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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Control biológico y químico contra Fusarium stilboides en pimiento morrón (Capsicum annuum L.) en poscosecha]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Postharvest biological and chemical control of Fusarium stilboides on bell pepper (Capsicum annuum L.)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Greenhouse production of fruits and vegetables in Mexico has increased from 721 ha in 1996 to 9,500 ha in 2009. A fungal disease caused by Fusarium stilboides has recently appeared in pepper (Capsicum annum L.) that affects the fruit peduncle in the postharvest period. An alternative means of reducing the damage caused by this fungus is the use of biological control methods. To assess the antagonistic capacity of yeast strains of different origin to control F. stilboides and compare them with chemical methods, pepper fruits were inoculated with a known yeast suspension (10(7) CFU·mL-1) and a spore suspension of F. stilboides (10(5) CFU·mL-1), or they were immersed in different fungicidal solutions (benomyl, captan, sodium bicarbonate and potassium bicarbonate) at various concentrations and then inoculated with the fungal spore suspension. Benomyl at 0.6 g·L-1 showed the highest severity-inhibition level on the peduncle (81 %), while sodium bicarbonate at 30 g·L-1 was the most effective on the epicarp (51 % reduction in lesion diameter). Yeasts(-2)5b and 18-1x from apple, Avv, 5vtt (Candida incommunis) from wine veils and 3d. RMA3 from pepper reduced lesion diameter on the epicarp by 63, 54, 53, 47 and 45 % respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Control biol&oacute;gico y qu&iacute;mico contra <i>Fusarium stilboides </i>en pimiento morr&oacute;n (<i>Capsicum annuum </i>L.) en poscosecha</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Postharvest biological and chemical control of <i>Fusarium stilboides </i>on bell pepper (<i>Capsicum annuum </i>L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Roc&iacute;o Aurora Sandoval&#150;Ch&aacute;vez<sup>1</sup>; Ram&oacute;n &Aacute;lvar Mart&iacute;nez&#150;Peniche<sup>1*</sup>; Monserrat Hern&aacute;ndez&#150;Iturriaga<sup>1</sup>; Eduardo Fern&aacute;ndez&#150;Escart&iacute;n<sup>1</sup>; </b><b>Sof&iacute;a Arvizu&#150;Medrano<sup>1</sup>; Lourdes Soto&#150;Mu&ntilde;oz<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Divisi&oacute;n de Estudios de Posgrado, Facultad de Qu&iacute;mica, Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro. Centro Universitario s/n, Colonia las Campanas. Quer&eacute;taro, Quer&eacute;taro. C. P. 76010. M&Eacute;XICO. Tel&eacute;fono y Fax: 52&#150;01 (442) 1&#150;92&#150;13&#150;04. Correo&#150;e: </i><a href="mailto:alvar@uaq.mx">alvar@uaq.mx</a><i> (*Autor para correspondencia). </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2 </sup>Departamento de Ingenier&iacute;a de Procesos Alimentarios, Universidad Tecnol&oacute;gica del Suroeste de Guanajuato. M&Eacute;XICO. Carretera Valle&#150;Huan&iacute;maro km 1.2. Tel. 01 456 64 36265 ext 115.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 3 de diciembre, 2009.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: 17 de junio, 2011.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de frutas y hortalizas bajo invernadero se ha incrementado en M&eacute;xico de 721 ha en 1996 a 9,500 ha en 2009. Recientemente se present&oacute; en el pimiento <i>(Capsicum annum </i>L.) una enfermedad fungosa que afecta al ped&uacute;nculo del fruto en poscosecha y cuyo agente causal es <i>Fusarium stilboides. </i>Una alternativa para reducir el da&ntilde;o producido por este hongo es el uso de m&eacute;todos de control biol&oacute;gico. Para evaluar el poder antag&oacute;nico de cepas de levaduras de distinto origen en comparaci&oacute;n con m&eacute;todos qu&iacute;micos para el control de <i>F. stilboides, </i>se inocularon frutos de pimiento con una concentraci&oacute;n conocida de levaduras (10<sup>7</sup> UFC&middot;mL<sup>&#150;1</sup>), en presencia de una suspensi&oacute;n de esporas (10<sup>5</sup> UFC&middot;mL<sup>&#150;1</sup>) de <i>F. stiboides, </i>o bien se sumergieron en soluciones de distintos fungicidas (benomyl, capt&aacute;n, bicarbonato de sodio y bicarbonato de potasio) a diversas concentraciones y se inocularon con la suspensi&oacute;n de esporas del hongo. Benomyl 0.6 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> mostr&oacute; el m&aacute;s alto nivel de inhibici&oacute;n de la severidad en el ped&uacute;nculo (81 %), mientras que bicarbonato de sodio 30 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> result&oacute; m&aacute;s efectivo a nivel del epicarpio (51 % de reducci&oacute;n del di&aacute;metro de la lesi&oacute;n). Las levaduras 22<sup>&#150;2</sup><sub>5b</sub> y 18<sup>&#150;1</sup><sub>x</sub> de manzana, Avv, 5vtt <i>(Candida incommunis) </i>de velos de vino, 3d. RMA<sub>3</sub> de pimiento redujeron el di&aacute;metro de la lesi&oacute;n en el epicarpio en 63, 54, 53, 47 y 45 %, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Capsicum annuum </i>L., levaduras antag&oacute;nicas, fungicidas, poscosecha, severidad del da&ntilde;o.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Greenhouse production of fruits and vegetables in Mexico has increased from 721 ha in 1996 to 9,500 ha in 2009. A fungal disease caused by <i>Fusarium stilboides </i>has recently appeared in pepper (<i>Capsicum annum </i>L.) that affects the fruit peduncle in the postharvest period. An alternative means of reducing the damage caused by this fungus is the use of biological control methods. To assess the antagonistic capacity of yeast strains of different origin to control <i>F. stilboides </i>and compare them with chemical methods, pepper fruits were inoculated with a known yeast suspension (10<sup>7</sup> CFU&middot;mL<sup>&#150;1</sup>) and a spore suspension of <i>F. stilboides </i>(10<sup>5</sup> CFU&middot;mL<sup>&#150;1</sup>), or they were immersed in different fungicidal solutions (benomyl, captan, sodium bicarbonate and potassium bicarbonate) at various concentrations and then inoculated with the fungal spore suspension. Benomyl at 0.6 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> showed the highest severity&#150;inhibition level on the peduncle (81 %), while sodium bicarbonate at 30 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> was the most effective on the epicarp (51 % reduction in lesion diameter). Yeasts<sup>&#150;2</sup><sub>5b</sub> and 18<sup>&#150;1</sup><sub>x</sub> from apple, Avv, 5vtt <i>(Candida incommunis) </i>from wine veils and 3d. RMA<sub>3</sub> from pepper reduced lesion diameter on the epicarp by 63, 54, 53, 47 and 45 % respectively.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words : </b><i>Capsicum annuum </i>L., antagonistic yeasts, fungicides, postharvest, damage severity.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os, el cultivo protegido de frutas y hortalizas se ha incrementado en M&eacute;xico de 721 ha en 1996 a 9,500 ha en 2009 (SAGARPA, 2009), ya que permite la obtenci&oacute;n de altos rendimientos fuera de temporada (Maroto, 2008). Uno de los cultivos de mayor importancia en este rubro es el chile morr&oacute;n o pimiento <i>(Capsicum annuum </i>L.) para el cual M&eacute;xico ocup&oacute; en 2007 el segundo lugar a escala mundial en superficie, destin&aacute;ndose el producto tanto al mercado nacional como a la exportaci&oacute;n (FAOSTAT, 2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha observado en este cultivo, una enfermedad en poscosecha que afecta principalmente al ped&uacute;nculo del fruto y se manifiesta por el desarrollo de un micelio blanquecino, que se extiende con el paso del tiempo y culmina con la necrosis parcial o total del tejido. En 2008 este problema se manifest&oacute; en alrededor de 30 % de los embarques para exportaci&oacute;n, lo que se tradujo en p&eacute;rdidas econ&oacute;micas significativas para las empresas. El agente causal de esta enfermedad ha sido identificado en el laboratorio de Microbiolog&iacute;a Sanitaria de la Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro como <i>Fusarium stilboides, </i>pat&oacute;geno que fue reportado en caf&eacute; en Uganda, &Aacute;frica, desde 1995 (Geiser <i>et al., </i>2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre los principales m&eacute;todos de control de las enfermedades en poscosecha se encuentra el uso de fungicidas qu&iacute;micos, aunque en los &uacute;ltimos a&ntilde;os ha generado diversas controversias debido a su toxicidad al hombre y da&ntilde;os ambientales. Adicionalmente, pueden generar resistencia en cepas del pat&oacute;geno (Barrera y Bautista, 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una medida alternativa es el control biol&oacute;gico, que se define como la manipulaci&oacute;n directa o indirecta por parte del hombre de los agentes vivos que de forma natural tienen la capacidad de control. Esta manipulaci&oacute;n provoca un incremento de su capacidad de inhibici&oacute;n de los pat&oacute;genos en poscosecha (Nigam y Mukerji, 1988). En los &uacute;ltimos a&ntilde;os ha sido objeto de estudio con resultados favorables en el control de algunas enfermedades en poscosecha, como es el caso de la levadura <i>Candida sake, </i>la cual coloniz&oacute; r&aacute;pidamente la superficie de manzanas <i>(Malus sylvestris Mill), </i>inhibiendo a <i>P. expansum </i>en 80 % despu&eacute;s de 60 d&iacute;as a 1 &deg;C (Usall <i>et al., </i>2000). Zhang <i>et al. </i>(2005) encontraron que <i>Cryptococcus laurentii </i>tiene un efecto variable contra <i>B. cinerea </i>en pera <i>(Pirus comunis </i>L.) en funci&oacute;n del momento de aplicaci&oacute;n del in&oacute;culo. Chanchaichaovivat <i>et al. </i>(2007) reportaron que las levaduras <i>Pichia guilliermondii, Candida musae, Issatchenkia orientalis </i>y <i>Candida quercitrusa </i>reducen el da&ntilde;o por <i>Colletotrichum capsici </i>en chile en poscosecha.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico se han aislado, seleccionado e identificado cepas antag&oacute;nicas de <i>Candida incommunis, Debaryomices hansenii, Cryptococcus albidus, Pichia membranaefaciens </i>y <i>Torulaspora </i>spp. contra hongos en manzanas, y se ha evaluado su efectividad biol&oacute;gica actuando por s&iacute; solas (S&aacute;nchez <i>et al., </i>2008) o en combinaci&oacute;n con bicarbonato de sodio en distintos cultivares de manzana (Soto y Mart&iacute;nez, 2009).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un antagonista deseable debe ser gen&eacute;ticamente estable, efectivo a bajas concentraciones, poco exigente en nutrimentos, adaptado a diferentes condiciones del medio, efectivo para una amplia gama de microorganismos pat&oacute;genos en diversas frutas y hortalizas, f&aacute;cilmente cultivable, manipulable, resistente a fungicidas, compatible con los procesos comerciales, no da&ntilde;ino para el hospedero y que no produzca sustancias nocivas para el humano (Spadaro y Lodovica, 2004). As&iacute; tenemos que las levaduras son organismos antagonistas potenciales, ya que pueden crecer a bajas temperaturas por tiempos prolongados (Usall <i>et al., </i>2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo fue evaluar la capacidad antag&oacute;nica de distintas cepas de levaduras obtenidas de diversas fuentes, as&iacute; como el efecto de algunos fungicidas de uso comercial contra <i>F. stilboides </i>en pimiento en poscosecha.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material biol&oacute;gico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron frutos de pimiento cv. 'Baselga' color amarillo colectados en madurez fisiol&oacute;gica aparente, en los invernaderos de la empresa Fresh Mex, ubicada en Col&oacute;n, Quer&eacute;taro, M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron 47 cepas de levaduras: 27 obtenidas de pimientos provenientes del mercado y de la empresa Fresh Mex, as&iacute; como 16 de manzana y cuatro de velos de vino elaborados en el laboratorio (<a href="#c1">Cuadro 1</a>), algunas de las cuales hab&iacute;an sido evaluadas previamente en <i>Penicillium expansum </i>en manzana (S&aacute;nchez <i>et al., </i>2008; Soto <i>et al., </i>2009).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa del hongo <i>Fusarium stilboides </i>CFNL&#150;2768 (Laboratorio de Micolog&iacute;a, UANL) se aisl&oacute; de frutos de pimiento con s&iacute;ntomas de la enfermedad. &Eacute;sta se identific&oacute; mediante el sistema automatizado Biolog<sup>&reg;</sup> (MicroStation<sup>TM</sup>) y se mantuvo en papa&#150;dextrosa agar (PDA) hasta su utilizaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de suspensiones microbianas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se transfiri&oacute; cada cepa de levadura a probar a tubos conteniendo 10 ml de caldo nutritivo, adicionado de extracto de levadura (0.5 %) y dextrosa (1 %) (NYDB) y se incubaron durante 72 h a 24 &plusmn; 1 &deg;C y 200 rpm de agitaci&oacute;n (Usall <i>et al., </i>2001). Se realizaron dos transferencias sucesivas cada 72 horas, y las c&eacute;lulas de la &uacute;ltima resiembra obtenidas por centrifugaci&oacute;n (12,000 rpm, 10 min) se sembraron en cajas con agar nutritivo&#150;dextrosa para levaduras (NYDA: 8 g de caldo nutritivo, 5 g de extracto de levadura, 10 g de dextrosa, 20 g de agar y 1000 ml de agua) y se incubaron durante 48 h a 24 &plusmn; 1 &deg;C. Los in&oacute;culos se prepararon a partir de las colonias aisladas de cada cepa, las cuales se suspendieron en diluyente de peptona est&eacute;ril. Se realizaron recuentos en la c&aacute;mara de Neubauer y se ajust&oacute; la concentraci&oacute;n a 10<sup>7</sup> UFC&middot;mL<sup>&#150;1</sup>. La viabilidad se comprob&oacute; mediante la t&eacute;cnica de extensi&oacute;n en superficie en medio NYDA (Nunes <i>et al., </i>2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para preparar el in&oacute;culo de <i>F. stilboides, </i>se recuperaron las esporas por barrido con soluci&oacute;n salina est&eacute;ril a 0.85 % sobre un cultivo extendido en medio PDA. La suspensi&oacute;n de esporas se filtr&oacute; a trav&eacute;s de dos capas de gasa de algod&oacute;n esterilizada y se prepararon diluciones, las cuales se sembraron por vaciado en placa con PDA (Fern&aacute;ndez, 2008). Las cajas se incubaron a 24 &plusmn; 1 &deg;C, y por &uacute;ltimo se efectu&oacute; un recuento de conidios viables y se obtuvo la concentraci&oacute;n requerida.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bioensayos con fungicidas</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un total de 30 frutos de pimiento se lavaron y desinfestaron con hipoclorito de sodio (5 %) durante 2 min., se enjuagaron con agua destilada est&eacute;ril y se dejaron secar bajo flujo laminar por 10 min. Posteriormente se sumergieron durante 2 min. en capt&aacute;n Ultra WP 50&reg; (principio activo: capt&aacute;n 50 % (3a<i>R</i>,7a<i>S</i>)&#150;2&#150;&#91;(trichloromethyl)sulfanylj&#150;3a,4,7,7a&#150;tetrahydro&#150;1<i>H</i>&#150;isoindole&#150;1,3(2<i>H</i>)&#150;dione) a 1.5 (C<b>&#150;</b>1.5) o 2.5 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> (C&#150;2.5), Antrak&reg; (principio activo: benomilo 50 % Methyl &#91;1&#150;&#91;(butylamino)carbonyl&#93;&#150;1H&#150;benzimidazol&#150;2&#150;yl&#93;carbamate) a 0.6 (B&#150;0.6) o 1.2 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> (B&#150;1.2), bicarbonato de sodio (NaHCO<sub>3</sub>) a 15 (BCS 15) o 30 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> (BCS 30) y bicarbonato de potasio a 10 (BCP 10), 20 (BCP 20) o 30 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> (BCP 30) y un testigo sin tratamiento fungicida inoculado &uacute;nicamente con la suspensi&oacute;n del pat&oacute;geno, usando tres frutos por tratamiento. Se realizaron 13 heridas superficiales de 3 mm de di&aacute;metro al fruto con un punz&oacute;n est&eacute;ril (10 en el epicarpio y tres en el ped&uacute;nculo), las cuales se inocularon con 10 |jl de la suspensi&oacute;n de esporas de <i>F. stilboides </i>(<img src="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9s1.jpg">1000 c&eacute;lulas); los frutos se dejaron secar, se depositaron en frascos individuales de pl&aacute;stico previamente desinfestados con etanol a 70 % y se incubaron a 24 &plusmn; 1 &deg;C. Al cabo de seis (6 d) y 12 d&iacute;as (12 d) se midieron el di&aacute;metro de crecimiento del pat&oacute;geno en el epicarpio (Usall <i>et al., </i>2001) y la severidad del da&ntilde;o en el ped&uacute;nculo de acuerdo a una escala donde 0=sin da&ntilde;o visible, 1=severidad baja (observaci&oacute;n de poco micelio), 2=severidad media (desarrollo del micelio sin cubrir totalmente el ped&uacute;nculo) y 3=da&ntilde;o severo (micelio abundante cubriendo totalmente el ped&uacute;nculo).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bioensayos con levaduras</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se desinfestaron un total de 223 frutos y, como en el caso de los ensayos con fungicidas, se practicaron 10 heridas en el epicarpio y tres en el ped&uacute;nculo; cada herida se inocul&oacute; con 25 &#956;l de la suspensi&oacute;n de levaduras antag&oacute;nicas (<img src="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9s1.jpg">250 000 c&eacute;lulas) y con la suspensi&oacute;n de esporas del pat&oacute;geno en la forma antes descrita. Se incluy&oacute; un testigo inoculado s&oacute;lo con la suspensi&oacute;n de esporas (sin levadura). Los frutos se incubaron y se determin&oacute; el di&aacute;metro de crecimiento del pat&oacute;geno en el epicarpio y la severidad en el ped&uacute;nculo a 6 y 12 d de incubaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de los datos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental para los dos casos fue completamente al azar con tres o cuatro repeticiones seg&uacute;n el caso, con 47 tratamientos para las levaduras y nueve tratamientos para los fungicidas, siendo la unidad experimental un fruto de pimiento. Los datos se analizaron con el programa estad&iacute;stico "STATGRAPHICS Centurion XVI.I" (Casta&ntilde;o y Dom&iacute;nguez, 2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ensayos con productos qu&iacute;micos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El bicarbonato de sodio a 30 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> redujo el di&aacute;metro de crecimiento del pat&oacute;geno con respecto al testigo en el epicarpio del fruto en 51 % a 6 d (4.39 mm. <i>vs. </i>8.89 mm.) y 43 % a 12 d (9.57 mm. vs. 16.79 mm.) de incubaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El resto de los tratamientos no mostr&oacute; reducci&oacute;n importante del pat&oacute;geno (menos de 22 %).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El bicarbonato de sodio ha sido utilizado con &eacute;xito en el control de podredumbres en poscosecha, y ha sido permitido sin restricciones por la regulaci&oacute;n norteamericana y europea (Vero y Mondino, 1999). La acci&oacute;n del bicarbonato de sodio se debe a la inhibici&oacute;n de la expresi&oacute;n y secreci&oacute;n de las poligalacturonasas que provocan la maceraci&oacute;n de los tejidos del fruto. La expresi&oacute;n de estas enzimas se ve favorecida a niveles bajos de pH. Los ba&ntilde;os con bicarbonato provocan un aumento de pH en las heridas infectadas, disminuyendo de esa forma la producci&oacute;n de poligalacturonasas (Prusky <i>et al., </i>2004). El bicarbonato de sodio a 4 % increment&oacute; el desarrollo de <i>P. expansum </i>en manzanas, mientras que a 2 % potenci&oacute; el efecto antag&oacute;nico de algunas levaduras (Soto y Mart&iacute;nez, 2009).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso del ped&uacute;nculo, B&#150;0.6 y C&#150;2.5 resultaron los m&aacute;s efectivos despu&eacute;s de 6 d de incubaci&oacute;n, reduciendo ambos la severidad del pat&oacute;geno en 81 % con relaci&oacute;n al testigo &#91;0.33 (sin da&ntilde;o) <i>vs </i>1.78 (severidad media)&#93;. A 12 d de almacenamiento, no se encontraron diferencias entre los fungicidas. Los mejores tratamientos qu&iacute;micos aplicados al fruto fueron el BCS 30 y B&#150;0.6, por lo que se incluyeron en un ensayo ulterior con las mejores levaduras evaluadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los benzimidazoles se convierten en metil benzimidazol carbamato (MBC, carbendazim) en la superficie de las plantas, el cual interfiere en la divisi&oacute;n nuclear de los hongos. El g&eacute;nero <i>Fusarium </i>es sensible a benomyl; sin embargo, es probable que este fungicida sea un agente mutag&eacute;nico, que pudiera incrementar el grado de resistencia de los pat&oacute;genos ante su efecto. Por su parte, el capt&aacute;n inhibe la s&iacute;ntesis de los compuestos que tienen los grupos &#150;NH<sub>2</sub> y &#150;SH (amino&aacute;cidos y enzimas) (Agrios, 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ensayos de antagonismo con levaduras en fruto</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las levaduras evaluadas fueron agrupadas en distintas series con base en consideraciones pr&aacute;cticas. Bas&aacute;ndonos en su comportamiento con relaci&oacute;n a la inhibici&oacute;n del desarrollo del hongo en el epicarpio y en el ped&uacute;nculo, se seleccionaron las mejores de cada serie para una prueba confirmatoria de antagonismo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las <a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9f1.jpg" target="_blank">Figuras 1</a> y <a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9f2.jpg" target="_blank">2</a> se observa el desarrollo de <i>F. stilboides </i>en el epicarpio en funci&oacute;n de la cepa de levadura a 6 y 12 d de incubaci&oacute;n, respectivamente, en cinco ensayos sucesivos. Ninguna levadura del grupo 1 disminuy&oacute; significativamente el di&aacute;metro de la lesi&oacute;n en el epicarpio en comparaci&oacute;n con el testigo (8.87 mm) a 12 d de incubaci&oacute;n. Sin embargo, se retuvo a (2)2a PRF para la prueba confirmatoria debido a que mostr&oacute; el menor porcentaje de incidencia (17.5 vs. 90 % en el testigo, datos no mostrados).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de las levaduras del grupo 2 inhibieron significativamente el desarrollo del pat&oacute;geno en el epicarpio (de 20 a 40 %) despu&eacute;s de 6 d de almacenamiento. La levadura 1RMA<sub>1</sub> result&oacute; la m&aacute;s efectiva para controlar al hongo inhibiendo en 50 % su crecimiento, mientras que a 12 d, cuatro de las cepas (4)23/HL/1a, Avv, 18<sup>&#150;1</sup><sub>x</sub> y 5vtt redujeron significativamente el desarrollo del pat&oacute;geno con porcentajes superiores a 50 % de inhibici&oacute;n. Estas cuatro cepas se retuvieron para la prueba confirmatoria.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el grupo 3 la levadura 16<sup>&#150;1</sup><sub>sc</sub> fue la m&aacute;s efectiva, reduciendo el crecimiento del pat&oacute;geno en el epicarpio en 37 % (9.01 mm) con relaci&oacute;n al testigo (14.22 mm) a 12 d de incubaci&oacute;n, mientras que a 6 d no se encontraron diferencias significativas entre tratamientos (F = 1.51).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el grupo 4 el testigo no mostr&oacute; el desarrollo que se esperaba en comparaci&oacute;n con los dem&aacute;s tratamientos. Al no detectarse diferencias entre &eacute;ste y las levaduras, se decidi&oacute; seleccionar a las que mostraron los menores di&aacute;metros de crecimiento del pat&oacute;geno, que resultaron 7/ HL/3a y 23&#150;61 tanto a 6 d (4.25 y 4.51 mm) como a 12 d (8.67 y 8.81 mm) de incubaci&oacute;n. La cepa 23&#150;61 obtenida de frutos de manzana, hab&iacute;a resultado sobresaliente contra <i>P. expansum </i>en manzana inhibi&eacute;ndolo 23 % a 12 d de incubaci&oacute;n. Esta cepa se someti&oacute; al sistema automatizado Biolog<sup>&reg;</sup>, sin haber podido identificarse (S&aacute;nchez <i>et al., </i>2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el grupo 5, 3ad. RMA<sub>3</sub>, aislada de pimientos, inhibi&oacute; el di&aacute;metro de crecimiento del pat&oacute;geno en 65 % despu&eacute;s de 6 d de incubaci&oacute;n, mientras que las cepas 22<sup>&#150;2</sup><sub>5b</sub>, 1ad. RMA<sub>2</sub>, 16/HL/1a, 8&#150;121 y 3ad. RMA<sub>3</sub> resultaron ser las mejores inhibiendo 54, 44, 40, 39 y 34 %, respectivamente a 12 d. Las cepas 3ad. RMA<sub>3</sub>, 16/HL/1a y 22<sup>&#150;2</sup><sub>5b</sub> se retuvieron para la prueba confirmatoria, ya que adem&aacute;s hab&iacute;an reducido sustancialmente la incidencia del pat&oacute;geno (datos no mostrados).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las <a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9f3.jpg" target="_blank">Figuras 3</a> y <a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9f4.jpg" target="_blank">4</a> se observa el desarrollo de <i>F. stilboides </i>en el ped&uacute;nculo en funci&oacute;n de la cepa de levadura a 6 d y 12 d de incubaci&oacute;n, respectivamente, en cinco ensayos sucesivos. La levadura (2)12/HL/1a del grupo 1 propici&oacute; en el pend&uacute;nculo el menor desarrollo (0.75 mm) del pat&oacute;geno a 12 d de incubaci&oacute;n y se someti&oacute; a la prueba confirmatoria, a pesar de que no hubo diferencias entre tratamientos (F = 1.24). Ninguna levadura del grupo 2 redujo el desarrollo del pat&oacute;geno a los 6 d, mientras que Avv inhibi&oacute; en 58 % al hongo (1.08 <i>vs </i>2.58) a 12 d, lo que confirma su buen comportamiento en el epicarpio, donde la reducci&oacute;n fue de 57 %. En el grupo 3 nuevamente destaca la levadura 16<sup>&#150;1</sup><sub>sc</sub> al reducir la severidad del pat&oacute;geno en 47 %, por lo cual se seleccion&oacute; para la prueba confirmatoria.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el grupo 4 la levadura 23&#150;61 produjo el menor desarrollo del hongo en el ped&uacute;nculo, tanto a 6 d como a 12 d de incubaci&oacute;n (1 y 1.33, respectivamente) y se consider&oacute; para la prueba confirmatoria. Finalmente, en el grupo 5 no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en ninguno de los tiempos evaluados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se probaron las 11 cepas de levadura que mostraron el mejor comportamiento en los ensayos previos. Tambi&eacute;n se incluyeron los fungicidas BCS 30 y B&#150;0.6, de acuerdo con la efectividad mostrada previamente en el epicarpio y en el ped&uacute;nculo (<a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). A 12 d, cinco cepas redujeron significativamente el da&ntilde;o del pat&oacute;geno en el epicarpio (<a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>) 22<sup>&#150;2</sup><sub>5b</sub>, Avv, 5vtt, 3d. RMA<sub>3</sub> y 18<sup>&#150;1</sup><sub>x</sub> con porcentajes de inhibici&oacute;n de 63, 54, 53, 47 y 45 %, respectivamente, con respecto al testigo (13.88 mm). El comportamiento mostrado por estas cepas fue muy similar al de los ensayos precedentes. Ninguno de los fungicidas incluidos en el ensayo mostr&oacute; un efecto significativo en contra del pat&oacute;geno.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La levadura 5vtt <i>(Candida incommunis) </i>hab&iacute;a sido evaluada contra <i>P. expansum </i>en manzana por S&aacute;nchez <i>et al. </i>(2008) con un porcentaje de inhibici&oacute;n de 23 % a 12 d de incubaci&oacute;n, mientras que en pimiento inhibi&oacute; 53 % el desarrollo de <i>F. stilboides </i>al mismo tiempo de incubaci&oacute;n. Por otro lado, Chand&#150;Goyal y Spotts (1996) reportan una reducci&oacute;n significativa de la incidencia y la severidad del desarrollo de <i>Penicillium expansum </i>en manzanas por seis cepas de levaduras aisladas de peras, al aplicarse simult&aacute;neamente con el pat&oacute;geno.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se encontraron diferencias entre las levaduras para la severidad del desarrollo del hongo en ped&uacute;nculo (<a href="/img/revistas/rcsh/v17n2/a9c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). En general, se aprecia un mayor nivel de inhibici&oacute;n del hongo por las levaduras en el epicarpio que en el ped&uacute;nculo y un mayor desarrollo del pat&oacute;geno en el epicarpio. Este resultado puede atribuirse a las diferencias de composici&oacute;n de estas dos partes del fruto, que propicia un mayor desarrollo del hongo en el primero cuando el tejido se hiere a nivel experimental. El hecho de que el pat&oacute;geno se desarrolle preferentemente en el ped&uacute;nculo en condiciones de almacenamiento comercial, seguramente se debe a que este tejido es herido al cortar el fruto, a diferencia del epicarpio, que com&uacute;nmente se mantiene intacto.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las 47 levaduras evaluadas 19 % redujo significativamente el crecimiento del pat&oacute;geno en el epicarpio a 6 d, de las cuales 11 % lo inhibieron en m&aacute;s de 50 %, mientras que a 12 d, 21 % de la levaduras redujo significativamente dicho crecimiento y de las cuales 24 % lo inhibieron en m&aacute;s de 50 %.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por el contrario, en el ped&uacute;nculo a 6 d ninguna levadura inhibi&oacute; significativamente la severidad del hongo, mientras a 12 d s&oacute;lo 4 % de las cepas fueron efectivas y de &eacute;stas s&oacute;lo la mitad redujo el desarrollo del hongo en m&aacute;s de 50 %. Si comparamos estos resultados con los obtenidos por S&aacute;nchez <i>et al. </i>(2008), vemos que en este &uacute;ltimo estudio 39 % de las cepas probadas redujeron el crecimiento de <i>P. expansum, </i>pero con porcentajes de inhibici&oacute;n menores a 50, mientras Vi&ntilde;as <i>et al. </i>(1998) obtuvieron, despu&eacute;s de siete d&iacute;as de incubaci&oacute;n, 40 % de cepas con inhibici&oacute;n significativa del mismo pat&oacute;geno de 933 probadas, 10 % de las cuales redujeron el crecimiento del hongo en m&aacute;s de 50 %.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de Benomyl a 0.6 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> inhibi&oacute; el desarrollo de <i>F. stilboides </i>en el ped&uacute;nculo de frutos de pimiento, en tanto que el bicarbonato de sodio a 30 g&middot;L<sup>&#150;1</sup> se mostr&oacute; efectivo en el epicarpio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dos cepas de levaduras aisladas de manzana, dos de velos de vino y una de pimiento resultaron efectivas para inhibir el hongo en el epicarpio de frutos de pimiento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA </b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AGRIOS GEORGE N. 2006. Protecci&oacute;n directa mediante m&eacute;todos de control qu&iacute;mico, En: Fitopatolog&iacute;a. 2da Ed. Limusa. D. F. M&eacute;xico. pp. 209&#150;234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667627&pid=S1027-152X201100020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BARRERA&#150;NECHA, L. L.; BAUTISTA&#150;BA&Ntilde;OS, S. 2008. Actividad antif&uacute;ngica de polvos, extractos y fracciones de <i>Cestrum nocturnum </i>L. sobre el crecimiento micelial de <i>Rhizopus stolonifer </i>(Ehrenb.   Fr.)  Vuill.   Revista  Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 26(001): 27&#150;31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667629&pid=S1027-152X201100020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CASTA&Ntilde;O, T. E.; DOM&Iacute;NGUEZ, D. J. 2001. Dise&ntilde;o de Experimentos para el Desarrollo Tecnol&oacute;gico y Mejora Industrial. Jit. Press. D.F. M&eacute;xico. 312 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667631&pid=S1027-152X201100020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHANCHAICHAOVIVAT, A.; RUENWONGSA, P.; PANIJPAN, B. 2007. Screening and identification of yeast strains from fruits and vegetables: Potential for biological control of postharvest chilli anthracnose <i>(Colletotrichum capsici). </i>Biological Control 42(3): 326&#150;335.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667633&pid=S1027-152X201100020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHAND&#150;GOYAL, T.; SPOTTS, R. 1996. Postharvest biological control of blue mold of apple and brown rot of sweet cherry by natural saprophytic yeasts alone or in combination with low doses of fungicides. Biological Control 6: 253&#150;259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667635&pid=S1027-152X201100020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAOSTAT. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2007. Disponible en: <a href="http://www.faostat.fao.org" target="_blank">www.faostat.fao.org</a>. Fecha de consulta: 4 de septiembre de 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667637&pid=S1027-152X201100020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FERN&Aacute;NDEZ&#150;ESCART&Iacute;N, E. 2008. Microbiolog&iacute;a e Inocuidad de los Alimentos 2da Ed. Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro, D. F. M&eacute;xico, 967 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667639&pid=S1027-152X201100020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GEISER, D. M.; LEWIS&#150;IVEY, M. L.; HAKIZA, G.; JUBA, J. H.; MILLER, S. A. 2005. <i>Gibberella xylaroides </i>(anamorph: <i>Fusarium xylaroides), </i>a causative agent of coffee wilt disease in Africa, is a previously unrecognized member of the <i>G. fujikuroi </i>species complex. Mycologia 97(1): 191&#150;201.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667641&pid=S1027-152X201100020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MAROTO, J. V. 2008. Elementos de Horticultura General. 3ra Ed. Mundi&#150;Prensa. Madrid, Espa&ntilde;a. 480 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667643&pid=S1027-152X201100020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NIGAM, N.; MUKERJI, K. G. 1988. Biological control. Concepts and practice. <i>In: </i>Biocontrol of Plant Diseases. Vol. 1. MUKERJI, K. G.; GARG, K. L. (Eds.). CRC Press Boca Rat&oacute;n. EE.UU. pp. 1&#150;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667645&pid=S1027-152X201100020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NUNES, C.; USALL, J.; TEIXID&Oacute;, N.; MIR&Oacute;, M.; VI&Ntilde;AS, I. 2001. Nutritional enhancement of biocontrol activity of <i>Candida sake </i>(CPA&#150;1) against <i>Penicillium expansum </i>on apples and pears. European Journal of Plant Pathology 107(5): 543&#150;551.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667647&pid=S1027-152X201100020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PRUSKY, D.; McEVOY, J.; SAFTNER, R.; CONWAY, W; JONES, R. 2004. Relatioship between host acidification and virulence of <i>Penicillium </i>sp. on apple and citrus fruit. Phytopathology 94: 44&#150;51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667649&pid=S1027-152X201100020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAGARPA. 2009. Estrategia Nacional de Agricultura Protegida. <a href="http://www.presidencia.gob.mx/prensa//sagarpa/" target="_blank">http://www.presidencia.gob.mx/prensa//sagarpa/</a>. Fecha de consulta: 25 de enero de 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667651&pid=S1027-152X201100020000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&Aacute;NCHEZ, E.; MART&Iacute;NEZ, R. A.; CASTILLO, T. J.; FERN&Aacute;NDEZ, E. E. 2008. Antagonismo de levaduras nativas contra la pudrici&oacute;n azul <i>(Penicillium expansum </i>Link) en frutos de manzana. Revista Fitotecnia Mexicana 31(4): 359&#150;366.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667653&pid=S1027-152X201100020000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SOTO&#150;MU&Ntilde;OZ L.; MART&Iacute;NEZ&#150;PENICHE. R. A. 2009. Efecto de levaduras antag&oacute;nicas y bicarbonato de sodio sobre <i>Penicillium expansum </i>Link en dos variedades de manzana. Revista Chapingo Serie Horticultura 15(2): 211&#150;215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667655&pid=S1027-152X201100020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SPADARO, D.; LODOVICA, G. M. 2004. State of the art and future prospect of biological control of postharvest fruit diseases. International Journal of Food Microbiology 91: 185&#150;194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667657&pid=S1027-152X201100020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USALL, J.; TEIXID&Oacute;, N.; FONS, E.; VI&Ntilde;AS, I. 2000. Biological control of blue mould on apple by a strain of <i>Candida sake </i>under several controlled atmosphere conditions. International Journal of Food Microbiology 58: 83&#150;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667659&pid=S1027-152X201100020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USALL, J.; TEIXID&Oacute;, N.; TORRES, R.; DE ERIBE, X. O.; VI&Ntilde;AS, I. <i>2001. Pilot tests </i>of <i>Candida sake </i>(CPA&#150;1) applications to control postharvest blue mold on apple fruit. Postharvest Biology and Technology 21(2): 147&#150;156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667661&pid=S1027-152X201100020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VERO, S.; MONDINO, P. 1999. Control biol&oacute;gico Postcosecha. Medidas para conservar fruta y hortalizas. Horticultura Internacional. A&ntilde;o 7: 29&#150;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667663&pid=S1027-152X201100020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VI&Ntilde;AS, I.; USALL, J.; TEIXID&Oacute;, N.; SANCHIS, V. 1998. Biological control of major postharvest pathogens on apple with <i>Candida sake. </i>International Journal of Food Microbiology 40: 9&#150;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667665&pid=S1027-152X201100020000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ZHANG, H.; ZHENG, X.; FU, C.; XI, Y. 2005. Postharvest biological control of gray mold rot of pear with <i>Cryptococcus laurentii. </i>Postharvest Biology and Technology 35:79&#150;86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6667667&pid=S1027-152X201100020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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