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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="Verdana" size="4">Otras comunicaciones</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Problema bioqu&iacute;mico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Elizabeth Lira Silva y Ricardo Jasso Ch&aacute;vez</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Departamento de Bioqu&iacute;mica, Instituto Nacional de Cardiolog&iacute;a.</i> Correo: <a href="mailto:eli_lira_sil@hotmail.com">eli_lira_sil@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cin&eacute;tica enzim&aacute;tica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cin&eacute;tica enzim&aacute;tica. Efecto del pH</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las enzimas microbianas han reemplazado a los catalizadores qu&iacute;micos utilizados en la industria qu&iacute;mica, farmac&eacute;utica, alimenticia y textil debido a que su proceso de producci&oacute;n es m&aacute;s amigable con el ambiente comparado con los procesos utilizados con anterioridad. En la actualidad dichas enzimas tienen un gran potencial a nivel industrial, un ejemplo de ello son las proteasas alcalinas que se utilizan preferencialmente como aditivos en la formulaci&oacute;n de detergentes sobre compuestos sint&eacute;ticos, debido a su capacidad para degradar manchas prote&iacute;nicas como sangre, chocolate y leche (1). Dos tercios de las proteasas producidas a nivel industrial son de origen microbiano, entre los que destacan principalmente el g&eacute;nero <i>Bacillus sp.</i> Las proteasas utilizadas deben tener un alto nivel de actividad y estabilidad en un amplio intervalo de pH y temperatura, por lo que es importante implementar estrategias para su obtenci&oacute;n con la finalidad de incrementar su rendimiento. En este sentido, se implement&oacute; el uso de lodos residuales para la producci&oacute;n de proteasas alcalinas a partir de <i>Bacillus licheniformis</i>, para lo cual se llev&oacute; a cabo la recuperaci&oacute;n y purificaci&oacute;n de la proteasa a partir del filtrado del cultivo fermentado. La eficacia de la enzima se ha examinado en presencia de detergentes comerciales est&aacute;ndar y se determin&oacute; que su m&aacute;xima actividad fue a 60 &deg;C, manteniendo el 97 % de su actividad durante 180 min de incubaci&oacute;n y que la presencia de Ca<sup>2+</sup> y Mn<sup>2+</sup> incrementaron la actividad (2).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la enzima se determin&oacute; por el m&eacute;todo modificado de Kunitz (2), midiendo a 275 nm la producci&oacute;n de tirosina liberada a partir de la hidr&oacute;lisis de case&iacute;na. Se incub&oacute; 1 mL de la enzima diluida con 5 mL de case&iacute;na (1.2 % p/v) por 10 min a 37&deg; C a diferentes valores de pH. El intervalo de pH se realiz&oacute; utilizando diferentes amortiguadores; acetato (pH 5), fosfato (pH 6&#45;7), borato (pH 8&#45;9), bicarbonato (pH 10), Robinson y Stokes (Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> + NaOH) (pH 11&#45;12). La reacci&oacute;n se detuvo por la adici&oacute;n e incubaci&oacute;n de la mezcla con 5 mL de &aacute;cido tricloroac&eacute;tico (TCA) al 10 % (w/v) para desnaturalizar y precipitar la prote&iacute;na no hidrolizada. Una unidad internacional de actividad (IU) se define como la cantidad de enzima requerida para liberar 1 &micro;mol (181.2 &micro;g) de tirosina/min a partir de case&iacute;na a pH 8.2 y 37&deg; C. La tabla 1 muestra la actividad de la proteasa alcalina de <i>B. licheniformis</i> a diferentes valores de pH.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los valores obtenidos determinar:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. la V<i><sub>max</sub></i>, K<i><sub>m</sub></i> y la eficiencia catal&iacute;tica (V<i><sub>max</sub></i>/K<i><sub>m</sub></i>) a cada valor de pH del ensayo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. los valores de pK<i><sub>a</sub></i> e identificar los residuos de los amino&aacute;cidos involucrados en la uni&oacute;n y en la cat&aacute;lisis.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Renganathan Jayakumar , Shanmugam Jayashree, Balumuri Annapurna, Sundaram Seshadri (2012) Appl Biochem Biotechnol. DOI 10.1007/s12010&#45;012&#45;9902&#45;6.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Jyothi Bezawada, S Yan, Rojan P John, RD Tyagi, RY Surampalli (2011) Biotechnology Research International doi:10.4061/2011/238549.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Segel IH (1975) Enzyme Kinetics. John Wiley and Sons, New York. p.957</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6484973&pid=S1665-1995201300030000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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