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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Selección de cepas de Bacillus spp. productoras de antiobióticos aisladas de frutos tropicales]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aim of this work was to isolate and select Bacillus strains according to their ability to produce antibiotic substances useful in the control of postharvest diseases of tropical fruits. Fifty strains were isolated from the surface of tropical fruits and from soil samples. Eight strains showed better in vitro inhibition rates versus postharvest fungi of tropical fruits. Lipopeptidic antibiotics were extracted with 1-butanol and analyzed by high-pressure liquid chromatography (HPLC) with a C18 column VARIAN®. The mobile phase was acetonitrile (0-80 % v/v). The isolated strains produced antibiotics from the family iturin A and surfactin. The strain Pla10 produced the highest concentrations of iturin A and surfactin. Iturin A fractions had fungicidal activity, but the surfactin fractions did not show any activity. However, when both fractions were applied together, a synergistic effect was obtained during the inhibition of Colletotrichum sp. from mango. The strain Pla10 was identified as Bacillus subtilis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Selecci&oacute;n de cepas de <i>Bacillus </i>spp. productoras de antiobi&oacute;ticos aisladas de frutos tropicales</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Selection of antiobiotic&#150;producing strains of<i> Bacillus </i>spp. isolated from tropical fruits</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Juan Arturo Ragazzo&#150;S&aacute;nchez<sup>1</sup>; Alejandra Robles&#150;Cabrera<sup>1</sup>; Leopoldo Lomel&iacute;&#150;Gonz&aacute;lez<sup>1</sup>; Guadalupe Luna&#150;Solano<sup>2</sup>; Montserrat Calder&oacute;n&#150;Santoyo<sup>1*</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Laboratorio Integral de Investigaci&oacute;n en Alimentos (LIIA), Instituto Tecnol&oacute;gico de Tepic. Av. Tecnol&oacute;gico 2595. Tepic, Nayarit, C.P. 63175. M&Eacute;XICO. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:montserratcalder@gmail.com">montserratcalder@gmail.com</a> <i>(*Autor para correspondencia).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2 </sup>Instituto Tecnol&oacute;gico de Orizaba. Av. Oriente 9,852. Orizaba, Veracruz, C. P. 94300. M&Eacute;XICO.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 10 de octubre, 2010.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: 18 de febrero, 2011.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo consisti&oacute; en seleccionar cepas de <i>Bacillus </i>con base en su capacidad de producci&oacute;n de antibi&oacute;ticos, para el control de fitopat&oacute;genos postcosecha de frutos tropicales. Se aislaron 50 cepas de frutos tropicales y de suelo. Ocho cepas presentaron las mejores caracter&iacute;sticas de inhibici&oacute;n <i>in vitro versus </i>los fitopat&oacute;genos. Se extrajeron los antibi&oacute;ticos lipopept&iacute;dicos con 1&#150;butanol, analiz&aacute;ndose en cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta presi&oacute;n (HPLC) en una columna C18 VARIAN&reg; con un gradiente de acetonitrilo (0&#150;80 % v/v). Las cepas aisladas produjeron antibi&oacute;ticos de las familias iturina A y surfactina. La cepa Pla10 obtuvo la mayor concentraci&oacute;n tanto de iturina A como de surfactina. Las fracciones de iturina A presentaron una actividad fungicida, mientras las fracciones de surfactina no presentaron actividad alguna. Sin embargo, cuando ambas fracciones fueron aplicadas en conjunto, se observ&oacute; un efecto sin&eacute;rgico en la inhibici&oacute;n de <i>Colletotrichum </i>sp. de mango. La cepa Pla10 fue identificada como <i>Bacillus subtilis.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>Control biol&oacute;gico, iturina, surfactina, <i>Colletotrichum, Fusarium, </i>enfermedades postcosecha.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The aim of this work was to isolate and select <i>Bacillus </i>strains according to their ability to produce antibiotic substances useful in the control of postharvest diseases of tropical fruits. Fifty strains were isolated from the surface of tropical fruits and from soil samples. Eight strains showed better <i>in vitro </i>inhibition rates <i>versus </i>postharvest fungi of tropical fruits. Lipopeptidic antibiotics were extracted with 1&#150;butanol and analyzed by high&#150;pressure liquid chromatography (HPLC) with a C18 column VARIAN&reg;. The mobile phase was acetonitrile (0&#150;80 % v/v). The isolated strains produced antibiotics from the family iturin A and surfactin. The strain Pla10 produced the highest concentrations of iturin A and surfactin. Iturin A fractions had fungicidal activity, but the surfactin fractions did not show any activity. However, when both fractions were applied together, a synergistic effect was obtained during the inhibition of <i>Colletotrichum </i>sp. from mango. The strain Pla10 was identified as <i>Bacillus subtilis.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>Biological control, iturin, surfactin, <i>Colletotrichum, Fusarium, </i>postharvest diseases.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los factores m&aacute;s importantes que reducen la vida de anaquel de los frutos son las infecciones f&uacute;ngicas, la senescencia y la transpiraci&oacute;n. Adicionalmente, algunos factores como los da&ntilde;os mec&aacute;nicos, el estado fisiol&oacute;gico y las condiciones inadecuadas de almacenamiento aceleran este proceso (Janisiewicz y Korsten, 2002). Las frutas de origen tropical y subtropical, t&iacute;picamente son atacadas por el hongo <i>Colletotrichum gloeosporioides, </i>que causa antracnosis. Este pat&oacute;geno penetra en la fruta mientras est&aacute; en el huerto, pero los s&iacute;ntomas de la antracnosis en la epidermis se observan s&oacute;lo en la fruta madura despu&eacute;s de la cosecha (Barkai&#150;Gol&aacute;n, 2001). <i>C. gloeosporioides, </i>es el principal hongo pat&oacute;geno responsable de importantes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en frutales en zonas tanto de climas templados como subtropicales y tropicales. Los s&iacute;ntomas asociados con la enfermedad son manchas hundidas, redondas y acuosas en los frutos maduros. Sobre estas manchas pueden observarse masas de esporas de color rosado naranja en un patr&oacute;n de anillos (Barkai&#150;Gol&aacute;n, 2001). Recientemente, el hongo <i>Colletotrichum </i>en sus especies <i>C. gloeosporioides </i>y <i>C. musae, </i>ha provocado serios problemas entre los productores mexicanos de frutos tropicales como mango, papaya y pl&aacute;tano, principalmente debido a las condiciones de alta humedad relativa que prevalecen en las regiones de producci&oacute;n y a la resistencia que han adquirido estas especies a los fungicidas de s&iacute;ntesis, por lo que es necesario aplicar dosis cada vez m&aacute;s elevadas y con mayor frecuencia, lo que ha llevado a la persistencia de residuos t&oacute;xicos en los frutos, da&ntilde;os a la salud de consumidores y trabajadores en campo y contaminaci&oacute;n del medio ambiente (Ben&iacute;tez&#150;Camilo <i>et al., </i>2003; Sharma <i>et al., </i>2009). A nivel mundial se ha visto la importancia de reducir el uso de fungicidas de s&iacute;ntesis, de tal manera que es preciso desarrollar m&eacute;todos de control alternativos que sean compatibles con el medio ambiente y salud humana (Mari <i>et al., </i>2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El control biol&oacute;gico o el uso de microorganismos antagonistas como las bacterias, hongos y levaduras ha surgido como una alternativa viable para el control de enfermedades en pre y postcosecha (Sharma <i>et al., </i>2009). El potencial de <i>Bacillus </i>spp. para sintetizar metabolitos con actividad antif&uacute;ngica y antibacteriana se ha utilizado en control biol&oacute;gico de fitopat&oacute;genos. La formaci&oacute;n de endosporas les otorga una alta viabilidad comparada con c&eacute;lulas vegetativas, ya que son resistentes a la desecaci&oacute;n y al calor, pudi&eacute;ndose formular f&aacute;cilmente en productos estables (Wulff <i>et al., </i>2002). De los p&eacute;ptidos antif&uacute;ngicos producidos por <i>Bacillus </i>podemos citar a micobacilinas, iturinas, bacilomicinas, surfactinas, micosubtilinas, fungistatinas y subporinas. Estos p&eacute;ptidos generalmente tienen un PM &lt; 2000 Da. Particularmente, <i>Bacillus subtilis </i>es una especie que produce diferentes metabolitos secundarios en la forma de lipop&eacute;ptidos con buena actividad antif&uacute;ngica, antibacteriana y frente a algunas levaduras, como consecuencia son de alto valor biotecnol&oacute;gico y farmac&eacute;utico (Volpon <i>et al., </i>2000). La aparici&oacute;n de resistencia contra p&eacute;ptidos antimicrobianos es menos probable que la resistencia a antibi&oacute;ticos convencionales (Oard <i>et al., </i>2004). La b&uacute;squeda de nuevos agentes de biocontrol con actividad frente a pat&oacute;genos de frutos y con caracter&iacute;sticas aptas para su aplicaci&oacute;n en pre y postcosecha, es una pr&aacute;ctica vigente, por lo que en el presente estudio se propuso la selecci&oacute;n de cepas de <i>Bacillus </i>con capacidad inhibitoria para fitopat&oacute;genos de pl&aacute;tano <i>(Musa paradisiaca </i>L.), mango <i>(Mangifera indica </i>L.) cv Ataulfo y papaya <i>(Carica papaya </i>L.) var. Maradol del estado de Nayarit, M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aislamiento de cepas de <i>Bacillus </i>se realiz&oacute; de la superficie de frutas tropicales y de suelo en las huertas de producci&oacute;n. Se seleccionaron muestras de frutas tropicales (10 papayas var. Maradol, 10 mangos cv Ataulfo, 10 melones cantaloup y 10 pl&aacute;tanos). Todas estas frutas fueron colectadas en huertas; de dos huertas por especie y cinco frutos por huerta del municipio de San Blas, Nayarit en el mes de julio 2009. Los frutos fueron trasladados al Laboratorio Integral de Investigaci&oacute;n en Alimentos (LIIA) del Instituto Tecnol&oacute;gico de Tepic, en donde se realiz&oacute; la parte experimental. Los frutos se colocaron enteros en bolsas de poliestireno con cierre y agua peptonada est&eacute;ril, cuyo volumen fue dos veces el peso del fruto. Los frutos se agitaron durante 2 min. Las muestras de suelo se colectaron de cinco huertas de frutos tropicales (dos muestras por huerta), para ello se tomaron 10 g de suelo en un radio de 3 cm de las ra&iacute;ces de los &aacute;rboles y a una profundidad de 10 cm. Las muestras se colocaron en 100 ml de agua peptonada, agit&aacute;ndose vigorosamente en vortex. Del agua peptonada utilizada para muestras de fruto y de suelo, se tomaron al&iacute;cuotas de 5 ml que se incubaron en ba&ntilde;o mar&iacute;a a 80 &deg;C con agitaci&oacute;n a 100 rpm por 30 min para destruir las c&eacute;lulas vegetativas. Se tomaron al&iacute;cuotas de 0.1 ml que se inocularon en caldo nutritivo a 37 &deg;C durante 24 h, posteriormente se sembr&oacute; en agar nutritivo, incub&aacute;ndose a 37 &deg;C durante 24 h (Wichitra <i>et al., </i>2007). Las colonias aisladas se resembraron en agar nutritivo hasta obtener cultivos puros y evaluar las caracter&iacute;sticas t&iacute;picas de <i>Bacillus </i>seg&uacute;n Koneman <i>et al. </i>(1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tinci&oacute;n de esporas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de Schaeffer&#150;Fulton para evidenciar la presencia de endosporas en las cepas aisladas. La muestra fue fijada al calor, se agreg&oacute; una soluci&oacute;n de verde de Malaquita al 5 %, la muestra se calent&oacute; por 3 min al mechero Bunsen, se lav&oacute; con agua corriente y se aplic&oacute; el colorante de contraste safranina al 0.5 % durante 1 min. Se lav&oacute; con agua corriente y se observ&oacute; al microscopio &oacute;ptico con objetivo 100X (Bradshaw, 1976).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cultivo de las cepas de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas de <i>Bacillus </i>se inocularon en tubos de ensayo con 10 ml de caldo Luria incub&aacute;ndose a 37 &deg;C por 48 h (Collins y Jacobsen, 2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de inhibici&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cajas Petri con medio de cultivo agar papa dextrosa (PDA) se realizaron cinco horadaciones de 5 mm, una en el centro de la caja, y las restantes en las orillas en disposici&oacute;n equidistante. En el centro se coloc&oacute; micelio del hongo fitopat&oacute;geno con siete d&iacute;as de crecimiento en PDA a 28 &deg;C (<i>Colletotrichum gloeosporioides </i>aislado de papaya, <i>Colletotrichum </i>sp. aislado de pl&aacute;tano, <i>Colletotrichum </i>sp. aislado de mango, <i>Fusarium sp. </i>aislado de pl&aacute;tano). En cada horadaci&oacute;n de las orillas de las caja se coloc&oacute; 0.1 ml del medio fermentado por las especies de <i>Bacillus </i>(10<sup>8</sup> c&eacute;lulas&#150;litro<sup>&#150;1</sup>). Se incubaron por siete d&iacute;as a 30 &deg;C y se midi&oacute; el di&aacute;metro en mm del halo de inhibici&oacute;n del antagonista (Yu <i>et al., </i>2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Producci&oacute;n y purificaci&oacute;n de las sustancias antibi&oacute;ticas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un medio de producci&oacute;n con la siguiente composici&oacute;n por litro: 10 g de triptona, 5 g de extracto de levadura, 0.5 g de NaCl, pH ajustado a 7 en tubos con 10 ml. Se incub&oacute; en un ba&ntilde;o mar&iacute;a a 30 &deg;C con agitaci&oacute;n a 120 rpm durante 18 a 22 h (Mendo <i>et al., </i>2004). El medio fermentado se centrifug&oacute; a 10,000 g durante 10 min y se filtr&oacute; en membrana de nitrocelulosa con tama&ntilde;o de poro de 0.2 &#956;m (Mackeen <i>et al., </i>1986). El sobrenadante clarificado se extrajo dos veces con 1/10 del volumen del caldo de 1&#150;butanol en cada extracci&oacute;n. La capa de 1&#150;butanol fue removida y congelada a &#150;70 &deg;C en al&iacute;cuotas de 0.5 ml. La fracci&oacute;n butan&oacute;lica fue liofilizada por 4 h. Las muestras se re&#150;hidrataron con una soluci&oacute;n de fosfatos, pH 7.0 0.1 M, centrifug&aacute;ndose a 10,000 g por 10 min. La pastilla formada se solubiliz&oacute; en una soluci&oacute;n de acetonitrilo al 80 % (v/v) y &aacute;cido trifluorac&eacute;tico al 0.1 % (v/v). La soluci&oacute;n fue analizada en una columna C18 VARIAN<sup>&reg;</sup> en HPLC Prostar&#150;210 VARIAN<sup>&reg;</sup>. La eluci&oacute;n se obtuvo con un gradiente de acetonitrilo (0&#150;80 % v/v) a 0.8 ml&#150;min<sup>&#150;1</sup> durante una hora. Se utiliz&oacute; un detector UV&#150;VIS VARIAN&reg; 325 a 220 nm. Al final del detector se coloc&oacute; un colector de fracciones VARIAN<sup>&reg;</sup> para recuperar las distintas fracciones de lipop&eacute;ptidos obtenidas. Las fracciones lipopept&iacute;dicas se identificaron y cuantificaron usando est&aacute;ndares externos (Mendo <i>et al., </i>2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la efectividad <i>in vitro </i>de las fracciones de lipop&eacute;ptidos frente a fitopat&oacute;genos de frutos tropicales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cajas con PDA se realizaron cinco horadaciones de 5 mm, una en el centro de la caja y las restantes en las orillas con disposici&oacute;n equidistante. En el centro se coloc&oacute; micelio del hongo fitopat&oacute;geno con siete d&iacute;as de crecimiento. Cada fracci&oacute;n colectada de las sustancias antibi&oacute;ticas, se coloc&oacute; en los pocillos de la orilla de la caja. Se incub&oacute; a 25 &deg;C durante siete d&iacute;as y se evalu&oacute; el di&aacute;metro de inhibici&oacute;n de las fracciones de las sustancias antibi&oacute;ticas (Yu <i>et al., </i>2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la identificaci&oacute;n de las especies de <i>Bacillus </i>se utiliz&oacute; el sistema API 50 CH. Este m&eacute;todo est&aacute; basado en la determinaci&oacute;n del perfil bioqu&iacute;mico de la cepa, mediante la fermentaci&oacute;n de 49 carbohidratos y derivados (heterosidos, polialcoholes, &aacute;cidos ur&oacute;nicos). La cepa a evaluar se resuspendi&oacute; en el medio API 50CHB/E hasta alcanzar una turbidez de 2 en la escala de McFarland. Las galer&iacute;as conteniendo los carbohidratos se inocularon con esta suspensi&oacute;n hasta llenar completamente las c&uacute;pulas y se incubaron a 30 &deg;C haciendo lecturas a las 24 y 48 h. Durante el periodo de incubaci&oacute;n, la fermentaci&oacute;n se tradujo por un cambio de coloraci&oacute;n en la c&uacute;pula, debida a la producci&oacute;n de &aacute;cido en anaerobiosis. El perfil bioqu&iacute;mico obtenido se compar&oacute; con la base de datos API&reg;/ID32 mediante el programa apiweb<sup>TM</sup> (Logan y Berkeley, 1984).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para seleccionar las cepas con mayor potencial como agentes de biocontrol se establecieron las diferencias entre tratamientos mediante una prueba de Tukey con una <i>P</i><u>&lt;</u>0.05, con el paquete estad&iacute;stico SAS System para Windows Versi&oacute;n 9.0.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de cepas de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo al procedimiento de aislamiento, se obtuvieron 50 cepas. Durante la tinci&oacute;n diferencial de Schaeffer&#150;Fulton y observaci&oacute;n al microscopio, s&oacute;lo 23 de las 50 cepas presentaron las caracter&iacute;sticas t&iacute;picas del g&eacute;nero <i>Bacillus, </i>es decir, la morfolog&iacute;a de bacilos o bastoncillos alargados (te&ntilde;idos en rojo) y la presencia de endosporas (te&ntilde;idas en verde) seg&uacute;n Bradshaw (1976). Cabe se&ntilde;alar que la esporulaci&oacute;n se present&oacute; entre las 72 y 96 h para las distintas cepas, evidenciando la presencia de diferentes especies.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de inhibici&oacute;n de los hongos de frutas tropicales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La capacidad inhibitoria de las cepas aisladas de <i>Bacillus, </i>se prob&oacute; frente a diversos pat&oacute;genos de postcosecha de frutas tropicales, obteni&eacute;ndose halos de inhibici&oacute;n de hasta 26 &plusmn; 0.3 mm (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Estos resultados son alentadores considerando resultados similares por Jiang <i>et al. </i>(2001) quienes utilizaron a <i>Bacillus subtilis </i>para controlar a <i>Peronophytora litchi </i>en el control postcosecha de litchi, reportando que con una concentraci&oacute;n de 10<sup>8 </sup>c&eacute;lulas&#150;L<sup>&#150;1</sup> de la bacteria antagonista se obtuvieron 28.9 mm de halo de inhibici&oacute;n. Durante las pruebas de inhibici&oacute;n se observaron dos patrones de inhibici&oacute;n, en el primero, el crecimiento de los fitopat&oacute;genos estuvo delimitado por el crecimiento de las cepas de <i>Bacillus. </i>Esto probablemente debido a una baja producci&oacute;n de lipop&eacute;ptidos y a la manifestaci&oacute;n de un mecanismo de competencia por espacio, como ha sido descrito por Butt <i>et al. </i>(1999). El segundo patr&oacute;n de inhibici&oacute;n estuvo caracterizado por la formaci&oacute;n de un halo de inhibici&oacute;n, manifestando la posible producci&oacute;n de compuestos fungit&oacute;xicos y la difusi&oacute;n de los mismos en el agar, como ha sido descrito por Cavaglieri <i>et al. </i>(2004) y Joshi <i>et al. </i>(2008). La producci&oacute;n de compuestos fungicidas ya ha sido ampliamente descrita para cepas de <i>Bacillus, </i>siendo los antibi&oacute;ticos de naturaleza lipopept&iacute;dica como la iturina y la surfactina los m&aacute;s estudiados en el biocontrol (Volpon <i>et al., </i>2000; Hiradate <i>et al., </i>2002; Tour&eacute; <i>et al., </i>2004). Sin embargo, Janisiewicz y Korsten (2002) mencionan que por lo general m&aacute;s de un mecanismo puede estar implicado en el biocontrol y en ning&uacute;n caso se ha observado que exista un solo mecanismo de acci&oacute;n involucrado en el control del pat&oacute;geno, esta multiplicidad de mecanismos de acci&oacute;n es favorable, si consideramos que para el fitopat&oacute;geno ser&aacute; m&aacute;s complicado generar resistencia ante un agente de biocontrol que presente varios mecanismos de acci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para seleccionar las mejores cepas inhibidoras se tomaron aqu&eacute;llas que hab&iacute;an presentado un patr&oacute;n de inhibici&oacute;n por antibiosis. Adicionalmente se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de diferencia de medias (Tukey <i>P</i><u>&lt;</u>0.05) tomando en cuenta la inhibici&oacute;n global de todos los fitopat&oacute;genos por cada cepa, de esta manera se seleccionaron a las ocho cepas que presentaron m&aacute;s eficiencia durante las pruebas de inhibici&oacute;n <i>in vitro </i>en agar PDA (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). El an&aacute;lisis global se realiz&oacute; sobre la base de que una formulaci&oacute;n con propiedades antif&uacute;ngicas a base de agentes de biocontrol tiene m&aacute;s probabilidades de &eacute;xito en el mercado si &eacute;sta es adecuada para inhibir una gama amplia de fitopat&oacute;genos en diferentes frutales.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2c2.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n de las sustancias antibi&oacute;ticas producidas por las cepas de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis por cromatograf&iacute;a de l&iacute;quidos de los extractos de antibi&oacute;tico de las ocho cepas de <i>Bacillus, </i>mostr&oacute; la presencia de los antibi&oacute;ticos iturina A y surfactina. Estos antibi&oacute;ticos generalmente se presentan como una serie de compuestos lipopept&iacute;dicos, Iturina A est&aacute; formada por un grupo de compuestos lipopept&iacute;dicos con cadenas de 13&#150;15 carbonos, unidos a un p&#150;amino&aacute;cido y diferenciados por la secuencia y orden de amino&aacute;cidos. As&iacute; mismo, la surfactina se presenta como un grupo de compuestos de lipop&eacute;ptidos de 13&#150;15 carbonos, unidos a una lactona, y diferenciados por la sustituci&oacute;n de un &aacute;cido graso (Noah <i>et al., </i>2002). En este estudio la iturina A present&oacute; cuatro compuestos antibi&oacute;ticos con tiempos de retenci&oacute;n de 27.66, 29.26, 30.02 y 31.8. La surfactina estuvo compuesta por cinco compuestos antibi&oacute;ticos con tiempos de retenci&oacute;n de 47.6, 50.52, 51.94, 53.63 y 54.82 (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Chen <i>et al. </i>(2008) encontr&oacute; en un extracto de <i>Bacillus subtilis </i>JA, antibi&oacute;ticos atribuidos a tres familias de lipop&eacute;ptidos: surfactina, iturina y fengicina. Iturina y fengicina tienen fuertes propiedades de biocontrol ya que pueden inhibir un rango amplio de pat&oacute;genos de plantas. En el caso de surfactina, &eacute;sta no es fungit&oacute;xica por s&iacute; misma; sin embargo, tiene un efecto sinergista con la actividad antif&uacute;ngica de iturina A. Estos mismos autores refieren que las cepas de <i>Bacillus subtilis </i>pueden producir m&aacute;s de 24 compuestos antif&uacute;ngicos con una gran variedad de estructuras, incluyendo compuestos vol&aacute;tiles que inhiben el crecimiento y la germinaci&oacute;n de esporas de pat&oacute;genos de frutas y verduras. De esta forma se podr&iacute;a intuir que la producci&oacute;n de antibi&oacute;ticos de las familias de iturina A y surfactina por las cepas de este estudio, obedece a la necesidad de establecer un efecto sinergista entre ambos antibi&oacute;ticos para lograr una efectiva acci&oacute;n fungicida. Lo anterior descrito es confirmado por Heins <i>et al. </i>(2000), quienes establecieron que las surfactinas poseen una actividad surfactante excepcional, provocando as&iacute; da&ntilde;os subletales a nivel de la membrana celular de los microorganismos sensibles, permitiendo as&iacute; un acceso m&aacute;s f&aacute;cil de las iturinas. Por su parte, las iturinas interact&uacute;an con las membranas f&uacute;ngicas, creando canales de transmembrana que permiten la liberaci&oacute;n de iones vitales, evitando el crecimiento de los hongos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la efectividad <i>in vitro </i>de las fracciones de lipop&eacute;ptidos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dado que la cepa Pla10 fue la que present&oacute; mayor concentraci&oacute;n en la producci&oacute;n de iturina A y surfactina, se utiliz&oacute; para comprobar el efecto sinergista de las fracciones de estos antibi&oacute;ticos. Se colectaron cuatro fracciones para iturina A y cinco fracciones para surfactina. Las pruebas de inhibici&oacute;n <i>in vitro </i>en agar PDA se realizaron frente al hongo <i>Colletotrichum </i>sp. aislado de mango. Los resultados mostraron una cierta inhibici&oacute;n de las fracciones de iturina A, presentando halos de inhibici&oacute;n desde 12 hasta 17 mm. Las fracciones colectadas de surfactina no presentaron ninguna actividad frente a <i>Colletotrichum </i>sp. aislado de mango. Sin embargo, cuando se mezclaron todas las fracciones de iturina A y de surfactina, el halo de inhibici&oacute;n alcanz&oacute; un valor de 23 mm, evidenci&aacute;ndose de esta manera el efecto sinergista entre ambos lipop&eacute;ptidos (<a href="#c3">Cuadro 3</a>), en concordancia con lo establecido por Heins <i>et al. </i>(2000).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estimaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de lipop&eacute;ptidos producidos por las cepas de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La estimaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de iturina A y surfactina producidos por la cepas de <i>Bacillus </i>se realiz&oacute; mediante la sumatoria de las &aacute;reas de las fracciones de los est&aacute;ndares externos. La cepa Pla10 present&oacute; las concentraciones m&aacute;s altas tanto de iturina A como de surfactina (<a href="#c4">Cuadro 4</a>), coincidiendo esto con los resultados de las pruebas de inhibici&oacute;n <i>in vitro, </i>ya que esta cepa produjo los halos de inhibici&oacute;n m&aacute;s grandes (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>, <a href="#c2">2</a>). La cepa Me8 aun cuando present&oacute; una concentraci&oacute;n m&iacute;nima de iturina A produjo buenos niveles de inhibici&oacute;n frente a los pat&oacute;genos postcosecha de los frutos tropicales (<a href="#c2">Cuadro 2</a>), debido posiblemente a la presencia de una cantidad considerable de surfactina (<a href="#c4">Cuadro 4</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2c4.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n de las cepas de <i>Bacillus </i>spp.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo a las pruebas realizadas mediante las galer&iacute;as de identificaci&oacute;n r&aacute;pida para <i>Bacillus </i>(API 50CH), se identificaron las cepas aisladas (<a href="#c5">Cuadro 5</a>), mostrando que las especies encontradas no son pat&oacute;genas.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17nspe1/a2c5.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas aisladas y caracterizadas en este estudio muestran un potencial como agentes de biocontrol en frutos tropicales, dada su producci&oacute;n de antibi&oacute;ticos de hasta 316 mg&#150;L<sup>&#150;1</sup> para iturina A y de 1125 mg&#150;L<sup>&#150;1</sup> para surfactina, obtenidos para la cepa Pla10 y los niveles de inhibici&oacute;n globales obtenidos cercanos a 20 mm para la misma cepa, <i>Bacillus subtilis </i>Pla10 produjo cuatro fracciones de iturina A y cinco de surfactina, cuya evaluaci&oacute;n del poder de inhibici&oacute;n revel&oacute; que s&oacute;lo las fracciones de iturina A poseen capacidad de inhibici&oacute;n por s&iacute; mismas. Las fracciones de surfactina no presentaron actividad antif&uacute;ngica, sin embargo, mostraron un efecto sin&eacute;rgico al combinar su acci&oacute;n con las fracciones de iturina A. La informaci&oacute;n recabada permitir&aacute; dise&ntilde;ar un proceso tecnol&oacute;gico, optimizando las condiciones de aplicaci&oacute;n de estas especies de <i>Bacillus </i>en frutos tropicales en postcosecha.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece al CONACYT por la beca otorgada para estudios de Maestr&iacute;a en Ciencias a A. Robles&#150;Cabrera, as&iacute; como a SEP&#150;CONACYT por el financiamiento al proyecto Clave 26075.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BARKAI&#150;GOL&Aacute;N, R. 2001. Postharvest Diseases of Fruits and Vegetables. Development and Control. Elsevier Academy Press. New York, USA. pp 147&#150;273.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700517&pid=S1027-152X201100040000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BEN&Iacute;TEZ&#150;CAMILO, F. A.; HUERTA&#150;PALACIOS, G.; HOLGU&Iacute;N&#150;MELENDEZ, F.; TOLEDO&#150;ARREOLA, J. 2003. Efecto de <i>Colletotrichum gloeosporioides </i>(Penz.) Penz. y Sacc. en la ca&iacute;da de frutos de mango <i>(Mangifera indica </i>L.) cv. Ataulfo en el Soconusco, Chiapas, Mexico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 21(2): 223&#150;227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700519&pid=S1027-152X201100040000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BRADSHAW, L. J. 1976. Microbiolog&iacute;a de Laboratorio. Traducido al espa&ntilde;ol por GONZALO&#150;PE&Ntilde;A. Ed.. El Manual Moderno. D.F. M&eacute;xico. pp 33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700521&pid=S1027-152X201100040000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BUTT, T. M.; HARRIS, J. G.; POWELL, K. A. 1999. Microbial biopesticides: The European Scene, pp. 23&#150;44. <i>In: </i>Biopesticides use and delivery. HILL, F. R.; MENN, J. J. (eds.). Humana Press. New Jersey, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700523&pid=S1027-152X201100040000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CAVAGLIERI, L. R.; PASSONE, A.; ETCHEVERRY, M. G. 2004. Correlation between screening procedures to select root endophytes for biological control of <i>Fusarium verticillioides </i>in <i>Zea mays </i>L. Biological Control 31: 259&#150;267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700525&pid=S1027-152X201100040000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHEN, H.; XIAO, X.; WANG, J.; WU, L.; ZHENG, Z.; YU, Z. 2008. Antagonistic effects of volatiles generated by <i>Bacillus subtilis </i>on spore germination and hyphal growth of the plant pathogen, <i>Botrytis cinerea. </i>Biotechnology Letters 30(5): 919&#150;923.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700527&pid=S1027-152X201100040000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">COLLINS, D. P.; JACOBSEN B. J. 2003. Optimizing a <i>Bacillus subtilis </i>isolate for biological control of sugar beet cercospora leaf spot. Biological Control 26(2): 153&#150;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700529&pid=S1027-152X201100040000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HEINS, D.; MANKER, D.; JIMENEZ, R. 2000. Nueva cepa de <i>Bacillus </i>destinada a luchar contra las enfermedades de las plantas y del gusano de las ra&iacute;ces del ma&iacute;z. Patente espa&ntilde;ola No. 2268774.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700531&pid=S1027-152X201100040000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HIRADATE, S.; YOSHIDA, S.; SUGIE, H.; YADA, H.; FUJII, Y. 2002. Mulberry anthracnose antagonists (iturins) produced by <i>Bacillus amyloliquefaciens </i>RC&#150;2. Phytochemistry 61: 693&#150;698.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700533&pid=S1027-152X201100040000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JANISIEWICZ, W. J.; KORSTEN, L. 2002. Biological control of post&#150;harvest diseases of fruit. Annual Review of Phytopathology 40: 411&#150;441</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700535&pid=S1027-152X201100040000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JIANG, Y. M.; ZHU, X. R.; LI, Y. B. 2001. Postharvest control of litchi fruit rot by <i>Bacillus subtilis. </i>Lebensmittel&#150;Wissenschaft und &#150;Technologie 34(7): 430&#150;436.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700536&pid=S1027-152X201100040000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JOSHI, S.; BHARUCHA, C.; DESAI, A. J. 2008. Production of biosurfactant and antifungal compound by fermented food isolate <i>Bacillus subtilis </i>20B. Bioresource Technology 99: 4603&#150;4608.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700538&pid=S1027-152X201100040000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KONEMAN, E. W.; ALLEN, S. D.; JANDA, W. M.; SCHRECKENBERGER, P. C.; WINN, W. C. JR. 1997. Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. Lippincott Williams &amp; Wilkins. Philadelphia, USA. 1535 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700540&pid=S1027-152X201100040000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LOGAN, N. A.; BERKELEY, R. C. W. 1984. Identification of <i>Bacillus </i>strains using the API System. Journal of General Microbiology 130: 1871&#150;1882.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700542&pid=S1027-152X201100040000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MCKEEN, C. D.; REILLY, C. C.; PUSEY, P. L. 1986. Production of partial characterization of antifungal substances antagonistic to <i>Monilia fructicola </i>from <i>Bacillus subtilis. </i>Phytopathology 76: 136&#150;139.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700544&pid=S1027-152X201100040000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MARI, M.; NERI, F.; BERTOLINI, P. 2007. Novel approaches to prevent and control postharvest diseases of fruit. Stewart Postharvest Review 3(6): 1&#150;7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700546&pid=S1027-152X201100040000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MENDO, S.; NUNO, A. F.; SARMENTO, A. C.; AMADO, F.; MOIR, A. J. G. 2004. Purification and characterization of a new peptide antibiotic produced by a thermotolerant <i>Bacillus licheniformis </i>strain. Biotechnology letters 26(2): 115&#150;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700548&pid=S1027-152X201100040000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NOAH, K. S.; FOX, S. L.; BRUHN, D. F.; THOMPSON, D. N.; BALA, G. A. 2002. Development of continuous surfactin production from potato process effluent by <i>Bacillus subtilis </i>in an airlift reactor. 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Characterization of antimicrobial peptides against a US strain of the rice pathogen <i>Rhizoctonia solani. </i>Journal of Applied Microbiology 97: 169&#150;180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700552&pid=S1027-152X201100040000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SHARMA, R. R.; SINGH, D.; SINGH, R. 2009. Biological control of postharvest diseases of fruits and vegetables by microbial antagonists: A review. Biological Control 50: 205&#150;221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700554&pid=S1027-152X201100040000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">TOUR&Eacute;, Y.; ONGENA, M.; JACQUES, P.; GUIRO, A.; THONART, P. 2004. Role of lipopeptides produced by Bacillus subtilis GA1 in the reduction of grey mould disease caused by <i>Botrytis cin&eacute;rea </i>on apple. Journal of Applied Microbiology 96: 1151&#150;1160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700556&pid=S1027-152X201100040000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VOLPON, L.; BESSON, F.; LANCELIN, J. M. 2000. NMR structure of antibiotics plipastatins A and B from <i>Bacillus subtilis </i>inhibitors of phospholipase A<sub>2.</sub> FEBS Letters 485: 76&#150;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700558&pid=S1027-152X201100040000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WICHITRA, L.; PUNPEN, H.; SAMERCHAI, C. 2007. Growth inhibitory properties of <i>Bacillus subtilis </i>strains and their metabolites against the green mold pathogen <i>(P&eacute;nicillium digitatum </i>Sacc.) of citrus fruit. Postharvest Biology and Technology 48: 113&#150;121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700560&pid=S1027-152X201100040000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WULFF, E. G.; MGUNI, C. M.; MANSFELD&#150;GIESE, K.; FELS, J.; L&Uuml;BECK, M.; HOCKENHULL, J. 2002. Biochemical and molecular characterization of <i>Bacillus amyloliquefaciens, B. subtilis </i>and <i>B. pumilus </i>isolates with distinct antagonistic potential against <i>Xanthomonas campestris </i>pv. <i>Campestris. </i>Plant Pathology 51(5): 574&#150;584.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700562&pid=S1027-152X201100040000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">YU, G. Y.; SINCLAIR, J. B.; HARTMAN G. L.; BERTAGNOLLI, B. L. 2002. Production of iturin A by <i>Bacillus amyloliquefaciens </i>suppressing <i>Rhizoctonia solani. </i>Soil Biology and Biochemistry 34(7): 955&#150;963.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6700564&pid=S1027-152X201100040000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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