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<article-id>S1027-152X2012000300012</article-id>
<article-id pub-id-type="doi">10.5154/r.rchsh.2011.08.038</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Color en cálices de jamaica (Hibiscus sabdariffa L.) y su relación con características fisioquímicas de sus extractos acuosos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The color of the calyxes of Roselle (Hibiscus sabdariffa L.) is a quality parameter that is considered by consumers and it is related with the concentration of some phytochemicals. There is not information on the relationship between this parameter and some physicochemical characteristics of the aqueous extracts in Hibiscus varieties grown in Mexico. The aim of the present work was to determine the color of calyxes of eight different Roselle varieties and to establish the relationship with chemical parameters of the aqueous extracts. The color of the calyxes (whole and ground) and the extracts was measured with a Hunter-Lab colorimeter. Total anthocyanin content (ANT), ascorbic acid (AA), titratable acidity, pH and °Brix were determined. The color of the calyxes and extracts was related to anthocyanin and AA contents. Varieties with dark red calyxes contained five to seven times higher ANT content than varieties with light red calyxes. The variety with white calyxes had the highest AA content. In the case of color parameters, ground calyx brightness could be used to estimate ANT content due to the high and negative correlation observed between these two variables.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Antocianinas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Color en c&aacute;lices de jamaica<i> (Hibiscus sabdariffa</i> L.) y su relaci&oacute;n con caracter&iacute;sticas fisioqu&iacute;micas de sus extractos acuosos</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Color in calyxes of roselle <i>(Hibiscus sabdariffa</i> L.) and their relationship with physicochemical characteristics of their aqueous extracts</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Yolanda Salinas&#150;Moreno<sup>1</sup>*; Araceli Rosa Elena Z&uacute;&ntilde;iga&#150;Hern&aacute;ndez<sup>2</sup>; Luis Bartolom&eacute; Jim&eacute;nez&#150;De la Torre<sup>2</sup>; Victor Serrano&#150;Altamirano<sup>3</sup>; C&eacute;sar S&aacute;nchez&#150;Feria<sup>1</sup></b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias. Laboratorios de Calidad. km 38.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, M&Eacute;XICO. C. P. 56230. C</i>orreo&#150;e: <a href="mailto:yolysamx@yahoo.com">yolysamx@yahoo.com</a><i> (*Autor para correspondencia).</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Departamento de Ingenier&iacute;a Agroindustrial. km 38.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, M&Eacute;XICO. C.P. 56230.</i></font></p>  	    <p align="justify"><i><font face="verdana" size="2"><sup>3</sup> Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias. Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca, Santo Domingo Barrio Bajo, Etla, Oaxaca. M&Eacute;XICO. C. P. 58200.</font></i><font face="verdana" size="2"></font></p> 	         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 30 de agosto, 2011.     <br>     Aceptado: 3 de noviembre, 2012.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color de los c&aacute;lices de la jamaica <i>(Hibiscus sabdariffa</i> L.) es un criterio de calidad considerado por el consumidor y se relaciona con la concentraci&oacute;n de ciertos fitoqu&iacute;micos. No se tiene informaci&oacute;n sobre la relaci&oacute;n de este par&aacute;metro con las caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas de los extractos acuosos en variedades de <i>Hibiscus</i> cultivadas en M&eacute;xico, por lo que el objetivo del presente trabajo fue determinar el color de c&aacute;lices de ocho variedades de jamaica y establecer su relaci&oacute;n con algunas variables qu&iacute;micas de los extractos acuosos obtenidos. Para ello se midi&oacute; el color de los c&aacute;lices (enteros y molidos) y el de los extractos con ayuda de un color&iacute;metro Hunter&#150;Lab. En los extractos se determin&oacute; el contenido de antocianinas totales (ANT), &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA), acidez titulable (AT), pH y &deg;Brix. Se encontr&oacute; que el color de los c&aacute;lices y de los extractos influy&oacute; en el contenido de antocianinas y &aacute;cido asc&oacute;rbico. Las variedades de c&aacute;lices oscuros presentaron entre cinco y siete veces m&aacute;s antocianinas que las de c&aacute;lices claros, mientras que la variedad de c&aacute;lices blancos tuvo el mayor contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico. De los par&aacute;metros de color, la luminosidad de los c&aacute;lices molidos puede usarse como estimador del contenido de antocianinas totales, por la elevada correlaci&oacute;n negativa entre estas variables.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Antocianinas, &aacute;cido asc&oacute;rbico, acidez titulable.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The color of the calyxes of Roselle <i>(Hibiscus sabdariffa</i> L.) is a quality parameter that is considered by consumers and it is related with the concentration of some phytochemicals. There is not information on the relationship between this parameter and some physicochemical characteristics of the aqueous extracts in <i>Hibiscus</i> varieties grown in Mexico. The aim of the present work was to determine the color of calyxes of eight different Roselle varieties and to establish the relationship with chemical parameters of the aqueous extracts. The color of the calyxes (whole and ground) and the extracts was measured with a Hunter&#150;Lab colorimeter. Total anthocyanin content (ANT), ascorbic acid (AA), titratable acidity, pH and &deg;Brix were determined. The color of the calyxes and extracts was related to anthocyanin and AA contents. Varieties with dark red calyxes contained five to seven times higher ANT content than varieties with light red calyxes. The variety with white calyxes had the highest AA content. In the case of color parameters, ground calyx brightness could be used to estimate ANT content due to the high and negative correlation observed between these two variables.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Additional keywords:</b> Anthocyanins, ascorbic acid, titratable acidity.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color es un atributo de calidad que tiene un papel importante en la selecci&oacute;n de los alimentos. En flores y frutos con tonalidades desde rosa hasta azul y morado, el color se debe a la presencia de antocianinas, que representan uno de los principales grupos de pigmentos solubles en agua. Las antocianinas pueden encontrarse en otras estructuras de la planta, como hojas y tallo, o en las estructuras florales como los c&aacute;lices. Esto ocurre en <i>Hibiscus sabdariffa</i> L, mejor conocida en M&eacute;xico como jamaica o "flor de jamaica". Los c&aacute;lices deshidratados de esta planta se utilizan ampliamente para elaborar extractos con los cuales se preparan bebidas refrescantes. En &eacute;stos se ha identificado una diversidad de fitoqu&iacute;micos, dentro de los que se encuentran: antocianinas, &aacute;cidos carbox&iacute;licos, &aacute;cidos fen&oacute;licos y otros flavonoides (Rodr&iacute;guez&#150;Medina <i>et al.,</i> 2009). Varios de estos compuestos se asocian con las acciones farmacol&oacute;gicas reportadas para <i>Hibiscus:</i> antihipertensiva (Herrera&#150;Arellano <i>et al.,</i> 2004), cardioprotectora (Chen <i>et al.,</i> 2003), antihipercolesterolemia (Herrera&#150;Arellano <i>et al.,</i> 2004), entre otras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color de los c&aacute;lices de <i>Hibiscus</i> var&iacute;a desde verde&#150;amarillento hasta rojo intenso, y se encuentra relacionado con el contenido de los compuestos fitoqu&iacute;micos encontrados en las variedades de jamaica (Babalola <i>et al.,</i> 2001). As&iacute;, los c&aacute;lices oscuros poseen mayor contenido de antocianinas que los c&aacute;lices claros (Christian y Jackson, 2009). Las variedades de c&aacute;lices blancos tienen alto contenido de vitamina C (Babalola <i>et al.,</i> 2001). Sin embargo, el ambiente de producci&oacute;n tiene un efecto elevado en la concentraci&oacute;n de los principales fenoles presentes en los c&aacute;lices. La concentraci&oacute;n de antocianinas puede incluso duplicarse en algunas variedades, de acuerdo al sitio de producci&oacute;n (Juliani <i>et al.,</i> 2009), por lo que este factor debe considerarse al definir la composici&oacute;n qu&iacute;mica de un cultivar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico los principales estados productores de <i>Hibiscus</i> son Guerrero y Oaxaca, en donde se cultivan variedades de c&aacute;lices claros y oscuros, con predominio de las primeras. La composici&oacute;n qu&iacute;mica de los extractos obtenidos de c&aacute;lices de diferentes colores se ha informado para cultivares de otros pa&iacute;ses (Babalola <i>et al.,</i> 2001; Christian y Jackson, 2009; Juliani <i>et al.,</i> 2009), pero se desconocen estos aspectos en las variedades que se cultivan en M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los objetivos del presente trabajo fueron determinar el color de los c&aacute;lices (enteros y molidos) y de los extractos acuosos de variedades de jamaica mexicana, y determinar su relaci&oacute;n con algunas variables fisicoqu&iacute;micas de los extractos.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material de estudio</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se trabaj&oacute; con los c&aacute;lices deshidratados de ocho cultivares de jamaica <i>(Hibiscus sabdariffa</i> L.), que corresponden a las variedades Colima 3, Colima 5, Sud&aacute;n, Coneja, Colima 6, Colima 7, Alma Blanca y China. Las siete primeras fueron cultivadas durante 2008 en la regi&oacute;n costa del estado de Oaxaca. Los c&aacute;lices se cosecharon manualmente y se deshidrataron al sol. De cada variedad se obtuvieron 2 kg de muestra, la cual se subdividi&oacute; en tres partes, que se manejaron como repeticiones biol&oacute;gicas por cada variedad. La muestra denominada "China" se obtuvo en la Central de Abasto de la Ciudad de M&eacute;xico.</font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables determinadas en los c&aacute;lices deshidratados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Humedad</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de humedad se determin&oacute; de acuerdo con lo establecido en el m&eacute;todo 10.004 de la AOAC (An&oacute;nimo, 1980).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Color en c&aacute;lices enteros</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; un color&iacute;metro Hunter Lab Mini Scan XE Plus (modelo 45/0&#150;L en la escala CIE L*a*b*, con iluminante D/65 y un &aacute;ngulo 10&deg;). Se obtuvieron los par&aacute;metros L*, que es la luminosidad de las muestras; a*, la coordenada que tiende al rojo (valores positivos) o hacia el verde (valores negativos), y b*, la coordenada que tiende al amarillo (valores positivos) o hacia el azul (valores negativos). A partir de los par&aacute;metros a* y b* se calcularon el &aacute;ngulo de tono (HUE) y el &iacute;ndice de saturaci&oacute;n del color (Croma), de acuerdo con lo descrito por McGuire (1992).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para medir el color de los c&aacute;lices enteros se coloc&oacute; el color&iacute;metro dentro de la bolsa de pl&aacute;stico negro que conten&iacute;a una muestra de 200 g, aproximadamente, para evitar errores por la difusi&oacute;n del haz de luz emitido por el aparato a trav&eacute;s de los espacios vac&iacute;os que se forman entre los c&aacute;lices.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Color en c&aacute;lices molidos (Harina)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para obtener la harina se molieron 15 g de cada muestra de c&aacute;lices secos en un molino marca IKA modelo MF 10, equipado con una malla de 0.5 mm. La muestra molida se coloc&oacute; en un recipiente de pl&aacute;stico blanco de aproximadamente 5 cm de di&aacute;metro y de 1 cm de profundidad, se compact&oacute; y elimin&oacute; el exceso de muestra. Posteriormente se realiz&oacute; la medici&oacute;n con el color&iacute;metro Hunter&#150;Lab sobre la superficie compactada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de los extractos acuosos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para establecer la relaci&oacute;n entre el color de los c&aacute;lices y el de los extractos acuosos obtenidos bajo condiciones estandarizadas, se prepararon extractos por duplicado de cada una de las muestras. Se pesaron 2.5 g de c&aacute;lices enteros base seca en un vaso de precipitados de 500 ml y se agregaron 100 ml de agua destilada. La mezcla se puso a ebullici&oacute;n plena durante 15 minutos en un digestor de fibra cruda modificado. El l&iacute;quido se separ&oacute; de los c&aacute;lices y se coloc&oacute; en un recipiente aparte; se repiti&oacute; la extracci&oacute;n bajo las mismas condiciones. Se juntaron los dos extractos y se afor&oacute; a 200 ml con agua destilada. A partir de esta muestra aforada se realizaron todas las determinaciones, tanto f&iacute;sicas como qu&iacute;micas.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para medir el color de los extractos, se colocaron 50 ml en la c&aacute;psula de vidrio del Hunter Lab, que es especial para l&iacute;quidos. De esta manera la lectura de color se toma sobre la base de la c&aacute;psula, y la distancia entre &eacute;sta y el punto de emisi&oacute;n de luz del equipo est&aacute; estandarizada. Se cubri&oacute; la c&aacute;psula con un cilindro de papel negro para evitar la incidencia de luz sobre el l&iacute;quido.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables f&iacute;sico&#150;qu&iacute;micas determinadas en los extractos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>S&oacute;lidos solubles totales</i> (&deg;Brix)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un refract&oacute;metro digital marca ATAGO (escala de 0 a 93 %). Una gota del extracto se coloc&oacute; en la c&aacute;mara de lectura del equipo. El resultado se obtuvo como porcentaje de s&oacute;lidos solubles totales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>pH en extractos acuosos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se midi&oacute; empleando un potenci&oacute;metro Denver Instrument UB10. La prueba se realiz&oacute; por duplicado, tomando dos lecturas en cada repetici&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Acidez titulable en extractos acuosos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La acidez titulable (AT) se determin&oacute; de acuerdo a la AOAC (An&oacute;nimo, 1980). Las muestras se prepararon seg&uacute;n las indicaciones para soluciones ligeramente coloreadas. La titulaci&oacute;n se realiz&oacute; con NaOH 0.089 N con el pH de vire de la fenolftale&iacute;na (8.2&#150;8.3) como punto final de la titulaci&oacute;n. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; en 10 ml de extracto diluido en 50 ml de agua destilada para c&aacute;lices claros y en 300 ml de agua destilada para c&aacute;lices oscuros. El resultado se expres&oacute; en funci&oacute;n del &aacute;cido c&iacute;trico y como porcentaje. Las determinaciones se realizaron por cuadruplicado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Antocianinas totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se midi&oacute; la absorbancia de los extractos acuosos obtenidos a una longitud de onda de 530 nm utilizando un espectrofot&oacute;metro Perkin Elmer Lambda 25 UV/Vis de acuerdo a lo descrito por Galicia&#150;Flores <i>et al.</i> (2008).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de antocianinas totales se obtuvo al sustituir el promedio de los dos valores de absorbancia de cada muestra en la ecuaci&oacute;n obtenida a partir de la curva est&aacute;ndar de cianidina 3&#150;gluc&oacute;sido. Los datos se expresaron como mg de cianidina 3&#150;glucosido100 g<sup>&#150;1</sup> de muestra seca.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;cido asc&oacute;rbico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido asc&oacute;rbico se determin&oacute; en la harina de c&aacute;lices deshidratados de las diferentes variedades de jamaica y en los extractos acuosos obtenidos en caliente, bajo las condiciones descritas en p&aacute;rrafos anteriores. Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo 967.21 del 2,6 diclorofenol indofenol (An&oacute;nimo, 2000). Una al&iacute;cuota de la muestra se titul&oacute; con una soluci&oacute;n estandarizada de 2.6 diclorofenol indofenol hasta que el color rosa fue permanente. El contenido se calcul&oacute; por referencia con soluciones de &aacute;cido asc&oacute;rbico de concentraci&oacute;n conocida y se expres&oacute; en mg por 100 g de &aacute;cido asc&oacute;rbico.</font></p>             <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p> 	 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos obtenidos se analizaron bajo un dise&ntilde;o completamente al azar. Para determinar el efecto de tratamiento (variedades) sobre las variables analizadas, se realizaron an&aacute;lisis de varianza y pruebas de comparaci&oacute;n de medias mediante el procedimiento de Tukey (P = 0.05). Tambi&eacute;n se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n entre las diferentes variables medidas.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Humedad y Color</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los productos agr&iacute;colas el color es un par&aacute;metro que permite al consumidor seleccionar de manera r&aacute;pida dentro de una variedad de opciones al momento de comprar. Este atributo es importante en los gustos y preferencias de las amas de casa al momento de elegir la jamaica que usan para preparar el agua fresca. La humedad de los productos, sin embargo, es un factor que va a afectar los par&aacute;metros que definen el color. En pimiento morr&oacute;n se ha observado que la luminosidad es mayor en la medida en que aumenta la humedad de la muestra (Romano <i>et al.,</i> 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La humedad de los c&aacute;lices vari&oacute; de 14 a 16 % de humedad, por lo que la influencia de este factor en los resultados sobre color se consider&oacute; insignificante, dado el rango de s&oacute;lo dos unidades.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferentes variedades de jamaica se pueden agrupar de acuerdo con el color visual de sus c&aacute;lices. Se tienen c&aacute;lices oscuros, claros y blancos (Babalola <i>et al.,</i> 2001; Christian y Jackson, 2009). A los c&aacute;lices blancos tambi&eacute;n se les denomina verdes, y al deshidratarse adquieren una coloraci&oacute;n verdosa&#150;amarillenta, que fue la que se observ&oacute; en los de la variedad Alma Blanca analizada en este estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variedades Colima 6, China y Sud&aacute;n de color rojo intenso, conformaron el grupo de c&aacute;lices oscuros. Colima 3, Colima 5, Coneja y Colima 7 de color rojo claro, se incorporaron al grupo de c&aacute;lices claros, y Alma Blanca, cuyos c&aacute;lices carecen de pigmento rojo, fue incluida en el grupo de c&aacute;lices de color blanco (<a href="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el <a href="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a> se presentan los valores de los diferentes par&aacute;metros usados para describir el color de los c&aacute;lices tanto enteros como molidos, y los extractos acuosos. Para c&aacute;lices enteros, los valores de L*, asociados con la luz reflejada por la muestra, fueron m&aacute;s bajos en los cultivares de c&aacute;lices oscuros con respecto a los de c&aacute;lices claros. El valor m&aacute;s alto correspondi&oacute; a la variedad Alma Blanca (L=32.4 %), de c&aacute;lices blancos. El &aacute;ngulo de tono (HUE) no present&oacute; diferencia significativa entre las muestras coloridas, pero s&iacute; entre &eacute;stas y la muestra de c&aacute;lices blancos (Alma Blanca), cuyo valor de HUE fue de 62.9&deg;. La baja reproducibilidad de las lecturas tomadas en una misma muestra probablemente contribuy&oacute; a que no se presentaran diferencias estad&iacute;sticas. Los valores de croma mostraron mayor variabilidad entre las muestras: las de c&aacute;lices oscuros tuvieron valores menores y estad&iacute;sticamente diferentes a las de c&aacute;lices claros. Sin embargo, esta variable no diferenci&oacute; la variedad de c&aacute;lices blancos con las de c&aacute;lices claros. Un bajo valor de croma se asocia con un color mate y de baja pureza, que es lo que caracteriza a los c&aacute;lices de las variedades Sud&aacute;n, Colima 6 y China.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los c&aacute;lices molidos, los valores de L* fueron mayores que los obtenidos para c&aacute;lices enteros. Las de c&aacute;lices oscuros presentaron valores entre 31.7 y 36.1 %, en tanto que las de c&aacute;lices claros mostraron una variaci&oacute;n de 52.1 a 57.2 %. Sin embargo, estos valores no se corresponden con la brillantez de las muestras y resultan elevados. Seg&uacute;n Wrolstad y Smith (2009), al moler la muestra se incorpora aire que eleva los valores de L*, y se obtienen datos de color que ya no corresponden con el de las muestras de inter&eacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de HUE fueron menores y m&aacute;s homog&eacute;neos que los observados en c&aacute;lices enteros. La reproducibilidad entre lecturas de una misma muestra provoc&oacute; que diferencias num&eacute;ricas peque&ntilde;as entre medias condujeran a diferencias estad&iacute;sticas. La variable croma en c&aacute;lices molidos mostr&oacute; valores m&aacute;s uniformes y elevados que en c&aacute;lices enteros.</font></p>             <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la medici&oacute;n de color en muestras s&oacute;lidas, la uniformidad de la superficie es un factor clave para la reproducibilidad de las determinaciones (Jha, 2010), por lo que en los casos en que sea posible se recomienda moler la muestra. No obstante, conviene que se revise si los datos de color en muestra molida corresponden con el color visual que se aprecia. En los c&aacute;lices de <i>H. sabdariffa</i> L. esta pr&aacute;ctica favoreci&oacute; la reproducibilidad de las lecturas y los valores de L*, HUE y croma para las variedades de c&aacute;lices oscuros fueron claramente distintos de los obtenidos para las de c&aacute;lices claros, pero los valores de L y croma en c&aacute;lices molidos no reflejan el verdadero color de las muestras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los extractos acuosos se caracterizaron por presentar valores de L* m&aacute;s bajos que los observados para los c&aacute;lices enteros y molidos, lo que denota una mayor absorci&oacute;n de luz por parte de la muestra. Los valores m&aacute;s bajos se presentaron en los extractos de c&aacute;lices oscuros y el m&aacute;s elevado en la de c&aacute;lices blancos. Los valores de HUE en los extractos fueron completamente diferentes de los de las muestras s&oacute;lidas (c&aacute;lices enteros y molidos), en las cuales el tinte o tono de color se ubic&oacute; en el primer cuadrante del plano de color, entre los colores rojo y amarillo (+a* y +b*).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de HUE en los extractos de las muestras Colima 3, Colima 5, Sud&aacute;n, Colima 6 y China, se asocian con un tinte rojo&#150;morado, en tanto que los de Coneja y Colima 7 con un tono rojo brillante. El HUE del extracto de Alma Blanca se asocia con un tono amarillo&#150;verdoso. Los valores de croma fueron muy bajos con respecto a los observados en c&aacute;lices enteros y molidos. Se presentaron diferencias estad&iacute;sticas para esta variable entre los extractos de c&aacute;lices claros (valores m&aacute;s altos) y los de c&aacute;lices oscuros (valores m&aacute;s bajos), lo que indica un color mate y con mayor presencia de grises en los extractos de c&aacute;lices oscuros (<a href="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque com&uacute;nmente el color se discute en funci&oacute;n de las variables L*, HUE y croma (McGuire, 1992), en ocasiones los valores de a* y b* complementan la interpretaci&oacute;n. Por esto se graficaron los valores de estas variables en c&aacute;lices enteros, molidos y en los respectivos extractos acuosos. Para c&aacute;lices enteros se apreci&oacute; una clara separaci&oacute;n de los tres tipos de variedades: c&aacute;lices oscuros, claros y blancos (<a href="#f2">Figura 2a</a>). Tal agrupamiento no se observa al graficar estas mismas variables obtenidas a partir de los c&aacute;lices molidos, pues &uacute;nicamente se aprecian dos grupos, el de la muestra sin pigmento rojo y el de los c&aacute;lices coloridos (<a href="#f2">Figura 2b</a>). La distribuci&oacute;n espacial en el plano a*b* de los extractos acuosos fue parecida a la que se obtuvo para los c&aacute;lices enteros (<a href="#f2">Figura 2c</a>).</font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p> 	         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12f2.jpg"></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con estos resultados, el color de los c&aacute;lices enteros se puede emplear para estimar el color que tendr&aacute;n los extractos acuosos. En un programa de mejoramiento gen&eacute;tico se puede optar por caracterizar las variedades por color en c&aacute;lices enteros, y tener con esta informaci&oacute;n una aproximaci&oacute;n del color de los concentrados. Sin embargo, debe considerarse que la relaci&oacute;n c&aacute;lices/ agua afecta el color final del concentrado.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n f&iacute;sico&#150;qu&iacute;mica de los extractos acuosos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables evaluadas en los extractos fueron grados Brix (&deg;Bx), pH y acidez titulable, cuyos resultados se muestran en el Cuadro 2. Los grados Brix mostraron poca variaci&oacute;n entre los extractos acuosos. El valor m&aacute;s alto se present&oacute; en Colima 3 y el m&aacute;s bajo en Colima 7 y Alma blanca. Esta variable se relaciona con la cantidad de s&oacute;lidos solubles en el extracto, y en el caso de frutos se asocia con la presencia de az&uacute;cares y &aacute;cidos org&aacute;nicos. El valor de &deg;Bx en los extractos depender&aacute; de factores tales como la relaci&oacute;n c&aacute;lices:agua con la cual se preparen, la humedad de los c&aacute;lices, la variedad de jamaica que se use, entre otros. Ram&iacute;rez&#150;Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> (2011) utilizaron una relaci&oacute;n c&aacute;lices:agua de 1:40 y los valores de &deg;Bx que informan son superiores a los del presente trabajo, en el que se us&oacute; una relaci&oacute;n 1:80.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de pH observados en los extractos acuosos de jamaica variaron de 2.4 a 2.65. El extracto de la variedad Coneja present&oacute; el valor m&aacute;s bajo, en tanto que los mayores correspondieron a las variedades Sud&aacute;n y Colima 6. El pH del extracto es un factor fundamental en la estabilidad del color, pues determina la estructura qu&iacute;mica de la antocianina. En la jamaica es importante que la estructura predominante sea la del cati&oacute;n flavilio, que confiere el color rojo brillante a los extractos, y se favorece a pH menor de 3 (Prenesti <i>et al.,</i> .2007). Cuando este valor sobrepasa 5, la estructura de este cati&oacute;n cambia a su base quinoidal (Brouillard, 1982) y en los extractos de jamaica muy diluidos con agua se aprecia una coloraci&oacute;n azul/morada, las antocianinas son inestables.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo estas condiciones de pH, todos los extractos mostraron un color rojo brillante, a excepci&oacute;n de la variedad Alma Blanca, que aunque de pH &aacute;cido (2.54), present&oacute; una coloraci&oacute;n amarilla clara, atribuida a la carencia de pigmento rojo. No obstante su falta de color rojo, el aroma del extracto de Alma Blanca fue el caracter&iacute;stico de la jamaica, que est&aacute; conformado por m&aacute;s de 37 compuestos diferentes agrupados en derivados de &aacute;cidos grasos, az&uacute;cares, fenoles y algunos terpenoides (Chen <i>et al.,</i> 1998).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La acidez de los extractos est&aacute; directamente relacionada con la cantidad de &aacute;cidos presentes, y en jamaica los dominantes son el ox&aacute;lico y el succ&iacute;nico (Fasoyiro <i>et al.,</i> 2005), aunque pueden encontrarse tambi&eacute;n c&iacute;trico, asc&oacute;rbico, m&aacute;lico y este&aacute;rico (Hirunpanich <i>et al.,</i> 2005). En trabajos recientes se menciona la presencia importante del &aacute;cido hibiscus en sus formas libre y glucosilada (Ram&iacute;rez&#150;Rodr&iacute;guez <i>et al.,</i> 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los extractos m&aacute;s &aacute;cidos provinieron de Colima 6 y Coneja, cuyos valores de acidez fueron estad&iacute;sticamente diferentes de los dem&aacute;s extractos. Galicia&#150;Flores <i>et al.</i> (2008) al comparar la acidez de extractos de jamaicas de diferentes or&iacute;genes, encontraron que el de la muestra Sud&aacute;n era la de menor acidez (13.8 %), con respecto a los valores de los extractos de muestras de China (20.3 %) y Guerrero (18.9 %).</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La acidez tiene un efecto antibacterial y contribuye a la absorci&oacute;n de iones met&aacute;licos en el cuerpo humano. Particularmente act&uacute;a contra la formaci&oacute;n de sales de baja solubilidad. Es probable que la sensaci&oacute;n de frescura que se percibe al tomar una bebida fr&iacute;a de jamaica est&eacute; relacionada con esta caracter&iacute;stica (Prenesti <i>et al.,</i> 2007). La acidez puede reducirse con la adici&oacute;n de az&uacute;car, pero para las personas muy sensibles al &aacute;cido podr&iacute;a no resultar suficiente. Para estas personas puede ser mejor preparar sus extractos con jamaicas del tipo Sud&aacute;n en mezcla con extracto de alguna de las jamaicas de c&aacute;lices claros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dado que las tres variables fisicoqu&iacute;micas consideradas en el <a href="#c2">Cuadro 2</a> son modificadas por la forma de preparaci&oacute;n de los extractos, en cuanto a la cantidad de c&aacute;lices y el volumen de agua, la comparaci&oacute;n de los resultados obtenidos con los de otros trabajos publicados no es posible. Sin embargo, existen coincidencias en cuanto al pH &aacute;cido y los valores de acidez elevados.</font></p> 	         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12c2.jpg"></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Antocianinas totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de antocianinas en los extractos de las muestras analizadas fue contrastante entre las variedades de c&aacute;lices claros (Colima 3, Colima 5, Colima 7 y Coneja), oscuros (Colima 6, Sud&aacute;n y China) y blancos (Alma Blanca). En las de c&aacute;lices oscuros el contenido fue entre cinco y siete veces m&aacute;s alto que en las de c&aacute;lices claros. Dentro de las variedades de c&aacute;lices oscuros, Sud&aacute;n sobresali&oacute; con un contenido de 1,488.0 mg, seguida por Colima 6 con 1,250.7 mg y finalmente China con 746.2 mg de cianidina 3&#150;glucosido&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> de c&aacute;lices secos. La variedad Alma Blanca, de c&aacute;lices blancos y carentes de color rojo, pr&aacute;cticamente no tiene antocianinas (<a href="#f3">Figura 3</a>).</font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12f3.jpg"></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Christian y Jackson (2009) encontraron tendencias similares a los del presente trabajo al evaluar el contenido de antocianinas en variedades de c&aacute;lices de los tres grupos formados con base en la intensidad del color visual, aunque sus contenidos de antocianinas fueron m&aacute;s bajos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las antocianinas le confieren a los extractos de jamaica su color rojo caracter&iacute;stico y la propiedad de ser una fuente natural de antioxidantes. Estos compuestos contribuyen con el 51 % de la actividad antioxidante total reportada para jamaica (Tsai <i>et al.,</i> 2002), por lo que su consumo en forma de "aguas frescas" a partir de los extractos es altamente recomendable si se considera la relaci&oacute;n que existe entre una dieta rica en antioxidantes y la menor incidencia de enfermedades cr&oacute;nico&#150;degenerativas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es necesario se&ntilde;alar que la variedad Sud&aacute;n del presente trabajo no es la misma que mencionan Galicia&#150;Flores <i>et al.</i> (2008), pues la usada en este estudio fue cultivada en la zona costa de Oaxaca, junto con las dem&aacute;s variedades, en tanto que a la que hacen referencia los autores proven&iacute;a de importaci&oacute;n, y se sabe que el ambiente de producci&oacute;n es determinante en la composici&oacute;n fitoqu&iacute;mica de los c&aacute;lices de jamaica (Juliani <i>et al.,</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;cido asc&oacute;rbico (vitamina C)</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se present&oacute; elevada variaci&oacute;n en el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico (vitamina C) entre las variedades de jamaica analizadas. Alma Blanca fue la de mayor contenido con 90.2 mg&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> de materia seca, mientras que el menor se observ&oacute; en la variedad Colima 6, con 33.2 mg&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> de materia seca (<a href="#f4">Figura 4)</a>. Los resultados son comparables con los informados por otros autores en cuanto a los valores obtenidos y la mayor presencia de esta vitamina en variedades de c&aacute;lices blancos (Babalola <i>et al.,</i> 2001).</font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12f4.jpg"></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La vitamina C es sensible a la temperatura, por lo que la cocci&oacute;n de los c&aacute;lices a 92 &deg;C por 15 min provoc&oacute; una reducci&oacute;n del contenido de vitamina C desde 27.2 % para Colima 6, hasta 72.4 % en Colima 5 (<a href="#f4">Figura 4</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tratamiento t&eacute;rmico empleado para preparar los extractos fue el mismo para todas las muestras. Sin embargo, el porcentaje de p&eacute;rdida de vitamina C fue diferente. La termosensibilidad de este compuesto se encuentra bien documentada (Munyaka <i>et al.,</i> 2010), pero la magnitud de la p&eacute;rdida depende de factores como pH y presencia de algunos flavonoides (Mar&iacute;n <i>et al.,</i> 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variedades Alma Blanca y Colima 5 fueron las de mayor contenido de vitamina C, pero a la vez presentaron los mayores porcentajes de p&eacute;rdidas durante la preparaci&oacute;n del extracto. Estas dos muestras tienen en com&uacute;n un bajo contenido de antocianinas y de acidez, con respecto a las muestras Coneja y Colima 6, que fueron las de menores porcentajes de p&eacute;rdidas de vitamina C y sus extractos se caracterizaron por una elevada acidez, y en el caso de Colima 6, tambi&eacute;n un elevado contenido de antocianinas. Dado que un pH bajo protege la oxidaci&oacute;n del &aacute;cido asc&oacute;rbico, es posible que este factor haya contribuido a preservar una mayor cantidad en las muestras Coneja y Colima 6. Al respecto, Mar&iacute;n <i>et al.</i> (2002) se&ntilde;alan que la presencia de flavonoides como miricetina y quercetina, flavonoides presentes en extractos acuosos de <i>Hibiscus</i> protegen al &aacute;cido asc&oacute;rbico de su oxidaci&oacute;n (Rodr&iacute;guez&#150;Medina <i>et al.,</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correlaci&oacute;n entre color de c&aacute;lices y variables fisicoqu&iacute;micas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las variables analizadas en el extracto acuoso de los c&aacute;lices de jamaica, el contenido de antocianinas totales (ANT) fue la que mayor n&uacute;mero de correlaciones significativas present&oacute; con los diferentes par&aacute;metros de color en c&aacute;lices enteros, molidos y en el extracto (<a href="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Esta variable estuvo altamente correlacionada de forma negativa con la luminosidad (L*) en los c&aacute;lices y el extracto.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos de ANT y L* en c&aacute;lices molidos transformados a logaritmo natural presentaron un alto coeficiente de determinaci&oacute;n (R<sup>2</sup> = 0.91) al ser ajustados a un modelo lineal, por lo que L* podr&iacute;a ser un estimador del contenido de antocianinas (<a href="#f5">Figura 5</a>). Determinar el valor de L* en c&aacute;lices molidos resulta m&aacute;s simple y econ&oacute;mico que cuantificar el contenido de antocianinas, por lo que esta variable puede ser &uacute;til en programas de mejoramiento gen&eacute;tico.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n3/a12f5.jpg"></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La correlaci&oacute;n positiva y altamente significativa entre AT y el valor de croma en c&aacute;lices enteros significa que aquellas muestras con menor &iacute;ndice de saturaci&oacute;n de color, posiblemente de c&aacute;lices claros, tendr&aacute;n mayor acidez. El contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA) mostr&oacute; una elevada correlaci&oacute;n negativa con el croma de c&aacute;lices molidos, por lo que el contenido de esta vitamina ser&aacute; mayor en las variedades de c&aacute;lices blancos y claros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se observ&oacute; correlaci&oacute;n significativa de &deg;Bx y pH con los par&aacute;metros de color en c&aacute;lices y extractos atribuido a la poca variabilidad observada en estas variables en las variedades analizadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables de color luminosidad y croma permiten diferenciar las variedades de c&aacute;lices claros y oscuros, tanto en muestra entera como molida. Sin embargo, los valores obtenidos en c&aacute;lices enteros reflejan mejor el color de la muestra.</font></p>             <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color de los c&aacute;lices y de los extractos estuvo relacionado con el contenido de antocianinas y &aacute;cido asc&oacute;rbico. Las variedades de c&aacute;lices oscuros presentaron entre cinco y siete veces m&aacute;s antocianinas que las de c&aacute;lices claros. La de c&aacute;lices blancos tuvo el mayor contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De los par&aacute;metros de color, la luminosidad de los c&aacute;lices molidos result&oacute; altamente correlacionada con el contenido de antocianinas totales, por lo que podr&iacute;a usarse como un estimador de esta variable.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AN&Oacute;NIMO. 1980. Official Methods of Analysis. ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTS (AOAC). 13a Ed. St. Paul Minnesota, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675037&pid=S1027-152X201200030001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AN&Oacute;NIMO. 2000. Official Methods of Analysis. ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTS (AOAC). 17a Ed. St. Paul Minnesota, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675039&pid=S1027-152X201200030001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BABALOLA, S. O.; BABALOLA, A. O.; AWORTH, O. C. 2001. Composition attributes of the calyces of roselle <i>(Hibiscus sabdariffa</i> L.). The Journal of Food Technology in Africa 6: 133&#150;134. <a href="http://hdl.handle.net/1807/3404" target="_blank">http://hdl.handle.net/1807/3404</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675041&pid=S1027-152X201200030001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>          <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BROUILLARD, R. 1982. Chemical structure of anthocyanins, pp. 1&#150;38. <i>In:</i> Anthocyanins as food colors. P. Markakis (Ed.), New York: Academic Press. DOI: 10.1016/S0308&#150;8146(96)00222&#150;1</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675043&pid=S1027-152X201200030001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHEN, C. C.; HSU, J. D.; WANG, S. F. 2003. <i>Hibiscus sabdariffa</i> extract inhibits the development of atherosclerosis in cholesterol&#150;fed rabbits. Journal of Agricultural and Food Chemistry 51: 5472&#150;5477. DOI: 10.1021/jf030065w</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675044&pid=S1027-152X201200030001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHEN, S&#150;H.; HUANG, T&#150;C.; HO, C&#150;T.; TSAI, P&#150;J. 1998. Extraction, analysis, and study on the volatiles in roselle tea. Journal of Agricultural and Food Chemistry 46: 1101&#150;1106. DOI: 10.1021/jf970720y</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675045&pid=S1027-152X201200030001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHRISTIAN, R. K.; JACKSON, J. C. 2009. Changes in total phenolic and monomeric anthocyanin composition and antioxidant activity of three varieties of sorrel <i>(Hibiscus sabdariffa)</i> during maturity. Journal of Food Composition and Analysis 22: 663&#150;667. DOI: 10.1016/j.jfca.2009.05.007</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675046&pid=S1027-152X201200030001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FASOYIRO, S. B.; ASHAYE, O. A.; ADEOLA, A.; SAMUEL, F. O. 2005. Chemical and storability of fruit&#150;flavoured <i>(Hibiscus sabdariffa)</i> drinks. World Journal of Agricultural Sciences 1(2): 165&#150;168. <a href="http://www.idosi.org/wjas/wjas1%282%29/11.pdf" target="_blank">http://www.idosi.org/wjas/wjas1%282%29/11.pdf</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675047&pid=S1027-152X201200030001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GALICIA&#150;FLORES, L. A.; SALINAS, M. Y.; ESPINOSA&#150;GARC&Iacute;A, B. M.; S&Aacute;NCHEZ&#150;FERIA, C. 2008. Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica y actividad antioxidante de extractos de jamaica <i>(Hibiscus sabdariffa</i> L.) nacional e importada. Revista Chapingo Serie Horticultura 14(2): 121&#150;129. <a href="http://www.chapingo.mx/revistas/revistas/articulos/doc/abe2f9c3ec926a671fddfbd99e82d1ef.pdf" target="_blank">www.chapingo.mx/revistas/revistas/articulos/doc/abe2f9c3ec926a671fddfbd99e82d1ef.pdf</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675048&pid=S1027-152X201200030001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERRERA&#150;ARELLANO, A.; FLORES&#150;ROMERO, S.; CH&Aacute;VEZ SOTO, M. A.; TORTORIELLO, J. 2004. Effectiveness and tolerability of a standardized extract from <i>Hibiscus sabdariffa</i> in patients with mild to moderate hypertension: a controlled and randomized clinical trial. Phytomedicine 11: 375&#150;382. DOI: 10.1016/j.phymed.2004.04.001</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675049&pid=S1027-152X201200030001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HIRUNPANICH, V.; UTAIPAT, A.; MORALES, N. P.; BUNYA&#150;PRAPHATSAEA, N.; SATO, H., HERUNSALEE, A.; SUTHIN&#150;SISANG, C. 2005. Antioxidant effect of aqueous extracts from dried calyx of <i>Hibiscus sabdariffa</i> Linn. (Roselle) <i>in vitro</i> using rat low&#150;density lipoprotein (LDL). Biological and Pharmaceutical Bulletin 28(3): 481&#150;484. DOI: 10.1248/bpb.28.481.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675050&pid=S1027-152X201200030001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JHA N, S. 2010. Color measurement and modeling. In: Nondestructive Evaluation of Food Quality. S N Jha (ed). Springer&#150;Verlag. Berlin, Heidelberg. pp:17&#150;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675052&pid=S1027-152X201200030001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JULIANI, H. R.; WELCH, C. R.; WU, Q.; DIOUF, B.; MALAINY, D.; SIMON, J. E. 2009. Chemistry and quality of Hibiscus <i>(Hibiscus sabdariffa)</i> for developing of natural&#150;product industry in Senegal. Journal of Food Science 74:113&#150;121. DOI: 10.1111/j.1750&#150;3841.2009.01076.x</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675054&pid=S1027-152X201200030001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MAR&Iacute;N, F. R.; FRUTOS, M. J.; P&Eacute;REZ&#150;&Aacute;LVAREZ, J. A.; MART&Iacute;NEZ&#150;S&Aacute;NCHEZ, F.; DEL R&Iacute;O, J. A. 2002. Flavonoids as nutraceuticals: Structural related antioxidant properties and their role on ascorbic acid preservation. Studies in Natural Products Chemistry 26 (Part G): 741&#150;778. DOI: 10.1016/S1572&#150;5995(02)80018&#150;7</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675055&pid=S1027-152X201200030001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MUNYAKA, W. A.; INDRAWATI, O.; LOEY, A. V.; HENDRICKX, M. 2010. Application of thermal inactivation of enzymes during vitamin C analysis to study the influence of acidification, crushing and blanching on vitamin C stability in broccoli <i>(Brassica oleracea</i> L. var. Italica). Food Chemistry 120:591&#150;598. DOI: 10.1016/j.foodchem.2009.10.029</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675056&pid=S1027-152X201200030001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McGUIRE, R. G. 1992. Reporting of objecting color measurements. HortScience 27(12): 1254&#150;1255. <a href="http://hortsci.ashspublications.org/content/27/12/1254.full.pdf+html" target="_blank">http://hortsci.ashspublications.org/content/27/12/1254.full.pdf+html</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675057&pid=S1027-152X201200030001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PRENESTI, E.; BERTO, S.; DANIELE, P. G.; TOSO, S. 2007. Antioxidant power quantification of decoction and cold infusions of <i>Hibiscus sabdariffa</i> flowers. Food Chemistry 100(2): 433&#150;438. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.09.063</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6675058&pid=S1027-152X201200030001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">RAM&Iacute;REZ&#150;RODR&Iacute;GUEZ, M. M., PLAZA, M. L., AZEREDO, A., BALABAN, M. O.; MARSHALL, M. R. 2011. Physicochemical and phytochemical properties of cold and hot water extraction from <i>Hibiscus sabdariffa.</i> Journal of Food Science 76(3): C428&#150;C435. 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