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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Composición de alcaloides en semillas de Lupinus mexicanus (Fabaceae) y evaluación antifúngica y alelopática del extracto alcaloideo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Plants synthesize secondary metabolites that can be isolated and used in agriculture as an alternative for the control of pests and diseases. Capillary gas chromatography-mass spectrometry (CG-MS) was used to analyze the composition of alkaloids in seeds of Lupinus mexicanus. In addition, an in vitro study was made of the antifungal and allelopathic activity of the crude extract of alkaloids. The antifungal action of the extract was evaluated based on the inhibition of the mycelial growth of the phytopathogenic fungi Sclerotium rolfsii, Rhizoctonia solani and Fusarium oxysporum, while the allelopathic activity was evaluated on the germination of seeds of Amaranthus hybridus and Echinochloa crus-galli. The analysis of alkaloids from the extract revealed the presence of lupanine, 3&#946;-hydroxylupanine, multiflorine aphylline, epiaphylline and &#945;-isolupanine as majority compounds. The extract, at the concentration of 3 mg mL-1, significantly inhibited the mycelial growth of R. solani by 87.7%, whereas the mycelial growth of S. rolfsii was only inhibited 72.5% with the highest concentration. Only the germination of seeds of A. hybridus showed significant differences from the effect of the extract, and inhibition of germination was 80% with the highest concentration (1 mg mL-1). Lupanine was the most abundant alkaloid (76.2%) in the extract of seeds of L. mexicanus. The extract showed inhibitory activity of the mycelial growth of R. solani and S. rolfsii, and a phytotoxic or inhibitory effect on the germination of seeds of A. hybridus.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Fitociencia</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Composici&oacute;n de alcaloides  en semillas de <i>Lupinus mexicanus </i>(fabaceae) y evaluaci&oacute;n antif&uacute;ngica y alelop&aacute;tica del extracto alcaloideo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Composition of  alkaloids in seeds of <i>Lupinus mexicanus </i>(fabaceae) and antifungal and allelopathic evaluation of the alkaloid extract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Francisco Zamora&#150;Natera<sup>1</sup>, Pedro Garc&iacute;a&#150;L&oacute;pez<sup>1</sup>, Mario Ruiz&#150;L&oacute;pez<sup>1</sup> y Eduardo Salcedo&#150;P&eacute;rez<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Departamento de Bot&aacute;nica y Zoolog&iacute;a, </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup> 2 </sup><i>Departamento de Madera Celulosa y Papel. Universidad de Guadalajara. 45110. Km. 15.5. Carretera Guadalajara&#150;Nogales. Las Agujas, Zapopan. Jalisco, M&eacute;xico</i> (<a href="mailto:jfzamora@cucba.udg.mx">jfzamora@cucba.udg.mx</a>)</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Marzo, 2007.    <br>   Aprobado: Diciembre, 2007.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas sintetizan metabolitos secundarios que se pueden aislar y usar en la agricultura como una alternativa para el control de plagas y enfermedades. Se analiz&oacute; por cromatograf&iacute;a de gases capilar&#150;espectrometr&iacute;a de masas (CG&#150;EM) la composici&oacute;n de alcaloides en semillas de <i>Lupinus mexicanus; </i>as&iacute; mismo se estudi&oacute; <i>in vitro </i>la actividad antif&uacute;ngica y alelo&#150;p&aacute;tica del extracto crudo de alcaloides. La acci&oacute;n antif&uacute;ngica del extracto se evalu&oacute; con base en la inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de los hongos fitopat&oacute;genos <i>Sclerotium rolfsii, Rhizoctonia solani </i>y <i>Fusarium oxysporum, </i>mientras que la actividad alelop&aacute;tica se evalu&oacute; sobre la germinaci&oacute;n de semillas de <i>Amaranthus hybridus </i>y <i>Echinochloa crus&#150;galli. </i>El an&aacute;lisis de alcaloides del extracto revel&oacute; la presencia de lupanina, 3<i>&beta;</i>&#150;hidroxilupanina, multiflorina afilina, epiafilina y &alpha;&#150;isolupanina como compuestos mayoritarios. El extracto, a concentraci&oacute;n de 3 mg mL<sup>&#150;1</sup>, inhibi&oacute; significativamente el crecimiento micelial de R. <i>solani </i>en 87.7%, mientras que el micelio de <i>S. rolfsii </i>s&oacute;lo se inhibi&oacute; 72.5% con la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta. S&oacute;lo la germinaci&oacute;n de semillas de <i>A. hybridus </i>mostr&oacute; diferencias significativas por efecto del extracto, y la inhibici&oacute;n de la germinaci&oacute;n fue 80% con la mayor concentraci&oacute;n (1 mg mL<sup>&#150;1</sup>). La lupanina fue el alcaloide m&aacute;s abundante (76.2%) en el extracto de semillas de <i>L. mexicanus. </i>El extracto mostr&oacute; actividad inhibitoria del crecimiento micelial de R. <i>solani </i>y <i>S. rolfsii, </i>y un efecto fitot&oacute;xico o inhibidor de la germinaci&oacute;n de semillas de <i>A. hybridus.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Lupinus, </i>actividad biol&oacute;gica, alcaloides quinolizid&iacute;nicos, hongos fitopat&oacute;genos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Plants synthesize secondary metabolites that can be isolated and used in agriculture as an alternative for the control of pests and diseases. Capillary gas chromatography&#150;mass spectrometry (CG&#150;MS) was used to analyze the composition of alkaloids in seeds of <i>Lupinus mexicanus. </i>In addition, an <i>in vitro </i>study was made of the antifungal and allelopathic activity of the crude extract of alkaloids. The antifungal action of the extract was evaluated based on the inhibition of the mycelial growth of the phytopathogenic fungi <i>Sclerotium rolfsii, Rhizoctonia solani </i>and <i>Fusarium oxysporum, </i>while the allelopathic activity was evaluated on the germination of seeds of <i>Amaranthus hybridus </i>and <i>Echinochloa crus&#150;galli. </i>The analysis of alkaloids from the extract revealed the presence of lupanine, 3<i>&beta;</i>&#150;hydroxylupanine, multiflorine aphylline, epiaphylline and &alpha;&#150;isolupanine as majority compounds. The extract, at the concentration of 3 mg mL<sup>&#150;1</sup>, significantly inhibited the mycelial growth of R. <i>solani </i>by 87.7%, whereas the mycelial growth of <i>S. rolfsii </i>was only inhibited 72.5% with the highest concentration. Only the germination of seeds of A. <i>hybridus </i>showed significant differences from the effect of the extract, and inhibition of germination was 80% with the highest concentration (1 mg mL<sup>&#150;1</sup>). Lupanine was the most abundant alkaloid (76.2%) in the extract of seeds of <i>L. mexicanus. </i>The extract showed inhibitory activity of the mycelial growth of R. <i>solani </i>and <i>S. rolfsii, </i>and a phytotoxic or inhibitory effect on the germination of seeds of A. <i>hybridus.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Lupinus, </i>biological activity, quinolizidine alkaloids, phytopathogenic fungi.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los insectos, microorganismos fitopat&oacute;genos y malezas son responsables de la reducci&oacute;n de los rendimientos en cultivos agr&iacute;colas. Seg&uacute;n Mohamed <i>et al. </i>(1996), las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas por enfermedades causadas por hongos en frutos pueden ser 5 a 50% o m&aacute;s. En especies como trigo o ma&iacute;z las bajas de rendimiento y las consiguientes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas por malezas son 30% y en algunos casos hasta 90% (Kogan y P&eacute;rez, 2003). Aunque estas p&eacute;rdidas se pueden reducir mediante el uso de variedades resistentes, rotaci&oacute;n de cultivos o pr&aacute;cticas sanitarias, el uso de plaguicidas sint&eacute;ticos para proteger los cultivos es el factor m&aacute;s importante para maximizar los rendimientos (Carpinella <i>et al., </i>2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, el uso indiscriminado de estos productos ocasiona problemas como la eliminaci&oacute;n de enemigos naturales, surgimiento de organismos resistentes, acumulaci&oacute;n de residuos t&oacute;xicos en productos agr&iacute;colas y contaminaci&oacute;n del ambiente (Duke <i>et al., </i>2000). Esto ha motivado la b&uacute;squeda de productos alternativos en la protecci&oacute;n de cultivos contra la acci&oacute;n de organismos fitopat&oacute;genos y malezas cuya actividad, selectividad y seguridad ambiental sea adecuada. Los productos naturales son menos agresivos para el ambiente y representan una fuente alternativa de plaguicidas naturales en la agricultura. Los alcaloides quinolizid&iacute;nicos son un grupo importante de compuestos naturales en el g&eacute;nero <i>Lupinus </i>(Fabaceae) (Wink, 2003). Estos metabolitos secundarios son un mecanismo de defensa contra microorganismos fitopat&oacute;genos, herb&iacute;voros y contra otras especies de plantas que causan competencia (Wink, 1998). Se han hecho estudios preliminares para conocer la actividad funguicida de polvos y extractos crudos obtenidos de semillas de <i>L. campestris, L. montanus y L. exaltatus </i>(Bravo <i>et al., </i>2000; Zamora <i>et al., </i>2002). En L. <i>mexicanus, </i>una especie silvestre con amplia distribuci&oacute;n en Jalisco, M&eacute;xico, y con alto contenido de alcaloides en sus semillas, no se ha estudiado la actividad biol&oacute;gica de estos compuestos. Por tanto, el objetivo de esta investigaci&oacute;n fue determinar la composici&oacute;n de alcaloides en semillas de <i>L. mexicanus </i>y evaluar la actividad antif&uacute;ngica y potencial alelop&aacute;tico <i>in vitro </i>del extracto de alcaloides.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material vegetal</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas de <i>L. mexicanus </i>se recolectaron en mayo de 2005 en el municipio de Lagos de Moreno, Jalisco, M&eacute;xico. Se determin&oacute; la identidad de la especie usando el herbario del Instituto de Bot&aacute;nica de la Universidad de Guadalajara (Voucher No. 853). Las semillas se molieron y la harina se desengras&oacute; con hexano en equipo soxhlet.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de alcaloides para an&aacute;lisis</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n de alcaloides se hizo seg&uacute;n Muzquiz <i>et al. </i>(1993): 500 mg de harina se homogenizaron con 5 mL de &aacute;cido tricloro&aacute;cetico al 5% por 1 min, la mezcla se centrifug&oacute; 15 min a 2400 x g y se decant&oacute; el sobrenadante. La extracci&oacute;n se repiti&oacute; dos veces y el volumen de los tres sobrenadantes se transfiri&oacute; a embudos para alcalinizar con 0.8 mL de Na0H 10 M. Los alcaloides se extrajeron con diclorometano (3X15 mL). Los extractos crudos se concentraron en un rotavapor a 40 &deg;C hasta sequedad. El residuo se disolvi&oacute; en 1 mL de metanol y se paso por filtros Millipore de 0.45 <i>&micro;</i>m.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cromatograf&iacute;a de gases capilar&#150;espectrometr&iacute;a de masas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de filtrar, 0.5 mL del extracto se mezclaron con 0.5 mL de metanol y se inyect&oacute; 1 <i><i>&micro;</i></i>L de muestra a un cromat&oacute;grafo de gases capilar Perkin&#150;Elmer Autosystem 1XL con columna capilar SPB&#150;1 (30 mX0.25 mm d.i.), acoplado a un espectr&oacute;metro de masas (Perkin&#150;Elmer Turbomass Gold). El gas acarreador fue He con un flujo de 1 mL min<sup>&#150;1</sup>; las temperaturas del inyector y del detector fueron 240 y 300 &deg;C. El programa de temperatura fue 180 &deg;C 2 min, isot&eacute;rmica, 180&#150;300 &deg;C a 5 &deg;C min, 300 &deg;C 10 min, isot&eacute;rmica. La abundancia relativa de alcaloides se calcul&oacute; considerando las &aacute;reas de los picos del cromatograma, mientras que para identificar los alcaloides se compararon los espectros de masas obtenidos con los de la biblioteca del software y con los reportados por Meibner y Wink (1991).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n del extracto crudo de alcaloides para los bioensayos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se pesaron 100 g de harina desengrasada y se homogeneizaron con 400 mL de &aacute;cido tricloroac&eacute;tico al 5% en agitaci&oacute;n constante por 12 h; la mezcla se centrifug&oacute; 15 min a 2400 x g. El sobrenadante se alcaliniz&oacute; con 10 mL de hidr&oacute;xido de sodio 10 M en un embudo de separaci&oacute;n, los alcaloides se extrajeron con diclorometano (3X50 mL), se recuper&oacute; la fase org&aacute;nica y se llev&oacute; a sequedad a 40 &deg;C con rotavapor. El extracto se resuspendi&oacute; en metanol, se transfiri&oacute; a frascos &aacute;mbar, se evapor&oacute; el solvente y se almacen&oacute; a 4 &deg;C hasta su utilizaci&oacute;n en los bioensayos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bioensayos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antif&uacute;gica <i>in vitro </i>del extracto se evalu&oacute; con base en su capacidad de inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de los hongos fitopat&oacute;genos <i>Sclerotium rolfsii </i>Sacc, y <i>Rhizoctonia solani </i>K&uuml;hn (cepas proporcionadas por El Instituto de Fitosanidad del Colegio de Postgraduados) y <i>Fusarium oxysporum </i>Schlechtend aislado de plantas de <i>Agave tequilana </i>Weber en Zapopan, Jalisco. El extracto de alcaloides disuelto en agua destilada se adicion&oacute; a 100 mL de medio de cultivo agar papa dextrosa a concentraciones de 0, 1, 2, 3, 4 y 5 mg mL<sup>&#150;1</sup>. El medio se esteriliz&oacute; 15 min en autoclave a 1.05 kg cm<sup>&#150;2</sup> de presi&oacute;n y se transfiri&oacute; a cajas Petri (8.5 cm di&aacute;metro). Las cajas se inocularon con discos de micelio (0.5 cm di&aacute;metro) y se incubaron en la oscuridad a 25 &deg;C. Cuando el micelio del hongo cubri&oacute; la superficie del medio en el testigo se retiraron todas las cajas de la estufa y se midi&oacute; el di&aacute;metro del micelio.  El porcentaje de inhibici&oacute;n se calcul&oacute; con la siguiente ecuaci&oacute;n:   I = &#91;(C &#150; T) / C &#93;<i> </i>* 100, donde I es la inhibici&oacute;n (%), C es el di&aacute;metro del micelio en la caja Petri del testigo (0 mg mL<sup>&#150;1</sup>), y T es el di&aacute;metro del micelio en la caja del tratamiento (1, 2, 3, 4 y 5 mg mL<sup>&#150;1</sup>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar la actividad alelop&aacute;tica del extracto se usaron semillas de <i>Amaranthus hibrydus </i>y <i>Echinochloa crus galli, </i>consideradas como malezas en el valle de M&eacute;xico (Espinosa y Sarukh&aacute;n, 1998). Estas se desinfectaron con hipoclorito de sodio al 5% y se lavaron con agua destilada. Para evaluar el efecto del extracto alcaloideo sobre la germinaci&oacute;n de las semillas se prepararon soluciones de extracto en agua destilada en concentraciones de 0.25, 0.50, 0.75 y 1.0 mg mL<sup>&#150;1</sup>. Se colocaron 40 semillas en cajas Petri sobre papel filtro (Whatman N&uacute;m. 1), se adicionaron 4 mL de cada concentraci&oacute;n, as&iacute; como 4 mL de agua destilada en el tratamiento testigo (0 ppm). Las cajas (5 por tratamiento) se incubaron 72 h en la oscuridad a 25 &deg;C y despu&eacute;s se registraron las semillas germinadas para cada tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar con cinco repeticiones por tratamiento y las variables fueron: crecimiento micelial, y germinaci&oacute;n de semillas. Se hizo un an&aacute;lisis de varianza y las medias se compararon con la prueba de Tukey (p<u>&lt;</u>0.05).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de alcaloides</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a href="/img/revistas/agro/v42n2/a6c1.jpg" target="_blank">En el Cuadro 1</a> se muestra el patr&oacute;n de fragmentaci&oacute;n de los alcaloides mayoritarios en el extracto de <i>L. mexicanus, </i>los cuales se identificaron al comparar los espectros de masas obtenidos con los espectros de la base de datos del programa y los existentes en la bibliograf&iacute;a (Meibner y Wink, 1991). Tambi&eacute;n se identificaron algunos alcaloides minoritarios: 11,12&#150;dehidrolupanina, 17&#150;oxolupanina, amodendrina y 11,12&#150;dehidro&#150;oxoesparte&iacute;na. La lupanina y 3&beta;&#150;hidroxilupanina fueron los principales alcaloides en el extracto (21.2 y 2.6 mg g<sup>&#150;1</sup>): el primero contribuy&oacute; con 76.2% y el segundo con 9.4% del contenido total, mientras que los alcaloides minoritarios representaron 4.5% (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). Seg&uacute;n Przybylak <i>et al. </i>(2005), la lupanina es el alcaloide mayoritario en semillas de <i>L. rotundiflorus </i>y <i>L. exaltatus </i>de M&eacute;xico, con 62.2 y 47.3%, pero estos valores son inferiores a los determinados en el presente estudio con <i>L. mexicanus </i>(76.2%).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v42n2/a6c2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En otras especies silvestres de M&eacute;xico, <i>L. hintonii </i>y <i>L. campestris, </i>los alcaloides mayoritarios son 13&alpha;&#150;hidroxilupanina e hidroxiafilidina (Berm&uacute;dez <i>et al., </i>2002; Mart&iacute;nez <i>et al., </i>2001). Estas variaciones en el perfil y composici&oacute;n de alcaloides en las semillas de las diferentes especies del g&eacute;nero <i>Lupinus </i>se han relacionado con la especie, lugar y fecha de recolecta.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antif&uacute;ngica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hubo diferencias significativas (p<u>&lt;</u>0.05) en el crecimiento promedio del micelio de <i>S. rolfsii </i>y <i>R. solani </i>por efecto del extracto. Las concentraciones m&aacute;s bajas del extracto no mostraron efectos importantes sobre el crecimiento del micelio con respecto al testigo; sin embargo, al aumentar las concentraciones hubo una se redujo el crecimiento micelial con una respuesta de susceptibilidad diferente en relaci&oacute;n con el pat&oacute;geno. As&iacute;, al aumentar las concentraciones de extracto el crecimiento del micelio de <i>R. solani </i>la inhibici&oacute;n promedio fue 81.6, 87.7 y 100% con 3, 4 y 5 mg mL<sup>&#150;1 </sup>(<a href="/img/revistas/agro/v42n2/a6c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Este comportamiento fue similar en <i>S. rolfsii, </i>pero la inhibici&oacute;n del crecimiento del micelio fue inferior al aplicar las mismas concentraciones del extracto: con 3, 4 y 5 mg mL<sup>&#150;1</sup> el crecimiento del micelio s&oacute;lo se inhibi&oacute; 31, 35 y 72.5%. Esto indica que <i>S. rolfsii </i>fue menos susceptible que <i>R. solani </i>al extracto alcaloideo de <i>L. mexicanus.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento micelial de <i>F. oxisporum </i>no fue diferente (p&gt;0.05) entre tratamientos, es decir, las concentraciones del extracto no inhibieron el crecimiento de este hongo. La resistencia de <i>F. oxysporum </i>a los alcaloides de <i>L. mexicanus </i>se ha reportado al usar extractos de <i>L. montanus </i>y <i>L. rotundiflorus </i>(Bernal, 2004<sup>3</sup>; Zamora <i>et al., </i>2002); adem&aacute;s, no se inhibi&oacute; el crecimiento micelial de <i>F. moniliforme </i>al incorporar al medio de cultivo semillas molidas de <i>L. campestris </i>y <i>L. mutabilis </i>(Bravo <i>et al., </i>2000).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sas&#150;Piotrowska <i>et al. </i>(1996) reportaron porcentajes de inhibici&oacute;n menores a los encontrados en el presente estudio contra <i>R. solani </i>y otras especies de hongos al usar diferentes fracciones de un extracto etan&oacute;lico de <i>L. angustifolius. </i>Las diferencias observadas en otros estudios y los reportados en esta investigaci&oacute;n se deben probablemente a la variaci&oacute;n en el perfil y concentraci&oacute;n de alcaloides en los extractos de semillas de las especies de <i>Lupinus, </i>as&iacute; como las posibles variaciones en la metodolog&iacute;a de extracci&oacute;n. Los resultados son de inter&eacute;s debido a que hay pocas referencias de la actividad fungicida de alcaloides quinolizd&iacute;nicos de especies mexicanas de <i>Lupinus.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad alelop&aacute;tica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hubo diferencias significativas entre tratamientos (p<u>&lt;</u>0.05) para la germinaci&oacute;n de semillas de <i>A. hybridus, </i>ya que disminuy&oacute; hasta 80% la germinaci&oacute;n con la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de extracto (<a href="/img/revistas/agro/v42n2/a6c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). En otro estudio (Z&aacute;rate <i>et al., </i>2006) se encontr&oacute; la misma tendencia al evaluar concentraciones de 0.5, 1, 2, 3, 4 y 5% de un extracto acuoso de hojas de <i>Calia secundiflora, </i>en el cual se detect&oacute; la presencia de alcaloides quinolizid&iacute;nicos, aunque la m&aacute;xima inhibici&oacute;n de la germinaci&oacute;n de <i>A. hybridus </i>fue 27%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wink (1983) report&oacute; una inhibici&oacute;n de 100% en semillas de <i>Lactuca sativa </i>al usar un extracto de <i>L. mutabilis </i>a una concentraci&oacute;n de 1.98 mg mL<sup>&#150;1</sup>, la cual fue superior a la concentraci&oacute;n m&aacute;xima usada en este estudio (1 mg mL<sup>&#150;1</sup>). Las anteriores diferencias en la inhibici&oacute;n de la germinaci&oacute;n se deben probablemente a la variaci&oacute;n en la composici&oacute;n y concentraci&oacute;n de alcaloides quinolizid&iacute;nicos entre <i>C. secundiflora, L. mutabilis y L. mexicanus. </i>Aunque hay antecedentes de la alta sensibilidad de <i>A. hybridus </i>a la aplicaci&oacute;n de diferentes compuestos naturales como &aacute;cidos fen&oacute;licos y aceites esenciales, &eacute;ste es el primer reporte de un efecto inhibitorio importante de la germinaci&oacute;n de esta especie de maleza, particularmente por el efecto de los alcaloides quinolizid&iacute;nicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de germinaci&oacute;n de las semillas de <i>E. crus galli </i>en el an&aacute;lisis no fueron diferentes (p&gt;0.05) entre las concentraciones de extracto y el testigo. Lo anterior indica que <i>A. hybridus </i>es m&aacute;s sensible a los alcaloides de <i>L. mexicanus </i>que <i>E. crus galli. </i>Esta diferencia de sensibilidad entre especies receptoras de alcaloides quinolizidinicos tambi&eacute;n fue reportada por Muzquiz <i>et al. </i>(1994) quienes, al evaluar un extracto alcaloideo obtenido de <i>Lupinus hispanicus </i>y <i>L. albus </i>sobre la germinaci&oacute;n de <i>Avena sterilis, Lycopersicom sculentum, Triticum aestivum, Chenopodium album, Vicia villosa </i>y <i>Pisum stivum, </i>s&oacute;lo encontraron efectos inhibitorios de la germinaci&oacute;n en <i>A. sterilis.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La lupanina fue el alcaloide m&aacute;s abundante en las semillas de <i>L. mexicanus. </i>Con la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de extracto (5 mg mL<sup>&#150;1</sup>) el crecimiento micelial de <i>R. solani </i>se inhibi&oacute; completamente (100%), mientras que el micelio de <i>S. rolfsii </i>a la misma concentraci&oacute;n mostr&oacute; una inhibici&oacute;n de 72.5%. S&oacute;lo la germinaci&oacute;n de <i>A. hybridus </i>se inhibi&oacute; significativamente por efecto del extracto.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la Secretar&iacute;a de Educaci&oacute;n Superior e Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica por el financiamiento otorgado mediante el PROMEP/103.5/07/27.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA </b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berm&uacute;dez T. K., N. Robledo Q., L. Barrera N., and M. Wink. 2002. Alkaloid profile of leaves and seeds of <i>Lupinus hintonii </i>C. P. Smith. Z. Naturforsch. 57c: 243&#150;247. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519084&pid=S1405-3195200800020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bravo L. L, K. Berm&uacute;dez T., y R. Montes B. 2000. Inhibici&oacute;n de <i>Fusarium moniliforme </i>Sheld. mediante polvos vegetales y algunos de sus componentes qu&iacute;micos. Manejo Integrado de Plagas 57: 29&#150;34. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519085&pid=S1405-3195200800020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carpinella C.  M.,  L.  M Giorda,  C.  Ferrayoli  G.,  and S.  M. Palacios. 2003. Antifungal effects of different organic extracts from <i>Melia azederach </i>on phytopatogenic fungi and their isolated active components. J. Agric. Food Chem. 51: 2506&#150;2511. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519086&pid=S1405-3195200800020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Duke,  S.  O,  J.  Romagni G.,  and E.  Dayan F.  2000.  Natural products as source for new mechanisms of herbicidal action. Crop Protection 19: 583&#150;589. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519087&pid=S1405-3195200800020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinosa G. F., y J. Sarukh&aacute;n K.  1998. Manual de Malezas del Valle de M&eacute;xico. Fondo de Cultura Econ&oacute;mica. M&eacute;xico, D. F. 407 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519088&pid=S1405-3195200800020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kogan A. M., y A. P&eacute;rez J. 2003. Herbicidas: Fundamento Fisiol&oacute;gicos y Bioqu&iacute;micos del Modo de Acci&oacute;n. Ediciones Universidad Cat&oacute;lica de Chile, Santiago, Chile. 333 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519089&pid=S1405-3195200800020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez H. J. N. Robledo Q., R. Mora E., and G. Davila O. 2001. Alkaloids composition of <i>Lupinus campestris </i>from Mexico. J. Food Biochem. 25: 117&#150;125.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519090&pid=S1405-3195200800020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meibner, C., and M. Wink 1991. GC/MS&#150;Analyse von Alkaloiden Nordamerikanischer Lupinen. Forschung, anbau und verwertung. Wink, M. (ed). Heidelberg, Germany. pp: 91&#150;22.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519091&pid=S1405-3195200800020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mohamed, S., S. Saka, S. El&#150;Sharkawy H., M. Ali, and S. Muid. 1996. Antimycotic screening of 58 Malaysian plants against plant pathogens.   Pesticide Sci. 47(3): 259&#150;264.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519092&pid=S1405-3195200800020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Muzquiz M, C. Burbano, C. Cuadrado, y C. De la Cuadra. 1993. Determinaci&oacute;n de factores antinutritivos termorresistentes en leguminosas I: Alcaloides. Inv. Agraria. Producci&oacute;n y Protecci&oacute;n Veg. 8: 351&#150;361.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519093&pid=S1405-3195200800020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Muzquiz M. E., C. De la Cuadra, C. Cuadrado, C. Burbano, and R. Calvo. 1994. Herbicide&#150;like effect of <i>Lupinus </i>alkaloids. Industrial Crops and Products 2: 173&#150;280.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519094&pid=S1405-3195200800020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Przybylak, J. K., D. Ciesiolka, W. Wysocka, P. Garcia L., M. A. Ruiz L., W. Wysocki, and K Gulewicz. 2005. Alkaloids profiles of Mexican wild lupin and effect of alkaloid preparation from <i>Lupinus exaltatus </i>seeds on growth and yield of paprika <i>(Capsicum annum </i>L.). Industrial Crops and Products 21: 1&#150;7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519095&pid=S1405-3195200800020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sas&#150;Piotrowska, B., T. Aniszewski, and K. Gulewicz. 1996. An evidence for fungistatic activity of some preparations from alkaloids&#150;rich lupin seeds on potato pathogenic fungi. Bull. of the Polish Academy of Biol. Sci. 44(1&#150;2): 41&#150;47.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519096&pid=S1405-3195200800020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wink, M. 1983. Inhibition of seed germination by quinolizidine alkaloids. Aspects of allelopathy in <i>Lupinus albus </i>(L.). Planta 158: 365&#150;368.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519097&pid=S1405-3195200800020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wink, M. 1998. Chemical ecology of alkaloids. <i>In: </i>Roberts F. M., and M. Wink (eds). Alkaloids: Biochemistry, Ecology and Medicinal Applications. Plenum Press, New York, pp: 265&#150;296.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519098&pid=S1405-3195200800020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wink, M. 2003. Evolution of secondary metabolites from an ecological and molecular phylogenetic perspective. Phytochemistry 64: 3&#150;19.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519099&pid=S1405-3195200800020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zamora N. F., G. Virgen C., A. Bernal A., S. Fausto G., and M. Ruiz L. 2002. <i>In vitro </i>antifungal activity of <i>Lupinus montanus </i>extract and lupanine on <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp <i>melonis. In: </i>Proc. 10th Int. Lupin Conference. van Santen E., M. Wink, S. Weissmann, and P. Romer (eds). Laugarvatn, Iceland. pp: 255&#150;256.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519100&pid=S1405-3195200800020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Z&aacute;rate H., J., R. Garc&iacute;a M., F. Zavala CH., R. P&eacute;rez L., y M. Soto H. 2006. Fitotoxicidad de los extractos de <i>Calia secundiflora </i>(Ort.) Yakovlev. Revista Chapingo, Serie Horticultura. 12(002): 197&#150;202.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=519101&pid=S1405-3195200800020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Alkaloid profile of leaves and seeds of Lupinus hintonii C. P. Smith]]></article-title>
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