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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias farmacéuticas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Análisis de ácido elágico en algunas plantas del semidesierto Mexicano]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma de Coahuila Facultad de Ciencias Químicas Departamento de Investigación en Alimentos]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro Departamento de Ciencia y Tecnología de Alimentos ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This work has been developed to evaluate the Coahuila semi-desert plants potential such as gobernadora (Larrea tridentata Cov.), candelilla (Euphorbia antisyphilitica Zucc.), hojasen (Fluorensia cernua D.C.), pomegranate husk (Punica granatum L.) in different rippening stages and dragon's blood (Jatropha dioica Cerv.), using them as ellagic acid sources to use it in food and pharmaceutical industries. This study showed ellagitannins and ellagic acid presence in the plants before mentioned. Ellagic acid quantification was carried out by Wilson-Hagerman & Lei methods. The results showed that the pomegranate husk and candelilla were the best sources of ellagitannins. The studies about the ellagic acid extraction from semi-desert plants are scarce, by this reason, this work is relevant in the matter.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Trabajo cient&iacute;fico</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>An&aacute;lisis de &aacute;cido el&aacute;gico en algunas plantas del semidesierto Mexicano</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Determination of ellagic acid in native plants from the Mexican semi&#45;desert</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Juan Alberto Ascacio&#45;Vald&eacute;s,<sup>1</sup> Antonio Aguilera&#45;Carb&oacute;,<sup>2</sup> Ra&uacute;l Rodr&iacute;guez&#45;Herrera,<sup>1</sup> Crist&oacute;bal Aguilar&#45;Gonz&aacute;lez<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Departamento de Investigaci&oacute;n en Alimentos, Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas, Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Ciencia y Tecnolog&iacute;a de Alimentos, Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dr. Juan Alberto Ascacio Vald&eacute;s    <br> 	Departamento de Investigaci&oacute;n en Alimentos    <br> 	Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas    <br> 	Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila    <br> 	Blvd Venustiano Carranza y Jos&eacute; C&aacute;rdenas Vald&eacute;s, CP.    <br> 	25280, Saltillo Coahuila, M&eacute;xico.    <br> 	Tel: 844 416 12 38. Fax: 844 415 95 34    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	e&#45;mail: <a href="mailto:alberto_ascaciovaldes@uadec.edu.mx">alberto_ascaciovaldes@uadec.edu.mx</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 29 de octubre de 2012.    <br> 	Fecha de recepci&oacute;n de modificaciones: 21 de marzo de 2013.    <br> 	Fecha de aceptaci&oacute;n: 9 de mayo de 2013.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo se desarroll&oacute; para evaluar el potencial de plantas del semidesierto mexicano, la gobernadora (<i>Larrea tridentata</i> Cov.), candelilla (<i>Euphorbia antisyphilitica</i> Zucc.), hojas&eacute;n (<i>Flourensia cernua</i> D.C.), c&aacute;scara de granada (<i>P&uacute;nica granatum</i> L.) en diferentes estados de maduraci&oacute;n y sangre de drago (<i>Jatropha dioica</i> Cerv.), usando &eacute;stas, como fuentes de obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico para su aplicaci&oacute;n en la industria famac&eacute;utica. Este estudio demostr&oacute; la presencia de elagitaninos y &aacute;cido el&aacute;gico en las plantas mencionadas. La cuantificaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico se realiz&oacute; con las metodolog&iacute;as reportadas por Wilson&#45;Hagerman y Lei. Los resultados obtenidos mostraron la c&aacute;scara de granada y la candelilla fueron las fuentes con mayor contenido de elagitaninos. Los estudios sobre extracci&oacute;n de elagitaninos y &aacute;cido el&aacute;gico de plantas del semidesierto son escasos, por esto, el presente estudio es relevante en este t&oacute;pico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> plantas del semidesierto, &aacute;cido el&aacute;gico, elagitaninos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">This work has been developed to evaluate the Coahuila semi&#45;desert plants potential such as gobernadora (<i>Larrea tridentata</i> Cov.), candelilla (<i>Euphorbia antisyphilitica</i> Zucc.), hojasen (<i>Fluorensia cernua</i> D.C.), pomegranate husk (Punica granatum L.) in different rippening stages and dragon's blood (<i>Jatropha dioica</i> Cerv.), using them as ellagic acid sources to use it in food and pharmaceutical industries. This study showed ellagitannins and ellagic acid presence in the plants before mentioned. Ellagic acid quantification was carried out by Wilson&#45;Hagerman &amp;&nbsp;Lei methods. The results showed that the pomegranate husk and candelilla were the best sources of ellagitannins. The studies about the ellagic acid extraction from semi&#45;desert plants are scarce, by this reason, this work is relevant in the matter.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> semi&#45;desert plants, ellagic acid, ellagitannins.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido el&aacute;gico es una mol&eacute;cula de naturaleza fen&oacute;lica que puede estar presente en forma libre en algunas especies vegetales como producto del metabolismo de las mismas, o bien puede encontrarse a partir de sus precursores, los elagitaninos.<sup>1</sup> El subgrupo de los elagitaninos pertenece a un gran grupo de compuestos polifen&oacute;licos conocidos como taninos, que tambi&eacute;n provienen del metabolismo secundario de los vegetales.<sup>2</sup> Los elagitaninos poseen en su estructura un grupo conocido como HHDP (6'6 dicarbonil 3'3, 4'4, 5'5 hexahidroxidif&eacute;nico o bien, &aacute;cido hexahidroxidif&eacute;nico),<sup>3</sup> el cu&aacute;l es caracter&iacute;stico de los elagitaninos, y que cuando se encuentran en presencia de &aacute;cidos o bases fuertes se hidroliza y se libera el &aacute;cido HHDP de los elagitaninos, el cual, sufre una reacci&oacute;n de lactonizaci&oacute;n espont&aacute;nea que da origen a la mol&eacute;cula conocida como &aacute;cido el&aacute;gico.<sup>3</sup> (<a href="#f1">Figura 1</a>)</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n2/a6f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido el&aacute;gico es una mol&eacute;cula muy estable (tiene un punto de fusi&oacute;n de 350&deg;) y por su naturaleza fen&oacute;lica tiende a reaccionar formando complejos con otras mol&eacute;culas como prote&iacute;nas, alcaloides y polisac&aacute;ridos. En vista de &eacute;stas propiedades que posee el &aacute;cido el&aacute;gico con el paso del tiempo se han realizado distintos trabajos de investigaci&oacute;n, trabajos como el de Huang y colaboradores,<sup>4</sup> Vattem y Shetty<sup>5</sup> en los cuales se han evaluado dichas propiedades y los resultados reportados y publicados han sido realmente interesantes. Se ha encontrado que el &aacute;cido el&aacute;gico posee propiedades que act&uacute;an en contra de agentes que pueden resultar nocivos para la salud, como lo son los radicales libres<sup>6</sup> que son los responsables de procesos como la oxidaci&oacute;n que se puede representar como el proceso de envejecimiento de las c&eacute;lulas del organismo, la presencia de radicales libres tambi&eacute;n representa un riesgo en la formaci&oacute;n tumores y distintas formas de c&aacute;ncer,<sup>7</sup> el &aacute;cido el&aacute;gico se ha reportado como un producto efectivo en contra de estos agentes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En vista de lo anterior, la presente investigaci&oacute;n busca satisfacer las necesidades de obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico mediante el empleo de especies vegetales que son nativas de nuestra regi&oacute;n lo que implica que no se necesitan inversiones para su producci&oacute;n, adem&aacute;s de proporcionarles un valor agregado, son accesibles, f&aacute;ciles de procesar y de adquirir, por lo cual se seleccionaron especies vegetales como el hojas&eacute;n, la gobernadora, la candelilla, la c&aacute;scara de granada y sangre de drago, que pueden resultar altamente atractivas como fuentes de obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emplearon como fuentes vegetales muestras de plantas nativas el semidesierto mexicano como gobernadora (<i>Larrea tridentata</i> Cov.), la candelilla (<i>Euphorbia antisyphilitica</i> Zucc), el hojas&eacute;n (<i>Fluorencia cernua</i> D.C.), la c&aacute;scara de granada (<i>P&uacute;nica granatum</i> L.) en diferentes estadios de maduraci&oacute;n y finalmente sangre de drago (<i>Jatropha dioica</i> Cerv.). Las plantas de gobernadora, candelilla, hojas&eacute;n y sangre de drago fueron recolectados en el ejido el Forl&oacute;n, en el kil&oacute;metro 66 de la carretera Saltillo&#45;Monclova, Coahuila, M&eacute;xico. Los frutos de granada fueron recolectados en una huerta en el municipio de Sabinas, Coahuila, M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las determinaciones de &aacute;cido el&aacute;gico en las muestras vegetales se llevaron a cabo mediante el uso de dos metodolog&iacute;as reportadas en la literatura.<sup>8,9</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n cuantitativa de &aacute;cido el&aacute;gico con H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 2N<sup>8</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para llevar a cabo &eacute;sta determinaci&oacute;n se pesaron 10 mg de muestra seca y molida de cada una de las plantas a analizar y se pasaron a un tubo Eppendorf de 1.5 mL de capacidad, cada muestra por triplicado, despu&eacute;s se les adicionaron 1 mL de &aacute;cido sulf&uacute;rico 2N y se llevaron a una estufa de calentamiento a una temperatura de 70&deg; C por un periodo de 30 horas para llevar a cabo la hidr&oacute;lisis de los taninos hidrolizables presentes en las muestras. Despu&eacute;s de que el tiempo de hidr&oacute;lisis transcurri&oacute;, las muestras en los tubos fueron filtradas a un tubo de ensaye empleando filtros Whatman n&uacute;mero 40. Al filtrado de cada muestra se le agregaron 9 mL de piridina para obtener as&iacute; una diluci&oacute;n 1:10 en donde el &aacute;cido el&aacute;gico se encuentra cristalizado. De &eacute;stas diluciones se tom&oacute; 1mL y se pas&oacute; a otros tubo de ensaye y despu&eacute;s se adicionaron 1.1 mL de piridina y posteriormente se llevaron a un ba&ntilde;o de hielo por 5 minutos en donde fueron agregados 0.1 mL de HCl concentrado a cada tubo, se incubaron r&aacute;pidamente en un ba&ntilde;o mar&iacute;a a 30&deg; C por 5 minutos. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n se les agreg&oacute; a cada tubo 0.1 mL de nitrito de sodio 1% (p/v) y se registr&oacute; r&aacute;pidamente la lectura de absorbancia en un espectrofot&oacute;metro (BioMate, modelo 3) a 538 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de que se registr&oacute; &eacute;sta lectura los tubos se llevaron nuevamente a incubar en un ba&ntilde;o mar&iacute;a a 30&deg; C por 36 minutos y se registr&oacute; nuevamente la lectura de absorbancia. Finalmente se obtuvo la diferencia entre la lectura final (36 minutos) y la lectura inicial (5 minutos), la diferencia entre las lecturas que se obtuvieron a los dos tiempos de incubaci&oacute;n es proporcional a la concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico presente en las muestras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n cuantitativa de &aacute;cido el&aacute;gico con &aacute;cido clorh&iacute;drico metan&oacute;lico<sup>9</sup></b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para llevar a cabo &eacute;sta determinaci&oacute;n, se pesaron 30 mg de material vegetal seco y molido y se colocaron en tubos de ensaye con tap&oacute;n de rosca y empaque para evitar la evaporaci&oacute;n de los disolventes utilizados en &eacute;sta t&eacute;cnica. Se adicionaron 1.5 mL de &aacute;cido clorh&iacute;drico metan&oacute;lico (&eacute;ste reactivo se prepara adicionando 0.190 mL de cloruro de acetilo al 98% por cada mL de metanol que se requiera), la adici&oacute;n de &eacute;ste reactivo se llev&oacute; a cabo en un congelador a &#45;20&deg; C, despu&eacute;s los tubos cerrados herm&eacute;ticamente se colocaron en una estufa de calentamiento por 30 horas a una temperatura de 70&deg; C, luego las muestras fueron destapadas y puestas de nuevo en la estufa de calentamiento bajo las mismas condiciones, para evaporar los disolventes que se utilizaron para realizar la hidr&oacute;lisis de las muestras. Luego de que los disolventes fueron evaporados a cada tubo se le adicionaron 1.5 mL de agua y se pasaron a tubos Eppendorf de 1.5 mL de capacidad y se sometieron a centrifugaci&oacute;n a 6000 rpm por 30 minutos (centrifuga Sigma modelo 1&#45;14), esto para eliminar los compuestos hidrosolubles presentes en las muestras. Despu&eacute;s de la centrifugaci&oacute;n de las muestras, los sobrenadantes fueron descartados y a los precipitados se les adicionaron 1.5 mL de etanol, luego las muestras se sometieron a vibraci&oacute;n s&oacute;nica por 20 minutos (sonicador Branson modelo 2510). Despu&eacute;s de &eacute;ste protocolo de extracci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico, se tomaron 0.75 mL de cada muestra, se filtraron por membranas de 0.45 &#956;m y se colocaron en viales de vidrio de 1.8 mL de capacidad y a cada vial se les agregaron 0.75 mL de etanol, el cual tambi&eacute;n se filtr&oacute; por membranas de 0.45 &#956;m para obtener as&iacute; una diluci&oacute;n 1:2 de cada muestra en los viales que despu&eacute;s fueron analizados por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (HPLC), para determinar la concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico en las muestras se prepar&oacute; una curva de calibraci&oacute;n a partir de una soluci&oacute;n madre de &aacute;cido el&aacute;gico de 0 a 500 ppm. Para este an&aacute;lisis se utiliz&oacute; un equipo para HPLC Varian ProStar 430 (Palo Alto, California, U.S.A.), con una bomba trif&aacute;sica, un automuestreador modelo 410, y un detector UV&#45;vis con arreglo de diodos, la columna que se emple&oacute; para el an&aacute;lisis fue una Varian Pursuit XRs c18, 4.6 mm x 250 mm, un flujo de 1 mL/min y un volumen de inyecci&oacute;n de 10 <i>&#956;</i>L por muestra. Las fases m&oacute;viles de an&aacute;lisis fueron A= metanol (fase de lavado), B= Acetonitrilo y C= &Aacute;cido ac&eacute;tico 3%, son los siguientes gradientes de eluci&oacute;n 0&#45;10 min 100% C, 10&#45;20 min 20% B 80% C, 20&#45;25 min 30% B 70% C, 25&#45;26 min 60% B 40% C, 26&#45;31 min 30% B 70% C, 31&#45;40 100% C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se trabajaron y evaluaron cinco fuentes vegetales recolectadas del semidesierto mexicano para la determinaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico mediante el empleo de hidr&oacute;lisis qu&iacute;mica &aacute;cida. Los resultados obtenidos son presentados a continuaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n cuantitativa de &aacute;cido el&aacute;gico con H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 2N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez que se llev&oacute; a cabo la hidr&oacute;lisis de los materiales vegetales a evaluar con H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 2N a una temperatura de 70&deg; C por 30 h, se obtuvieron concentraciones de &aacute;cido el&aacute;gico (mgg&#45;1), las cuales se presentan en la <a href="#t1">tabla 1</a>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n2/a6t1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cantidades de &aacute;cido el&aacute;gico encontradas en algunas fuentes vegetales evaluadas son bastante importantes, Wilson y Hagerman<sup>8</sup> reportaron, empleando el m&eacute;todo desarrollado por ellos, que encontraron concentraciones de 1.02 % de &aacute;cido el&aacute;gico por peso seco de hojas de roble blanco (<i>Quercus alba</i>), y en este trabajo se report&oacute; que para la c&aacute;scara de granada en estado maduro (c&aacute;scara roja) se obtuvo una concentraci&oacute;n de 85.5 mg/g de &aacute;cido el&aacute;gico lo que representado en porcentaje equivale a un 8.5% de &aacute;cido el&aacute;gico por gramo de c&aacute;scara, lo demuestra que en el caso de la granada resulta una fuente de obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico y que el m&eacute;todo reportado por ellos es tambi&eacute;n un buen m&eacute;todo de cuantificaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico, Seeram y colaboradores,<sup>10</sup> reportaron valores de 85% de elagitaninos de polifenoles totales de c&aacute;scara de granada y 1.3% de &aacute;cido el&aacute;gico. Las otras fuentes vegetales evaluadas en este trabajo tambi&eacute;n superan las cantidades reportadas por &eacute;ste equipo de investigaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n cuantitativa de &aacute;cido el&aacute;gico con &aacute;cido clorh&iacute;drico metan&oacute;lico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; una hidr&oacute;lisis qu&iacute;mica de los materiales vegetales a estudiar utilizando &aacute;cido clorh&iacute;drico metan&oacute;lico a una temperatura de 70&deg; C por un per&iacute;odo de tiempo de 30 horas, las concentraciones obtenidas de &aacute;cido el&aacute;gico por gramo de planta empleada (mg/g) son reportadas a continuaci&oacute;n en la <a href="#t2">tabla 2</a>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n2/a6t2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhentian Lei y colaboradores<sup>9</sup> reportaron bajo la t&eacute;cnica que ellos desarrollaron, que despu&eacute;s de haber tratado muestras de roble blanco y casta&ntilde;a obtuvieron concentraciones de &aacute;cido el&aacute;gico de 0.37% para roble blanco y 1.04% para el &aacute;rbol de la casta&ntilde;a, en este trabajo se obtuvo para la c&aacute;scara de granada (c&aacute;scara verde) un resultado de 145.8 mg de &aacute;cido el&aacute;gico por gramo de planta, lo que representado en porcentaje equivale a un 14.5% de &aacute;cido el&aacute;gico por gramo de planta, sin embargo &eacute;sta no fue la &uacute;nica fuente vegetal evaluada de la que se obtuvo &aacute;cido el&aacute;gico, las otras fuentes que se analizaron en este trabajo tambi&eacute;n superan claramente a los resultados reportados por Lei y colaboradores.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cuanto al contenido de &aacute;cido el&aacute;gico en las fuentes vegetales tratadas, para el caso de la c&aacute;scara de granada (<i>P&uacute;nica granatum</i> L.), que result&oacute; la fuente de obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico mas importante en el presente trabajo, las concentraciones de &aacute;cido el&aacute;gico obtenidas fueron distintas, esto debido a que se utilizaron c&aacute;scaras de granada en diferentes estadios de maduraci&oacute;n (verde, turning y roja), lo que deja de manifiesto que el estado de maduraci&oacute;n de la granada juega un papel muy importante en cuanto al contenido de elagitaninos y de &aacute;cido el&aacute;gico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabe mencionar que las muestras tratadas en este trabajo son buenas fuentes para la obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico, tambi&eacute;n es importante mencionar que los resultados obtenidos en el trabajo mostraron que algunas de las muestras evaluadas no registraron buenos t&iacute;tulos de &aacute;cido el&aacute;gico, como en el caso de la <i>Jatropha dioica</i> en la cual, se registraron las concentraciones de &aacute;cido el&aacute;gico m&aacute;s bajas por los dos m&eacute;todos empleados para el presente trabajo (7.9 mg/g de &aacute;cido el&aacute;gico para el m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico y 8.3 mg/g de &aacute;cido el&aacute;gico para el m&eacute;todo cromatogr&aacute;fico), esto debido a que el contenido de elagitaninos en esta especie vegetal no es muy elevado y por ende la concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico tambi&eacute;n es baja.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con los resultados obtenidos en este trabajo, se puede decir que los m&eacute;todos empleados para llevar a cabo la hidr&oacute;lisis qu&iacute;mica del material vegetal son confiables (de acuerdo con el an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n que se realiz&oacute; sobre las metodolog&iacute;as empleadas en el presente trabajo), sin embargo, en el caso del m&eacute;todo de Lei y colaboradores,<sup>8</sup> los resultados arrojaron mayores rendimientos en cuanto a concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico, incluso que con el empleo del m&eacute;todo de Wilson y Hagerman,<sup>9</sup> esto puede ser debido a que el agente hidrolizante que se emple&oacute; en el m&eacute;todo de Lei (HCl metan&oacute;lico) sea m&aacute;s fuerte que el empleado para el m&eacute;todo de Wilson y Hagerman (H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 2N) y por lo tanto la liberaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico registrada fue mayor. Tambi&eacute;n se puede hablar de una sensibilidad mayor en la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico en el m&eacute;todo de Lei ya que la determinaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico, en este caso, se llev&oacute; a cabo por cromatograf&iacute;a liquida de alta resoluci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las metodolog&iacute;as empleadas en este trabajo permitieron una obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico bastante significativa (tomando en cuenta las concentraciones de &aacute;cido el&aacute;gico reportadas), y a pesar de que son dos m&eacute;todos diferentes se puede decir que son confiables para la determinaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La relevancia de proponer fuentes alternativas para la recuperaci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico ha ganado gran importancia actualmente, ya que se ha demostrado que este compuesto de origen fen&oacute;lico posee importantes propiedades biol&oacute;gicas con potencial aplicaci&oacute;n en la industria farmac&eacute;utica, porque se ha demostrado que el &aacute;cido el&aacute;gico posee actividad como antioxidante, antimicrobiana y antitumoral. Se menciona que el &aacute;cido el&aacute;gico reacciona con un t&iacute;pico carcinog&eacute;nico, el benzo&#91;a&#93;pireno&#45;7,8&#45;diol&#45;9,10&#45;epoxido (BPDE), reacci&oacute;n en la cual el &aacute;cido el&aacute;gico act&uacute;a como un quimioprotector contra c&aacute;nceres provocados por compuestos arom&aacute;ticos policiclicos,<sup>7</sup> inhibiendo la mutaci&oacute;n de c&eacute;lulas sanas, paso inicial en el desarrollo del c&aacute;ncer. El &aacute;cido el&aacute;gico ha sido evaluado como agente farmac&eacute;utico en pruebas de reducci&oacute;n de multiplicidad de tumores en vejiga de rat&oacute;n por administraci&oacute;n oral en la dieta.<sup>11</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido el&aacute;gico ha sido reportado como antimicrobiano, debido a su efecto sobre bacterias, hongos y par&aacute;sitos. Se ha encontrado que algunos extractos de la planta <i>Pteleopsis hylodendron,</i> principalmente derivados del &aacute;cido el&aacute;gico, presentan actividad contra determinadas bacterias pat&oacute;genas, tales como <i>Klebsiella pneumoniae, Bacillus cereus, Escherichia coli, Salmonella typhi</i> y <i>Salmonella pyogenes.</i><sup>11</sup> De la planta Punica granatum L.<sup>13</sup> se obtuvieron extractos los cuales mostraron la capacidad de inhibir el crecimiento de <i>Pseudomonas aeruginosa</i> y <i>Bacillus subtilis</i> en concentraciones de 70 mg/mL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general el potencial biol&oacute;gico del &aacute;cido el&aacute;gico ha sido evaluado y demostrado, lo cual potencializa su aplicaci&oacute;n en distintas ramas de la industria, como por ejemplo, la industria farmac&eacute;utica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se puede concluir que la mejor fuente de obtenci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico es la c&aacute;scara de granada en sus diferentes estadios de maduraci&oacute;n, siendo este factor determinante en la concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico. A su vez, se puede mencionar que la candelilla es la mejor fuente no convencional de &aacute;cido el&aacute;gico y la fuente con la menor concentraci&oacute;n de &aacute;cido el&aacute;gico es la sangre de drago. En general, los materiales vegetales que se encuentran en el semidesierto Coahuilense son una fuente confiable de &aacute;cido el&aacute;gico, fuentes que pueden ser explotadas de una manera sustentable para obtener compuestos de alto valor agregado y brindarles una aplicaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT), por el apoyo brindado para la realizaci&oacute;n del presente estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Carretero&#45;Accame ME. Compuestos fen&oacute;licos: Taninos. Panorama Actual Med. 2000; (235): 633&#45;636.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917590&pid=S1870-0195201300020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Bala I, Bhardway V, Hariharan S, Kumar MNVR. Analytical methods for assay of ellagic acid and its solubility studies. J Pharm biomed anal. 2006; (40): 206&#45;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917592&pid=S1870-0195201300020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3.&nbsp;Khanbabaee K and van Ree T. Tannins : Classification and definition. Nat Prod Rep. 2001; (18): 641&#45;649.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917594&pid=S1870-0195201300020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Huang W, Ni J and Borthwick A. Biosynthesis of tannin hidrolase and hydrolysis of valonia tannin to ellagic acid by Aspergillus SHL 6. Process Biochem. 2005; (40): 1245&#45;1249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917596&pid=S1870-0195201300020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Vattem DA and Shetty K. Solid&#45;state production of phenolics antioxidants from cranberry pomace by Rizhopus oligosporus. Food Biotechnology. 2003; (3): 189&#45;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917598&pid=S1870-0195201300020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Priyadarsini KI, Khopde SM, Kumar SS, Mohan H. Free Radical Studies of Ellagic Acid, a Natural Phenolic Antioxidant. J Agric Food Chem. 2002; (50): 2200&#45;2260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917600&pid=S1870-0195201300020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Huetz P, Mavaddat N and Mavri J. Reaction between Ellagic Acid and an Ultimate Carcinogen. J Chem Inf Model. 2005; (45): 1564&#45;1570.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917602&pid=S1870-0195201300020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8.&nbsp;Wilson TC and Hagerman A. Quantitative determination of ellagic acid. J Agric Food Chem. 1990; (38): 1678&#45;1683.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917604&pid=S1870-0195201300020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9.&nbsp;Lei Z, Jervis J y Helm RF. Use of methanolysis for the determination of total ellagic and gallic acid contents of woods and food products. J Agric Food Chem. 2001; (49): 1165&#45;1168.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917606&pid=S1870-0195201300020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Seeram N, Lee R y Herber D. Rapid large scale purification of ellagitannins form pomegranate husk, a by&#45;product of the commercial juice industry. Sep Purif Technology. 2005; (41): 49&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917608&pid=S1870-0195201300020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Kellof GJ, Boone CW, Crowell JA, Steele VE, Luber R, Sigman CC. Chemopreventive drug development: perspectives and progress. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 1994; (3): 85&#45;98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917610&pid=S1870-0195201300020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Atta&#45;Ur&#45;Rahman NFN, Choudhary MI, Malik S, Makhmoor T, Nur&#45;E&#45;Alam, Zareen S, Lontsi D, Ayafor JF, Sondengam BL. New antioxidant and antimicrobial ellagic acid derivates from Pteleopsis hylodendron. Plant Med. 2001; (67): 335&#45;339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917612&pid=S1870-0195201300020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Nascimento GGF, Locatelli J, Freitas PC, Silva GL, Antibacterial activity of plant extracts and phytochemical on antibiotic&#45;resistant bacteria. Braz J Microbiol. 2000; (31): 247&#45;256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7917614&pid=S1870-0195201300020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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