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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Optimización de iones de fierro para la eliminación de piocianina en la reacción de degradación de Tolueno, Benceno y Fenol por Pseudomonas aeruginosa]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Optimization of iron ions to eliminate pyocyanine in the degradation reaction of Toluene, Benzene and Phenol by Pseudomonas aeruginosa]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A wide range of xenobiotic substances represent a serious problem as environmental pollutants because of their toxicity, among them are found aromatic compounds that can be biodegraded by microorganisms, which use them as their source of carbon and energy. The genus Pseudomonas is outstanding for its multiple biotechnological applications due to its remarkable metabolic versatility. It is capable of producing useful metabolites, enzymatic transformations, biodegradation and bioremediation in soil, as well as in water polluted with oil and pesticides. In this study, cells of P. aeruginosa were used to degrade toluene, benzene and phenol. The strain was cultivated in a solid mineral medium, and the following optimal concentrations were established for the development of viable cells: 0.31, 0.19, and 0.13 M for toluene, benzene and phenol. The environments with limited concentrations of Fe(III) favored the production of pyocyanine, a pigment that can interfere in the analytical method of aromatic compound biodegradation. This effect was eliminated by increasing the concentration of iron ions in the medium. On this basis, the mineral culture medium was optimized and established at 0.04 g L-1 FeSO4 in presence of toluene (0.03 M). With this initial concentration, a rate of biodegradation of 75 % was obtained. The specific degradation tests for the aromatic compounds showed that the P. aeruginosa strain used can degrade toluene, benzene and phenol. The rates of degradation were higher for toluene (58.4 °/o) and benzene (70.11 °/o) with the initial concentrations of 0.14 M and 0.16 M. Degradation was less for phenol (24.65 %) with an initial concentration of 0.10 M. The degrading capacity of P. aeruginosa was directly proportional to its growth in the presence of the xenobiotic substances studied. A larger amount of cell protein was exhibited in cultures with benzene (1.4982 mg mL-1) and toluene (0.8629 mg mL-1), and less in the cultures grown in presence of phenol (0.4431 mg mL-1), indicating that deficient bacterial development (biomass) can result in suboptimal biodegradation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Recursos naturales renovables</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Optimizaci&oacute;n de iones de fierro para la eliminaci&oacute;n de piocianina en la reacci&oacute;n de degradaci&oacute;n de Tolueno, Benceno y Fenol por <i>Pseudomonas aeruginosa</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Optimization of iron ions to eliminate pyocyanine in the degradation reaction of Toluene, Benzene and Phenol by <i>Pseudomonas aeruginosa</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a de L. Rangel&#150;Garc&iacute;a*, Jes&uacute;s Rodr&iacute;guez&#150;Mart&iacute;nez, Yolanda Garza&#150;Garc&iacute;a, Jos&eacute; L. Mart&iacute;nez&#150;Hern&aacute;ndez</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Departamento de Biotecnolog&iacute;a, Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas, Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila. 25280. Boulevard Venustiano Carranza y Jos&eacute; C&aacute;rdenas Valdez. Saltillo, Coahuila.</i> *Autor responsable: (<a href="mailto:maluraga@hotmail.com">maluraga@hotmail.com</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Diciembre, 2008.     <br>   Aprobado: Noviembre 2009.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una amplia gama de substancias xenobi&oacute;ticas representan un serio problema como contaminantes ambientales por su toxicidad; entre ellos los compuestos arom&aacute;ticos pueden ser biodegradados por microorganismos que los usan como fuente de carbono y energ&iacute;a. El g&eacute;nero <i>Pseudomonas </i>destaca por sus m&uacute;ltiples aplicaciones biotecnol&oacute;gicas debido a su gran versatilidad metab&oacute;lica; puede producir metabolitos &uacute;tiles, transformaciones enzim&aacute;ticas, biodegradaci&oacute;n y biorremediaci&oacute;n de suelos, y en aguas contaminadas con petr&oacute;leo y plaguicidas. En esta investigaci&oacute;n se usaron c&eacute;lulas de <i>P. aeruginosa </i>para degradar tolueno, benceno y fenol. La cepa fue cultivada en medio mineral s&oacute;lido y se establecieron las concentraciones &oacute;ptimas para el desarrollo de c&eacute;lulas viables: 0.31, 0.19 y 0.13 M para tolueno, benceno y fenol. Los ambientes con concentraciones limitadas de Fe(III) favorecen la producci&oacute;n de piocianina, pigmento que puede interferir en el m&eacute;todo anal&iacute;tico de biodegradaci&oacute;n de compuestos arom&aacute;ticos. Este efecto fue eliminado aumentando la concentraci&oacute;n de iones de fierro en el medio. Con base en lo anterior, se optimiz&oacute; y estableci&oacute; el medio de cultivo mineral con 0.04 g L<sup>&#150;1</sup> de FeSO<sub>4</sub> en presencia de tolueno (0.03 M) <i>y </i>con esta concentraci&oacute;n inicial la tasa de biodegradaci&oacute;n fue 75 <i>%. </i>Las pruebas de degradaci&oacute;n espec&iacute;ficas para los compuestos arom&aacute;ticos mostraron que la cepa de <i>P. aeruginosa </i>usada puede degradar tolueno, benceno <i>y </i>fenol. Las tasas de degradaci&oacute;n fueron mayores para tolueno (58.4 %) y benceno (70.11 %) con concentraciones iniciales de 0.14 M y 0.16 M, y la degradaci&oacute;n fue menor para fenol (24.65 %) con una concentraci&oacute;n inicial 0.10 M. La capacidad degradadora de <i>P. aeruginosa </i>tuvo proporci&oacute;n directa con su crecimiento en presencia de los xenobi&oacute;ticos estudiados, mostrando una mayor cantidad de prote&iacute;na celular en los cultivos con benceno (1.4982 mg mL<sup>&#150;1</sup>), tolueno (0.8629 mg mL<sup>&#150;1</sup>) y menor en los cultivos desarrollados en presencia de fenol (0.4431 mg mL<sup>&#150;1</sup>); lo cual muestra que un deficiente desarrollo bacteriano (biomasa) influye en una sub&oacute;ptima biodegradaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Pseudomonas aeruginosa, </i>degradaci&oacute;n, piocianina, xenobi&oacute;ticos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A wide range of xenobiotic substances represent a serious problem as environmental pollutants because of their toxicity, among them are found aromatic compounds that can be biodegraded by microorganisms, which use them as their source of carbon and energy. The genus <i>Pseudomonas </i>is outstanding for its multiple biotechnological applications due to its remarkable metabolic versatility. It is capable of producing useful metabolites, enzymatic transformations, biodegradation and bioremediation in soil, as well as in water polluted with oil and pesticides. In this study, cells of <i>P. aeruginosa </i>were used to degrade toluene, benzene and phenol. The strain was cultivated in a solid mineral medium, and the following optimal concentrations were established for the development of viable cells: 0.31, 0.19, and 0.13 M for toluene, benzene and phenol. The environments with limited concentrations of Fe(III) favored the production of pyocyanine, a pigment that can interfere in the analytical method of aromatic compound biodegradation. This effect was eliminated by increasing the concentration of iron ions in the medium. On this basis, the mineral culture medium was optimized and established at 0.04 g L<sup>&#150;1</sup> FeSO<sub>4</sub> in presence of toluene (0.03 M). With this initial concentration, a rate of biodegradation of 75 <i>% </i>was obtained. The specific degradation tests for the aromatic compounds showed that the <i>P. aeruginosa </i>strain used can degrade toluene, benzene and phenol. The rates of degradation were higher for toluene (58.4 &deg;/o) and benzene (70.11 &deg;/o) with the initial concentrations of 0.14 M and 0.16 M. Degradation was less for phenol (24.65 %) with an initial concentration of 0.10 M. The degrading capacity of <i>P. aeruginosa </i>was directly proportional to its growth in the presence of the xenobiotic substances studied. A larger amount of cell protein was exhibited in cultures with benzene (1.4982 mg mL<sup>&#150;1</sup>) and toluene (0.8629 mg mL<sup>&#150;1</sup>), and less in the cultures grown in presence of phenol (0.4431 mg mL<sup>&#150;1</sup>), indicating that deficient bacterial development (biomass) can result in suboptimal biodegradation.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Pseudomonas aeruginosa, </i>degradation, pyocyanine, xenobiotics.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un gran problema actual es la contaminaci&oacute;n ambiental, donde el hombre genera desechos que alteran la calidad del aire, tierra, agua y su entorno; muchos desechos industriales se vierten en el agua de arroyos, manantiales, r&iacute;os y mares (Brock <i>et al., </i>1987). La contaminaci&oacute;n con qu&iacute;micos peligrosos es uno de los mayores problemas generado por mundo industrializado (Boopathy, 2000); entre estos contaminantes destacan los compuestos xenobi&oacute;ticos por su alta toxicidad y dificultad para ser degradados (Brock <i>et al, </i>1987).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hidrocarburos son algunos de los principales contaminantes del ambiente (Abalos <i>et al., </i>2004) y en particular los compuestos arom&aacute;ticos (CA); las formas sustituidas representan un mayor riesgo de contaminaci&oacute;n (Khan <i>et al., </i>2005). La contaminaci&oacute;n con hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo ha ocasionado defectos ambientales y de salud, y tambi&eacute;n ha aumentado el inter&eacute;s por desarrollar e implementar tecnolog&iacute;a para limpiar esta contaminaci&oacute;n. El benceno y sus derivados representan la mayor parte de los contaminantes org&aacute;nicos en los efluentes de la industria qu&iacute;mica, petroqu&iacute;mica, farmac&eacute;utica, metal&uacute;rgica y productos plaguicidas (Banerjee <i>et al., </i>2001; Siedlecka y Stepnowski, 2005). Estas aguas residuales requieren tratamientos apropiados antes de ser descargadas al ambiente. Entre las t&eacute;cnicas disponibles para remover fenol y sus derivados, la biodegradaci&oacute;n es una tecnolog&iacute;a alternativa (Banerjee <i>et al, </i>2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los componentes con anillos arom&aacute;ticos como benceno, tolueno, fenol y xileno son de gran inter&eacute;s debido a su toxicidad y baja solubilidad, representando una fuente potencial a largo plazo de contaminaci&oacute;n de aguas residuales o subterr&aacute;neas (Cavalca, 2004) y su remoci&oacute;n por los tratamientos biol&oacute;gicos comunes no ha tenido el &eacute;xito esperado. As&iacute;, la introducci&oacute;n de nuevas tecnolog&iacute;as para degradar estas mol&eacute;culas recalcitrantes en mol&eacute;culas m&aacute;s peque&ntilde;as es imperativo (Siedlecka y Stepnowski, 2005). La degradaci&oacute;n por microorganismos es el principal proceso de eliminaci&oacute;n de contaminantes en el ambiente, proceso que puede ser usado para remover los contaminantes del suelo y agua (Abalos <i>et al, </i>2004; Khan <i>et al, </i>2005). <i>Alcaligenes eutrophus, Bacillus stearothermophilus, Pseudomonas </i>sp., <i>Rhodococcus </i>sp. y <i>Trichosporon cutaneum </i>han sido usados para degradar fenol y sus derivados a bajas concentraciones (0.002&#150;12.7 mM) (Hinteregger <i>et al, </i>1992).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varias especies del g&eacute;nero <i>Pseudomonas </i>contienen pl&aacute;smidos con enzimas codificadas que pueden biotransformar compuestos org&aacute;nicos derivados del petr&oacute;leo o compuestos organoclorados u organofosforados. Estas enzimas son inducibles y la selecci&oacute;n de las cepas adecuadas puede reducir la contaminaci&oacute;n por los compuestos xenobi&oacute;ticos (Conesa, 1997; Sutton y Harmon, 1997). Los microorganismos de la especie <i>P. aeruginosa </i>son muy comunes en la naturaleza y pueden ser aislados de una gran variedad de fuentes naturales. <i>Pseudomonas </i>puede multiplicarse en muchos sustratos, incluyendo los xenobi&oacute;ticos, y crecer con nutrientes derivados de materiales usados en la construcci&oacute;n de sistemas de distribuci&oacute;n de agua e instalaciones de tuber&iacute;as dom&eacute;sticas (Tsoraeva y Rodr&iacute;guez, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Pseudomonas aeruginosa </i>genera numerosos exo&#150;productos, incluyendo proteasas, hemolisinas, ramnol&iacute;pidos y derivados de fenazina (Lau, 2004), factores potencialmente citot&oacute;xicos que aumentan su competitividad y supervivencia (Britigan <i>et al, </i>1999; Norman <i>et al, </i>2004). Por ejemplo, el metabolito secundario soluble en agua piocianina (l&#150;hidroxi&#150;5&#150;metil&#150;fenazina) ha mostrado actividad antimicrobiana contra una gran variedad de microorganismos (Norman <i>et al, </i>2004). La piocianina se sintetiza en cantidades importantes por <i>P. aeruginosa </i>en ciertas condiciones desfavorables de crecimiento como las condiciones limitantes de hierro. El estr&eacute;s por nutrientes induce en <i>Pseudomonas </i>algunos cambios morfol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos; adem&aacute;s, en condiciones limitantes de crecimiento, la bacteria expresa mecanismos de protecci&oacute;n, permitiendo a las c&eacute;lulas sobrevivir a desaf&iacute;os ambientales (Fern&aacute;ndez y Pizarro, 1999; Reardon <i>et al, </i>2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por tanto, el objetivo de este trabajo fue optimizar la concentraci&oacute;n de iones de fierro y evitar la producci&oacute;n e interferencia del pigmento piocianina en cultivos de <i>P. aeruginosa </i>para su aplicaci&oacute;n efectiva en la degradaci&oacute;n de tolueno, benceno y fenol.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cepa bacteriana y condiciones de cultivo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa de <i>P. aeruginosa </i>se aisl&oacute; de muestras de agua obtenidas de la red de suministro local en la zona carbon&iacute;fera de Coahuila, en el norte de M&eacute;xico. Se cultiv&oacute; en agar nutritivo a 37 &deg;C, por 24 h en condiciones aerobias y se transfiri&oacute; al medio selectivo agar Pseudomonas (Sigma) para su identificaci&oacute;n mediante la producci&oacute;n de pigmento (Pichardo <i>et al., </i>1981) y se conserv&oacute; en un medio mineral s&oacute;lido: Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> (7 g L<sup>&#150;1</sup>), KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> (2 g L<sup>&#150;1</sup>), (NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> (1 g L<sup>&#150;1</sup>), MgSO<sub>4</sub>.7H<sub>2</sub>O (0.1 g L<sup>&#150;1</sup>), CaCl<sub>2</sub> (0.02 g L<sup>&#150;1</sup>), K<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> (0.1 g L<sup>&#150;1</sup>), FeSO<sub>4</sub> . 7H<sub>2</sub>O (0.01 g L<sup>&#150;1</sup>), ZnSO<sub>4 </sub>. 7 H<sub>2</sub>O (0.01 g L<sup>&#150;1</sup>) y CuSO<sub>4</sub> (0.01 g L<sup>&#150;1</sup>) a pH 7.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inducci&oacute;n para la biodegradaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inducci&oacute;n de <i>P. aeruginosa </i>para degradar benceno, tolueno y fenol se realiz&oacute; adicionando concentraciones diferentes de cada uno de los xenobi&oacute;ticos usados en el medio mineral s&oacute;lido. En el estudio se uso un intervalo de concentraci&oacute;n 0.001 M&#150;0.5 M para cada xenobi&oacute;tico. La adici&oacute;n de cada xenobi&oacute;tico se hizo progresiva y paulatinamente para detectar cambios en el desarrollo de los cultivos, iniciando con concentraciones bajas y manejando una sola variable en cada caso.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos de prueba se inocularon con 125 <i>&micro;</i>L de <i>Pseudomonas </i>previamente desarrolladas en el medio mineral l&iacute;quido con las condiciones de cultivo descritas. Se cuantific&oacute; el crecimiento microbiano en las placas de agar y se realiz&oacute; la resiembra en el medio mineral s&oacute;lido sin xenobi&oacute;tico para determinar la viabilidad de las c&eacute;lulas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&eacute;todos anal&iacute;ticos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento de la cepa <i>P. aeruginosa </i>fue determinado directamente por turbidimetr&iacute;a a 590 nm con intervalos de 24 h, usando un espectrofot&oacute;metro Cintra 10 UV&#150;Visible. El medio mineral l&iacute;quido fue la base para verificar el desarrollo del cultivo donde se us&oacute; glucosa como fuente primaria de carbono (cometabolito) y tolueno, benceno y fenol como fuente secundaria.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cada variable se evalu&oacute; por triplicado y los resultados experimentales se granearon considerando el n&uacute;mero de repeticiones, su promedio (media aritm&eacute;tica) y las desviaciones est&aacute;ndar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de prote&iacute;na</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n, las c&eacute;lulas propagadas se separaron por centrifugaci&oacute;n a 7000 rpm, por 30 min a 4 &deg;C; la biomasa obtenida se lav&oacute; dos veces con soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos 0.01 M de pH 7, en las mismas condiciones por 15 min. El paquete celular se suspendi&oacute; en 3 mL de la misma soluci&oacute;n amortiguadora y se cuantific&oacute; la concentraci&oacute;n de prote&iacute;na seg&uacute;n el m&eacute;todo de Lowry modificado por Peterson (Gorina y Yakovleva, 1980).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Degradaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de la degradaci&oacute;n progresiva de los xenobi&oacute;ticos se realiz&oacute; por espectrofotometr&iacute;a, determinando el consumo de sustrato a 270 nm, 254 nm y 271 nm para tolueno, benceno y fenol. Las muestras fueron analizadas a intervalos de 24 h, determinando las tasas de degradaci&oacute;n con cada uno de los compuestos arom&aacute;ticos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Optimizaci&oacute;n de iones de fierro</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de los iones de fierro en la producci&oacute;n de piocianina se estudi&oacute; variando la concentraci&oacute;n de FeSO<sub>4</sub> (0.01, 0.02, 0.04, 0.06 y 0.08 g L<sup>&#150;1</sup> ) en el caldo de cultivo mineral (pH 7). Se tom&oacute; como referencia las concentraciones usadas por Zache y Rehm (1989), Belhaj <i>et al. </i>(2002), Meenal y Ambalal (2005) y Fortunato <i>et al. </i>(2005). Los medios l&iacute;quidos fueron inoculados con 0.5 mL de una suspensi&oacute;n de c&eacute;lulas obtenida de agar inclinado, con una concentraci&oacute;n inicial de tolueno 0.03 M e incubados en condiciones aerobias con agitaci&oacute;n de 250 rpm (Lab&#150;Line incubator shaker) a 37 &deg;C por 144 h y monitoreados a intervalos de 0, 24, 48, 72, 96, 120 y 144 h, cuantificando el crecimiento y la degradaci&oacute;n de tolueno.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los caldos inoculados con <i>P aeruginosa </i>se colocaron en matraces erlenmeyer de 1 L adicionando tolueno, benceno y fenol en cultivos independientes, seg&uacute;n Khan <i>et al. </i>(2005). Las concentraciones iniciales para los experimentos de degradaci&oacute;n fueron: 0.14 M, 0.16 M y 0.10 M para tolueno, benceno y fenol; los matraces se incubaron con agitaci&oacute;n (250 rpm) y a 37 &deg;C. Las muestras fueron analizadas por el m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico a intervalos de 0, 24, 48, 72, 96 y 120 h, determinando el crecimiento microbiano y la tasa de biodegradaci&oacute;n (TB) de cada compuesto.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue monofactorial, evaluando independientemente la influencia de los iones de hierro en cinco niveles (0.01, 0.02, 0.04, 0.06 y 0.08 g L<sup>&#150;1</sup>), la bioconversi&oacute;n en tres niveles (tolueno 0.14 M, benceno 0.16 M y fenol 0.10 M) y el desarrollo microbiano por 144 h. Los resultados se procesaron estad&iacute;sticamente usando Microsoft&reg; Office Excel&reg; 2003, considerando las barras de error o desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (<i>&sigma;</i> =2) en las Figuras (p<u>&lt;</u>0.05; n = 3) (Castro, 1979; Walpole <i>et al, </i>1999; Triola, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa desarrollada en agar nutritivo present&oacute; las caracter&iacute;sticas y morfolog&iacute;a celular de <i>P. aeruginosa </i>y el crecimiento en agar Pseudomonas mostr&oacute; la presencia de pigmento verde correspondiente a la piocianina.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inducci&oacute;n para biodegradaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos desarrollados en placas de medio mineral adicionadas con diferentes concentraciones de tolueno, benceno y fenol (0.001&#150;0.5 M) mostraron que <i>P. aeruginosa </i>creci&oacute; en presencia de los tres xenobi&oacute;ticos estudiados separadamente. El crecimiento no se inhibi&oacute; totalmente, pero si disminuy&oacute; considerable y significativamente (p<u>&lt;</u>0.05) a altas concentraciones. Con fenol se apreci&oacute; menor tolerancia de <i>P. aeruginosa </i>a los xenobi&oacute;ticos, a&uacute;n a bajas concentraciones. Las pruebas de viabilidad fueron positivas con las concentraciones m&aacute;ximas de 0.31 M para tolueno, 0.19 M para benceno y 0.13 M para fenol. A concentraciones superiores, el n&uacute;mero de c&eacute;lulas decreci&oacute; en relaci&oacute;n directa al aumento de la concentraci&oacute;n del xenobi&oacute;tico. <i>Pseudomonas aeruginosa </i>mostr&oacute; una mayor tolerancia a altas concentraciones de tolueno, concentraciones menores de benceno y aun menores de fenol.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Biodegradaci&oacute;n de los xenobi&oacute;ticos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La optimizaci&oacute;n del proceso de la degradaci&oacute;n de los xenobi&oacute;ticos se logr&oacute; determinando el efecto de la concentraci&oacute;n de iones de fierro en la producci&oacute;n de piocianina. Despu&eacute;s del per&iacute;odo de incubaci&oacute;n de <i>P aeruginosa </i>en medio mineral l&iacute;quido con diferentes concentraciones de FeSO<sub>4</sub> (0.01 a 0.08 g L<sup>&#150;1</sup>) y con una concentraci&oacute;n inicial (0.03 M) de tolueno, se observ&oacute; crecimiento microbiano por turbidimetr&iacute;a en todos los matraces. En la cin&eacute;tica de consumo de sustrato (<a href="#f1">Figura 1</a>), la producci&oacute;n de piocianina se detect&oacute; en el medio con 0.01 g L de FeSO<sub>4</sub>, observ&aacute;ndose una considerable disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de tolueno hasta las 72 h, producto del proceso de biodegradaci&oacute;n y un posterior aumento en las lecturas de absorbancia por acumulaci&oacute;n de compuestos, lo cual coincide con la presencia de un color azul&#150;verde en el medio de cultivo provocado por la producci&oacute;n de piocianina, pigmento que absorbe en la regi&oacute;n UV, al igual que los compuestos arom&aacute;ticos (Fern&aacute;ndez y Pizarro, 1999).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v44n2/a12f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aumento en los valores de absorbancia sobre la lectura inicial, indica el doble efecto dado por el remanente del xenobi&oacute;tico en el reactor y el pigmento producido. A concentraciones mayores de fierro (0.02 a 0.08 g L<sup>&#150;1</sup> ) no se observ&oacute; la interferencia de piocianina (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f2">Figura 2</a> se presentan las tasas de degradaci&oacute;n del tolueno 0.03 M. La mayor velocidad de degradaci&oacute;n del tolueno (3&#150;00E&#150;04 M h<sup>&#150;1</sup> ) se present&oacute; a una concentraci&oacute;n de 0.04 g L<sup>&#150;1</sup> de FeSO<sub>4</sub> y la menor (2.00E&#150;04 M h<sup>&#150;1</sup> ) en las otras concentraciones probadas (p<u>&lt;</u>0.05). La mayor remoci&oacute;n de tolueno ocurri&oacute; al usar concentraciones de 0.02 y 0.04 g L<sup>&#150;1</sup> cuya tasa de biodegradaci&oacute;n (TB) fue 75 <i>% </i>para ambas. Durante el estudio de degradaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos, se decidi&oacute; utilizar la concentraci&oacute;n de 0.04 g L<sup>&#150;1</sup> de FeSO<sub>4</sub> en el medio de cultivo, debido a que las cin&eacute;ticas de degradaci&oacute;n del tolueno ocurrieron a mayor velocidad en comparaci&oacute;n con las otras concentraciones de FeSO<sub>4</sub>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v44n2/a12f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez optimizada la concentraci&oacute;n de FeSO<sub>4</sub> en el medio mineral, se desarrollaron cultivos de <i>P. </i><i>aeruginosa </i>en presencia de una concentraci&oacute;n superior a 0.03 M de tolueno (0.14 M).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s se estudi&oacute; la influencia del benceno y de fenol en concentraciones de 0.16 M y 0.10 M. Despu&eacute;s de una incubaci&oacute;n de 5 d <i>P. aeruginosa </i>mostr&oacute; un buen crecimiento en presencia de tolueno y benceno, pero no con fenol. En la <a href="#f3">Figura 3</a> se observa que el crecimiento de <i>P. aeruginosa </i>en presencia de tolueno y benceno inici&oacute; despu&eacute;s de 48 h de adaptaci&oacute;n; en ambos cultivos hubo una fase exponencial hasta las 96 h. La velocidad espec&iacute;fica de crecimiento (<i>&micro;</i>) fue significativamente mayor (p<u>&lt;</u>0.05) en los cultivos con 0.16 M de benceno (<i>&micro;</i> = 3.8 x 10<sup>&#150;3</sup> h<sup>&#150;1</sup> ) y menor en los cultivos con 0.10 M de fenol (<i>&micro;</i> =4.0<sup>&#150;4</sup> x 10 h<sup>&#150;1</sup> ), donde tambi&eacute;n la fase exponencial tuvo una menor duraci&oacute;n (hasta las 72 h) (marca con la l&iacute;nea de mayor grosor en la <a href="#f3">Figura 3</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v44n2/a12f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento microbiano de <i>P aeruginosa </i>en presencia de los xenobi&oacute;ticos fue diferente (p<u>&lt;</u>0.05; <a href="#f4">Figura 4</a>): una mayor cantidad de prote&iacute;na celular (1.498 mg mL<sup>&#150;1</sup> ) en los cultivos con 0.16 M benceno, 0.863 mg mL<sup>&#150;1</sup> con 0.14 M tolueno y 0.443 mg mL<sup>&#150;1</sup> con 0.10 M fenol.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v44n2/a12f4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de biodegradaci&oacute;n (TB) de los compuestos se grafic&oacute; en funci&oacute;n del tiempo (<a href="#f5">Figura 5</a>). Los cultivos de <i>P aeruginosa </i>en presencia de benceno (0.16 M) mostraron 70.11 % de biodegradaci&oacute;n, 58.14 % con tolueno (0.14 M) a las 72 h, y 24.65 % con fenol (0.10 M) en 96 h. Con lo anterior se puede afirmar que las TB estuvieron directamente relacionadas con la cantidad de biomasa producida, observ&aacute;ndose la mayor bio&#150;conversi&oacute;n con benceno 0.16 M (70.11 %), que coincide con la mayor producci&oacute;n de prote&iacute;na celular (1.4982 mg mL<sup>&#150;1</sup>). Asimismo, laTB baja del fenol (0.10 M) se obtuvo con la menor cantidad de biomasa (0.4431 mg mL<sup>&#150;1</sup>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v44n2/a12f5.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los componentes qu&iacute;micos espec&iacute;ficos de los medios de cultivo determinan el crecimiento del microorganismo, la s&iacute;ntesis de sus componentes celulares y la finalidad de su aplicaci&oacute;n (S&aacute;nchez <i>et al., </i>2003). Considerar la finalidad de aplicaci&oacute;n de los microorganismos es un aspecto importante que requiere varios factores metab&oacute;licos y fisiol&oacute;gicos, como ocurre en los procesos de degradaci&oacute;n de diferentes compuestos (Menezes <i>et al., </i>2005). Un nivel inadecuado de componentes qu&iacute;micos en el medio de cultivo puede resultar en un pobre desarrollo bacteriano y realizar una biodegradaci&oacute;n sub&oacute;ptima; de ah&iacute; la importancia de determinar la cantidad de prote&iacute;na celular de la biomasa obtenida en el desarrollo de los cultivos (Kwok <i>et al., </i>2003).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la mayor&iacute;a de los trabajos de biorremediaci&oacute;n es importante la producci&oacute;n de una buena cantidad de prote&iacute;na celular (biomasa), el tipo de poblaci&oacute;n bacteriana y sus actividades enzim&aacute;ticas. Si no se produce suficiente biomasa de las bacterias degradadoras y la concentraci&oacute;n de los contaminantes es muy alta, no se realizar&aacute; una degradaci&oacute;n r&aacute;pida o eficiente (Norman <i>et al, </i>2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cavalca <i>et al.</i>. (2004) y Reardon <i>et al. </i>(2000) reportan degradaci&oacute;n de tolueno (2.7 x 10<sup>&#150;3</sup> M) y benceno (5.5 x 10<sup>&#150;4</sup>&#150;3.2 x 10<sup>&#150;3</sup> M) por <i>Pseudomonas </i>sp., concentraciones inferiores a las usadas en esta investigaci&oacute;n. Adem&aacute;s, no obstante la baja biotransformaci&oacute;n obtenida con el fenol, esta cepa de <i>P. aeruginosa </i>degrad&oacute; el compuesto arom&aacute;tico a concentraciones iniciales superiores (0.10 M) a las reportadas por Hinteregger <i>et al. </i>(1992), Banerjee <i>et al. </i>(2001) y Siedlecka y Stepnowski (2005) de 0.002 a 0.012 M.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un aspecto importante en los procesos de biodegradaci&oacute;n es la adaptaci&oacute;n de los microorganismos a los compuestos que se degradar&aacute;n. En esta investigaci&oacute;n <i>P aeruginosa </i>fue inducida con diferentes concentraciones de los xenobi&oacute;ticos de prueba adicionados a placas de medio mineral. Esta cepa de <i>P aeruginosa </i>pudo usar los xenobi&oacute;ticos como sustratos de crecimiento con 0.31 M de tolueno, 0.19 M de benceno y 0.13 M de fenol, que permitieron un buen desarrollo de los cultivos en medio s&oacute;lido.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerando que la bios&iacute;ntesis y secreci&oacute;n de sider&oacute;foros como la piocianina es estrictamente regulada en relaci&oacute;n inversa por la concentraci&oacute;n del fierro en el medio de crecimiento de las bacterias (D&iacute;az de Villegas <i>et al., </i>2002), se optimiz&oacute; la cantidad de FeSO<sub>4</sub> adicionando concentraciones crecientes al medio mineral, lo que evit&oacute; la producci&oacute;n del pigmento, como lo reportan D&iacute;az y Villa (2002). As&iacute; se elimin&oacute; la interferencia en el estudio de la reacci&oacute;n de biodegradaci&oacute;n de tolueno (0.03M) donde se obtuvo una alta TB (75%).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En presencia de 0.01 g L de FeSO<sub>4</sub> <i>P. aeruginosa </i>mostr&oacute; un buen crecimiento, con un efecto colateral que favoreci&oacute; la producci&oacute;n de piocianina, aumentando las lecturas de absorbancia que interfieren en el monitoreo real de la reacci&oacute;n de biodegradaci&oacute;n del tolueno. La eliminaci&oacute;n de la producci&oacute;n del sider&oacute;foro se logr&oacute; usando concentraciones superiores a 0.01 g L de FeSO<sub>4</sub>. La concentraci&oacute;n &oacute;ptima para este caso fue 0.04 g L de FeSO<sub>4</sub> que permiti&oacute; monitorear la biotransformaci&oacute;n. Esta concentraci&oacute;n de sulfato de hierro coincide con la usada por Belhaj <i>et al. </i>(2002) con <i>P. aeruginosa.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio se mostr&oacute; que los efectos de la concentraci&oacute;n de iones de fierro en la producci&oacute;n de fenazinas, como la piocianina, deben ser considerados para mejorar el dise&ntilde;o de cultivo de bacterias con capacidad de producir este tipo de pigmentos y que puedan ser aplicados confiablemente en los m&eacute;todos de biodegradaci&oacute;n de CA. Las pruebas de degradaci&oacute;n individual de CA mostraron que la cepa de <i>P aeruginosa </i>usada degrada tolueno, benceno y fenol. Las concentraciones iniciales de los tres CA disminuyeron y el proceso de degradaci&oacute;n estuvo en relaci&oacute;n directa con el crecimiento bacteriano. Con las concentraciones iniciales de 0.14 M de tolueno y 0.16 M de benceno se logr&oacute; 58.14 % y 70.11 % de degradaci&oacute;n. Estas concentraciones fueron superiores a las reportadas por Reardon <i>et al. </i>(2000) con <i>P. putida </i>(tolueno 2.7 x 10<sup>&#150;3</sup> M y benceno 5.5 x 10<sup>&#150;4 </sup>&#150;3.2 x 10<sup>&#150;3</sup>M).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La biodegradaci&oacute;n de tolueno y benceno fueron mayores que la biodegradaci&oacute;n de fenol, mostrando que la m&aacute;xima tasa de degradaci&oacute;n de tolueno (0.14M) y benceno (0.16M) ocurri&oacute; a las 72 h (durante la fase exponencial), siendo la TB mayor para el benceno (70.11 %). Colateralmente, la mayor concentraci&oacute;n de prote&iacute;na fue encontrada en las c&eacute;lulas desarrolladas en presencia de este CA.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tolueno y benceno fueron mejores sustratos que el fenol, resultando en un mejor crecimiento de <i>P. aeruginosa; </i>adem&aacute;s fueron degradados m&aacute;s r&aacute;pido que el fenol. La baja tasa de degradaci&oacute;n de 0.10 M de fenol (24.65 %) correspondi&oacute; con una baja velocidad de crecimiento de <i>P. aeruginosa </i>y una baja concentraci&oacute;n de prote&iacute;na celular. Seg&uacute;n Hinteregger <i>et al. </i>(1992) los compuestos fen&oacute;licos pueden inhibir el crecimiento microbiano a&uacute;n a concentraciones relativamente bajas (&gt;200 mg L<sup>&#150;1</sup>). En el presente trabajo se reporta una cepa de <i>P. aeruginosa </i>que degrada fenol a una concentraci&oacute;n inicial de 0.10 M, superior a la reportada por Hinteregger <i>et al. </i>(1992) con <i>P. putida </i>y por Zache y Rehm (1989) con un cultivo mixto de <i>P. putida </i>y <i>Cryptococcus elinovii. </i>Esta capacidad degradativa de algunas cepas es de gran inter&eacute;s para los procesos de bioremediaci&oacute;n (Ma y Herson, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se mostr&oacute; la capacidad de <i>P. aeruginosa </i>para degradar compuestos arom&aacute;ticos, y debido a esta caracter&iacute;stica metab&oacute;lica la cepa creci&oacute; en presencia de concentraciones elevadas de tolueno (0.31 M), benceno (0.19 M) y fenol (0.13 M), lo que permite su aplicaci&oacute;n en procesos de biotecnolog&iacute;a ambiental.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tolueno y benceno fueron mejores sustratos que el fenol, efecto observado determinantemente en las mayores tasas de biodegradaci&oacute;n obtenidas con los dos primeros compuestos y las bajas TB con fenol. Hubo un efecto similar con la cantidad de biomasa: mayor crecimiento y una consecuentemente mayor cantidad de prote&iacute;na celular en presencia de tolueno y benceno; no as&iacute; con fenol. As&iacute;, la capacidad degradadora de <i>P. aeruginosa </i>estuvo en proporci&oacute;n directa con su crecimiento en presencia de los xenobi&oacute;ticos estudiados. Esto confirma que un deficiente desarrollo bacteriano (biomasa) converge en una deficiente biodegradaci&oacute;n, factor importante en el dise&ntilde;o de este tipo de tecnolog&iacute;as.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la optimizaci&oacute;n de los iones de FeSO<sub>4</sub> (0.04 g L<sup>&#150;1</sup>) en los estudios de biotransformaci&oacute;n de 0.03 M tolueno se logr&oacute; eliminar la producci&oacute;n e interferencia de la piocianina en los biorreactores utilizados, obteniendo una alta tasa de biodegradaci&oacute;n. Esto mejora el dise&ntilde;o de cultivo de bacterias productoras de pigmentos y permite proponer m&eacute;todos de biodegradaci&oacute;n de compuestos arom&aacute;ticos con mayor eficiencia y confiabilidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente trabajo proporciona informaci&oacute;n &uacute;til para el tratamiento exitoso de aguas contaminadas con tolueno, benceno y fenol, lo que permite entender mejor la capacidad y la funci&oacute;n de <i>P. aeruginosa </i>en aplicaciones biotecnol&oacute;gicas, lo que dar&aacute; una mayor eficiencia en procesos de biorremediaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abalos A., Vi&ntilde;as M., J. Sabat&eacute;, M. A. Manresa, and A. M. Solanas. 2004. Enhanced biodegradation of Casablanca crude oil by a microbial consortium in precence of rhamnolipid produced by <i>Pseudomonas aeruginosa </i>AT10. Biodegradation 15: 249&#150;260.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540388&pid=S1405-3195201000020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Banerjee I., J. M. Modak, K. Bandopadhyay, D. Das, and B. R. Maiti. 2001. Mathematical model for evaluation of mass transfer limitations in phenol biodegradation by immobilized <i>P. putida. </i>J. Biotechnol. 87: 211&#150;223.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540389&pid=S1405-3195201000020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Belhaj A., N. Desnoves, and C. Elmerich. 2002. Alkane biodegradation in <i>Pseudomonas aeruginosa </i>strain isolated from a pollute zone: Identification of alk B and alk B&#150;related genes. Res. Microbiol. 153: 339&#150;344.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540390&pid=S1405-3195201000020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Boopathy, R. 2000. Factors limiting bio remediation technologies. Bioresource Technol. 74: 63&#150;67.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540391&pid=S1405-3195201000020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Britigan B. E., M. A. Railsback, and CH. D. Cox. 1999. The <i>Pseudomonas aeruginosa </i>secretory product pyocyanin inactivates al protease inhibitor: Implications for the pathogenesis of cystic fibrosis lung disease. Infection and Immunity 67: 1207&#150;1212.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540392&pid=S1405-3195201000020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brock, T. D., D. W. Smith, y M. T. Madigan. 1987. Microbiolog&iacute;a. 4a edici&oacute;n. Prentice&#150;Hall Hispanoamericana. M&eacute;xico, pp: 163, 164,737.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540393&pid=S1405-3195201000020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castro, L. 1979. Dise&ntilde;o Experimental sin Estad&iacute;stica. 1&ordf; edici&oacute;n. Editorial Trillas. M&eacute;xico, pp: 59&#150;62.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540394&pid=S1405-3195201000020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cavalca L., E. Dell'Amico, and V. Andreoni. 2004. Intrinsic bioremediability of an aromatic hydrocarbon&#150;polluted groundwater: diversity of bacterial population and toluene monoxygenase genes. Appl. Microbiol. Biotechnol. 64: 576&#150;587.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540395&pid=S1405-3195201000020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Conesa, F. V. 1997. Gu&iacute;a Metodol&oacute;gica para la Evaluaci&oacute;n del Impacto Ambiental. 3&ordf; Edici&oacute;n. Ediciones Mundi&#150;Prensa. Espa&ntilde;a, pp: 200&#150;201.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540396&pid=S1405-3195201000020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az de Villegas, M. E., P. Villa, and A. Fr&iacute;as. 2002. Evaluation of the siderophores production by <i>Pseudomonas aeruginosa </i>PSS. Rev. Latin. Microbiol. 44: 3&#150;4, 112&#150;117.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540397&pid=S1405-3195201000020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fern&aacute;ndez, R. O., and R. A. Pizarro. 1999. <i>Pseudomonas aeruginosa </i>UV&#150;A&#150;induced let al effect: influence of salts, nutricional stress and pyocyanine. J. Photochem.Photobiol. B: Biology 50: 59&#150;65.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540398&pid=S1405-3195201000020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fortunato, R., J. G. Crespo, and M. A. M. Reis. 2005. Biodegradation of thiomersal containing effluents by a mercury resistant <i>Pseudomonas putida </i>strain. Water Res. 39: 3511&#150;3522.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540399&pid=S1405-3195201000020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gorina I. A., and I. V. Yakovleva. 1980. Rapid method for measuring protein content in microbial cells. Appl. Biochem. Microbiol. XVI: 936&#150;939.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540400&pid=S1405-3195201000020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hinteregger Ch., R. Leitner, M. Loidl, A. Ferschl, and F. Streichsbier. 1992. Degradation of phenol and phenolic compounds by <i>Pseudomonas putida </i>EKII. Appl. Microbiol. and Biotechnol. 37: 252&#150;259.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540401&pid=S1405-3195201000020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jacques, P., M. Ongena, F. Bernard, R. Fuchs, H. Budzikiewicz, and P. Thonart. 2003. Fluorescent Pseudomonas mainly produce the dihydroform of pyoverdine at low specific growth rate. Letters Appl. Microbiol. 36: 259&#150;262.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540402&pid=S1405-3195201000020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khan, S. A., M. Hamayun, and S. Ahmed. 2005. Degradation of 4&#150;aminophenol by newly isolated <i>Pseudomonas </i>sp. Strain ST&#150;4. Enzyme and Microbial Technol. 31: 10&#150;13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540403&pid=S1405-3195201000020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kwok, Chen&#150;Ko, and Loh Kai&#150;Chee. 2003. Effects of Singapore soil type on bioavailability of nutrients in soil bioremediation. Adv. Environ. Res. 7: 889&#150;900.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540404&pid=S1405-3195201000020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lau G. W., Huimin Ran, F. Kong, D. J. Hassett, and D. Mavrodi. 2004. <i>Pseudomonas aeruginosa </i>pyocyanin is critical for lung infection in mice. Infection and Immunity 72: 4275&#150;4278.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540405&pid=S1405-3195201000020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ma Y., and D. S. Herson. 2000. The catechol 2,3&#150;dioxigenase gene and toluene monooxigenase genes from <i>Burkholderia </i>sp. AA1, an isolate capable of degrading aliphatic hydrocarbons and toluene. J. Industrial Biotechnol. 25: 127&#150;131.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540406&pid=S1405-3195201000020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meenal, K., and Ch. Ambalal. 2005. Biodegradation of p&#150;nitrophenol by <i>P. putida. </i>Bioresource Technol. 97: 982&#150;988.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540407&pid=S1405-3195201000020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Menezes, B. R, C. F. A. de Oliveira, B. C. Okeke, and W. T Frankenberger Jr. 2005. Diversity of biosurfactant producing microorganisms isolated from soils contaminated with diesel oil. Microbiol. Res. 160: 249&#150;255.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540408&pid=S1405-3195201000020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Norman R. S., P. Moeller, T. J. McDonald, and P. J. Morris. 2004. Effect of pyocyanin on a crude&#150;oil&#150;degrading microbial community. Appl. Environ. Microbiol. 70: 4004&#150;4011.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540409&pid=S1405-3195201000020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pichardo, R. E. A., M. J. Bale, W. H. Cannon, and J. M. Matsen. 1981. Identification of <i>Pseudomonas aeruginosa </i>by pyocyanin production on agar tech. J. Clinical Microbiol. 13:456&#150;458.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540410&pid=S1405-3195201000020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reardon, K. F., D. C. Mosteller, and J. D. Bull Rogers. 2000. Biodegradation kinetics of benzene. Toluene and phenol as single and mixed substrates for <i>Pseudomonas putida </i>PI. Biotechnol. Bioeng. 69: 386&#150;400.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540411&pid=S1405-3195201000020001200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez, L., S. Ortiz, y A. Hern&aacute;ndez. 2003. Obtenci&oacute;n de sider&oacute;foros a partir de <i>Burkholderia cepacia </i>y optimizaci&oacute;n del medio de cultivo para su producci&oacute;n. Rev. Salud Anim. 25: 27&#150;33.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540412&pid=S1405-3195201000020001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Siedlecka, E. M., and P. Stepnowski. 2005. Phenols degradation by Fenton reaction in the presence of chlorides and sulfates. Polish J. Environ. Studies. 16: 823&#150;828.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540413&pid=S1405-3195201000020001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sutton, D. B., y P. Harmon. 1997. Fundamentos de Ecolog&iacute;a. Ed. Limusa, M&eacute;xico, 19&ordf; impresi&oacute;n, pp: 132&#150;133.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540414&pid=S1405-3195201000020001200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Triola, M. F. 2004. Probabilidad y Estad&iacute;stica. 9&ordf; edici&oacute;n. Pearson Educaci&oacute;n. M&eacute;xico. 648 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540415&pid=S1405-3195201000020001200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tsoraeva, A., and M. C. Rodr&iacute;guez. 2000. Comparison of two culture media for selective isolation and membrana filter enumeration of <i>Pseudomonas aeruginosa </i>in water. Rev. Latin. Microbiol. 42: 149&#150;154.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540416&pid=S1405-3195201000020001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Walpole, R. E., R. H. Myers, y S. L. Myers. 1999. Probabilidad y Estad&iacute;stica para Ingenieros. 6&ordf; edici&oacute;n. Pearson Prentice&#150;Hall. M&eacute;xico. 752 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540417&pid=S1405-3195201000020001200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zache, G., and H. J. Rehm. 1989. Degradation of phenol by a coimmobilized entrapped mixed culture. Appl. Microbiol. Biotechnol. 30: 426&#150;432.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=540418&pid=S1405-3195201000020001200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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