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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Tolerancia a sequía y salinidad en Cucurbita pepo var. pepo asociada con hongos micorrízicos arbusculares del desierto sonorense]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) are used as biofertilizers because when colonizing the roots they can improve growth, production and plant water status. The potential benefit of host is higher with native AMF. In this study the effect of a mixed inoculum and a consortium of seven species of AMF native of the Sonoran Desert associated with Cucurbita pepo var. pepo planted with drought, and high and low salinity was evaluated. The response of these inocula was compared with AMF from a temperate region and the control. The experimental design was a completely random design and a factorial analysis was performed: 4 (three inocula and the control) × 2 (with and without stress) with low salinity or drought; for high saline stress data an ANOVA was applied. The variables analyzed were shoot and root dry weight, percentage of leaf moisture, water and osmotic potential, percentage of mycorrhized roots, mycelium in soil and total number of spores. It was found that mixed inoculum of native AMF decreased physiological stress in C. pepo var. pepo caused by drought and low salinity, while the consortium of seven species of native AMF improved response to high saline stress, compared with other treatments (p<0.05).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Recursos naturales renovables </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Tolerancia a sequ&iacute;a y salinidad en <i>Cucurbita pepo </i>var. <i>pepo </i>asociada con hongos micorr&iacute;zicos arbusculares del desierto sonorense</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Tolerance to drought and salinity by <i>Cucurbita pepo </i>var. <i>pepo </i>associated with arbuscular mycorrhizal fungi of the sonoran desert</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Citlalli Harris&#150;Valle<sup>1</sup>, Mart&iacute;n Esqueda<sup>1</sup>*, Elisa Valenzuela&#150;Soto<sup>1</sup>, Alejandro Castellanos<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Centro de Investigaci&oacute;n en Alimentaci&oacute;n y Desarrollo, A. C. 83000. Hermosillo, Sonora, M&eacute;xico. </i>(<a href="mailto:esqueda@ciad.mx">esqueda@ciad.mx</a>). <i>*Autor responsable.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Universidad de Sonora, Departamento de Investigaciones Cient&iacute;ficas y Tecnol&oacute;gicas. 83000. Hermosillo, Sonora, M&eacute;xico.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: octubre, 2010.     <br> Aprobado: octubre, 2011.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos micorr&iacute;zicos arbusculares (HMA) se usan como biofertilizantes porque al colonizar las ra&iacute;ces pueden mejorar el crecimiento, la producci&oacute;n y el estado h&iacute;drico de las plantas. El beneficio potencial del hospedero es mayor con HMA nativos. En este estudio se evalu&oacute; el efecto de un in&oacute;culo mixto y un consorcio de siete especies de HMA nativos del Desierto Sonorense asociados con <i>Cuc&uacute;rbita pepo </i>var. <i>pepo </i>cultivada con sequ&iacute;a, as&iacute; como alta y baja salinidad. La respuesta de estos in&oacute;culos se compar&oacute; con un HMA procedente de una regi&oacute;n templada y el testigo. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar y se hizo un an&aacute;lisis factorial 4 (tres in&oacute;culos y el testigo) &times; 2 (con y sin estr&eacute;s) con baja salinidad o sequ&iacute;a; para los datos de estr&eacute;s salino alto se aplic&oacute; un ANOVA. Las variables analizadas fueron peso seco v&aacute;stago y ra&iacute;z, porcentaje de humedad foliar, potenciales h&iacute;drico y osm&oacute;tico, porcentaje de ra&iacute;ces micorrizadas, micelio en suelo y n&uacute;mero total de esporas. Se encontr&oacute; que el in&oacute;culo mixto de HMA nativos disminuy&oacute; el estr&eacute;s fisiol&oacute;gico en <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>causado por la sequ&iacute;a y baja salinidad, mientras que el consorcio de siete especies de HMA nativos mejor&oacute; la respuesta al estr&eacute;s salino alto, comparado con los otros tratamientos (p<u>&lt;</u>0.05).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Cuc&uacute;rbita pepo </i>var. <i>pepo, </i>micorrizas, sequ&iacute;a, salinidad, potencial h&iacute;drico, potencial osm&oacute;tico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) are used as biofertilizers because when colonizing the roots they can improve growth, production and plant water status. The potential benefit of host is higher with native AMF. In this study the effect of a mixed inoculum and a consortium of seven species of AMF native of the Sonoran Desert associated with <i>Cucurbita pepo </i>var. <i>pepo </i>planted with drought, and high and low salinity was evaluated. The response of these inocula was compared with AMF from a temperate region and the control. The experimental design was a completely random design and a factorial analysis was performed: 4 (three inocula and the control) &times; 2 (with and without stress) with low salinity or drought; for high saline stress data an ANOVA was applied. The variables analyzed were shoot and root dry weight, percentage of leaf moisture, water and osmotic potential, percentage of mycorrhized roots, mycelium in soil and total number of spores. It was found that mixed inoculum of native AMF decreased physiological stress in <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>caused by drought and low salinity, while the consortium of seven species of native AMF improved response to high saline stress, compared with other treatments (p<u>&lt;</u>0.05).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Cuc&uacute;rbita pepo </i>var. <i>pepo, </i>mycorrhizae, drought, salinity, water potential, osmotic potential.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">hongos micorr&iacute;zicos arbusculares (HMA) encuentran en la mayor&iacute;a de los suelos y asocian con plantas, estableciendo una interacci&oacute;n simbi&oacute;tica obligada, mejorando la absorci&oacute;n de minerales y agua, y la tolerancia a distintos tipos de estreses abi&oacute;ticos y bi&oacute;ticos (Smith y Read, 2008). La simbiosis micorr&iacute;zica es poco espec&iacute;fica y la eficiencia de la interacci&oacute;n planta&#150;hongo var&iacute;a dependiendo de las especies asociadas o las caracter&iacute;sticas del ambiente (Piotrowski <i>et al., </i>2004; Bucher, 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rilling y Mummey (2006) se&ntilde;alan que los HMA mejoran el crecimiento y las relaciones h&iacute;dricas de las plantas a trav&eacute;s de cambios en la conductancia estom&aacute;tica y la transpiraci&oacute;n. Estos organismos incrementan el crecimiento, la supervivencia y el rendimiento de las plantas en condiciones de baja disponibilidad de agua, por lo que se consideran de alta importancia agr&iacute;cola y ecol&oacute;gica (Aug&eacute;, 2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respuesta de una planta micorrizada con la misma especie de HMA var&iacute;a seg&uacute;n las condiciones ambientales. Por ello ha aumentado el inter&eacute;s en estudiar la asociaci&oacute;n con HMA nativos. La inoculaci&oacute;n de consorcios de HMA procedentes de regiones semi&aacute;ridas en <i>Solanum tuberosum </i>L. y <i>Sorghum bicolor </i>(L.) Moench, mejoran el estado h&iacute;drico, la producci&oacute;n de biomasa y la calidad de la papa o sorgo, comparado con un aislado puro de <i>Glomus intraradices </i>N. C. Schenck &amp; G. S. Smith (Davies <i>et al., </i>2005; Cho <i>et al., </i>2006). En diferentes variedades de <i>Cucurbita pepo </i>L. la inoculaci&oacute;n con HMA mejora la producci&oacute;n total y el contenido de f&oacute;sforo en la planta (Lau <i>et al., </i>1995; Schroeder y Janos, 2005). Asimismo, la asociaci&oacute;n de <i>G. intraradices </i>con esta misma cucurbit&aacute;cea contrarresta los efectos perjudiciales del estr&eacute;s salino (Colla <i>et al., </i>2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pr&aacute;cticas de cultivo tradicionales como el monocultivo y la destrucci&oacute;n de la rizosfera por el arado, reducen las poblaciones de HMA que promueven la resistencia de los cultivos a la desecaci&oacute;n y aumentan aquellos con menor grado de adaptaci&oacute;n a esas condiciones (Boddington y Dodd, 2000). La Costa de Hermosillo (LCH), estado de Sonora, M&eacute;xico, es una regi&oacute;n agr&iacute;cola semi&aacute;rida donde la carencia de agua y la salinidad en los suelos ha ocasionado el abandono de poco m&aacute;s de 80 000 ha de cultivo (Halvorson <i>et al., </i>2003; Castellanos <i>et al., </i>2005). A&uacute;n as&iacute;, es una zona importante para la producci&oacute;n de hortalizas, entre las que destaca la calabaza italiana <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>con una producci&oacute;n de m&aacute;s de 9000 t (SAGARPA, 2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de HMA nativos del Desierto Sonorense, procedentes de campos salinos de LCH, en el crecimiento y balance h&iacute;drico de <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>cultivada en condiciones de estr&eacute;s salino y sequ&iacute;a. Los resultados se compararon con el efecto de <i>Glomus claroideum </i>N. C. Schenck &amp; G. S. Smith procedente de clima templado, con la finalidad de determinar si la utilizaci&oacute;n de biofertilizantes compuestos de HMA nativos de regiones semi&aacute;ridas son m&aacute;s efectivos para disminuir el efecto del estr&eacute;s por sequ&iacute;a y salinidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de in&oacute;culos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las esporas de HMA nativos se obtuvieron en suelos de campos salinos abandonados en LCH, Sonora. Los sitios presentaron salinidad de 5 dS m<sup>&#150;1</sup>, pH de 8, relaci&oacute;n de adsorci&oacute;n de sodio de 3, sodio intercambiable 3.5 % y 70 % de arena. Con la finalidad de incrementar el n&uacute;mero de esporas se cultiv&oacute; <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>en muestras de suelo procedentes de LCH, obteni&eacute;ndose un in&oacute;culo conformado por siete morfoespecies de HMA (In7): <i>Glomus </i>sp. 1 (103 esporas g<sup>&#150;1</sup>), <i>Glomus claroideum </i>(90 esporas g<sup>&#150;1</sup>), <i>Glomus intraradices </i>(34 esporas g<sup>&#150;1</sup>), <i>Pacispora </i>sp. 1 (27 esporas g<sup>&#150;1</sup>), <i>Glomus </i>sp. 2 (11 esporas g<sup>&#150;1</sup>), <i>Glomus </i>sp. 3 (10 esporas g<sup>&#150;1</sup>) y <i>Pacispora </i>sp. 2 (7 esporas g<sup>&#150;1</sup>). Las plantas se desarrollaron bajo una luz diurna &gt;800 lum m<sup>&#150;2</sup>, con un riego diario de 100 mL hasta la floraci&oacute;n. Para producir el in&oacute;culo mixto compuesto por dos morfoespecies (In2): <i>Glomus </i>sp. 1 (42 esporas g<sup>&#150;1</sup>) y <i>Glomus </i>sp. 3 (24 esporas g<sup>&#150;1</sup>), se inocularon 30&#150;50 esporas de cada morfoespecie por planta de sorgo usando suelo est&eacute;ril. Las plantas trampa crecieron a una temperatura y humedad relativa promedio de 25 &deg;C y 35 %, con iluminaci&oacute;n diurna &gt; 800 lum m<sup>&#150;2</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Condiciones de cultivo y tratamientos de inoculaci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se sembraron cinco semillas de <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>en 5 L de sustrato est&eacute;ril (5:2 turba negra: suelo) en macetas de 30 cm de di&aacute;metro&times;35 cm de alto. Las plantas se cultivaron hasta floraci&oacute;n con luz diurna de 850 lum m<sup>&#150;2</sup> durante 8 h, con humedad relativa y temperatura diurna promedio de 26.5 % y 23&#150;28 &deg;C. En cada tratamiento se usaron seis repeticiones y la unidad experimental fue de tres plantas por maceta. La temperatura, iluminaci&oacute;n y humedad del ambiente se monitore&oacute; con un equipo HOBO modelo 1996 serie 922811 (Lab Safety Supply, EE.UU.).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n se inici&oacute; 10 d despu&eacute;s de la siembra en todos los tratamientos y consisti&oacute; en inocular en cada planta 3 g In2, 1.5 g In7, 1 g de un in&oacute;culo con <i>G. claroideum </i>procedente de Hueyotlipan, estado de Tlaxcala (InG). Estas cantidades se definieron considerando 100&#150;150 esporas g <sup>1</sup> de la morfoespecie m&aacute;s abundante en cada in&oacute;culo. En el testigo (T0) se adicion&oacute; 1 g de suelo est&eacute;ril por planta para uniformizar el manejo de las unidades experimentales. Los tratamientos con estr&eacute;s se iniciaron 5 d despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, para estabilizar la interacci&oacute;n planta&#150;HMA.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estr&eacute;s por sequ&iacute;a</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En esta evaluaci&oacute;n se realizaron experimentos preliminares para conocer el volumen m&iacute;nimo de agua de riego que permitiera cultivar las plantas hasta floraci&oacute;n, evitando la muerte por desecaci&oacute;n. Dicho volumen fue 25&#150;50 mL diarios por maceta (2540 % de humedad). Para mantener una humedad de 50&#150;60 % en el sustrato se requirieron 100 mL d<sup>&#150;1</sup> de agua, con lo cual no se observ&oacute; s&iacute;ntomas de desecaci&oacute;n (condici&oacute;n sin estr&eacute;s).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estr&eacute;s salino bajo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se a&ntilde;adieron diariamente 100 mL de agua por maceta manteniendo una salinidad de 1.4&plusmn;0.43 dS m<sup>&#150;1</sup> para las plantas sin estr&eacute;s, y 100 mL de agua con NaCl 40 mM manteniendo una salinidad de 3.8&plusmn; 1.2 dS m<sup>&#150;1</sup> para las plantas con estr&eacute;s por salinidad baja.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estr&eacute;s salino alto</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los cuatro tratamientos se aplic&oacute; un riego diario de 100 mL de agua con NaCl 50 mM, manteniendo una salinidad promedio de 4.5 dS m <sup>1</sup> con variaciones entre 3.5 y 6 dS m<sup>&#150;1</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la respuesta</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El peso seco total del v&aacute;stago y radical se midi&oacute; colocando ambas partes de la planta en una estufa a 60 &deg;C por 72 h o hasta peso constante. Los porcentajes de humedad foliar se cuantificaron por diferencia entre peso fresco y seco de secciones de hojas. El potencial h&iacute;drico (&#936;) se registr&oacute; con una bomba de Scholander (PMS Instrument Co.). Las muestras se congelaron a &#151; 80 &deg;C para obtener el exudado intracelular del tejido foliar y medir el potencial osm&oacute;tico con un osm&oacute;metro (Wescor Vapor 5520). Los resultados de osmolaridad se convirtieron a potencial osm&oacute;tico con la ecuaci&oacute;n de Van't Hoff (&#936;<sub>s</sub> = &#151; CiRT).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las caracter&iacute;sticas de micorrizaci&oacute;n se evaluaron procesando las muestras con el m&eacute;todo de tamizado en h&uacute;medo. El n&uacute;mero total de esporas (NTE) se cuantific&oacute; con el m&eacute;todo de flotaci&oacute;n en sacarosa y visualizaci&oacute;n con un microscopio &oacute;ptico. Para medir el micelio externo se colocaron 0.02&#150;0.025 g de tamizado en un portaobjetos con glicerina y se cuantific&oacute; el n&uacute;mero de hifas encontradas a lo largo de cuatro l&iacute;neas uniformemente distribuidas en el cubreobjetos (Herrera&#150;Peraza <i>et al., </i>2004). La colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica (CM) se evalu&oacute; ti&ntilde;endo 100&#150;150 mg de ra&iacute;ces secas (45 &deg;C) con azul de tripano (Phillips y Hayman, 1970), calculando el porcentaje de ra&iacute;ces micorrizadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar en todos los experimentos. El estr&eacute;s por sequ&iacute;a y salinidad baja se analiz&oacute; con un arreglo factorial 4 (tres in&oacute;culos y el testigo)X 2 (con y sin estr&eacute;s) de tratamientos. Las diferencias significativas (p<u>&lt;</u>0.05) por la combinaci&oacute;n de factores se compararon con base en el error est&aacute;ndar. Para los datos de el estr&eacute;s salino alto se aplic&oacute; un ANOVA y las diferencias estad&iacute;sticas de las medias se compararon por el m&eacute;todo de Tukey&#150;Kramer (p<u>&lt;</u>0.05). Para todos los an&aacute;lisis estad&iacute;stico se us&oacute; NCSS versi&oacute;n 2006 (Hintze, 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estr&eacute;s por sequ&iacute;a</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo de <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>bajo condiciones de estr&eacute;s por sequ&iacute;a dur&oacute; 57 d, durante el cual ocurri&oacute; la floraci&oacute;n. El an&aacute;lisis factorial mostr&oacute; variaciones en el peso seco del v&aacute;stago (PSV) y de la ra&iacute;z (PSR), por el efecto combinado de la sequ&iacute;a y el in&oacute;culo de HMA (p<u>&lt;</u>0.05). Sin embargo la relaci&oacute;n v&aacute;stago:ra&iacute;z (V:R) cambi&oacute; &uacute;nicamente con o sin sequ&iacute;a, obteni&eacute;ndose los valores m&aacute;s altos en plantas sin estr&eacute;s (10&#150;25 %) <i>vs. </i>cultivadas con sequ&iacute;a (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el estr&eacute;s por sequ&iacute;a, las plantas inoculadas con las cepas nativas de HMA (In2 e In7) aumentaron el PSV en 0.03&#150;0.06 g en comparaci&oacute;n con los otros dos tratamientos; adem&aacute;s, con In2 e In7 aument&oacute; el PSR (&gt;0.05 g) vs. testigo (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Ruiz&#150;Lozano y Azc&oacute;n (2000) se&ntilde;alan que la presencia de HMA permite a las ra&iacute;ces de las plantas alcanzar un mayor crecimiento en comparaci&oacute;n con plantas no micorrizadas, debido a un aumento en la cantidad de nutrimentos transferidos al tejido radical.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estr&eacute;s por sequ&iacute;a y la presencia de los in&oacute;culos InG, In2 e In7, cambiaron significativamente el porcentaje de agua, el potencial osm&oacute;tico (&#936;<sub>s</sub>) y el h&iacute;drico (&#936;) de las plantas (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). La presencia de HMA nativos adaptados a condiciones de sequ&iacute;a mejora la capacidad fisiol&oacute;gica de las plantas para resistir la baja disponibilidad de agua en el suelo (Feire&#150;Cruz <i>et al., </i>2000; Marulanda <i>et al., </i>2006). Los tratamientos con In2 e In7 aumentaron el porcentaje de agua en las hojas en condiciones de baja disponibilidad de agua (&gt; 89 %) y hubo una cantidad similar de agua en las hojas de las plantas con y sin sequ&iacute;a (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro </a><a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg">1</a>). Las plantas expuestas a sequ&iacute;a e inoculadas con In2 presentaron los potenciales osm&oacute;ticos menores ( <b>&#151; </b>1.25 MPa), siendo similar a lo registrado con InG ( 1.3 MPa); en el testigo y con In7 se cuantific&oacute; un &#936;<sub>s</sub> de <b>&#151; </b>1.1 MPa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica en las ra&iacute;ces de <i>C. pepo </i>sin estr&eacute;s por sequ&iacute;a fueron mayores que en plantas con estr&eacute;s h&iacute;drico (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Lo anterior es similar a lo observado en <i>Triticum aestivum </i>L. inoculado con <i>Glomus etunicatum </i>W. N. Becker &amp; Gerd. o <i>Funneliformis mosseae </i>(T. H. Nicolson &amp; Gerd.) C. Walker &amp; A. Sch&uuml;bler, donde dichos porcentajes aumentaron cuando la disponibilidad de agua para la planta aument&oacute; de 50 a 405 mm de precipitaci&oacute;n pluvial durante el cultivo (Al&#150;Karaki <i>et al., </i>2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando la humedad en el suelo fue 25&#150;40 %, el n&uacute;mero total de esporas fue significativamente mayor con In2 <i>vs. </i>In7 con una diferencia de <b>&gt; </b>5 esporas g<sup>&#150;1</sup> de suelo, mientras que con InG se obtuvieron los valores menores (6.5&#150;10 esporas g<sup>&#150;1</sup> de suelo). Con In2 la cantidad de esporas no vari&oacute; en los tratamientos con o sin estr&eacute;s por sequ&iacute;a (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El micelio externo fue significativamente mayor con los HMA nativos <i>vs. </i>InG, obteni&eacute;ndose valores similares entre In2 e In7 con alrededor de 40 mg ME g <sup>1</sup> de suelo. El efecto positivo en el estado h&iacute;drico de las plantas y la mayor producci&oacute;n de micelio externo por las morfoespecies presentes en los in&oacute;culos de HMA nativos, puede estar relacionado con el incremento en la retenci&oacute;n de agua en el sustrato debido al aumento en la cantidad de micelio en el suelo como lo se&ntilde;alan Ben&#150;Khaled <i>et al. </i>(2003) y Aug&eacute; (2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estr&eacute;s salino bajo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta evaluaci&oacute;n dur&oacute; 47 d y el an&aacute;lisis factorial mostr&oacute; que el peso seco de la ra&iacute;z vari&oacute; significativamente por el estr&eacute;s salino. La presencia de sales en bajas concentraciones disminuy&oacute; de 0.05 a 0.1 g el crecimiento radical <i>vs. </i>tratamientos sin estr&eacute;s. Adem&aacute;s, el PSV, la V:R, el porcentaje de humedad foliar y el potencial h&iacute;drico fluctuaron con la condici&oacute;n de salinidad en el suelo y la presencia de los distintos in&oacute;culos (p<u>&lt;</u>0.05) (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El PSV fue aproximadamente 45 % m&aacute;s alto con la inoculaci&oacute;n de HMA nativos en relaci&oacute;n con InG y el testigo. Al comparar las plantas con y sin estr&eacute;s salino bajo se encontr&oacute; que con In2 e In7 el PSV aument&oacute; m&aacute;s de 7 g. Con los tratamientos In2 e In7 bajo estr&eacute;s salino, el PSR disminuy&oacute; 0.02 g para ambos comparados con InG. Adem&aacute;s el crecimiento radical se redujo de 0.05 a 0.1 g con respecto a los tratamientos sin estr&eacute;s. Con todos los in&oacute;culos la salinidad baja aument&oacute; la relaci&oacute;n V:R <i>vs. </i>condici&oacute;n no salina; con o sin estr&eacute;s los valores m&aacute;s altos se cuantificaron con In2 seguido de In7 (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los HMA nativos mejoraron el estado h&iacute;drico de las plantas al aumentar en m&aacute;s de 82 % el agua foliar en condiciones de salinidad baja, respecto a los otros dos tratamientos. El potencial osm&oacute;tico foliar en<b> </b><i>C. pepo </i>creciendo con salinidad de 3.8 dS m<sup>&#150;1</sup> fue similar con In7 e InG ( &#151;1.5 y &#151;1.6 MPa), siendo mayores a los cuantificados en In2 y el testigo (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de esporas de HMA de In7 e InG disminuy&oacute; con la condici&oacute;n de salinidad baja respecto a los cultivos sin estr&eacute;s, similar a lo observado en condiciones naturales en suelos salinos <i>vs. </i>no salinos (Carvalho <i>et al., </i>2003; Garc&iacute;a <i>et al., </i>2008). En los tratamientos con HMA nativos y salinidad baja (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>) se observ&oacute; que la cantidad de micelio externo fue 30 % mayor con respecto a InG, y los valores fueron similares entre In2 e In7 de <i>ca. </i>50 mg ME g<sup>&#150;1</sup> de suelo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estr&eacute;s salino alto</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con salinidad alta el PSV aument&oacute; m&aacute;s de 1 g y se duplic&oacute; la relaci&oacute;n V:R con In7 en comparaci&oacute;n con el testigo. El porcentaje de agua en las hojas y el potencial h&iacute;drico se evalu&oacute; s&oacute;lo con baja salinidad porque la alta salinidad da&ntilde;&oacute; las hojas, lo cual no permiti&oacute; medir ambas variables. Con salinidad alta (4.5 dS m<sup>&#150;1</sup>) el potencial osm&oacute;tico de las plantas fue mayor a 2.7 MPa con In7, y <u>&lt;</u> 2.3 MPa con los otros tres tratamientos (<a href="#c3">Cuadro 3</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v45n8/a8c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica fue mayor en 24.5 % con InG al aplicar salinidad alta, respecto a los hongos nativos (15&#150;20 %). El aumento en la salinidad de 3.8 a 4.5 dS m<sup>&#150;1</sup> disminuy&oacute; el porcentaje de CM en todos los tratamientos inoculados con HMA en 25, 15 y 5 % con InG, In2 e In7 (<a href="/img/revistas/agro/v45n8/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadros 2</a> y <a href="#c3">3</a>). Ello es similar a lo observado por Al&#150;Karaki (2000) cuando evalu&oacute; el efecto de HMA en plantas de <i>Lycopersicum esculentum </i>Mill. expuestas a diferentes niveles de salinidad, donde un incremento en la conductividad el&eacute;ctrica de 4.7 a 7.4 dS m<sup>&#150;1</sup> disminuy&oacute; en 15 % los porcentajes de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica de <i>F. mosseae.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las plantas donde la salinidad fue 4.5 dS m<sup>&#150;1</sup>, In7 produjo m&aacute;s de 10 mg de micelio externo g<sup>&#150;1</sup> de suelo, siendo 20 y 14 % mayor que con In2 e InG (<a href="#c3">Cuadro 3</a>). Lo anterior podr&iacute;a relacionarse con la sensibilidad de ciertos HMA ante la condici&oacute;n salina del suelo porque la presencia de sales puede afectar su germinaci&oacute;n y crecimiento, modificando la tasa espec&iacute;fica de extensi&oacute;n micelial (Juniper y Abbot, 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los HMA nativos de regiones &aacute;ridas o semi&aacute;ridas permiten que especies vegetales poco resistentes al estr&eacute;s salino mejoren su crecimiento debido a un aumento en la asimilaci&oacute;n de f&oacute;sforo, porque los hongos asociados presentan una mayor producci&oacute;n de hifas en el suelo comparado con las cepas procedentes de otros climas (Aug&eacute; <i>et al., </i>2003; Bhoopander y Mukerji, 2004). En el presente estudio, el In7 de HMA nativos produjo mayor micelio externo en el suelo que InG e In2 cuando la salinidad fue 4.5 dS m<sup>&#150;1</sup>, y adem&aacute;s el m&aacute;s efectivo para obtener mayor PSV e incrementar el potencial osm&oacute;tico foliar (<a href="#c3">Cuadro 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los in&oacute;culos de HMA (In7, In2 e InG) evaluados en este trabajo modificaron de forma variable el crecimiento, estado h&iacute;drico y caracter&iacute;sticas de micorrizaci&oacute;n (CM, ME y NTE) en el cultivo de <i>C. pepo </i>var. <i>pepo </i>con o sin estr&eacute;s. El efecto de los factores abi&oacute;ticos y la asociaci&oacute;n micorr&iacute;zica en las plantas sometidas a estr&eacute;s h&iacute;drico es complejo; cualquier cambio ambiental afecta la fisiolog&iacute;a de la planta y el desarrollo del hongo, por lo cual la respuesta var&iacute;a de acuerdo con la composici&oacute;n de la comunidad de HMA y la condici&oacute;n de estr&eacute;s (Quilambo, 2003; Escudero y Mendoza, 2005; Bucher, 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de los resultados indica que los HMA nativos permiten un mejor crecimiento y balance h&iacute;drico que la especie f&uacute;ngica procedente de una regi&oacute;n templada (G. <i>claroideum</i>). De manera similar, en <i>Citrus volkameriana </i>Pasq. se encontr&oacute; que aislados de <i>Glomus </i>procedentes de regiones semi&aacute;ridas permiten que las plantas en condiciones de estr&eacute;s mantengan un mejor estado h&iacute;drico que los HMA procedentes de ambientes templados (Fidelibus <i>et al., </i>2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos micorr&iacute;zicos arbusculares procedentes de campos salinos del Desierto Sonorense, disminuyeron el efecto negativo del estr&eacute;s por sequ&iacute;a y salinidad en los cultivos de <i>C. pepo </i>var. <i>pepo, </i>mejorando el crecimiento y el estado h&iacute;drico de las plantas en comparaci&oacute;n con HMA procedente de una regi&oacute;n templada <i>(G. claroideun) </i>y el testigo. El aislado compuesto por dos morfoespecies nativas confiri&oacute; mayor beneficio a las plantas expuesta a sequ&iacute;a y baja salinidad, y el in&oacute;culo compuesto por siete morfoespecies de HMA nativos fue el mejor inoculante en condiciones de alta salinidad. Este estudio sirve de base para aumentar la investigaci&oacute;n de los HMA nativos de regiones &aacute;ridas y semi&aacute;ridas, para usarlos como biofertilizantes en cultivos comerciales en condiciones de baja disponibilidad de agua o salinidad en el suelo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece a Inter&#150;American Institute for Global Change Research (IAI) CRN II&#150;14, US National Science Foundation (Grant GEO&#150;04523250) por el financiamiento parcial. Citlalli Harris&#150;Valle agradece a CONACYT&#150;M&eacute;xico por su beca doctoral.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura Citada</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al&#150;Karaki, G. N. 2000. Growth of mycorrhizal tomato and mineral acquisition under salt stress. Mycorrhiza 10: 51&#150;5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563802&pid=S1405-3195201100080000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al&#150;Karaki, G., B. McMichael, and J. Zak. 2004. Field response of wheat to arbuscular mycorrhizal fungi and drought stress. Mycorrhiza 14: 263&#150;269.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563804&pid=S1405-3195201100080000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aug&eacute;, R. M. 2001. Water relations, drought and vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal symbiosis. Mycorrhiza 11: 3&#150;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563806&pid=S1405-3195201100080000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aug&eacute;, R. M. 2004. Arbuscular mycorrhizae and soil/plant water relations. Can. J. Soil Sci. 84: 373&#150;381.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563808&pid=S1405-3195201100080000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aug&eacute;, R. M., J. L. Moore, K. Cho, D. M. Sylvia, A. Al&#150;Agely, and A. M. Saxton. 2003. Relating foliar dehydration tolerance of mycorrhizal <i>Phaseolus vulgaris </i>to soil and root colonization by hyphae. J. Plant Physiol. 160: 1147&#150;1156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563810&pid=S1405-3195201100080000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ben&#150;Khaled, L., A. Morte&#150;G&oacute;mez, E. M. Ouarraqi, and A. Oihabi. 2003. R&eacute;ponses physiologiques et biochimiques du tr&egrave;fle (<i>Trifolium alexandrinum </i>L.) &agrave; la double association Mycorhizes&#150;Rhizobium sous une contrainte saline. Agronomie 23: 571&#150;580.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563812&pid=S1405-3195201100080000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bhoopander, G., and K. G. Mukerji. 2004. Mycorrhizal inoculant alleviates salt stress in <i>Sesbania aegyptiaca </i>and <i>Sesbania grandiflora </i>under field conditions. Mycorrhiza 14: 307&#150;312.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563814&pid=S1405-3195201100080000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Boddington, C. L., and J. D. Dodd. 2000. Effect of agricultural practices on the development of indigenous arbuscular mycorrhizal fungi. I. Field studies in an Indonesian ultisol. Plant Soil 218: 137&#150;144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563816&pid=S1405-3195201100080000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bucher, M. 2006. Functional biology of plant phosphate uptake at root and mycorrhiza interfaces. New Phytologist 173: 11&#150;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563818&pid=S1405-3195201100080000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carvalho, L. M., P. M. Correia, R. J. Ryel, and M. A. Martinis&#150;Lou&ccedil;&atilde;o. 2003. Spatial variability of arbuscular mycorrhizal fungal spores in tow natural plant communities. Plant and Soil 251: 227&#150;236.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563820&pid=S1405-3195201100080000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castellanos, A. E, M. J. Mart&iacute;nez, J. M. Llano, W. L. Halvorson, M. Espiricueta, and I. Espejel. 2005. Successional trends in Sonora Desert abandoned agricultural fields in northern Mexico. J. Arid Environ. 60: 437&#150;455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563822&pid=S1405-3195201100080000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cho, K., H. Toler, J. Lee, B. Ownley, J. C. Stutz, J. L. Moore, and R. M. Aug&eacute;. 2006. Mycorrhizal symbiosis and response of sorghum plants to combined drought and salinity stresses. J. Plant Physiol. 163: 517&#150;528.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563824&pid=S1405-3195201100080000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Colla, G., Y. Rouphael, M. Cardarelli, M. Tullido, A. M. Rivera, and A. Rea. 2008. Alleviation of salt stress by arbuscular mycorrhizal in zucchini plants grown at low and high phosphorus concentration. Biology and Fertility of Soils 44: 501&#150;509.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563826&pid=S1405-3195201100080000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Davies F. T., C. M. Calderon, and Z. Huaman. 2005. Influence of arbuscular micorriza indigenous to Peru and a flavonoid on growth, yield, and leaf elemental concentration of "Yungay" potatoes. HortScience 40: 381&#150;385.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563828&pid=S1405-3195201100080000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Escudero, V., and A. Mendoza. 2005. Seasonal variation of arbuscular mycorrhizal fungi in temperate grasslands along a wide hydrologic gradient. Mycorrhiza 15: 291&#150;299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563830&pid=S1405-3195201100080000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Feire&#150;Cruz, A., T. Ishii, and K. Kadoya. 2000. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi on tree growth, leaf water potential, and levels of 1&#150;aminocyclopropane1&#150;carboxylic acid and ethylene in the roots of papaya under water&#150;stress conditions. Mycorrhiza 10: 121&#150;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563832&pid=S1405-3195201100080000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fidelibus, M. W., C. A. Martin, and J. C. Stutz. 2001. Geographic isolates of <i>Glomus </i>increase root growth and whole&#150;plant transpiration of <i>Citrus </i>seedlings grown with high phosphorus. Mycorrhiza 10: 231&#150;236.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563834&pid=S1405-3195201100080000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garc&iacute;a, I., R. Mendoza, and M. C. Pomar. 2008. Deficit and excess of soil water impact on plant growth of <i>Lotus tenuis </i>by affecting nutrient uptake and arbuscular mycorrhizal symbiosis. Plant and Soil 304: 117&#150;131.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563836&pid=S1405-3195201100080000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Halvorson, W. L., A. E. Castellanos, and J. Murrieta&#150;Sald&iacute;var. 2003. Sustainable land use requirements attention to ecological signals. Environ. Manage. 32: 551&#150;558.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563838&pid=S1405-3195201100080000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera&#150;Peraza, R. A., E. Furrazola, R. Fernandez&#150;Valle, and Y. Torres. 2004. Functional strategies of root hairs and arbuscular mycorrhizae in evergreen tropical forest, Sierra del Rosario, Cuba. Revista del Centro Nacional de Investigaciones Cient&iacute;ficas de Cuba Ciencias Biol&oacute;gicas 35: 113&#150;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563840&pid=S1405-3195201100080000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hintze, J. 2006. NCSS, PASS and GESS. NCSS, Kaysville, UT, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563842&pid=S1405-3195201100080000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Juniper, S., and L. K. Abbott. 2006. Soil salinity delays germination and limits growth of hyphae from propagules of arbuscular mycorrhizal fungi. Mycorrhiza 16: 371&#150;379.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563844&pid=S1405-3195201100080000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lau, T. C., X. Lu, R. T. Koide, and A. G. Stephenson. 1995. Effects of soil fertility and mycorrhizal infection on pollen production and pollen grain size of <i>Cucurbita pepo </i>(Cucurbitaceae). Plant, Cell and Environ.18: 169&#150;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563846&pid=S1405-3195201100080000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marulanda, A., J. M. Barea, and R. Azc&oacute;n. 2006. An indigenous drought&#150;tolerant stain of <i>Glomus intraradices </i>associated with a native bacterium improves water transport and root development in <i>Remata sphaerocarpa. </i>Microbial Ecol. 52: 670&#150;678.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563848&pid=S1405-3195201100080000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phillips, J. M., and D. S. Hayman. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Trans. Br. Mycol. Soc. 55: 158&#150;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563850&pid=S1405-3195201100080000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Piotrowski, J. S., T. Denich, J. N. Klironomos, J. M. Graham, and M. C. Rillig. 2004. The effects of arbuscular mycorrhizas on soil aggregation depend on the interaction between plant and fungal species. New Phytologist 164: 365&#150;373.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563852&pid=S1405-3195201100080000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Quilambo, O. A. 2003. The vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal symbiosis. Afr. J. Biotechnol. 2: 539&#150;546.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563854&pid=S1405-3195201100080000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rilling, M. C., and D. L. Mummey. 2006. Mycorrhizas and soil structure. New Phytologist 171: 41&#150;53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563856&pid=S1405-3195201100080000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruiz&#150;Lozano, J. M., and R. Azc&oacute;n. 2000. Symbiotic efficiency and infectivity of an autochthonous arbuscular mycorrhizal <i>Glomus </i>sp. from saline soils and <i>Glomus deserticola </i>under salinity. Mycorrhiza 10: 137&#150;143.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563858&pid=S1405-3195201100080000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAGARPA, Secretar&iacute;a de Agricultura Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural y Pesca y Alimentaci&oacute;n. 2010. <a href="http://www.siap.gob.mx/" target="_blank">http://www.siap.gob.</a><a href="http://www.siap.gob.mx/">mx</a> (Consultado: agosto, 2010).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563860&pid=S1405-3195201100080000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schroeder, M. S., and D. P. Janos. 2005. Plant growth, phosphorus nutrition, and root morphological responses to arbuscular mycorrhizas, phosphorus fertilization, and intraspecific density. Mycorrhiza 15: 203&#150;216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563862&pid=S1405-3195201100080000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smith, E., and D. J. Read. 2008. Mycorrhizal Symbiosis. Academic Press, London. 787 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=563864&pid=S1405-3195201100080000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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