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<journal-title><![CDATA[Revista Chapingo. Serie horticultura]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Universidad Autónoma Chapingo]]></publisher-name>
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<article-id>S1027-152X2014000100002</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Rendimiento y absorción de algunos nutrimentos en plantas de camote cultivadas con estrés hídrico y salino]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional Agraria La Molina Centro de Investigación de Hidroponía y Nutrición Mineral ]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Centro Internacional de la Papa División Sistemas de Producción y Manejo de Cultivos ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Sweet potato (Ipomoea batatas L.) is a low production cost crop that is grown during almost the whole year, mainly in developing countries. In arid and semiarid regions, the presence of salinity and water stress can generate yield reductions and losses in the quality of the tuber roots. To address these issues, an experiment was performed to determine yield, N, P, K, Ca, Mg and Na uptake and proline content in plants belonging to two sweet potato cultivars with a different degree of salt tolerance, grown under three (0, 8 and 14 mmol NaCl) salt and two watering regimes (watering after two and four days), during summer-fall conditions of 2009. Salinity and watering frequencies were controlled by using the soilless culture technique. Both water and salt stresses reduced tuber root yields. The yield reduction is explained by a reduction in the uptake of N, P, K, Ca and Mg with the water stress treatment, and an increased Na uptake in the high salinity treatment. The salt and water stress adjustments were reflected in an increment in proline content in leaves and tuber roots. The results confirm the tolerant cultivar as a hardy variety adaptable to abiotic stresses, whereas the non-tolerant variety had lower yield and nutrient uptake. The results did not support the hypothesis that changes in proline content might be used as fast screening tools to discriminate between tolerant and susceptible sweet potato cultivars.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Nitrógeno]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Rendimiento y absorci&oacute;n de algunos nutrimentos en plantas de camote cultivadas con estr&eacute;s h&iacute;drico y salino</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Yield and nutrient uptake in sweet potato plants grown with salt and water stress</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Alfredo Rodr&iacute;guez&#45;Delf&iacute;n<sup>1*</sup>; Adolfo Posadas<sup>2</sup>; Roberto Quiroz<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Universidad Nacional Agraria La Molina, Centro de Investigaci&oacute;n de Hidropon&iacute;a y Nutrici&oacute;n Mineral. Av. La Molina s/n. La Molina, Lima, PER&Uacute;.</i> Correo&#45;e: <a href="mailto:delfin@lamolina.edu.pe">delfin@lamolina.edu.pe</a> <i>(*Autor para correspondencia).</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Centro Internacional de la Papa, Divisi&oacute;n Sistemas de Producci&oacute;n y Manejo de Cultivos. Av. La Molina # 1895. La Molina, Lima, PER&Uacute;.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 2 de enero, 2013.    <br> 	Aceptado: 27 de enero, 2014.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El camote (<i>Ipomoea batatas</i> L.) es un cultivo de bajo costo de producci&oacute;n que se produce casi todo el a&ntilde;o, principalmente en pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo. En regiones &aacute;ridas y semi&aacute;ridas, la presencia de estr&eacute;s h&iacute;drico y salino puede generar disminuci&oacute;n de los rendimientos y p&eacute;rdidas en la calidad de las ra&iacute;ces tuberosas. Se realiz&oacute; un experimento para determinar el rendimiento, la absorci&oacute;n de nitr&oacute;geno, f&oacute;sforo, potasio, calcio, magnesio y sodio, y contenido de prolina en plantas de dos cultivares de camote con diferente grado de tolerancia a la salinidad, cultivadas bajo tres reg&iacute;menes de sales (0, 8 y 14 mmol NaCl) y dos reg&iacute;menes de frecuencia de riego (riego cada dos y cada cuatro d&iacute;as), en condiciones del verano&#45;oto&ntilde;o de 2009. La salinidad y las frecuencias de riego se controlaron mediante un sistema de cultivo sin suelo. Ambos estreses redujeron los rendimientos de ra&iacute;ces tuberosas. La reducci&oacute;n del rendimiento se explica por la reducci&oacute;n de la absorci&oacute;n de nitr&oacute;geno, f&oacute;sforo, potasio, calcio y magnesio con el tratamiento de estr&eacute;s h&iacute;drico, y un incremento de la absorci&oacute;n de sodio con el tratamiento de mayor salinidad. Los ajustes de salinidad y estr&eacute;s h&iacute;drico se expresaron con un incremento en los contenidos de prolina en hojas y ra&iacute;ces tuberosas. Los resultados confirmaron que el cultivar tolerante es adaptable a los estreses abi&oacute;ticos, mientras que el otro cultivar obtuvo menor rendimiento y menor absorci&oacute;n de nutrimentos. Los resultados no apoyaron la hip&oacute;tesis de que cambios en los contenidos de prolina podr&iacute;an ser usados como una herramienta r&aacute;pida para discriminar los cultivares de camote tolerantes de los que son susceptibles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave adicionales:</b> Nitr&oacute;geno, f&oacute;sforo, potasio, calcio, magnesio, sodio, prolina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sweet potato (<i>Ipomoea batatas</i> L.) is a low production cost crop that is grown during almost the whole year, mainly in developing countries. In arid and semiarid regions, the presence of salinity and water stress can generate yield reductions and losses in the quality of the tuber roots. To address these issues, an experiment was performed to determine yield, N, P, K, Ca, Mg and Na uptake and proline content in plants belonging to two sweet potato cultivars with a different degree of salt tolerance, grown under three (0, 8 and 14 mmol NaCl) salt and two watering regimes (watering after two and four days), during summer&#45;fall conditions of 2009. Salinity and watering frequencies were controlled by using the soilless culture technique. Both water and salt stresses reduced tuber root yields. The yield reduction is explained by a reduction in the uptake of N, P, K, Ca and Mg with the water stress treatment, and an increased Na uptake in the high salinity treatment. The salt and water stress adjustments were reflected in an increment in proline content in leaves and tuber roots. The results confirm the tolerant cultivar as a hardy variety adaptable to abiotic stresses, whereas the non&#45;tolerant variety had lower yield and nutrient uptake. The results did not support the hypothesis that changes in proline content might be used as fast screening tools to discriminate between tolerant and susceptible sweet potato cultivars.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Additional keywords:</b> Nitrogen, phosphorus, potassium, magnesium, calcium, sodium, proline.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La salinidad afecta cada aspecto de la fisiolog&iacute;a de la planta y su metabolismo (Taiz y Zeiger, 2010). La alta concentraci&oacute;n de sales ocasiona un desequilibrio i&oacute;nico en el citosol y reduce el potencial osm&oacute;tico a nivel celular en c&eacute;lulas vegetales, y ocurre inhibici&oacute;n del crecimiento que se manifiesta a trav&eacute;s de efectos osm&oacute;ticos de iones espec&iacute;ficos y de asimilaci&oacute;n inadecuada de nutrimentos (Alcar&aacute;z, 2012). Por otro lado, diferentes procesos fisiol&oacute;gicos se ven afectados por el d&eacute;ficit h&iacute;drico, como p&eacute;rdida de turgencia celular, reducci&oacute;n de la tasa de expansi&oacute;n celular, disminuci&oacute;n de la s&iacute;ntesis de pared celular y, reducci&oacute;n de s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas (Taiz y Zeiger, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La alta concentraci&oacute;n de sales en la soluci&oacute;n del suelo y el estr&eacute;s h&iacute;drico puede afectar el crecimiento y desarrollo de las plantas a trav&eacute;s de una alta concentraci&oacute;n de iones potencialmente t&oacute;xicos, tales como el sodio y cloro (Gunes <i>et</i> <i>al</i>., 1996). El sodio es el cati&oacute;n soluble que predomina en la mayor&iacute;a de suelos y aguas salinas. La mayor&iacute;a de cultivos exhiben una hipersensibilidad a los ambientes salinos ya que la acumulaci&oacute;n de sodio intercelular es negativa en el metabolismo celular y puede reducir la productividad del cultivo significativamente (Cha&#45;um y Kirdmanee, 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estr&eacute;s h&iacute;drico y salino pueden causar deficiencias o desequilibrios de nutrientes, debido a la competencia del sodio y cloro con nutrientes como el potasio, calcio y nitr&oacute;geno (Hu y Schmidhalyer, 2005; Parida y Das, 2006). El aumento de la salinidad produce disminuci&oacute;n de los niveles de calcio y magnesio (Meloni <i>et al</i>., 2001) y deficiencia de potasio en las plantas (Parida y Das, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Condiciones de estr&eacute;s producen formas reactivas de ox&iacute;geno, las que disparan se&ntilde;ales de desintoxicaci&oacute;n, complejas respuestas moleculares como la expresi&oacute;n de prote&iacute;nas y producci&oacute;n de osmolitos, previniendo el da&ntilde;o a las estructuras celulares (Alcar&aacute;z, 2012). En condiciones severas de estr&eacute;s h&iacute;drico, causado por salinidad o sequ&iacute;a, las plantas detienen el crecimiento y acumulan solutos en c&eacute;lulas para mantener el volumen y turgencia celular contra la deshidrataci&oacute;n. Este proceso es referido como ajuste osm&oacute;tico (Volkmar <i>et al</i>., 1998; Nonami, 1998; Taiz y Zeiger, 2010). La acumulaci&oacute;n de prolina es una respuesta metab&oacute;lica com&uacute;n en plantas superiores al estr&eacute;s por d&eacute;ficit de agua y salinidad, como una manera de proteger a las enzimas contra la deshidrataci&oacute;n y acumulaci&oacute;n de sales (Thomas, 1990). La acumulaci&oacute;n end&oacute;gena de prolina en plantas estresadas por sales ha sido usada como un indicador efectivo de la tolerancia a sales (Cha&#45;um y Kirdmanee, 2009) y se ha sugerido como un par&aacute;metro de evaluaci&oacute;n para la programaci&oacute;n de riego y selecci&oacute;n de variedades tolerantes a la sequ&iacute;a. La respuesta de la planta al estr&eacute;s depende de la naturaleza de las sales presentes y del estado de crecimiento (P&eacute;rez&#45;Alfocea <i>et</i> <i>al</i>., 1993; Gunes <i>et al</i>., 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo fue estudiar el efecto de tres niveles de salinidad y dos frecuencias de riego en el rendimiento, absorci&oacute;n de nutrimentos y contenido de prolina de dos cultivares de camote con diferente grado de tolerancia al estr&eacute;s h&iacute;drico y salino.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se realiz&oacute; en el Centro de Investigaci&oacute;n de Hidropon&iacute;a y Nutrici&oacute;n Mineral de la Universidad Nacional Agraria La Molina, Lima, Per&uacute;, (12&deg; 05' 06" latitud sur, 76&deg; 51' 00" longitud oeste, a 243 m de altitud) en condiciones del verano&#45;oto&ntilde;o del a&ntilde;o 2009.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron dos cultivares de camote con diferente respuesta a la salinidad: 1) Huambachero, de hoja simple lobulada con 5 l&oacute;bulos (menos tolerante), y 2) Untacip, hoja simple triangular (tolerante). Se obtuvieron plantas de esquejes de 25 cm de longitud, trasplantados a arena de cantera (densidad real, 2.60 g&middot;cm<sup>&#45;3</sup>; densidad aparente 1.63 g&middot;cm<sup>&#45;3</sup>; espacio poroso total 37.31 &#37;; capacidad de aireaci&oacute;n, 32.01 &#37;; capacidad de retenci&oacute;n de agua 5.3&#37;; pH, 6.60; conductividad el&eacute;ctrica, 0.3 dS&middot;m<sup>&#45;1</sup>) previamente lavada, con tama&ntilde;o de part&iacute;culas de 0.5 a 1.0 mm, en contenedores de madera de 1.5 &#215; 1.0 &#215; 0.3 m forrados interiormente con polietileno de color negro de 6 micras de espesor. El distanciamiento entre plantas fue 0.3 &#215; 0.3 m. Las plantas fueron cultivadas a campo abierto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La soluci&oacute;n nutritiva empleada para alimentar a las plantas tuvo la siguiente concentraci&oacute;n (mg&middot;litro<sup>&#45;1</sup>): N 125; P 20; K 200; Ca 160; Mg 40; S 98; Fe 1.0; Mn 0.5; B 0.6; Zn 0.15; Cu 0.10 y Mo 0.05. Los valores de pH variaron de 6.0 a 6.5. Para ajustar el pH se us&oacute; &aacute;cido sulf&uacute;rico. El efecto salinidad fue obtenido a trav&eacute;s del uso de esta soluci&oacute;n nutritiva con tres niveles de NaCl: 0, 8 y 14 mmol (con conductividades el&eacute;ctricas (CE) de 2.0, 3.0 y 3.5 dS&middot;m<sup>&#45;1</sup>, para incrementar la salinidad de las soluciones nutritivas se us&oacute; una soluci&oacute;n madre de NaCl 1 M.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Inicialmente se regaron las plantas s&oacute;lo con agua para promover el crecimiento de ra&iacute;ces adventicias. Los riegos con soluci&oacute;n nutritiva empezaron a los siete d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante (DDT) y se aplic&oacute; cada dos d&iacute;as, frecuencia de riego que mantiene la turgencia de las plantas. La soluci&oacute;n nutritiva (250 ml) fue aplicada sobre el sustrato al pie de cada planta. A partir de los 65 DDT se aplicaron dos frecuencias de riego con soluci&oacute;n nutritiva: Control (C), despu&eacute;s de dos d&iacute;as, y Estr&eacute;s H&iacute;drico (EH), despu&eacute;s de cuatro d&iacute;as. Antes de iniciar los tratamientos de frecuencia de riego (los primeros 64 DDT), cada planta recibi&oacute; 250 ml de soluci&oacute;n nutritiva por riego. Una vez que se iniciaron los tratamientos (65 a 140 DDT) para mantener la misma concentraci&oacute;n de nutrimentos, la concentraci&oacute;n de las soluciones nutritivas fueron ajustadas para aportar una soluci&oacute;n isonutritiva: se aplic&oacute; la mitad de dosis en el tratamiento Control y, la dosis completa de la soluci&oacute;n nutritiva para el tratamiento de EH. Al final del ciclo de cultivo, cada planta recibi&oacute; un total de 34 y 24 litros de soluci&oacute;n nutritiva para los tratamientos C y EH, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se tomaron muestras compuestas de hojas para analizar las concentraciones de N, P, K, Ca, Mg y Na y calcular la absorci&oacute;n de nutrimentos. El N total fue determinado por micro Kjeldahl; el P, por colorimetr&iacute;a del fosfo&#45;vanadomolibdato; el K, Ca, Mg y Na, por espectrofotometr&iacute;a de absorci&oacute;n at&oacute;mica (Temminghoff y Houba, 2004). El espectrofot&oacute;metro usado fue Modelo Contra 300, Analytic Jena. La absorci&oacute;n de nutrimentos en hojas se estim&oacute; multiplicando el peso seco de hojas (PSH) por la concentraci&oacute;n de nutriente (g&middot;planta<sup>&#45;1</sup>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar el efecto de los factores estresantes en las plantas, se determin&oacute; el contenido de prolina, seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por Bates <i>et al</i>. (1973). Se extrajeron muestras de hojas y ra&iacute;ces tuberosas (1 g) con &aacute;cido sulfosalic&iacute;lico (3 &#37; v/v), las cuales fueron filtradas con papel filtro Whatman &#35;1. Las soluciones extra&iacute;das (2 ml) fueron hervidas por una hora agregando &aacute;cido ac&eacute;tico glacial (2 ml) y ninhidrina (2 ml); luego se agreg&oacute; tolueno fr&iacute;o (4 ml). La concentraci&oacute;n de prolina fue medida con el espectrofot&oacute;metro (LW Scientific, Modelo V325XS) a 520 nm y fue calculada como &#956;mol&middot;g<sup>&#45;1</sup> de peso seco. Se us&oacute; como est&aacute;ndar L&#45;prolina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se us&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, con un arreglo de tratamientos factorial 2x3x2 (dos cultivares, tres niveles de salinidad y dos frecuencias de riego) y cuatro repeticiones. El n&uacute;mero total de plantas fue 432. Los datos fueron analizados con el programa estad&iacute;stico SAS V. 9.2. Cuatro plantas por tratamiento fueron elegidas al azar y fueron cosechadas a los 140 DDT. Se registraron peso fresco (PFRT) y peso seco de ra&iacute;ces tuberosas (PSRT); PSH y &aacute;rea foliar (AF). Con el PSH y el AF se obtuvo el &aacute;rea foliar espec&iacute;fica (AFE).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crecimiento (AF y AFE)</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las condiciones de estr&eacute;s h&iacute;drico y salinidad y sus interacciones afectaron significativamente el AF y AFE (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Aunque el cultivar Huambachero present&oacute; mayor AF que Untacip, el AFE, fue mayor en el cultivar Untacip que en Huambachero. El AFE, definida como la raz&oacute;n entre el &aacute;rea foliar y el PSH, refleja una estrategia de distribuci&oacute;n de fotosintatos dentro de cada hoja, la cual est&aacute; influida por cambios internos y externos percibidos por la planta (Wilson <i>et</i> <i>al</i>., 1999; P&eacute;rez&#45;Amaro <i>et al</i>., 2004; Milla <i>et al</i>., 2008), como puede ser una condici&oacute;n adversa. Mayores valores de AFE, el tama&ntilde;o y forma de las hojas (Milla <i>et al</i>., 2008) han sido asociados con una mejor distribuci&oacute;n de fotosintatos hacia los &oacute;rganos sumideros, lo que ayudar&iacute;a a explicar los mayores valores de rendimiento obtenidos por Untacip, a&uacute;n en condiciones limitantes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Absorci&oacute;n de Nutrimentos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivar Huambachero mostr&oacute; mayores niveles de absorci&oacute;n de N, P, K, Ca, Mg y Na que el cultivar Untacip (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El EH caus&oacute; una reducci&oacute;n significativa en la absorci&oacute;n de N, P, K, Ca, Mg y Na. La reducci&oacute;n de la absorci&oacute;n de N, P, K, Ca y Mg lleg&oacute; a 17&#37;, 28&#37;, 35&#37;; 27&#37; y 25&#37;, respectivamente, mientras que, la reducci&oacute;n de la absorci&oacute;n de Na fue 42&#37; en relaci&oacute;n con las plantas regadas cada dos d&iacute;as (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). En el cultivar Huambachero se observ&oacute; menor absorci&oacute;n de P, K, Ca, Mg y Na debido al EH, mientras que la absorci&oacute;n de estos cinco nutrimentos en Untacip fue similar (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La salinidad no afect&oacute; la absorci&oacute;n de N y Ca. La absorci&oacute;n de P y Mg fue reducida en 25&#37; pero s&oacute;lo para el mayor nivel de salinidad, comparado con el nivel m&aacute;s bajo. En contraste, el incremento de la salinidad sobre el nivel m&aacute;s bajo, aument&oacute; significativamente la absorci&oacute;n de Na por encima de 31&#37;. En relaci&oacute;n a la absorci&oacute;n de K, &eacute;ste disminuy&oacute; 28&#37; al aumentar el nivel de salinidad a 14.0 mmol NaCl. La absorci&oacute;n de K disminuye cuando las plantas son cultivadas con niveles altos de salinidad, lo que afecta el rendimiento (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2012). Uno de los efectos da&ntilde;inos del estr&eacute;s salino, producido por el incremento de las concentraciones de Na y Cl, es la interrupci&oacute;n del mecanismo de homeostasis de la planta (Katiyar&#45;Agarwal <i>et al</i>., 2005). El exceso de absorci&oacute;n de Na afecta la absorci&oacute;n de N, P, K (Katiyar&#45;Agarwal <i>et al.</i>, 2005) y Ca en las c&eacute;lulas vegetales (Essa, 2002). El exceso de Na, acumulado en el citosol, inhibe numerosas enzimas (Jaleel <i>et al</i>., 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Rendimiento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El rendimiento (PFRT y PSRT) de ra&iacute;ces tuberosas (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>) fue afectado por el cultivar, frecuencia de riego, salinidad y, por la interacci&oacute;n frecuencia de riego y salinidad. El cultivar Untacip present&oacute; un promedio de rendimiento mayor que Huambachero. Ambos cultivares fueron afectados por la salinidad, la cual redujo el rendimiento de PFRT en 23&#37; y 32&#37; cuando los niveles aumentaron de 0 a 8.0 y, de 0 a 14.0 mmol de NaCl, respectivamente. El EH redujo el rendimiento alrededor de 16&#37;, una respuesta tambi&eacute;n observada por Indira y Kabeerathumma (1988) en otros cultivares, particularmente cuando el estr&eacute;s ocurri&oacute; al terminar la estaci&oacute;n de crecimiento (Bok <i>et al</i>., 2000). Los efectos positivos de riegos m&aacute;s frecuentes sobre el rendimiento fueron neutralizados por el incremento de la salinidad, ya que las plantas regadas cada dos d&iacute;as presentaron rendimientos similares que las plantas expuestas a EH, cuando la salinidad super&oacute; los 8.0 mmol de NaCl (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Untacip, comparado con Huambachero, mostr&oacute; una marcada disminuci&oacute;n del rendimiento a medida que aumentaba la salinidad. Aunque Untacip super&oacute; en rendimiento a Huambachero al menor nivel de salinidad, su porcentaje de p&eacute;rdida de rendimiento como una funci&oacute;n de la salinidad fue mayor que la de Huambachero (38.7&#37; y 24.0&#37;, respectivamente) y la brecha del rendimiento entre ambos cultivares fue reducida a cero dentro de los niveles altos de salinidad probados (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Ali <i>et al</i>. (2004) sugirieron que las respuestas de rendimiento como fueron observadas en este experimento podr&iacute;an explicarse por una disminuci&oacute;n de la asimilaci&oacute;n de agua, toxicidad de sodio y cloro en las c&eacute;lulas vegetales, y por una reducida tasa de fotos&iacute;ntesis, causada por salinidad. Tambi&eacute;n se ha reportado que altas cantidades de NaCl disturba el balance i&oacute;nico de las c&eacute;lulas vegetales, que provoca desequilibrios en los nutrientes, lo cual afectar&iacute;a el crecimiento de la planta (Jamil <i>et al.</i>, 2007; Munns y Tester, 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de Prolina</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n a la concentraci&oacute;n de prolina, el cultivar Huambachero exhibi&oacute; significativamente menor concentraci&oacute;n en ra&iacute;ces tuberosas que Untacip, pero no se registraron diferencias en las hojas (<a href="/img/revistas/rcsh/v20n1/a2c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>). En general, el EH increment&oacute; los niveles de prolina en ra&iacute;ces tuberosas pero no en hojas. Tambi&eacute;n, los niveles de prolina en ra&iacute;ces tuberosas y hojas fueron incrementadas cuando la salinidad aument&oacute; de 0 a 8.0 (2.0 a 3.0 dS&middot;m<sup>&#45;1</sup>) &oacute; 14.0 mmol de NaCl (3.5 dS&middot;m<sup>&#45;1</sup>). Los niveles altos de prolina en hojas y ra&iacute;ces tuberosas causados por el incremento de la concentraci&oacute;n de sales y el EH coincidieron con los resultados observados en camote (Indira y Kabeerathumma, 1988), tomate (P&eacute;rez&#45;Alfocea <i>et al</i>., 1993) y pimiento (Gunes et al., 1996). Se ha reportado que condiciones de estr&eacute;s reducen la actividad de enzimas que degradan la prolina (Kandpal <i>et al.</i>, 1981).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los rendimientos de ra&iacute;ces tuberosas de los cultivares de camote Huambachero y Untacip fueron afectadas por la restricci&oacute;n de agua y por la salinidad. El cultivar Untacip fue superior en rendimiento en condiciones favorables, pero fue m&aacute;s afectado por las condiciones desfavorables que el cultivar Huambachero.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estr&eacute;s h&iacute;drico caus&oacute; una menor absorci&oacute;n de N, P, Ca, Mg, K y Na. El estr&eacute;s salino provoc&oacute; una menor absorci&oacute;n de P, K y Mg, y una mayor absorci&oacute;n de Na. Ambas condiciones de estr&eacute;s causaron un incremento de los niveles en prolina, principalmente en ra&iacute;ces tuberosas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivar Huambachero mostr&oacute; menor absorci&oacute;n de P, K, Ca, Mg y Na debido al estr&eacute;s h&iacute;drico, mientras que en el cultivar Untacip la absorci&oacute;n de esos cinco nutrimentos fue similar. No se encontraron diferencias entre cultivares en el rendimiento de ra&iacute;ces tuberosas sometidas a un alto nivel de estr&eacute;s salino.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados sugieren que en las condiciones probadas el cultivar Untacip es m&aacute;s tolerante que Huambachero.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados indican que diferencias en algunas respuestas fisiol&oacute;gicas no necesariamente afectan el rendimiento de los cultivares en una forma similar cuando se comparan sus respuestas individuales con estr&eacute;s y sin &eacute;l.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALI, Y.; ASLAM, Z.; ASHRAF, M. Y; TAHIR. G. R. 2004. Effect of salinity on chlorophyll concentration, leaf area, yield and yield components of rice genotypes grown under saline environment. International Journal of Environment Science and Technology 1(3):221&#45;225. doi: 10.1007/BF03325836.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681756&pid=S1027-152X201400010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALCARAZ, F. J. 2012. Salinidad y vegetaci&oacute;n, pp. 144&#45;153. <i>In</i>: Geobot&aacute;nica. ALCARAZ, F. J. (ed.). Universidad de Murcia, Espa&ntilde;a. <a href="http://www.um.es/docencia/geobotanica/ficheros/tema18.pdf" target="_blank">http://www.um.es/docencia/geobotanica/ficheros/tema18.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681758&pid=S1027-152X201400010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BATES, L. S.; WALDREN, R. P.; TEARE, I. D. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil 39(1): 205&#45;207. doi: 10.1007/BF00018060.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681760&pid=S1027-152X201400010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BOK, I., HAMMES, P. S.; STEYN, J. M. 2000. Effect of water stress at different growth stages on yield and quality of sweet potato. African Potato Association Conference Proceedings 5: 205&#45;208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681762&pid=S1027-152X201400010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHA&#45;UM, S.; KIRDMANEE, C. 2009. Effect of salt stress on proline accumulation, photosynthetic ability and growth characters in two maize cultivars. Pakistan Journal of Botany 41(1): 87&#45;98. <a href="http://www.pakbs.org/pjbot/PDFs/41&#37;281&#37;29/PJB41&#37;281&#37;29087.pdf" target="_blank">http://www.pakbs.org/pjbot/PDFs/41&#37;281&#37;29/PJB41&#37;281&#37;29087.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681764&pid=S1027-152X201400010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ESSA, T. A. 2002. Effect of salinity stress on growth and nutrient composition of three soybean (<i>Glycine max</i> L. Merrill) cultivars. Journal of Agronomy and Crop Science 188(2): 86&#45;93. doi: 10.1046/j.1439&#45;037X.2002.00537.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681766&pid=S1027-152X201400010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&Uuml;NES, A.; INAL, A; ALPASLAN, M. 1996. Effect of salinity on stomatal resistance, proline, and mineral composition of pepper<i>.</i> Journal of Plant Nutrition 19(2): 389&#45;396. doi: 10.1080/01904169609365129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681768&pid=S1027-152X201400010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HU, Y.; SCHMIDHALTER, U. 2005. Drought and salinity: a comparison of their effects on mineral nutrition of plants. Journal of Plant Nutrition and Soil Science 168(4): 541&#45;549. doi: 10.1002/jpln.200420516.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681770&pid=S1027-152X201400010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">INDIRA, P.; KABEERATHUMMA, S. 1988. Physiological response of sweet potato under water stress 1. Effect of water stress during the different phases of tuberization. Journal of Root Crops 14(2): 37&#45;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681772&pid=S1027-152X201400010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JALEEL, C. A.; SANKAR, B.; SRIDHARAN, R.; PANNEERSELVAM; R. 2008. Soil salinity alters growth, chlorophyll content, and secondary metabolite accumulation in <i>Catharanthus roseus</i>. Turkish Journal of Biology 32(2): 79&#45;83. <a href="http://journals.tubitak.gov.tr/biology/issues/biy&#45;08&#45;32&#45;2/biy&#45;32&#45;2&#45;2&#45;0709&#45;7.pdf" target="_blank">http://journals.tubitak.gov.tr/biology/issues/biy&#45;08&#45;32&#45;2/biy&#45;32&#45;2&#45;2&#45;0709&#45;7.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681774&pid=S1027-152X201400010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JAMIL, M.; REHMAN, S. U., S.; LEE, K. J.; KIM, J. M.; KIM, H. S.; RHA, E. S. 2007. Salinity reduced growth PS2 photochemistry and chlorophyll content in radish. Science in Agriculture 64(2): 111&#45;118. doi: 10.1590/S0103&#45;90162007000200002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681776&pid=S1027-152X201400010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KANDPAL, R. P.; VAIDYANATHAN, C. S.; KUMAR, M. U.; SASTRY, K. S.; RAO, N. A. 1981. Alterations in the activities of the enzymes of proline metabolism in Ragi <i>(Eleusine coracana)</i> leaves during water stress. Journal of Biosciences 3(4): 361&#45;370. doi: 10.1007/BF02702623.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681778&pid=S1027-152X201400010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KATIYAR&#45;AGARWAL, S.; VERSLUES, P.; ZHU, J. K. 2005. Mechanisms of salt tolerance in plants. Plant Nutrition for Food Security, Human Health and Environmental Protection 23: 44&#45;45. <a href="https://ag.purdue.edu/hla/zhulab/Documents/Publications/2005/SKA.pdf" target="_blank">https://ag.purdue.edu/hla/zhulab/Documents/Publications/2005/SKA.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681780&pid=S1027-152X201400010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MELONI, D. A.; OLIVA, M. A.; RU&Iacute;Z, H. A.; MART&Iacute;NEZ, C. A. 2001. Contribution of proline and inorganic solutes to osmotic adjustment in cotton under salt stress. Journal of Plant Nutrition. 24(3): 599&#45;612. doi: 10.1081/PLN&#45;100104983.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681782&pid=S1027-152X201400010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MILLA, R.; REICH, P. B.; NIINEMETS, &Uuml;; CASTRO&#45;D&Iacute;EZ, P. 2008. Environmental and developmental controls of specific leaf area are little modified by leaf allometry. Functional Ecology 22(4): 565&#45;576. doi: 10.1111/j.1365&#45;2435.2008.01406.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681784&pid=S1027-152X201400010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MUNNS, R.; TESTER, M. 2008. Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology 59: 651&#45;681. doi: 10.1146/annurev.arplant.59.032607.092911.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681786&pid=S1027-152X201400010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NONAMI, H. 1998. Plant water relations and control of cell elongation at low water potentials. Journal of Plant Research 111(3): 373&#45;382. doi: 10.1007/BF02507801.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681788&pid=S1027-152X201400010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PARIDA, A. K.; DAS, A. B. 2006 Salt tolerance and salinity effects on plants: a review. Ecotoxicology and environmental safety 60(3): 324&#45;339. doi: 10.1016/j.ecoenv.2004.06.010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681790&pid=S1027-152X201400010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&Eacute;REZ&#45;ALFOCEA, F.; ESTAN, M. T.; SANTA C., A. ; BOLAR&Iacute;N, M. C. 1993. Effect of salinity on nitrate, total nitrogen, soluble protein and free amino acid levels in tomato plants. 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USA. 782 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681798&pid=S1027-152X201400010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">TEMMINGHOFF, J. M.; HOUBA, V. J. G. 2004. Plant Analysis Procedures. 2da. ed. Kluwer Academic Publishers. 179 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681800&pid=S1027-152X201400010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">THOMAS, H. 1990. 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Canadian Journal of Plant Science 78(1):19&#45;27. doi: 10.4141/P97&#45;020.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6681804&pid=S1027-152X201400010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WILSON, P. J.; THOMPSON, K. E. N.; HODGSON, J. G.1999. Specific leaf area and leaf dry matter content as alternative predictors of plant strategies. 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