aacute;n disponibles para las flores en poscosecha (O'Donoghue <i>et al.,</i> 2002), esto pudo favorecer una mayor vida de la flor del h&iacute;brido oriental Showwinner.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Ca es un i&oacute;n relacionado con la estabilidad y fuerza mec&aacute;nica de la pared celular, la cual se debe a la uni&oacute;n de &eacute;ste con la pectina de la l&aacute;mina media. En el caso de <i>Lilium</i> h&iacute;brido oriental Showwinner el Ca pudo estar confiriendo mayor rigidez a las paredes y lamina media del tejido fundamental de los t&eacute;palos y retrasar su degradaci&oacute;n, lo que es una caracter&iacute;stica deseable y muy apreciada por los floricultores y comercializadores de flores. El retraso en el debilitamiento de los t&eacute;palos podr&iacute;a relacionarse con el mantenimiento de la turgencia de las c&eacute;lulas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Ca interviene en la regulaci&oacute;n del metabolismo intracelular, permeabilidad de las membranas y es un mensajero secundario en el citoplasma, el cual se une a prote&iacute;nas moduladoras de calcio, tales como la calmodulina y la kinasa (Sanders <i>et al.,</i> 2002). La prote&iacute;na kinasa se encuentra en la membrana plasm&aacute;tica, la cual junto con el complejo calcio&#45;calmodulinafosforila otras enzimas como la ATPasa, por lo que al calcio es un regulador del crecimiento y de la senescencia (Chang y Miller, 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El magnesio participa como cofactor en reacciones enzim&aacute;ticas que act&uacute;an sobre sustratos fosforilados (cinasas), favoreciendo el acoplamiento de tipo quelatante entre la estructura pirofosfatada y la enzima o bien el sustrato, principalmente al ATP, adem&aacute;s de ser componente de la clorofila y de los ribosomas, y participa en la regulaci&oacute;n de la RuBP carboxilasa en el estroma del cloroplasto (Sharma, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El manganeso es constituyente de algunas enzimas, ribosomas y de la clorofila, y est&aacute; involucrado directamente en el fotosistema II de la fotos&iacute;ntesis y en la s&iacute;ntesis de metabolitos secundarios, como pigmentos de cloroplastos (fitol y carotenoides) y giberelinas (Sharma, 2006).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El boro est&aacute; involucrado en el metabolismo de los carbohidratos, de N, P, de l&iacute;pidos y de hormonas (auxinas) y en la s&iacute;ntesis de &aacute;cidos nucle&iacute;cos, prote&iacute;nas y en la utilizaci&oacute;n de fosfato al incrementar la actividad de la ATPasa. Participa activamente en la s&iacute;ntesis de la pared celular, por lo que se considera un elemento formativo de las estructuras vegetales como tejidos, la absorci&oacute;n activa de sales y en la fotos&iacute;ntesis (Sharma, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El fierro es un elemento fundamental para el mantenimiento de la clorofila y para el funcionamiento y estructura del cloroplasto, es esencial como componente de muchas enzimas y transportadores y participa en la transferencia de electrones en los fotosistemas, en la bios&iacute;ntesis de giberelinas, etileno y &aacute;cido jasmonico, participa en un mecanismo de osmoprotecci&oacute;n y antioxidativo manteniendo la estructura e integridad de la membrana plasm&aacute;tica (Sharma, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las funciones de estos elementos pueden relacionarse con los resultados obtenidos en el presente trabajo sobre la calidad y vida de la flor, a las cuales se puede atribuir menores niveles encontrados y en cuya absorci&oacute;n y traslocaci&oacute;n los HMA participan activamente. Podr&iacute;an estar relacionados con el eficiente sistema de enzimas antioxidantes, sobre la estructura celular y la integridad del tejido. Los niveles de antioxidantes en las flores pueden ser directamente influenciados por los niveles de expresi&oacute;n y actividad de enzimas antioxidantes como la superoxido dismutasa, catalasa y ascorbato peroxidasa (Ahn <i>et al.,</i> 2005), por lo que las micorrizas adem&aacute;s de mejorar la absorci&oacute;n de nutrimentos como P, tambi&eacute;n lo hacen en los niveles de antioxidantes donde participan los dem&aacute;s elementos referidos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ausencia de significancia estad&iacute;stica en los elementos nutritivos estudiados, en las plantas que recibieron B. <i>subtilis</i> no coincidi&oacute; con lo reportado por otros autores, donde se ha establecido que el mejoramiento en la nutrici&oacute;n de la planta puede ser un mecanismo, por el cual la rizo bacteria incrementa el rendimiento y la calidad (Marulanda et al., 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La capacidad de la promoci&oacute;n del crecimiento de <i>B. subtilis</i> BEB&#45;13, est&aacute; relacionada con la secreci&oacute;n de peque&ntilde;os p&eacute;ptidos ACC de aminasa y con la s&iacute;ntesis de mol&eacute;culas como auxinas (Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo, 2004), las cuales pudieran ser las responsables de los resultados obtenidos en el presente estudio. Las fitohormonas producidas por PGPR son capaces de cambiar los patrones de distribuci&oacute;n o desdoblamiento de asimilados en las plantas, alterando el crecimiento de ra&iacute;ces y la superficie de absorci&oacute;n de agua y nutrientes as&iacute; como los procesos de fructificaci&oacute;n y desarrollo del fruto. Estos resultados, sumados a los efectos que originaron los HMA reflejan un efecto potencializador, ben&eacute;fico para el crecimiento, desarrollo y calidad de las plantas de <i>Lilium</i> h&iacute;brido oriental Showwinner.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de componentes principales (tratamiento por variable)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mejor tratamiento fue T3 (G. <i>fasciculatum,</i> 22 &micro;g ml<sup>&#45;1</sup> P, con <i>B. subtilis),</i> seguido de T4 (G. <i>fasciculatum,</i> 22 (ig ml<sup>&#45;1</sup> P, sin <i>B. subtilis),</i> T2 (G. <i>fasciculatum,</i> 00 (ig ml<sup>&#45;1</sup> P, sin <i>B. subtilis) yT5</i> (G. <i>fasciculatum,</i> 44 &micro;gml<sup>1</sup> P,con B. <i>subtilis);</i> que permitieron lamejor expresi&oacute;n de 19 de las 25 variables evaluadas. Ancho de p&eacute;talo (PE), di&aacute;metro (DF), peso seco (PF), vida (VF) y color de la flor (CH) y per&iacute;odo de floraci&oacute;n (F) est&aacute;n vinculadas a una mejor calidad comercial; a mayor tama&ntilde;o de flor, expresado por (PE) y (DF), mayor peso seco de este &oacute;rgano. Una mayor intensidad en el color expresa flores con mayor pigmentaci&oacute;n; a mayor vida de la flor se ampl&iacute;a el rango en que las flores presentan condiciones aceptables para su comercializaci&oacute;n.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El incremento en el per&iacute;odo de floraci&oacute;n se&ntilde;ala mayor tiempo en que las plantas florecen, par&aacute;metro significativo en el valor de la producci&oacute;n <i>de Lilium</i> sp., resultado que concuerda con los de C&aacute;rdenas&#45;Flores <i>et al.</i> (2007), quienes trabajaron con los mismos in&oacute;culos en <i>T. erecta</i> y detectaron mejoras significativas en la calidad de la flor. Estos resultados se explican por las estrechas correlaciones que se observaron entre las variables se&ntilde;aladas con el peso seco de la ra&iacute;z y la relaci&oacute;n peso seco de ra&iacute;z/parte a&eacute;rea vegetativa. Estas correlaciones tambi&eacute;n sugieren una mayor colonizaci&oacute;n por <i>G, fasciculatum</i> en presencia de <i>B. subtilis,</i> as&iacute; como una mejora en la tasa fotosint&eacute;tica, lo cual concuerda con lo indicado por Aboul&#45;Nasr (1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mayor porcentaje de colonizaci&oacute;n se asoci&oacute; a <i>G. fasciculatum,</i> 00 <i>&micro;</i>ml<sup>&#45;1</sup> P, con <i>B. subtilis</i> con un valor 56.1%, seguido por <i>G. fasciculatum,</i> 22 <i>&micro;g</i> ml<sup>&#45;1</sup> P, con <i>B. subtilis</i> con un valor 51.2%, pero estos porcentajes disminuyeron considerablemente al incrementarse la concentraci&oacute;n de P (<a href="/img/revistas/remexca/v3n1/a9c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). Anushri <i>et al.</i> (2002); Rub&iacute;&#45;Arriaga <i>et al.</i> (2009), se&ntilde;alaron que la colonizaci&oacute;n se favoreci&oacute; con niveles medios de P. Es probable que <i>B. subtilis</i> desarroll&oacute; un papel preponderante al solubilizar P del suelo, facilitando la aportaci&oacute;n de este elemento.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los mayores porcentajes de colonizaci&oacute;n obtenidos por medio de la inoculaci&oacute;n conjunta de ambos microorganismos, muestran su interacci&oacute;n ben&eacute;fica, ya que la colonizaci&oacute;n de las ra&iacute;ces por los hongos estimula el flujo de carbohidratos desde el follaje hasta la ra&iacute;z, y que por exudaci&oacute;n pueden constituirse en fuente de carbono para el crecimiento de la bacteria, en tanto que las hormonas y p&eacute;ptidos producidos por la bacteria (Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo <i>et al.,</i> 2004), pueden estimular la germinaci&oacute;n y el crecimiento hifal de los HMA, lo que favorece la incorporaci&oacute;n del P solubilizado por la bacteria (Artursson <i>et al.,</i> 2006; Zaidi y Khan, 2006).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La estrecha correlaci&oacute;n entre Zn y Cu con variables de crecimiento y calidad de flor y con los mejores tratamientos (3 y 4) puede atribuirse a que ambos son componentes esenciales y activadores de numerosas enzimas, entre ellas la Cu&#45;Zn superoxido dismutasa, la cual ofrece protecci&oacute;n contra el da&ntilde;o de las especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS) (Sharma, 2006). El Zn interviene en la bios&iacute;ntesis de clorofila y Cu e s constituyente de la plastocianina que funciona como un acarreador m&oacute;vil de electrones, ligando el Fotosistema II al Fotosistema I.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La plastocianina acepta electrones del complejo del citocromo b<sub>6</sub>f y dona &eacute;stos al PSI, los cuales son transferidos a la ferredoxina, capacit&aacute;ndola para reducir el NADP<sup>+</sup>, adem&aacute;s se involucra en el transporte c&iacute;clico de electrones asociados con el PSI mediando la producci&oacute;n de ATP asa, y favorece el movimiento de las mol&eacute;culas de plastoquinona durante el transporte de electrones en el PSII, lo que explica la correlaci&oacute;n positiva que reflejan estos elementos con la tasa fotosint&eacute;tica y con las variables de crecimiento y calidad de flor (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v3n1/a9f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fuerte relaci&oacute;n del K con las variables de calidad se puede atribuir a la diversidad de funciones en el metabolismo de las plantas en las que participa, substancialmente como activador de enzimas y osmoregulador, adem&aacute;s es esencial para el uso eficiente del N. El NO<sub>3</sub> es tomado por las ra&iacute;ces de las plantas v&iacute;a un proceso activo y la absorci&oacute;n puede ser afectada por la influencia del K en la traslocaci&oacute;n de fotosintatos necesarios para soportar dicho proceso, lo que marca la relaci&oacute;n con Zn y Cu que se aprecia en el biplot (<a href="#f1">Figura 1</a>). Es preciso se&ntilde;alar que tiene efectos antagonistas en la absorci&oacute;n de P, Ca, Mg y B, el cual cuando est&aacute; presente en altas concentraciones puede disminuir la absorci&oacute;n de otros iones (Chang <i>et al.,</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disminuci&oacute;n en la absorci&oacute;n de Ca cuando se incrementa la concentraci&oacute;n de K, puede estar relacionada con la competencia entre ambos, debido a las propiedades fisiol&oacute;gicas de estos iones a lo que se puede atribuir la ubicaci&oacute;n del Ca en el biplot que refleja una relaci&oacute;n importante con las variables de calidad. El efecto depresivo de K en la absorci&oacute;n de Mg a altas concentraciones, puede ser interpretada como un resultado de la competencia por los compuestos metab&oacute;licos producidos, donde una reducci&oacute; en la traslocaci&oacute;n de las ra&iacute;ces al tallo parece ser la fuente del antagonismo K/Mg, lo que pudiera explicar la posici&oacute;n que ocupa el Mg en el biplot de la <a href="#f1">Figura 1</a>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados expuestos en este trabajo sugieren una asociaci&oacute;n planta&#45;microorganismos&#45;f&oacute;sforo efectiva, basada fundamentalmente en un intercambio favorable, entre los exudados radicales promovidos por las micorrizas y el conjunto de substancias activas promovidos por la rizobacteria. La combinaci&oacute;n Glomus fasciculatum&#45;Bacillus subtilisf&oacute;sforo a 22 &#956;g ml&#45;1, se establece como una alternativa promisoria para la producci&oacute;n de Lilium.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n con G. fasciculatum increment&oacute; altura, di&aacute;metro del tallo, peso seco de ra&iacute;z y tallo, mejor&oacute; la calidad de las plantas y flores de esta especie.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La coinoculaci&oacute;n con G. fasciculatum y B. subtilis ejerci&oacute; un efecto positivo en la apariencia (ausencia de defectos, tama&ntilde;o, forma y color), que resulta en mayores rendimientos comerciales de Lilium h&iacute;brido oriental Showwinner. Elementos como Zn, Cu, K, N, P y Ca resultan de particular importancia en la producci&oacute;n de esta especie ornamental.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aboul&#45;Nasr, A. 1996. Effects of vesicular&#45;arbuscular mycorrhiza on Tagetes erecta and Zinnia elegans. Mycorrhiza. 6:61&#45;64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758234&pid=S2007-0934201200010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahn, T.; Oke, M.; Schofield, A. and Paliyat, G. 2005. Effect of phosphorus fertilizer supplementation on antioxidant enzyme activities in tomato fruits. J. Agric. Food Chem. 53:1539&#45;1545.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758236&pid=S2007-0934201200010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alc&aacute;ntar, G. G. y Sandoval, M. V. 1999. Manual de an&aacute;lisis qu&iacute;mico de tejido vegetal. Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo, A. C. Chapingo, M&eacute;xico. Publicaci&oacute;n Especial. N&uacute;m. 10. 156 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758238&pid=S2007-0934201200010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;lvarez&#45;S&aacute;nchez, M. E.; Maldonado&#45;Torres, R.; Garc&iacute;a&#45; Mateos, R.; Almaguer&#45;Vargas, G.; Rupit&#45;Ayala, J. y Zavala&#45;Estrada, F. 2008. Suministro de Calcio en el desarrollo y nutrici&oacute;n de Lilium asi&aacute;tico. Agrociencia. 42:881&#45;889.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758240&pid=S2007-0934201200010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anushri, V. M.; Sharma, P.; Adholeya, A.; Dhawan, V. and Srivastava, P. S. 2002. Enhanced growth of micropropagated bulblets of Lilium sp.inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi at different P fertility levels in an alfisol. J Hortic. Sci. Technol. 77(3):258&#45;263.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758242&pid=S2007-0934201200010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Artursson, V.; Finlay, R. D. and Jansson, J. K. 2006. Interaction between arbuscular mycorrhizal fungi and bacteria and their potential for stimulating plant growth. Environ. Microbiol. 8(1):1&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758244&pid=S2007-0934201200010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Azc&oacute;n, R.; Rodr&iacute;guez, R.; Amora&#45;Lazcano, E. and Ambrosano, E. 2008. Uptake and metabolism of nitrate of mycorrhiza plants as affected by watter availability and N concentration in soil. European J. Soil Sci. 59(2):131&#45;138.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758246&pid=S2007-0934201200010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Betancourt&#45;Olvera, M.; Rodr&iacute;guez&#45;Mendoza, M. N.; Sandoval&#45;Villa, M. y Gaytan&#45;Acu&ntilde;a, E. 2005. Fertilizaci&oacute;n foliar una herramienta en el desarrollo del cultivo de Lilium cv. Stargeizer. Revista Chapingo. Serie Horticultura. 11(2):371&#45;378.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758248&pid=S2007-0934201200010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">C&aacute;rdenas&#45;Flores, A.; Estrada&#45;Luna, A. and Olalde&#45;Portugal, V. 2007. Yield and quality enhancement of marigold flower by inoculation with Bacillus subtilis and Glomus fasciculatum. J. Sus. Agric. 31(1):21&#45;31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758250&pid=S2007-0934201200010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chang, Y. CH. and Miller, W. B. 2004. The relationship between leaf enclosure, transpiration, and upper leaf necrosis on Lilim Star Gazer. J. Am. Soc. Hort. Sci. 129:128&#45;133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758252&pid=S2007-0934201200010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chang, K. H.; Rung, Y. W.; Keng, Ch. Ch.; Ting, F. H. and Ren, S. Ch. 2010. Effects of chemical and organic fertilizer on the growth, flower quality and nutrient uptake of Anthurium andreanum, cultivated for cut flower production. Sci. Hortic. 345 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758254&pid=S2007-0934201200010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Huerta, A.; V&aacute;zquez&#45;Garc&iacute;a, L. M.; Sahag&uacute;n&#45; Castellanos, G. J.; Rodr&iacute;guez&#45;P&eacute;rez, J. E. y P&eacute;rez&#45;L&oacute;pez, D. J. 2007. Rendimiento del ma&iacute;z de temporal y su relaci&oacute;n con la pudrici&oacute;n de mazorca. Rev. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 33(1):33&#45;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758256&pid=S2007-0934201200010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hewitt, E. J. 1966. Sand and water culture methods used in the study of plant nutrition. Common wealth Agricultural Bureaux of Horticulture. Technical Communication. 22 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758258&pid=S2007-0934201200010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jim&eacute;nez&#45;Delgadillo, R. 2004. P&eacute;ptidos secretados por Bacillus subtilis que modifican la arquitectura de la ra&iacute;z de Arabidopsis thaliana. Ph D Thesis. Cinvestav&#45; Irapuato, Guanajuato, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758260&pid=S2007-0934201200010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kabelka, E.; Yang, W. and Francis, D. M. 2004. Improved tomato fruit color within an inbred backcross line derived from Lycopersicum sculentum and L. hirsutum involves the interaction of loci. J. Ame. Soc. Hortic. Sci. 129:250&#45;257.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758262&pid=S2007-0934201200010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maier, W.; Schmidt, J.; Nimtz, M.; Wray, V. and Strack, D. 2000. Secondary products in micorrhyzal roots of tobacco and tomato. Phytochemistry. 54:473&#45;479.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758264&pid=S2007-0934201200010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marulanda, M.; Barea, J. M. and Azc&oacute;n, R. 2009. Stimulation of plant growth and drought tolerance by native microorganism (AM fungi and bacteria) from dry environment. Mechanism related to bacterial effectiveness. J. Plant. Growth Reg. 28:115&#45;124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758266&pid=S2007-0934201200010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">O'Donogue, E. M.; Somerfield, S. D. and Heyes, J. A. 2002. Vase solutions containing sucrose result in changes to cell walls of sandersonia (Sandersonia auriantiaca flowers. postharvest. Biol. Technol. 26:285&#45;594.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758268&pid=S2007-0934201200010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ortega&#45;Blu, R.; Correa&#45;Benguria, M. y Olate&#45;Mu&ntilde;oz, E. 2006. Determinaci&oacute;n de las curvas de acumulaci&oacute;n de nutrientes en tres cultivares de Lilium spp. Para flor de corte. Agrociencia. 40:77&#45;88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758270&pid=S2007-0934201200010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phillips, J. M. and Hayman, D. S. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of interaction. Transactions of the British. Mycological Society. 55:158&#45;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758272&pid=S2007-0934201200010000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rub&iacute;&#45;Arriaga, M.; Gonz&aacute;lez&#45;Huerta, A.; Castillo&#45;Gonz&aacute;lez, A. M.; Olalde&#45;Portugal, V.; Reyes&#45;Reyes, B. G. y Aguilera&#45;G&oacute;mez, L. I. 2009. Respuesta de Lilium sp. al f&oacute;sforo y su relaci&oacute;n con Glomus fasciculatum y Bacillus subtilis. Phyton. 78:91&#45;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758274&pid=S2007-0934201200010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez, G. J. J. 1995. El an&aacute;lisis biplot en clasificaci&oacute;n. Rev. Fitotec. Mex. 18:188&#45;203.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758276&pid=S2007-0934201200010000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sanders, D.; Pelloux, J.; Brownlee, C. and Harper, J. F. 2002. Calcium at the crossroads of signaling. Plant Cell. 4(2):401&#45;417.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758278&pid=S2007-0934201200010000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scagel, C. F. and Schreiner, R. P. 2006. Phosphorus supply alters tuber composition, flower production, and mycorrhizal responsiveness of container&#45;grown hybrid Zantedeschia. Plant. Soil. 283:323&#45;337.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758280&pid=S2007-0934201200010000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schwinn, K. and Davies, K. M. 2004. Flavonoids. Plant pigment and manipulation. In: Kevin D. (ed.). Edit Board. New Zeeland. Annual Plant Reviews. 14:92&#45;107 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758282&pid=S2007-0934201200010000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sharma, C. P. 2006. Plant micronutrients. Science publishers. United States of America&#45;India. 265 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758284&pid=S2007-0934201200010000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zaidi, A. and Khan, M. S. 2006. Co&#45;inoculation effect of phosphate solubilizing microorganisms and Glomus fasciculatum on Green Gram&#45;Bradyrhizobium symbiosis. Turk J. Agric. For. 30:223&#45;230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7758286&pid=S2007-0934201200010000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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