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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Free-radical scavenging, reducing activities, total phenolics and total anthocyanins of extract aqueous, methanolic and ethanolic of eigthteen varieties of Mexican maize were determinated. The total phenolic content varied from 65.75 to 3400 mg/100 g and the total anthocyanin from 1.5 to 2052.75 mg/100 g of fresh corn kernels. Methanolic and ethanolic extract of varieties "AREQ516540TL" and "Veracruz 42" were the most capable of inhibiting sodium persulfate/O2 mediated oxidation of ABTS+ (2-2-azino-bis-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid) and inhibition of the &#946;-carotene bleaching coupled to linoleic acid. These same extracts were also most efficient to reducing DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazil) radical cation.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Antioxidante]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[pigmented corn]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Ciencias Naturales e Ingenier&iacute;as</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Actividad antioxidante de extractos metan&oacute;licos y acuosos de distintas variedades de ma&iacute;z mexicano</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Antioxidant activity of methanolic and aqueous extracts of different varierties of mexican maize</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>L. X&oacute;chitl L&oacute;pez&#45;Mart&iacute;nez<sup>1</sup> y H. Sergio Garc&iacute;a&#45;Galindo<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Universidad del Papaloapan, Loma Bonita, Oaxaca. M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> UNIDA, Instituto Tecnol&oacute;gico de Veracruz, Veracruz. M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Leticia X&oacute;chitl L&oacute;pez Mart&iacute;nez.</i> Direcci&oacute;n postal. E&#45;mail: <a href="mailto:llopez@naxoloxa.unca.edu.mx"><u>llopez@naxoloxa.unca.edu.mx</u></a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recepci&oacute;n: 09&#45;08&#45;09&nbsp;    <br> 	Aceptaci&oacute;n: 12&#45;10&#45;09</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio se determin&oacute; la actividad antioxidante y capacidad de inhibir la formaci&oacute;n y acci&oacute;n de radicales libres, y contenido de compuestos fen&oacute;licos totales y antocianinas de extractos acuosos y metan&oacute;licos de distintas variedades de ma&iacute;z mexicano. El contenido de compuestos fen&oacute;licos vari&oacute; de entre 65.75 a 3400 mg/100 g y las antocianinas entre 1.5 a 2052.75 mg/100 g de harina de ma&iacute;z. Las variedades "AREQ516540TL" y "Veracruz 42" fueron las que mostraron la mayor capacidad de inhibir la oxidaci&oacute;n de ABTS<sup>&#43;</sup> (2&#45;2'azino&#45;bis&#45;etilbenziatoline&#45;6&#45;acido sulf&oacute;nico) mediada por persulfato de sodio y la inhibici&oacute;n del blanqueamiento del &#946;&#45;caroteno acoplado a &aacute;cido linol&eacute;ico, los mismos extractos fueron los m&aacute;s eficientes para reducir el radical cati&oacute;n DDPH (1,1&#45;difenil&#45;2&#45;picrilhidrazil).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Antioxidante, compuestos fen&oacute;licos, antocianinas, ma&iacute;z pigmentado.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Free&#45;radical scavenging, reducing activities, total phenolics and total anthocyanins of extract aqueous, methanolic and ethanolic of eigthteen varieties of Mexican maize were determinated. The total phenolic content varied from 65.75 to 3400 mg/100 g and the total anthocyanin from 1.5 to 2052.75 mg/100 g of fresh corn kernels. Methanolic and ethanolic extract of varieties "AREQ516540TL" and "Veracruz 42" were the most capable of inhibiting sodium persulfate/O<sub>2</sub> mediated oxidation of ABTS<sup>&#43;</sup> (2&#45;2&#45;azino&#45;bis&#45;ethylbenzthiazoline&#45;6&#45;sulfonic acid) and inhibition of the &#946;&#45;carotene bleaching coupled to linoleic acid. These same extracts were also most efficient to reducing DPPH (1,1&#45;diphenyl&#45;2&#45;picrylhydrazil) radical cation.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> Antioxidant, phenolic compounds, anthocyanins, pigmented corn.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ma&iacute;z (Zea mays L.) es un cereal ampliamente consumido en M&eacute;xico y Centro Am&eacute;rica principalmente en forma de productos tales como tortillas, tamales, y totopos,(1) as&iacute; como en forma de bebidas como chicha morada la cual ha sido relacionada con beneficios a la salud en Per&uacute; (2). Los ma&iacute;ces pigmentados contienen compuestos fen&oacute;licos, los cuales han despertado inter&eacute;s por sus propiedades antioxidantes y bioactivas (1). Diversos estudios han reportado actividades antioxidantes y anticarcinog&eacute;nicas de compuestos fen&oacute;licos como &aacute;cido fer&uacute;lico y cum&aacute;rico y sus derivativos (3). Tambi&eacute;n se ha encontrado que los extractos etan&oacute;licos de ma&iacute;z morado y azul poseen actividades antimutag&eacute;nicas, anticarcinog&eacute;nicas y actividades contra los radicales libres; estas actividades fueron asociadas con las antocianinas presentes en los granos de ma&iacute;z.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antioxidante y el contenido de compuestos fen&oacute;licos torales de algunos variedades de ma&iacute;z mexicano han sido reportados (1), sin embargo, no ha sido estudiado extensivamente la capacidad antioxidante presente en la diversidad del germoplasma del ma&iacute;z mexicano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&eacute;todos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Preparaci&oacute;n de las muestras</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El origen de las variedades y la pigmentaci&oacute;n de las mismas utilizadas en este estudio se encuentran en la <a href="#t1">Tabla 1</a>. Las muestras fueron propagadas utilizando los m&eacute;todos convencionales de cultivo en M&eacute;xico. Los granos obtenidos fueron secados al sol hasta un contenido de agua de aproximadamente 20&#37;. Las muestras fueron molidas, mezcladas y almacenadas a &#45;20 &#176;C hasta el momento del an&aacute;lisis.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ns/v2n3/a5t1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Preparaci&oacute;n de los extractos acuosos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cinco gramos de harina de ma&iacute;z fueron mezclados con 25 ml de agua destilada y homogenizados con agitaci&oacute;n constante en un agitador orbital (Lab&#45;Line Orbiton Environ, Modelo 3527, Melrose Plaza, IL) a 50 &#176;C durante 10 min. Los homogenizados fueron filtrados a trav&eacute;s de papel filtro Whatman No. 4 y el residuo fue reextra&iacute;do con 15 ml de agua destilada por 10 min m&aacute;s. Los filtrados fueron congelados a &#45;18 &#176;C y posteriormente liofilizados (12&#45;L Free zone Freeze drier, Labcono, Kansas City, MO) por 72 h a 13.3 Pa. Los liofilizados fueron almacenados en frascos de color &aacute;mbar a 4 &#176;C, hasta el momento de ser analizados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de los extractos metan&oacute;licos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cinco gramos de harina de ma&iacute;z fueron molidos con 25 ml de metanol acuoso (20:80 v/v, agua: metanol) en matraces de 50 ml, en ausencia de luz a 50 &#176;C por 2 h con agitaci&oacute;n constante en un agitador orbital. La mezcla resultante fue filtrada a trav&eacute;s de papel filtro Whatman No. 4 y los filtrados fueron sujetos a evaporaci&oacute;n (Rotavapor model R110, B&uuml;chi Flawil, Suiza) a 40 &#176;C para remover el metanol y posteriormente fueron liofilizados por 72 h a13.3 Pa. El concentrado metan&oacute;lico fue almacenado a &#45;20 &#176;C hasta el momento de ser analizado.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los compuestos fen&oacute;licos totales en los extractos se determinaron utilizando el m&eacute;todo de Folin&#45;ciocalteu (1) determinaron en base a una curva est&aacute;ndar a una absorbancia a 765 nm. 100 &#956;l de los extractos fueron diluidos con 500 &#956;l de gua, posteriormente se agregaron 700 &micro;l de una soluci&oacute;n 0.2N del reactivo de Folin&#45;ciocalteu, se agit&oacute; manualmente la muestra y se le permiti&oacute; reposar por 3 min a temperatura ambiente antes de agregar 900 &#956;l de una soluci&oacute;n de Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> 1N y se dej&oacute; en reposo por 90 min a 25 &#176;C en ausencia de luz, despu&eacute;s de los cuales se determin&oacute; la absorbancia a 765 nm. Los resultados fueron expresados como mg de &aacute;cido g&aacute;lico por cada 100 gr de harina de ma&iacute;z.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el an&aacute;lisis de las antocianinas totales se adapt&oacute; la t&eacute;cnica espectrofotom&eacute;trica de Abdel&#45;Aaal y Hucl (6) por la medici&oacute;n de absorbancia de los extractos del ma&iacute;z a pH 1.0. Un gramo de harina de ma&iacute;z fue homogenizado con 5.0 ml de una soluci&oacute;n (HCl 0.225N en etanol acuoso al 95&#37;), colocados en viales color &aacute;mbar con agitaci&oacute;n constante por 24 h a 4 &#176;C; posteriormente, los extractos fueron centrifugados a 3000 xg durante 5 min y se colect&oacute; el sobrenadante. Se determinaron absorbancias a 535 nm y 700 nm. Los resultados fueron expresados como mg de cianidina 3&#45;gluc&oacute;sido por cada 100 g de harina de ma&iacute;z.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antiradical</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La medici&oacute;n de la actividad antiradical de los extractos fue adaptada de Brand&#45;Williams <i>et al.,</i> (7). La reacci&oacute;n anti&#45;radical se llevo al cabo en tubos de propileno de 15 ml a 25 &#176;C, donde se adicionaron los extractos los cuales fueron probados a una concentraci&oacute;n de 0.1 mM de compuestos fen&oacute;licos, se adicionaron 2.8 ml de DDPH 98.8 &#956;M y se agitaron manualmente por 15 s. Se midi&oacute; el decremento en la absorbancia a 515 nm cada 10 minutos hasta que no se presentaran cambios en la misma. Se utiliz&oacute; Trolox 0.20 mM como control antioxidante y DPPH en metanol como testigo. La actividad antiradical fue expresada como porciento de cambio de absorbancia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Potencia total de reducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ensayo de la potencia total de reducci&oacute;n fue adaptado de Pellegrini <i>et al.,</i> (8) y se encuentra basado en la generaci&oacute;n de una crom&oacute;foro del radical ABTS<sup>.&#43;</sup> y la capacidad del antioxidante para blanquear este radical. La actividad antioxidante se defini&oacute; como la concentraci&oacute;n de trolox con actividad antioxidante equivalente a 1 mM. Se prepar&oacute; el radical ABTS<sup>.&#43;</sup> mezclando 5 ml de una soluci&oacute;n ABTS 7 mM y 88 &#956;l de una soluci&oacute;n de persulfato de potasio 140 mM, esta mezcla repos&oacute; por 12 h en ausencia de luz o hasta que se desarrolle un color verde oscuro. Los extractos fueron probados a una concentraci&oacute;n de 0.1 mM de compuestos fen&oacute;licos. Se transfirieron 190 &#956;l de metanol a una celda de cuarzo y el ensayo se inici&oacute; cuando se le adicion&oacute; a la celda 1 ml de la soluci&oacute;n de ABTS preformado y se determin&oacute; la absorbancia a 734 nm despu&eacute;s de 10 min de reacci&oacute;n. El porcentaje de inhibici&oacute;n se calcul&oacute; como: &#37; Inhibici&oacute;n: (Absorbancia <sub>testigo</sub>&#45;Absorbancia <sub>muestra</sub>/Absorbancia<sub>testigo</sub>) x 100.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Blanqueamiento de la soluci&oacute;n de &#914;&#45;caroteno</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este ensayo se basa en el blanqueamiento de la soluci&oacute;n de &#946;&#45;caroteno y de la habilidad de los antioxidantes para inhibir la decoloraci&oacute;n de la soluci&oacute;n propiciada por la oxidaci&oacute;n del &aacute;cido linol&eacute;ico. Se adapt&oacute; del m&eacute;todo de Miller <i>et al.,</i> (9). 1 ml de una soluci&oacute;n de &#946;&#45;caroteno (0.2 mg/ml en cloroformo) fue adicionada a un matraz de fondo plano de 50 ml que conten&iacute;a una soluci&oacute;n de 0.2 ml de Tween 20 y 0.02 ml de &aacute;cido linol&eacute;ico, se agit&oacute; la mezcla y se le agregaron los extractos en una concentraci&oacute;n de 0.1 mM de compuestos fen&oacute;licos. La mezcla se agit&oacute; manualmente y se evapor&oacute; hasta sequedad bajo vac&iacute;o a 25 &#176;C, posteriormente se le agregaron 50 ml de una soluci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> al 3&#37; y se agit&oacute; vigorosamente por 45 s hasta formar un liposoma. Las muestras fueron incubadas a 50 &#176;C, se tomaron lecturas de absorbancia a 470 nm cada 10 min hasta 2 h a partir del momento de la adici&oacute;n del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>. Los extractos fueron probados a una concentraci&oacute;n de 0.1 mM de compuestos fen&oacute;licos. La actividad antioxidante fue expresada como porcentaje de retenci&oacute;n de &#946;&#45;caroteno relacionado al testigo. Se utiliz&oacute; tocoferol a una concentraci&oacute;n de 0.20 Mm como testigo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los an&aacute;lisis fueron realizados por triplicado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todos los experimentos se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o de bloques totalmente al azar y una significancia de (P&#60; de 0.05) de las diferencias entre los tratamientos y ser&aacute; establecida usando ANOVA de una v&iacute;a utilizando el software MINITAB v.10.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones de compuestos fen&oacute;licos totales y antocianinas de las variedades de ma&iacute;z utilizadas en este estudio se muestran en la <a href="#t2">Tabla 2</a>. Como puede observarse las concentraciones estuvieron comprendidas entre 170&#45;3400 mg de &aacute;cido g&aacute;lico/ 100 g para el extracto metan&oacute;lico y 65.8&#45;786 mg de &aacute;cido g&aacute;lico/ 100 g para el extracto acuoso. Las diferencias entre los compuestos fen&oacute;licos extra&iacute;bles en medio acuoso y medio metan&oacute;lico refleja la polaridad de los mismos y el grado en el cual puedan estar esterificados y/o glicosilados. Muchas de las variedades examinadas contuvieron niveles de compuestos fen&oacute;licos extra&iacute;bles en agua del 12&#45;44&#37; referido a los compuestos extra&iacute;bles por metanol. Sin embargo las variedades "rojo", "naranja", "azul" y "RO", contuvieron del 50&#45;82&#37; de compuestos fen&oacute;licos extra&iacute;bles con agua relativo al metanol y la variedad "blanco" exhibi&oacute; la mayor cantidad de compuestos fen&oacute;licos extra&iacute;bles por agua. Estos resultados pueden indicar que el perfil de compuestos fen&oacute;licos var&iacute;a considerablemente entre diferentes tipos de ma&iacute;z aunque posean la misma pigmentaci&oacute;n. Entre los grupos pigmentados se examinaron muestras de la misma coloraci&oacute;n y los rangos de contenido de compuestos fen&oacute;licos extra&iacute;bles por metanol y agua fueron respectivamente por 100 g de harina de ma&iacute;z: morado (n&#61;5): 465&#45;3400 mg y 145&#45;786 mg; negro (n&#61;4) 475&#45;565 mg y 66&#45;197 mg, rojo (n&#61;4) 406&#45;617 mg y 82&#45;266 mg. Entre las variedades de coloraci&oacute;n morada, "AREQ516540TL" present&oacute; la mayor concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos, mientras que "Pinto" y "Nn04c1 <b>"</b> mostraron la mayor concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos entre los rojos y negro respectivamente.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ns/v2n3/a5t2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de antocianinas se encontr&oacute; entre 1.50 a 2050 mg de cianidina 3&#45;gluc&oacute;sido/ 100 g de harina de ma&iacute;z, para todos las examinados (<a href="#t2">Tabla 2</a>). Las variedades "blanco", "amarillo" y "naranja" contuvieron el menor contenido de antocianinas, lo cual es esperado en esas coloraciones ya que los carotenoides principalmente en forma de lute&iacute;na y zeaxantina, son los pigmentos m&aacute;s abundantes en ese tipo de muestras (10). Para las diferentes variedades examinadas se encontr&oacute; que el contenido de antocianinas fue: morado: 261&#45;2050, negro, 237529; rojo 127&#45;431. "AREQ516540TL" y "Veracruz 42" mostraron la mayor cantidad de antocianinas entre los fenotipos color morado y "Pinto" y "Nc04c1 " mostraron la mayor cantidad de antocianinas entre los rojos y negros examinados respectivamente. As&iacute;, para las variedades examinadas, aquellas que mostraron la mayor cantidad de compuestos fen&oacute;licos, tambi&eacute;n tuvieron la mayor concentraci&oacute;n de antocianinas (las cuales contribuyen a los niveles de compuestos fen&oacute;licos totales). En estudios realizados por De la Parra <i>et al.,</i> (1), se determin&oacute; el contenido de antocianinas totales en variedades de ma&iacute;z de coloraciones blanco, amarillo, rojo y azul, encontrando concentraciones de estos compuestos de 1.33, 0.56, 9.57 y 38.8 mg/ 100g de harina de ma&iacute;z, los autores utilizaron la misma t&eacute;cnica de extracci&oacute;n que la utilizada en el presente estudio, por lo que las diferencias en los resultados pueden deberse a la variabilidad gen&eacute;tica y el origen de cada una de las variedades utilizadas en los diferentes estudios, al igual que en el caso de los compuestos fen&oacute;licos totales (las antocianinas son parte de estos).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Capacidad anti&#45;radical</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general lo compuestos fen&oacute;licos derivados de los extractos metan&oacute;licos fueron m&aacute;s efectivos para inhibir la formaci&oacute;n de los radicales DPPH<sup>.</sup> que sus equivalentes derivados del extracto acuoso (<a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1 A</a>, <a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f1.jpg" target="_blank">B</a>). Los compuestos fen&oacute;licos libres m&aacute;s abundantes en el ma&iacute;z son el &aacute;cido benz&oacute;ico, el &aacute;cido fer&uacute;lico, el &aacute;cido cum&aacute;rico y sus derivativos (3) y la actividad inhibidora de la formaci&oacute;n de radicales de los extractos acuosos y metan&oacute;licos puede ser debida a esa porci&oacute;n de compuestos, as&iacute; como a las antocianinas presentes en los extractos. Aunque no existe una relaci&oacute;n significativa entre la actividad anti&#45;radical y el contenido de compuestos fen&oacute;licos en los extractos, las variedades "ARQTL516540TL" y "Veracruz 42" fueron las m&aacute;s efectivos en la capacidad antiradical de las variedades examinadas. Las variedades "NO04c2" y "Nn04c1 " de coloraci&oacute;n negra tambi&eacute;n poseen actividades inhibidoras altas comparadas con las dem&aacute;s variedades examinadas. As&iacute;, aquellas variedades que exhiben alta actividad inhibidora, son aquellas que poseen las m&aacute;s altas concentraciones de compuestos fen&oacute;licos y antocianinas. Se ha encontrado que en pruebas como ORAC las antocianinas han demostrado tener mayor capacidad antiradical que los &aacute;cidos fen&oacute;licos (11).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Potencia reductora</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del ensayo de la reducci&oacute;n del radical ABTS<sup>&#43;</sup> preformado, mostraron que los extractos metan&oacute;licos fueron m&aacute;s efectivos como agentes anti&#45;radicales que los extractos acuosos. (<a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f2.jpg" target="_blank">Figura 2 A</a>, <a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f2.jpg" target="_blank">B</a>), un comportamiento similar al presentado en la actividad inhibidora (<a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1 A</a>, <a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f1.jpg" target="_blank">B</a>) de los mismos extractos. Los extractos que muestran grandes actividades para inhibir la formaci&oacute;n del radical DPPH<sup>.</sup> fueron tambi&eacute;n aquellas con mayor actividad reductora del radical ABTS<sup>&#43;</sup>, los extractos de las variedades moradas "AREQ5165OTL", "Veracruz 42" y las variedades negras "NO04c2" y "Nn04c1 ", adem&aacute;s de los extractos de la variedad amarilla (especialmente el metan&oacute;lico) y la variedad roja llamada "Pinto" fueron las preparaciones m&aacute;s efectivas para reducir ABTS<sup>&#43;.</sup> As&iacute;, las variedades con mayor concentraci&oacute;n de antocianinas est&aacute;n nuevamente asociadas con altas propiedades anti&#45;radicales, con la &uacute;nica excepci&oacute;n de la variedad "Amarillo". En un estudio previo donde se analizaron las propiedades reductoras de extractos acuosos de ma&iacute;z, se encontr&oacute; que a una concentraci&oacute;n de 0.1 mM de compuestos fen&oacute;licos puede reducir aproximadamente 0.3 equivalente Trolox (12). En el presente estudio el extracto acuoso de la variedad "Amarillo"" tuvo una efectividad de reducci&oacute;n del radical ABTS<sup>.&#43;</sup> equivalente a aproximadamente 0.35 equivalentes Trolox, este efecto puede ser explicado como que el ma&iacute;z utilizado en cada estudio procede de distintos or&iacute;genes adem&aacute;s de la variabilidad gen&eacute;tica de los mismos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inhibici&oacute;n del blanqueamiento de &#946;&#45;caroteno</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inhibici&oacute;n de las cadenas de reacci&oacute;n por los radicales libres en una emulsi&oacute;n de &aacute;cido linol&eacute;ico catalizada por H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> es com&uacute;nmente derivado del efecto barredor de los oxy&#45;radicales. En este sistema los extractos acuosos exhibieron mayor actividad antiradical que los extractos metan&oacute;licos al mismo nivel de compuestos fen&oacute;licos (<a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f3.jpg" target="_blank">Figura 3 A</a>, <a href="/img/revistas/ns/v2n3/a5f3.jpg" target="_blank">B</a>). Este efecto puede ser explicado por la polaridad de los extractos que tienen mayor capacidad de reducir los radicales oxy formados. Los extractos de las variedades moradas "AREQ5165OTL" y "Veracruz 42" y la variedad negra "N0O4c2" fueron los m&aacute;s efectivos para prevenir la co&#45;oxidaci&oacute;n de &#946;&#45;caroteno en este sistema. Sin embargo, tambi&eacute;n existe menor habilidad para distinguir entre la actividad antiradical de los extractos acuosos y metan&oacute;licos. La actividad anti&#45;radical en este ensayo, entre las variedades utilizadas no se encuentra relacionanda con la cantidad de compuestos fen&oacute;licos o antocianinas presentes en el extracto. Por ejemplo, altos niveles de retenci&oacute;n de &#946;&#45;caroteno fueron observados por los extractos de la variedad negra "M3n2c2" y roja "M5IG04", aunque las concentraciones de antocianinas se encuentren entre las m&aacute;s bajas de los fenotipos estudiados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analizaron diversas variedades de ma&iacute;z mexicano y las actividades antioxidantes de sus extractos. Aunque el perfil espec&iacute;fico de compuestos fen&oacute;licos y antocianinas en las muestras se encuentran relacionadas a las actividades antioxidantes observadas, existe una relaci&oacute;n general entre el contenido de antocianinas y el nivel de actividad antioxidante relativa. Los fenotipos morados que mostraron mayor cantidad de antocianinas totales fueron AREQ51654TL y Veracruz 42 las cuales consistentemente exhiben la mayor capacidad antioxidante. Estas variedades son objeto de estudios m&aacute;s profundos sobre su efecto potencial como promotores de la salud, as&iacute; como de la identificaci&oacute;n de cu&aacute;les de los compuestos fen&oacute;licos son responsables de las actividades antioxidantes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1.&#45; Abdel&#45;Aal, E.E. (1999). A rapid method for quantifying total anthocyanins in blue aleurone and purple pericarp wheats. <i>Cereal Chemistry</i> 76(13), 350&#45;354. (6).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559850&pid=S2007-0705201000010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2.&#45; Brack&#45;Egg, A. (1999). <i>Zea mays</i> L. In Diccionario enciclop&eacute;dico de plantas &uacute;tiles en Per<span style="font-size:10.0pt;font-family:&quot;Verdana&quot;,&quot;sans-serif&quot;">&uacute;</span>. (p537&#45;538). Cuzco, Per&uacute;: Imprenta del Centro Bartolom&eacute; de las Casas. (2).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559852&pid=S2007-0705201000010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3.&#45; Brand&#45;Willians, W., Cuvelier, M. E., &#38; Berset, C. (1995). Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. <i>Lebensmittel&#45;Wissenschaft Und Technologie&#45;Food Science and Technology,</i> 28(1), 25&#45;30. (7).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559854&pid=S2007-0705201000010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4.  De la Parra C., Serna&#45;Saldivar S.O. and Lui L. 2007. Effect of processing on the phytochemical profiles and antioxidant activity of corn for production of masa, tortillas and tortilla Chips. <i>Journal of Agricultural and Food Chemistry,</i> <b>55</b>(10): 4177&#45;4183. (1).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559856&pid=S2007-0705201000010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5.&#45; Kroon, P.A.,&#38; Williamson, G. (1999). Hydroxycinamates in plants and food: Current and future perspectives. <i>Journal of Agricultural and Food Chemistry,</i> <b>55</b>(10):4177&#45;4183. (3).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559858&pid=S2007-0705201000010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6.&#45; Kurilich, A. C.,&#38; Juvik, J. A. ( 1999). Quantification of carotenoids and tocopherol antioxidants in <i>Zea Mays. Journal of Agricultural Food Chemistry, 47,</i> 1948&#45;1955. (10).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559860&pid=S2007-0705201000010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7.&#45; Miller H.E. 1971. A simplified method for evaluation of antioxidants. <i>Journal of American Oil Chemists Society,</i> <b>1</b>:48&#45;91. (9).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559862&pid=S2007-0705201000010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8.&#45; Pellegrini G., Miller N. and Rice&#45;Evans C. A. 1999. Screening of dietary carotenoids and carotenoid&#45;rich fruit extracts for antioxidant activities applying 2, 2''&#45;azinobis (3&#45;ethylenbenzothiazoline&#45;6&#45;sulfonic acid) radical cation) decolorization assay. In: Packer L. editor. Methods in Enzymology, Vol. 299, Oxidants and antioxidants. Part A, New York. Academic Press pp. 379&#45;389. (8).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559864&pid=S2007-0705201000010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9.&#45; Vinson J.A., Hao Y., Su X. and Zubik L. 1998. Phenol antioxidant quantity and qualityin foods: vegetables, <i>Journal of Agricultural and Food Chemistry,</i> <b>46:</b> 3630&#45;3634. (5).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559866&pid=S2007-0705201000010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10.&#45; Wettasinghe M., Bolling B. and Plahk L. 2002. Screening for Phase II enzyme&#45;inducing and antioxidant activities of common vegetables. <i>Journal of Food Science,</i> <b>67:</b> 2583&#45;2588 (12).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559868&pid=S2007-0705201000010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11.&#45; Zheng W. and Wang S.Y. 2003. Oxygen radical absorbing capacity of phenolics in blueberries, cranberries, chokeberries, and lingonberries. <i>Journal of Agricultural and Food Chemistry,</i> <b>51</b>:502&#45;509. (11).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5559870&pid=S2007-0705201000010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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