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<article-id>S1027-152X2014000200008</article-id>
<article-id pub-id-type="doi">10.5154/r.rchsh.2013.05.018</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Dinámica del crecimiento de papaya por efecto de la inoculación micorrízica y fertilización con fósforo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Papaya is a major fruit export for Mexico; however, the international market is increasingly demanding bio quality, representing a significant production challenge due to the need for bio-ecological and sustainable technologies. Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) can contribute significantly to plant nutrition, particularly in phosphorous (P) uptake. The use of AMF in papaya is yielding encouraging results, but there is a need to define certain aspects regarding agronomic management of AMF-based products. The aim of this study was to evaluate the effect of AMF Glomus sp. Zac-2 and P fertilization on the growth of Cera var. papaya during the nursery stage. For this, a 2 x 3 x 4 tri-factorial experiment (AMF inoculation, P source and P dose) was conducted in a completely randomized design. The variables plant height (PH) and stem diameter (SD) were evaluated every 15 days; dry biomass (DB) and spore density (SD) were assessed at the end of the experiment (90 days). From the DB of plants with and without mycorrhizal inoculation, the relative mycorrhizal dependency index (RMDI) was calculated. Data analysis showed significant differences (P &#8804; 0.05) between papaya plants with and without AMF for PH, SD and DB, regardless of the P dose and source. At 75 days, growth increases of more than 500 % were recorded in plants with AMF compared to the non-inoculated plants; the RMDI was 99 %. These results suggest that AMF inoculation in papaya during the nursery phase can benefit further growth in the field.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Din&aacute;mica del crecimiento de papaya por efecto de la inoculaci&oacute;n micorr&iacute;zica y fertilizaci&oacute;n con f&oacute;sforo</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Growth dynamics of papaya due to mycorrhizal inoculation and phosphorous fertilization</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Evangelina Esmeralda Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar<sup>1</sup>; Luis L&oacute;pez&#45;P&eacute;rez<sup>2</sup>; Gabriel Rinc&oacute;n&#45;Enr&iacute;quez<sup>1</sup>*</b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Biotecnolog&iacute;a Vegetal, Centro de Investigaci&oacute;n y Asistencia en Tecnolog&iacute;a y Dise&ntilde;o del Estado de Jalisco. Av. Normalistas n&uacute;m. 800, Colinas de la Normal. C. P. 44270. Guadalajara, Jalisco, M&eacute;xico.</i> Correo&#45;e: <a href="mailto:grincon@ciatej.mx">grincon@ciatej.mx</a> <i>(*Autor para correspondencia)</i>.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup><i> Instituto de Investigaciones Agropecuarias y Forestales de la Universidad Michoacana de San Nicol&aacute;s de Hidalgo. km 9.5 Carretera Morelia&#45;Zinap&eacute;cuaro, col. El Tr&eacute;bol. C. P. 58880. Tar&iacute;mbaro, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 25 de mayo, 2013.     <br> Aceptado: 11 de agosto, 2014.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, la papaya es un fruto importante de exportaci&oacute;n; sin embargo, este mercado exige calidad bio, constituyendo un reto en la producci&oacute;n con el uso de tecnolog&iacute;as bio&#45;ecol&oacute;gicas y sostenibles. Los hongos micorr&iacute;zicos arbusculares (HMA) pueden contribuir significativamente en la nutrici&oacute;n vegetal, en especial en la obtenci&oacute;n de f&oacute;sforo (P). El empleo de los HMA en papaya es alentador, pero falta definir aspectos sobre el manejo agron&oacute;mico de productos a base de HMA. El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto del HMA <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 y la fertilizaci&oacute;n con P, sobre el crecimiento de papaya var. Cera, durante la etapa de vivero. Para ello, se realiz&oacute; un experimento trifactorial 2 x 3 x 4 (inoculaci&oacute;n HMA, fuente y dosis de P) en un dise&ntilde;o completamente al azar. Las variables evaluadas fueron altura de planta (AP) y di&aacute;metro de tallo (DT), cada 15 d&iacute;as; biomasa seca (BS) y densidad de esporas (DE), al final del experimento (90 d&iacute;as). A partir de la BS de plantas con y sin micorrizar, se calcul&oacute; el &iacute;ndice relativo de dependencia micorr&iacute;zica (IRDM). Las variables AP, DT y BS fueron diferentes (<i>P</i> &le; 0.05) entre plantas con y sin HMA, independientemente de la dosis y fuente de P. A los 75 d&iacute;as, las plantas con HMA incrementaron su crecimiento m&aacute;s de 500 % con respecto a las no inoculadas; el IRDM fue 99 %. Estos resultados sugieren que la inoculaci&oacute;n de HMA en papaya durante la fase de vivero puede beneficiar su crecimiento posterior en campo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Carica papaya</i> L., superfosfato, roca fosf&oacute;rica, micorrizas, simbiosis micorr&iacute;zica, absorci&oacute;n de f&oacute;sforo.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Papaya is a major fruit export for Mexico; however, the international market is increasingly demanding bio quality, representing a significant production challenge due to the need for bio&#45;ecological and sustainable technologies. Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) can contribute significantly to plant nutrition, particularly in phosphorous (P) uptake. The use of AMF in papaya is yielding encouraging results, but there is a need to define certain aspects regarding agronomic management of AMF&#45;based products. The aim of this study was to evaluate the effect of AMF <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 and P fertilization on the growth of Cera var. papaya during the nursery stage. For this, a 2 x 3 x 4 tri&#45;factorial experiment (AMF inoculation, P source and P dose) was conducted in a completely randomized design. The variables plant height (PH) and stem diameter (SD) were evaluated every 15 days; dry biomass (DB) and spore density (SD) were assessed at the end of the experiment (90 days). From the DB of plants with and without mycorrhizal inoculation, the relative mycorrhizal dependency index (RMDI) was calculated. Data analysis showed significant differences (<i>P</i> &le; 0.05) between papaya plants with and without AMF for PH, SD and DB, regardless of the P dose and source. At 75 days, growth increases of more than 500 % were recorded in plants with AMF compared to the non&#45;inoculated plants; the RMDI was 99 %. These results suggest that AMF inoculation in papaya during the nursery phase can benefit further growth in the field.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Carica papaya</i> L., superphosphate, phosphate rock, mycorrhizae, mycorrhizal symbiosis, phosphorus uptake.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La papaya (<i>Carica papaya</i> L.) es uno de los principales cultivos frut&iacute;colas de las regiones tropicales y subtropicales. M&eacute;xico ocupa el quinto lugar como productor y el primero como exportador de este cultivo (An&oacute;nimo, 2013). La productividad es afectada por problemas fitosanitarios y por la dependencia de la planta a la fertilizaci&oacute;n qu&iacute;mica. El conocimiento de c&oacute;mo esta especie vegetal responde a diversos factores ambientales proporciona las bases para el manejo de estrategias que permitan mejorar la producci&oacute;n y la calidad del fruto (Campostrini y Glenn, 2007). En M&eacute;xico, muchos huertos comerciales de papaya son establecidos en suelos de baja fertilidad, por lo que los fruticultores necesitan aplicar fertilizantes, principalmente a base de f&oacute;sforo (P) para mejorar la productividad (Alarc&oacute;n <i>et al.,</i> 2002). Se ha observado que, durante la etapa reproductiva, las variedades de alto rendimiento tienen demanda alta de P que excede la capacidad del sistema radical (Dunne y Fitter, 1989). El problema radica en que aunque la concentraci&oacute;n de P en el suelo sea alta, el elemento no est&aacute; disponible o solo es aprovechable fuera de la rizosfera. Pocos suelos sin fertilizar liberan el P lo suficientemente r&aacute;pido para sostener las tasas altas de crecimiento de las plantas de papaya. En muchos sistemas agr&iacute;colas donde la aplicaci&oacute;n de P es necesaria para asegurar la productividad de los cultivos, las plantas recuperan poco nutriente debido a que en el suelo m&aacute;s de 80 % de dicho elemento se inmoviliza o no est&aacute; disponible para que la planta pueda absorberlo (Holford, 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de las plantas terrestres forman simbiosis con hongos micorr&iacute;zicos arbusculares (HMA). Esta asociaci&oacute;n contribuye a la absorci&oacute;n de nutrimentos, especialmente de P. De esta forma, las ra&iacute;ces micorrizadas tienen dos v&iacute;as para llevar a cabo la absorci&oacute;n de nutrimentos, directamente a trav&eacute;s de la epidermis radical y pelos radicales, y a trav&eacute;s de la v&iacute;a micorr&iacute;zica; es decir, por medio de las hifas f&uacute;ngicas presentes en las c&eacute;lulas corticales de la ra&iacute;z. Las investigaciones fisiol&oacute;gicas y moleculares se&ntilde;alan que la v&iacute;a micorr&iacute;zica proporciona grandes cantidades de P a las plantas, incluso en las que no muestran crecimiento suficiente (Smith y Smith, 2011). La formaci&oacute;n de simbiosis micorr&iacute;zica arbuscular es una de las estrategias m&aacute;s comunes que las plantas utilizan para incrementar la absorci&oacute;n de P e involucra aproximadamente 80 % de las plantas terrestres. El hongo simbi&oacute;tico proporciona una ruta efectiva a la planta para la absorci&oacute;n de P, la exploraci&oacute;n de grandes vol&uacute;menes de suelo y para superar el agotamiento del elemento en la rizosfera cuando la absorci&oacute;n directa de la ra&iacute;z es m&aacute;s r&aacute;pida que el reemplazo de P en el suelo. Los HMA confieren beneficios a diversas especies vegetales de importancia agr&iacute;cola (Ochoa&#45;Meza <i>et</i> al., 2009; Montero <i>et al.,</i> 2010; V&aacute;zquez&#45;Hern&aacute;ndez <i>et al.,</i> 2011; Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.,</i> 2012a). Entre los principales beneficios se incluyen una mejor nutrici&oacute;n al aumentar la absorci&oacute;n de elementos poco m&oacute;viles como el P y absorci&oacute;n de micronutrientes; mayor resistencia a factores adversos como la sequ&iacute;a y salinidad, adem&aacute;s de protecci&oacute;n contra enfermedades transmitidas por microorganismos fitopat&oacute;genos del suelo (Gallou <i>et al.,</i> 2011; Jung <i>et al.,</i> 2012). Algunos estudios muestran la importancia de la simbiosis micorr&iacute;zica en papaya en suelos de baja fertilidad (Martins <i>et al.,</i> 2000). Respecto al aumento en la absorci&oacute;n de P como efecto de la micorrizaci&oacute;n, se reporta que la aplicaci&oacute;n de fertilizantes a base de este nutriente en plantas de papaya inoculadas con HMA disminuye hasta 50 % en condiciones de campo (Mamatha <i>et al.,</i> 2002). Se ha demostrado que en plantas de papaya micorrizadas y cultivadas en suelos &aacute;cidos y deficientes de P, la actividad fosfatasa incrementa por efecto de la interacci&oacute;n HMA&#45;papaya. Lo anterior indica que si el P es deficiente en el medio, el nutrimento podr&aacute; ser captado por las hifas f&uacute;ngicas extrarradicales de los HMA. Las hifas ayudan a que el P sea transportado y translocado pasivamente por medio de las hifas intrarradicales o que sea transferido activamente a las plantas a trav&eacute;s de los arb&uacute;sculos del hongo (Khade <i>et al.,</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de las plantas terrestres, entre ellas la papaya, son colonizadas de manera natural por los HMA; sin embargo en el suelo existe diversidad y abundancia de microorganismos que compiten por un h&aacute;bitat (Whipps, 2001). De esta forma, las plantas pueden ser colonizadas por diversos tipos de hongos entre los que se incluyen algunos fitopat&oacute;genos, rest&aacute;ndole a los HMA parte de sus efectos ben&eacute;ficos. Por ello, es importante que las plantas que sean trasplantadas a campo se desarrollen en sustratos libres de microorganismos pat&oacute;genos y sean inoculadas con HMA con la finalidad de proporcionar la bioprotecci&oacute;n adecuada antes del trasplante definitivo a campo. As&iacute;, los HMA adem&aacute;s de proporcionar bioprotecci&oacute;n contra microorganismos pat&oacute;genos de la ra&iacute;z a las plantas de papaya, proporcionar&aacute;n una mejora en su nutrici&oacute;n. Existen estudios en papaya cuyos resultados sugieren que esta especie depende de la micorrizaci&oacute;n para mejorar su nutrici&oacute;n (V&aacute;zquez&#45;Hern&aacute;ndez <i>et al.,</i> 2011; Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.,</i> 2012a; 2012b). En tal contexto, el objetivo de este estudio fue determinar el efecto del HMA <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2, en presencia de distintas fuentes y dosis de fertilizantes fosfatados, sobre el crecimiento de plantas de papaya en etapa de vivero.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material biol&oacute;gico y condiciones de crecimiento de las plantas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se estableci&oacute; con pl&aacute;ntulas de papaya bajo condiciones de invernadero en la Unidad de Capacitaci&oacute;n para el Desarrollo Rural en Coatepec, Veracruz. Se emplearon semillas de papaya variedad "Cera" y la cepa de <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 (HMA), aislada y caracterizada en el &aacute;rea de microbiolog&iacute;a del Colegio de Postgraduados. Las semillas se tomaron de frutos maduros y sanos, provenientes de plantas madre de un huerto del municipio de Emiliano Zapata, Veracruz. Las semillas se lavaron y la sarcotesta (capa de consistencia carnosa y jugosa) se elimin&oacute; a presi&oacute;n; posteriormente, se secaron y se aplic&oacute; Benomyl<sup>&reg;</sup> en forma espolvoreada (5 g&#183;100 semillas<sup>&#45;1</sup>) para protegerlas de los hongos fitopat&oacute;genos. Las semillas germinaron en charolas germinadoras de pl&aacute;stico que conten&iacute;an tezontle fino est&eacute;ril (calor h&uacute;medo a 121 &deg;C en autoclave a 1.3 kg&#183;cm<sup>&#45;2</sup> durante 4 h) como sustrato para el crecimiento de las plantas. El sustrato consisti&oacute; en una mezcla de suelo agr&iacute;cola de un huerto ubicado en Emiliano Zapata, Veracruz, con un contenido N&#45;P&#45;K de 0.24, 8.4 y 65.5 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de suelo, respectivamente, y arena de banco en una proporci&oacute;n 2:1 v/v. La mezcla fue esterilizada con bromuro de metilo (907.2 g&#183;m<sup>&#45;3</sup>) (Calder&oacute;n, 1991; Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.,</i> 1998). Como contenedores, se emplearon bolsas de polietileno color negro con capacidad para 4 kg de sustrato, con cuatro orificios (6 mm) en el fondo y ocho a lo largo de la bolsa para permitir el drenaje durante el riego. El experimento se desarroll&oacute; en un periodo de 90 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante (DDT).</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Dise&ntilde;o experimental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se estableci&oacute; en un dise&ntilde;o completamente al azar con arreglo trifactorial mixto 2 x 3 x 4, con un total de 24 tratamientos y 10 repeticiones por tratamiento; la unidad experimental fue cada contenedor con una planta de papaya. Los factores y niveles de estudio fueron: 1) Inoculaci&oacute;n micorr&iacute;zica: con y sin inoculaci&oacute;n de <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2; 2) Fuente de P: superfosfato triple (SFT, P = 46 %), superfosfato simple (SFS, P = 21 %) y roca fosf&oacute;rica (RF, P = 15 a 20 %); 3) Dosis de P: 0, 30, 60 y 90 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup>.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La adici&oacute;n de cada fuente de P se realiz&oacute; antes de la inoculaci&oacute;n y trasplante; el sustrato de cada contenedor se revolvi&oacute; con su respectiva fuente y dosis. Antes del trasplante, las pl&aacute;ntulas de papaya fueron seleccionadas considerando aquellas con dos hojas verdaderas y crecimiento homog&eacute;neo en altura. El sustrato de cada maceta fue humedecido para despu&eacute;s trasplantar una planta por maceta. De acuerdo con el dise&ntilde;o experimental, las plantas de papaya se inocularon en el sistema radicular, al momento del trasplante, con 10 g de arena&#45;in&oacute;culo que conten&iacute;a prop&aacute;gulos micorr&iacute;zicos de la cepa <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 con una colonizaci&oacute;n de 80 % y aproximadamente 10 esporas de HMA&#183;g<sup>&#45;1</sup> de arena. Al inicio del experimento, las plantas fueron regadas cada tercer d&iacute;a durante tres semanas con 200 ml por contenedor, posteriormente, los riegos se hicieron de acuerdo con las necesidades h&iacute;dricas de las plantas.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables de respuesta</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento vegetal se evalu&oacute; de acuerdo con la altura de la planta (AP) y el di&aacute;metro del tallo (DT), cada 15 d&iacute;as a partir del inicio del experimento; tambi&eacute;n se incluy&oacute; biomasa seca total (BS) al final del experimento. Como variable microbiol&oacute;gica se determin&oacute; la densidad de esporas micorr&iacute;zicas (DE) en la rizosfera de papaya al final del experimento (90 DDT). La variable AP se midi&oacute; con una regla graduada (cm), el DT se midi&oacute; con un vernier (mm) en la base del tallo, a ras del suelo. La BS se cuantific&oacute; (g) secando el sistema radicular y la parte a&eacute;rea de las plantas por separado en una estufa a 75 &deg;C hasta peso constante. Posteriormente, el material seco de ambas partes se pes&oacute; en una balanza granataria por separado; la BS se obtuvo mediante la sumatoria de los pesos. La DE se determin&oacute; a trav&eacute;s de una mezcla de suelo de las 10 repeticiones de cada tratamiento que comprenden la inoculaci&oacute;n micorr&iacute;zica, para obtener 12 muestras compuestas. La extracci&oacute;n de las esporas se hizo por triplicado, a partir de 100 g de suelo seco por el m&eacute;todo de tamizado h&uacute;medo y decantaci&oacute;n (Gerdemann y Nicolson, 1963), modificado de acuerdo con las condiciones de trabajo y el tipo de sustrato; las series de tamices empleadas fueron de 500, 250, 149, 105 y 44 &#181;m. El conteo de esporas se hizo de forma visual con un contador manual, colocando el tamizado con agua en la base de una caja de Petri (90 mm) cuadriculada bajo el est&eacute;reomicroscopio (Stereo Zoom SZ&#45;4, marca Leica). Finalmente, el &iacute;ndice relativo de dependencia micorr&iacute;zica (IRDM, %) se calcul&oacute; de acuerdo con Plenchette <i>et al.</i> (1983) mediante la f&oacute;rmula siguiente:</font></p>  	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8e1.jpg"></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>BS<sup>+HMA</sup></i> = Biomasa seca de plantas micorrizadas (g) </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>BS<sup>&#45;HMA</sup></i> = Biomasa seca de plantas no micorrizadas (g)</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables de respuesta se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza factorial con nivel de significancia <i>P</i> &le; 0.05 y pruebas m&uacute;ltiples de separaci&oacute;n de medias de Tukey (<i>P</i> &le; 0.05), mediante el software estad&iacute;stico SAS (An&oacute;nimo, 1988).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del P sobre el crecimiento de plantas de papaya var. Cera</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a> muestra la din&aacute;mica de crecimiento de las plantas de papaya var. Cera inoculadas con HMA (<i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 ) y fertilizadas con distintas fuentes y dosis de P. En dicha figura se puede observar que los HMA promovieron el crecimiento de las plantas de papaya, independientemente de la dosis de fertilizaci&oacute;n con P. A los 15 DDT, los tratamientos inoculados con HMA con y sin P presentaron diferencias significativas (<i>P</i> &le; 0.05) en la AP y el DT. Por otra parte, las plantas inoculadas con HMA y las no inoculadas mostraron diferencias significativas (<i>P</i> &le; 0.01) a partir de los 30 DDT. Lo anterior indica que el P fue importante en el crecimiento de las plantas de papaya en los primeros d&iacute;as de vida y durante el tiempo de establecimiento de la simbiosis. Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.</i> (2012b) reportan un efecto similar en papaya var. Maradol, bajo condiciones de invernadero, pero hasta los 50 DDT, debido probablemente a que utilizaron sustrato (7:3 arena y suelo) deficiente en P (13 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup>) y, por lo tanto, la respuesta de los HMA al crecimiento vegetal se retras&oacute;. En el presente estudio, a partir de los 30 DDT, solo las plantas de papaya inoculadas con HMA continuaron su crecimiento (AP y DT) independientemente de la fuente y dosis de P. Este efecto de crecimiento debido a los HMA, independientemente del P presente en el sustrato, se encuentra documentado. Por ejemplo, Khade y Rodrigues (2009a) citan que con un aporte de 2.5 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P en papaya, utilizando <i>G. intraradices</i> Schenck &amp; Smith, <i>G. mosseae</i> (Nicol. &amp; Gerd.) Gerd. &amp; Trappe, y su combinaci&oacute;n, se obtienen incrementos de 27, 91 y 82 % de P en el follaje, respectivamente, respecto al control sin inocular. Esto sugiere que en concentraciones de P aun m&aacute;s bajas que la m&iacute;nima utilizada en el presente estudio (8.4 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> en el sustrato de los tratamientos), los HMA son capaces de facilitar la absorci&oacute;n del nutriente. Asimismo, Rodr&iacute;guez&#45;Romero <i>et al.</i> (2011) evaluaron el crecimiento vegetal en BS de las plantas de papaya var. Sunrise inoculadas con <i>G. mosseae</i> + 18.3 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P y encontraron efecto significativamente distinto al obtenido con dosis de 48, 79.4 y 100 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P (suministrado como KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>). Esto demuestra la capacidad de los HMA para captar y movilizar P de las zonas de la rizosfera (hifosfera), donde posiblemente las ra&iacute;ces no son capaces de obtenerlo. Este resultado es similar a la tendencia que se presenta en la <a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>, donde la presencia de <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 bajo el tratamiento sin P (solo 8.4 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P presente en el sustrato) fue igual a los tratamientos con suministro de P externo, independientemente de la fuente fosf&oacute;rica (RF, SFS y SFT).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos autores se&ntilde;alan que las ra&iacute;ces micorrizadas presentan mayor actividad fosfatasa y, por lo tanto, disponibilidad de P que es tomado por el micelio extrarradical y transportado hacia la planta (Khade <i>et al.,</i> 2010). Esta v&iacute;a de adquisici&oacute;n del P es mediada por la micorrizaci&oacute;n (Smith y Smith, 2011). En este sentido, la tendencia del tratamiento con HMA sin P, en todas las gr&aacute;ficas de la <a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>, sugiere que las plantas incrementaron su crecimiento probablemente por la absorci&oacute;n de P v&iacute;a micorriza, en parte porque la expresi&oacute;n gen&eacute;tica de los trasportadores f&uacute;ngicos de P de los HMA son regulados por la concentraci&oacute;n del elemento en el sustrato (Maldonado&#45;Mendoza <i>et al.,</i> 2001). La inoculaci&oacute;n con <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 en papaya var. Cera mostr&oacute; efecto significativo (<i>P</i> &le; 0.01) en la AP y DT con respecto a las plantas no inoculadas (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>), lo que muestra el efecto ben&eacute;fico que los HMA proporcionan a las plantas en asociaci&oacute;n con estos microorganismos del suelo, principalmente en la adquisici&oacute;n de P.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del HMA <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 sobre el crecimiento de plantas de papaya var. Cera</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas de papaya mostraron asociaci&oacute;n con HMA, ya que desde los 15 DDT se observaron diferencias significativas (Tukey,<i> P</i> &le; 0.05) en la AP y el DT entre plantas inoculadas y sin inocular (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). A los 15 DDT, el crecimiento de las plantas micorrizadas con respecto a aquellas sin micorrizar presentaron incrementos de 141.9 % en la AP y 129.3 % en el DT. Esta tendencia se mantuvo a lo largo de la evaluaci&oacute;n del experimento. A los 75 DDT, se tuvieron incrementos de 508.1 y 581.2 % en la AP y DT, respectivamente (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>), lo que muestra que la simbiosis de las plantas de papaya con la cepa de HMA contribuy&oacute; de manera significativa en la nutrici&oacute;n, reflej&aacute;ndose en el aumento de crecimiento. Al respecto, Ferguson (1982) menciona que los HMA incrementan la superficie de exploraci&oacute;n radical facilitando la absorci&oacute;n de nutrimentos y el crecimiento de la planta. Smith y Smith (2011) observaron el mismo comportamiento en plantas de <i>Tripholium subterraneum</i> L. en asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica con <i>G. mosseae</i> sin P; adem&aacute;s reportaron que las plantas inoculadas con HMA + P mostraron incremento de P tres veces mayor en el tejido, en comparaci&oacute;n con las inoculadas con HMA sin P, lo cual sugiere que la micorriza continu&oacute; transfiriendo el nutriente, incluso con suficiencia de este elemento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El incremento de AP fue 288 % (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>); Khade y Rodrigues (2009b) tambi&eacute;n reportaron un alto incremento de 170 % en la AP de papaya var. Surya inoculada con <i>G. mosseae,</i> con respecto a las no inoculadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La BS de las plantas con y sin inoculaci&oacute;n de HMA fue estad&iacute;sticamente diferente (<i>P</i> &le; 0.05), independientemente del nivel de P (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). Este efecto tambi&eacute;n fue encontrado por Gardezi <i>et al.</i> (2000), quienes utilizaron la misma cepa de HMA (<i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2) en <i>Dodonaea viscosa</i> (L.) Jacq. con 32 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P. Asimismo, Khade y Rodrigues (2009b) reportaron BS diferente entre plantas de papaya var. Surya con y sin HMA (P = 2.5 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup>). Por su parte, Rodr&iacute;guez&#45;Romero <i>et al.</i> (2011) reportaron incrementos de 257 % en peso seco en plantas de papaya var. Sunrise inoculadas con <i>G. mosseae,</i> con respecto a las plantas no inoculadas tratadas con 18.3 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P. Estos incrementos pueden ser explicados por la dependencia de la planta de papaya a la micorrizaci&oacute;n. Por ejemplo, en el estudio de Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.</i> (2012a) el incremento del crecimiento de plantas de papaya inoculadas con HMA fue altamente significativo, similar a los resultados del presente estudio. Por el contario, todos los reportes anteriores contrastan con los de Nava&#45;Guti&eacute;rrez <i>et al.</i> (2012), quienes no encontraron diferencias en biomasa seca entre plantas de papaya var. Maradol con y sin inoculaci&oacute;n de <i>G.</i> <i>intraradices</i> con dosis de 0.3 y 0.6 mM de P. La diversidad de respuesta de la papaya hacia los HMA sugiere que la capacidad de acumulaci&oacute;n de materia seca, producto de la asociaci&oacute;n planta&#45;hongo, depende de la variedad, la especie vegetal y la especie de HMA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El IRDM present&oacute; valores alrededor de 99 % independientemente del nivel de P (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f5.jpg" target="_blank">Figura 5</a>), lo cual sugiere una fuerte necesidad de asociaci&oacute;n entre las plantas de papaya y los HMA, que se refleja en el crecimiento significativamente mayor en las plantas inoculadas que en las no inoculadas. En este sentido, Rodr&iacute;guez&#45;Romero <i>et al.</i> (2011) reportan un IRDM de 72 % a un nivel de P de 18.3 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> con <i>G. mosseae</i> en papaya (var. Sunrise); Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.</i> (2012a) tambi&eacute;n presentan resultados que permiten calcular un IRDM de 98.5 %. En otros estudios, Trindade <i>et al.</i> (2001) y Nava&#45;Guti&eacute;rrez <i>et al.</i> (2012) calcularon un IRDM de entre 1.4 y 85 % para diferentes variedades de papaya con distintos niveles de P, lo que revela una respuesta variable de este cultivo a la inoculaci&oacute;n micorr&iacute;zica. La variaci&oacute;n se acredita a factores como la variedad cultivada, la especie de HMA, el nivel de P presente en el sustrato, el tipo de sustrato o suelo y el manejo previo a la inoculaci&oacute;n en condiciones de vivero.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Interacci&oacute;n de P con <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 sobre el crecimiento de plantas de papaya var. Cera</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las distintas fuentes y dosis de P no interaccionaron con el nivel de inoculaci&oacute;n (con o sin HMA). Las dosis de las fuentes de P produjeron un efecto similar en la AP de papayo, tanto en plantas inoculadas como sin inocular con HMA (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f6.jpg" target="_blank">Figura 6</a>). Por otro lado, al aumentar las dosis de P se observ&oacute; un incremento significativo (<i>P</i> &le; 0.05) en la altura de planta (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Habte y Manjunath (1987) reportaron resultados similares utilizando &aacute;rboles de guaje <i>(Leucaena leucocephala</i> &#91;Lam.&#93; de Wit) inoculados con <i>G. fasciculatum</i> (Thaxt.) Gerd. &amp; Trappe. De igual manera Qui&ntilde;ones&#45;Aguilar <i>et al.</i> (2012a) mostraron que la cepa Zac&#45;2 puede soportar niveles de P relativamente altos, dado que reportan colonizaciones mayores de 90 % en tratamientos con 90 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P, independientemente de su fuente. La respuesta del crecimiento de las plantas de papaya a dosis altas de P en tratamientos con el HMA <i>Glomus</i> Zac&#45;2 puede deberse a la tolerancia del hongo hacia el nutriente.</font></p>  	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del P en la densidad de esporas de <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="/img/revistas/rcsh/v20n2/a8f7.jpg" target="_blank">Figura 7</a> muestra la producci&oacute;n de esporas de <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 en plantas de papaya var. Cera, fertilizadas con P. El mayor n&uacute;mero de esporas micorr&iacute;zicas se encontr&oacute; en los tratamientos con adici&oacute;n de 30 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de RF y 90 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de SFT seguido de 60 y 90 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de RF y 60 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de SFT. En el resto de los tratamientos se observ&oacute; menor n&uacute;mero de esporas; los valores m&aacute;s bajos ocurrieron cuando no se adicion&oacute; P. Esto indica que la adici&oacute;n de P podr&iacute;a estimular una mayor esporulaci&oacute;n de la cepa <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2. Es importante resaltar que algunos reportes muestran que la concentraci&oacute;n de P puede afectar la simbiosis micorr&iacute;zica (Sylvia y Schenck 1983; Habte y Manjunath, 1987; Gardezi <i>et al.,</i> 2000; Javot <i>et al,.</i> 2007). Menge <i>et al.</i> (1978) reportaron que, en un sustrato con 600 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P, la esporulaci&oacute;n de <i>G. fasciculatum</i> increment&oacute; 765 % en relaci&oacute;n con otro sustrato que solo conten&iacute;a 6 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P. Al respecto, Sylvia y Schenck (1983) mencionan que el P puede estimular la esporulaci&oacute;n de los HMA. En la opini&oacute;n de Johnson (1984), el incremento en la esporulaci&oacute;n representa un mecanismo de reproducci&oacute;n y persistencia de los hongos formadores de micorriza arbuscular en suelos con alto contenido de P. Sie verding (1991) denota que los niveles bajos de P incrementan los prop&aacute;gulos de los HMA nativos y que los niveles altos pueden representar un instrumento para hacer eficiente el uso de algunas especies de HMA tolerantes al P, cuando se encuentran de manera nativa en el suelo. Se ha reportado que los HMA aislados de suelos con P en altas concentraciones son resistentes al mineral y proliferan mejor (Sylvia y Schenck, 1983). V&aacute;zquez&#45;Hern&aacute;ndez <i>et al.</i> (2011) fertilizaron papaya var. Maradol a nivel de campo con dosis de 30 mg&#183;kg<sup>&#45;1</sup> de P. Los autores reportaron mayor diferencia estad&iacute;stica a nivel de colonizaci&oacute;n y densidad de esporas con <i>G. mosseae,</i> que con <i>Entrophospora colombiana</i> Spain &amp; N.C. Schenck. En el presente estudio, la simbiosis fue significativamente eficiente, tanto para las plantas de papaya como para el hongo, ya que &eacute;ste prolifer&oacute; abundantemente al asociarse con las plantas a niveles bajos y altos de P.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos micorr&iacute;zicos favorecieron significativamente el crecimiento de las plantas de papaya. La inoculaci&oacute;n con <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 permiti&oacute; el crecimiento r&aacute;pido de las plantas de papaya, sin la adici&oacute;n de P. Esto puede representar ahorro econ&oacute;mico para viveristas, al disminuir o eliminar la aplicaci&oacute;n de fertilizantes fosfatados y disminuir el tiempo de estancia de la planta en los viveros. Adem&aacute;s, el P presente en la roca fosf&oacute;rica y el superfosfato triple estimularon la producci&oacute;n de esporas de <i>Glomus</i> sp. Zac&#45;2 en el suelo.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALARC&Oacute;N, A.; DAVIES, F. T. J.; EGILLA, J. N.; FOX, T. C.; ESTRADA&#45;LUNA, A. A.; FERRERA&#45;CERRATO, R. 2002. Short term effects of <i>Glomus claroideum</i> and <i>Azospirillum brasilense</i> on growth and root acid phosphatase activity of <i>Carica papaya</i> L. under phosphorus stress. Revista Latinoamericana de Microbiolog&iacute;a 44: 31&#45;37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703543&pid=S1027-152X201400020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AN&Oacute;NIMO. 1988. SAS/STAT User's guide: Statistics. Ver. 6, 4<sup>th</sup> ed. (Vol. 1 and 2). SAS Institute, Inc. Cary, NC. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703545&pid=S1027-152X201400020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">AN&Oacute;NIMO. FAOESTAT. 2013. <a href="http://faostat.fao.org/DesktopDefault.aspx?PageID=291 &amp;lang=es" target="_blank">http://faostat.fao.org/DesktopDefault.aspx?PageID=291 &lang=es</a>. Fecha de consulta: abril, 2013. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CALDER&Oacute;N, A. E. 1991. Fruticultura general: el esfuerzo del hombre. Limusa. M&eacute;xico, D.F. 764 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703548&pid=S1027-152X201400020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CAMPOSTRINI, E.; GLENN, D. M. 2007. Ecophysiology of papaya <i>Carica papaya</i> L.: a review. Brazilian Journal of Plant Physiology 19: 83&#45;94. <a href="http://www.scielo.br/pdf/bjpp/v19n4/a10v19n4.pdf" target="_blank">http://www.scielo.br/pdf/bjpp/v19n4/a10v19n4.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703550&pid=S1027-152X201400020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DUNNE, M. J.; FITTER, A. H. 1989. The phosphorous budget of a field&#45;grown strawberry <i>(Fragaria</i> x <i>ananassa</i> cv. Hapil) crop: evidence for a mycorrhizal contribution. Association of Applied Biologist 114: 185&#45;193. doi: 10.1111/j.1744&#45;7348.1989.tb06799.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703552&pid=S1027-152X201400020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FERGUSON, J. J. 1982. The use of mycorrhizal fungi in citrus nurseries. The Citrus Industry 63: 1&#45;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703554&pid=S1027-152X201400020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GALLOU, A.; LUCERO, H. P.; CRANENBROUCK, M. S.; SU&Aacute;REZ, J. P.; DECLERCK, S. 2011. Mycorrhiza induced resistance in potato plantlets challenged by <i>Phytophthora infestans.</i> Physiological and Molecular Plant Pathology 76: 20&#45;26. doi: 10.1016/j.pmpp.2011.06.005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703556&pid=S1027-152X201400020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GARDEZI, A. K.; CETINA, A. V. M.; TALAVERA, M. D.; FERRERA&#45;CERRATO, R.; RODR&Iacute;GUEZ, N. F.; LARQU&Eacute;, S. M. 2000. Efecto de inoculaci&oacute;n con endomicorriza arbuscular y dosis creciente de fertilizaci&oacute;n fosfatada en el crecimiento del chapulixtle <i>(Dodonaea viscosa).</i> Terra 18: 153&#45;160. <a href="http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=57318208" target="_blank">http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=57318208</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703558&pid=S1027-152X201400020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GERDEMANN, J. W.; NICOLSON, T. H. 1963. Spores of mycorrhizal endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Transactions of the British Mycological Society 46: 235&#45;244. doi: 10.1016/S0007&#45;1536(63)80079&#45;0.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703560&pid=S1027-152X201400020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HABTE, M.; MANJUNATH, A. 1987. Soil solution phosphorus status and mycorrhizal dependency in <i>Leucaena leucocephala.</i> Applied and Environmental Microbiology 53: 797&#45;801. <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC203759/pdf/aem00121&#45;0189.pdf" target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC203759/pdf/aem00121&#45;0189.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703562&pid=S1027-152X201400020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HOLFORD, I. C. R. 1997. Soil phosphorus: its measurement, and its uptake by plants. Australian Journal of Soil Research 35: 227&#45;239. doi:10.1071/S96047.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703564&pid=S1027-152X201400020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JAVOT, H.; PUMPLIN, N.; HARRISON, M.J. 2007. Phosphate in the arbuscular mycorrhizal symbiosis: transport properties and regulatory roles. Plant, Cell and Environment 30: 310&#45;322. doi: 10.1111/j.1365&#45;3040.2006.01617.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703566&pid=S1027-152X201400020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JOHNSON, C. R. 1984. Phosphorus nutrition on mycorrhizal colonization photosynthesisgrowth and nutrient composition of <i>Citrus aurantium.</i> Plant and Soil 80: 35&#45;42. doi: 10.1007/BF02232937.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703568&pid=S1027-152X201400020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JUNG, S. C.; MART&Iacute;NEZ&#45;MEDINA, A.; L&Oacute;PEZ&#45;RAEZ, J. A.; POZO, M. J. 2012. Mycorrhiza&#45;induced resistance and priming of plant defenses. Journal of Chemical Ecology 38: 651&#45;664. doi: 10.1007/s10886&#45;012&#45;0134&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703570&pid=S1027-152X201400020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KHADE, W. S.; RODRIGUES, B. F. 2009a. Studies on effects of arbuscular mycorrhizal (Am.) fungi on mineral nutrition of <i>Carica papaya</i> L. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj&#45;Napoca 37: 183&#45;186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703572&pid=S1027-152X201400020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KHADE, W. S.; RODRIGUES, B. F. 2009b. Studies on arbuscular mycorrhisation of papaya. African Crop Science Journal 17: 155&#45;165. doi: 10.4314/acsj.v17i3.54215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703574&pid=S1027-152X201400020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KHADE, W. S.; RODRIGUES, B. F.; SHARMA, P. K. 2010. Arbuscular mycorrhizal status and root phosphatase activities in vegetative <i>Carica papaya</i> L. varieties. Acta Physiologiae Plantarum 32: 565&#45;574. doi: 10.1007/s11738&#45;009&#45;0433&#45;x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703576&pid=S1027-152X201400020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MALDONADO&#45;MENDOZA, I. E.; DEWBRE, G. R.; HARRISON, M. J. 2001. A phosphate transporter gene from the extra&#45;radical mycelium of an arbuscular mycorrhizal fungus <i>Glomus intraradices</i> is regulated in response to phosphate in the environment. Molecular Plant Microbe Interactions 14:1140&#45;1148. doi: <a href="http://apsjournals.apsnet.org/doi/pdf/10.1094/MPMI.2001.14.10.1140" target="_blank">http://apsjournals.apsnet.org/doi/pdf/10.1094/MPMI.2001.14.10.1140</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703578&pid=S1027-152X201400020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MAMATHA, G.; BAGYARAJ, D. J.; JAGANATH, S. 2002. Inoculation of field established mulberry and papaya with VAM fungi and mycorrhiza helper bacterium. Mycorrhiza 12: 313&#45;316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703580&pid=S1027-152X201400020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MARTINS, M. A.; GONCLAVES, G. F. D. E.; SOARES, A. C. F. 2000. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi associated with phenolic compounds on the growth ofpapaya. Pesquisa Agropecu&aacute;ria Brasileira 35: 465&#45;1471. doi: 10.1590/ S0100&#45;204X2000000700022.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703582&pid=S1027-152X201400020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MENGE, J. A.; STEIRLE, D.; BAGYARAJ, D. J.; JOHNSON, E. L. V.; LEONARD, R. T. 1978. Phosphorus concentrations in plants responsible for inhibition of mycorrhizal infection. New Phytologist 80: 575&#45;578. doi: 10.1111/j.1469&#45;8137.1978.tb01589.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703584&pid=S1027-152X201400020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MONTERO, L.; DUARTE, R. C.; CABRERA, J. A.; GONZALES, Y P.J. 2010. Efectividad de biofertilizantes micorr&iacute;zicos en el rendimiento del pimiento <i>(Capsicum annuum</i> L. var. Verano 1) cultivado en diferentes condiciones de humedad del sustrato. Cultivos Tropicales 31: 11&#45;14. <a href="http://scielo.sld.cu/pdf/ctr/v31n3/ctr01310.pdf" target="_blank">http://scielo.sld.cu/pdf/ctr/v31n3/ctr01310.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703586&pid=S1027-152X201400020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> NAVA&#45;GUT&Iacute;ERREZ,Y.;FERRERA&#45;CERRATO, R.; SANTAMAR&Iacute;A, J. M. 2012. <i>Glomus intraradices</i> attenuates the negative effect of low P<sub>i</sub> supply on photosynthesis and growth of papaya Maradol plants. Journal of Botany, Article ID 129591, 8 pages. doi: 10.1155/2012/129591.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">OCHOA&#45;MEZA, A.; ESQUEDA, M.; FERN&Aacute;NDEZ&#45;VALLE, R.; HERRERA&#45;PERAZA, R. 2009. Variaci&oacute;n estacional de hongos micorr&iacute;zicos arbusculares asociados con <i>Agave angustifolia</i> Haw. en la sierra sonorense, M&eacute;xico. Revista Fitotecnia Mexicana 32: 189&#45;199. <a href="http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=61011739003" target="_blank">http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=61011739003</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703589&pid=S1027-152X201400020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PLENCHETTE, C.; FORTIN, J. A.; FURLAN, V. 1983. Growth responses of several plant species to mycorrhizae in a soil of moderate P&#45;fertility: I. Mycorrhiza dependency under field conditions. Plant and Soil 70: 199&#45;209. doi: 10.1007/BF02374780.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703591&pid=S1027-152X201400020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">QUI&Ntilde;ONES&#45;AGUILAR, E. E.; TREJO&#45;AGUILAR, D.; AGUAS, R. T.; FERRERA&#45;CERRATO, R.; GONZ&Aacute;LEZ&#45;CH&Aacute;VEZ, M. C. 1998. Hongos endomicorr&iacute;cicos arbusculares y diferentes sustratos en el crecimiento de plantas de papaya <i>(Carica papaya</i> L.) en vivero, pp. 126&#45;140. <i>In:</i> Avances de la Investigaci&oacute;n Micorr&iacute;zica en M&eacute;xico. ZULUETA, R. R.; ESCALONA, A. M. A.; TREJO, A. D. (eds.). Universidad Veracruzana. Xalapa, Veracruz.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703593&pid=S1027-152X201400020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">QUI&Ntilde;ONES&#45;AGUILAR,E.E.;HERN&Aacute;NDEZ&#45;ACOSTA,E.;RINC&Oacute;N&#45;ENR&Iacute;QUEZ, G.; FERRERA&#45;CERRATO, R. 2012a. Interacci&oacute;n de hongos micorr&iacute;zicos arbusculares y fertilizaci&oacute;n fosfatada en papaya. 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Fruits 66: 3&#45;10. doi: 10.1051/fruits/2010036.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703599&pid=S1027-152X201400020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SIEVERDING, E. 1991. Vesicular&#45;arbuscular mycorrhiza management in tropical agrosystems. Technical Cooperation, Federal Repuplic of Germany Eschborn. 371 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703601&pid=S1027-152X201400020000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SMITH, S. E.; SMITH, F. A. 2011. Roles of arbuscular mycorrhizas in plant nutrition and growth: new paradigms from cellular to ecosystem scales. Annual Review of Plant Physiology 62: 227&#45;50. doi: 10.1146/annurev&#45;arplant&#45;042110&#45;103846.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703603&pid=S1027-152X201400020000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SYLVIA, D. M.; SCHENCK, N. C. 1983. Application of superphosphate to mycorrhizal plants stimulates sporulation of phosphorus&#45;tolerant vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal fungi. 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Pesquisa Agropecu&aacute;ria Brasileira 36: 1485&#45;1494. <a href="http://www.scielo.br/pdf/pab/v36n12/7491.pdf" target="_blank">http://www.scielo.br/pdf/pab/v36n12/7491.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6703606&pid=S1027-152X201400020000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
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