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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Cruzamiento natural de chia (Salvia hispanica L.)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Mexico has the largest genetic diversity of chia (Salvia hispanica L.). Recently, chia seed derivates have attracted commercial attention. However, too little is known about its breeding system to define a genetic improvement strategy and to preserve its germplasm. In this study, the percentage of natural outcrossing of S. hispanica was determined in Chapingo, Mexico. Flower color was used as the genetic marker, considering purple flowers dominant over white and blue flowers. Two cross-pollination plots were established in 1999. In the first plot, seeds of purple-flowered plants and white-flowered plants of a cultivated genotype from Jalisco were sown alternately in each row; in the other, the same cultivar were sown alternately with seeds of purple-flowered cultivated plants and blue-flowered wild plants collected in Sinaloa. Determination of natural outcrossing rate was based on the percentage of purple-flowered plants in both the F1 progeny of white-flowered cultivated plants and of blue-flowered wild plants. Outcrossing was more frequent in the cultivated genotype (22.17%) than in the wild genotype (1.51%), which might indicate that the breeding system was modified under cultivation. Since there was no reproductive isolation, the cultivated and wild genotypes should be considered subspecies or races of S. hispanica. The resulting hybrids were vigorous, like the cultivated parent, and had dehiscent fruits, like the wild parent.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Cruzamiento natural de chia (<i>Salvia hispanica </i>L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Natural outcrossing of chia (<i>Salvia hispanica </i>L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>J. A. Hern&aacute;ndez&#150;G&oacute;mez<sup>1*</sup>, S. Miranda&#150;Col&iacute;n<sup>2</sup> y </b><b>A. Pe&ntilde;a&#150;Lomel&iacute;<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup>Departamento de Fitotecnia, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Km. 38.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, C. P. 56230. M&eacute;xico. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:alhdezg2@hotmail.com">alhdezg2@hotmail.com</a> <i>(*Autor responsable).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>Instituto de Recursos Gen&eacute;ticos y Productividad. Colegio de Postgraduados. Km. 36.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Montecillo, Estado de M&eacute;xico, C. P. 56230. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 13 de noviembre, 2007    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: 25 de julio, 2008</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor diversidad gen&eacute;tica de <i>Salvia hispanica </i>L. se encuentra en M&eacute;xico. Actualmente, los derivados de su semilla han despertado inter&eacute;s comercial; sin embargo, se conoce poco acerca de su sistema reproductivo para iniciar su mejoramiento y conservar su germoplasma. Por tal motivo, se determin&oacute; el porcentaje de cruzamiento natural en <i>S. hispanica</i>, en Chapingo, M&eacute;xico. Se utiliz&oacute; el color de flor como marcador gen&eacute;tico, considerando que el color morado es dominante sobre el color blanco y el azul. En 1999, se establecieron dos lotes de intercruzamiento; en el primer lote, se us&oacute; semilla de un cultivar de Jalisco y en cada surco, se alternaron plantas con flor morada y flor blanca; en el segundo, se sembr&oacute; el anterior cultivar, con flor morada, altern&aacute;ndolo con un material silvestre, con flor azul, colectado en Sinaloa. En el 2000, se determin&oacute; el cruzamiento natural bas&aacute;ndose en el porcentaje de plantas con flor morada en las progenies F<sub>1</sub> del cultivar con flor blanca y en las del tipo silvestre. El material cultivado de Jalisco present&oacute; mayor cruzamiento natural (22.17%) que el material silvestre de Sinaloa (1.59%), lo que podr&iacute;a indicar que el sistema de apareamiento de <i>S. hispanica </i>se ha modificado bajo condiciones de cultivo. No existe aislamiento reproductivo cuando se intercruzan ambos genotipos, por lo que deber&iacute;an ser considerados como subespecies o razas de <i>S. hispanica</i>. Los h&iacute;bridos obtenidos son vigorosos, como el progenitor cultivado, y con frutos dehiscentes, como el progenitor silvestre.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Salvia hispanica </i>L., color de flor, sistema de apareamiento, h&iacute;bridos intraespec&iacute;ficos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mexico has the largest genetic diversity of chia (<i>Salvia hispanica </i>L.). Recently, chia seed derivates have attracted commercial attention. However, too little is known about its breeding system to define a genetic improvement strategy and to preserve its germplasm. In this study, the percentage of natural outcrossing of <i>S. hispanica </i>was determined in Chapingo, Mexico. Flower color was used as the genetic marker, considering purple flowers dominant over white and blue flowers. Two cross&#150;pollination plots were established in 1999. In the first plot, seeds of purple&#150;flowered plants and white&#150;flowered plants of a cultivated genotype from Jalisco were sown alternately in each row; in the other, the same cultivar were sown alternately with seeds of purple&#150;flowered cultivated plants and blue&#150;flowered wild plants collected in Sinaloa. Determination of natural outcrossing rate was based on the percentage of purple&#150;flowered plants in both the F<sub>1</sub> progeny of white&#150;flowered cultivated plants and of blue&#150;flowered wild plants. Outcrossing was more frequent in the cultivated genotype (22.17%) than in the wild genotype (1.51%), which might indicate that the breeding system was modified under cultivation. Since there was no reproductive isolation, the cultivated and wild genotypes should be considered subspecies or races of <i>S. hispanica</i>. The resulting hybrids were vigorous, like the cultivated parent, and had dehiscent fruits, like the wild parent.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Salvia hispanica </i>L., flower color, breeding system, intra&#150;species hybrids.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Salvia hispanica </i>L. es una especie vegetal que form&oacute; parte esencial de la cultura mesoamericana. Por su amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y porque la conoc&iacute;an y utilizaban diferentes grupos &eacute;tnicos, parece que su cultivo se extendi&oacute; desde los per&iacute;odos m&aacute;s antiguos de la fitodomesticaci&oacute;n; actualmente, se conserva como cultivo marginal; su semilla se utiliza en la elaboraci&oacute;n de bebidas refrescantes y nutritivas, y su aceite en la preparaci&oacute;n de lacas artesanales  y pinturas (Bukasov, 1963).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El hecho de que <i>S. hispanica </i>est&eacute; ampliamente distribuida en M&eacute;xico aunado a su diversidad gen&eacute;tica y a su valor alimenticio e industrial, la convierte en un recurso vegetal promisorio. Cualquier programa futuro de valoraci&oacute;n y utilizaci&oacute;n de esta especie requiere contar con el conocimiento b&aacute;sico de su sistema reproductivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La descripci&oacute;n de la morfolog&iacute;a floral de <i>S. hispanica </i>fue abordada por Mart&iacute;nez (1959) y Ramamoorthy (1985) como sigue: Las flores pediceladas se encuentran reunidas en grupos de seis o m&aacute;s, en verticilos sobre el raquis de la inflorescencia. El c&aacute;liz es persistente, pubescente y bilabiado. La corola de color morado o azul es monop&eacute;tala y bilabiada; el labio inferior se expande hacia afuera y abajo; el superior es ascendente y se arquea en forma de casco o g&aacute;lea. Los estambres f&eacute;rtiles son dos y est&aacute;n unidos por un conectivo, el cual se articula a filamentos cortos que se insertan en la corola. El ovario es s&uacute;pero, bicarpelar y tetralocular; en la base del ovario se encuentra un disco nectar&iacute;fero. El estilo es glabro, glanduloso en la base y su estigma tiene dos ramificaciones; la m&aacute;s larga est&aacute; exerta a la corola y la m&aacute;s corta se ubica entre las anteras. Tanto las anteras como el estigma est&aacute;n cubiertos y protegidos por la g&aacute;lea.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se conoce con precisi&oacute;n el mecanismo de polinizaci&oacute;n en <i>S. hispanica</i>. Se ha supuesto que es una especie al&oacute;gama y entom&oacute;fila por el color de los p&eacute;talos, por la forma de pista de aterrizaje del labio inferior de la corola, por la articulaci&oacute;n de los estambres a la corola y por la presencia de n&eacute;ctar en la base del ovario (Mart&iacute;nez, 1959; Ramamoorthy, 1985). Mann (1959) asegura que la protandria en el g&eacute;nero <i>Salvia </i>es el mecanismo responsable de evitar la autofecundaci&oacute;n; por su parte Haque y Goshal (1981) registran plantas androest&eacute;riles en <i>S. hispanica </i>que obligan a cierto cruzamiento natural o baja producci&oacute;n de semilla en ausencia de polinizadores. El mecanismo de polinizaci&oacute;n en especies entom&oacute;filas del g&eacute;nero <i>Salvia </i>y descrito por Faegri y Pijl (1979) es el siguiente: Las abejas se posan sobre el labio inferior de la corola y presionan hacia el nectario; esto produce la inclinaci&oacute;n de las anteras que depositan el polen en el dorso del insecto. El estigma es independiente de este mecanismo pero con cierta frecuencia, se inclina y frota el dorso del insecto visitador.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otros autores refieren que la autofecundaci&oacute;n puede estar presente en el g&eacute;nero <i>Salvia</i>. Faegri y Pijl (1979) atribuyen la autofecundaci&oacute;n a la cercan&iacute;a del estigma y las anteras; Haque y Goshal (1981) indican que <i>S. hispanica </i>es autocompatible y que la autofecundaci&oacute;n es debida a que las flores son muy peque&ntilde;as y homost&iacute;licas y porque se produce semilla a&uacute;n en plantas aisladas; Cahill (2004) reporta un 0.24% de cruzamiento natural entre una poblaci&oacute;n silvestre y otra domesticada de <i>S. hispanica </i>y, aunque la hibridaci&oacute;n intraespec&iacute;fica en las silvestres es rara, las cruzas controladas entre poblaciones silvestres y domesticadas producen progenie completamente f&eacute;rtil.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen varios factores que influyen en el sistema de apareamiento en especies vegetales. Schoen (1982) menciona que el mejor predictor floral de la frecuencia de cruzamiento es el grado de protandria; Wolff <i>et al</i>. (1988) indican que la presencia de plantas androest&eacute;riles en una especie predominantemente aut&oacute;gama puede incrementar la frecuencia de cruzamientos y para Schemske y Lande (1985), la morfolog&iacute;a floral y el grado de autocompatibilidad se relacionan con la frecuencia de cruzamientos. Los polinizadores parecen ser atra&iacute;dos por flores de coloraci&oacute;n m&aacute;s intensa (Ennos y Clegg, 1983); las flores peque&ntilde;as, con menos se&ntilde;ales visuales u olfativas, est&aacute;n relacionadas con especies aut&oacute;gamas (Levin, 1971).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las caracter&iacute;sticas del ambiente que influyen en el flujo de polen, y por lo tanto en la frecuencia de cruzamiento, son la densidad de poblaci&oacute;n (Schemske y Lande, 1985; Wolff <i>et al.</i>, 1988) y la abundancia de los polinizadores (Clegg, 1980). El sistema de apareamiento, como otros atributos del sistema gen&eacute;tico, es sensible a la selecci&oacute;n; en <i>Nicotiana rustica</i>, Breese (1959) demostr&oacute; que la morfolog&iacute;a y el desarrollo de la flor pueden ser modificados por selecci&oacute;n y afectar el sistema de apareamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color de flor en <i>S. hispanica </i>puede ser morado, azul o blanco. Aunque no existe informaci&oacute;n sobre la herencia del color de flor en esta especie, algunos resultados en otras especies vegetales se&ntilde;alan que el color de la flor es debido a la acci&oacute;n de un par de genes alelom&oacute;rficos, en que el color morado o p&uacute;rpura es completamente dominante sobre el blanco, como en <i>Vicia sativa </i>(Donnelly, 1958); en <i>Phaseolus vulgaris </i>(Miranda, 1969); en <i>Glicine sp. </i>(Weiss, 1949) y en <i>Vigna unguiculata </i>(Sangwan y Lodhi, 1998). Otros autores como Hartwig y Hinson (1963) y Clark y Donelly (1964), quienes trabajaron en <i>Glycine sp. </i>y en <i>V. sativa</i>, respectivamente, afirman que los genes involucrados en la herencia del color de flor est&aacute;n ubicados en m&aacute;s de un locus, con diferente acci&oacute;n g&eacute;nica, y que el color morado domina al color azul y rosa y &eacute;stos dominan al blanco. Adicionalmente, Martin y Gerats (1993) han propuesto que adem&aacute;s de los genes estructurales, que determinan el tipo de pigmento dominante en la flor, existen genes reguladores que controlan la cantidad y distribuci&oacute;n de dicho pigmento, generando matices y tonalidades en la flor entre el color dominante y el color blanco. Para la estimaci&oacute;n del tipo de polinizaci&oacute;n en condiciones de campo, es conveniente la utilizaci&oacute;n del color de flor como marcador gen&eacute;tico, pues es una caracter&iacute;stica polim&oacute;rfica, heredable, de tipo monog&eacute;nico u oligog&eacute;nico y su registro es f&aacute;cil y r&aacute;pido (Bretting y Widrlechner, 1995).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El conocimiento del sistema reproductivo de una especie hace posible la elecci&oacute;n de una estrategia efectiva de mejoramiento; permite seleccionar los procedimientos &oacute;ptimos de mantenimiento del germoplasma y pureza varietal y ayuda a predecir su comportamiento evolutivo. Con la finalidad de generar informaci&oacute;n sobre el tipo de reproducci&oacute;n en ch&iacute;a y su comportamiento seg&uacute;n la variedad, la localidad y la &eacute;poca del a&ntilde;o, los objetivos del presente trabajo fueron: a) Determinar el porcentaje de cruzamiento natural dentro y entre poblaciones de <i>S. hispanica, </i>utilizando como marcador el color de flor, bajo las condiciones ambientales de Chapingo, M&eacute;xico y b) Caracterizar morfol&oacute;gicamente la progenie obtenida del cruzamiento natural entre una poblaci&oacute;n de ch&iacute;a silvestre y otra de ch&iacute;a cultivada.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El material gen&eacute;tico utilizado fue semilla de plantas con flor morada y con flor blanca de una variedad de ch&iacute;a cultivada en Acatic, Jalisco y donada por el Ing. Guillermo Orozco de Rosas. Aunque se ha observado polimorfismo en varias caracter&iacute;sticas de la variedad en condiciones de cultivo, no se han evaluado las proporciones de segregaci&oacute;n en el color de la flor. Lo que s&iacute; es cualitativamente observable es la predominancia del color morado de la flor en la variedad; el color blanco de la flor fue probablemente resultado de una mutaci&oacute;n y la planta seleccionada fue mantenida aisladamente en reproducci&oacute;n. Se utiliz&oacute; tambi&eacute;n la semilla de ch&iacute;a de un material silvestre, con flores azules, de la colecci&oacute;n de Howard Gentry de la Universidad de California, en Riverside, y colectada en Sta. Luc&iacute;a, Sinaloa. En evaluaciones previas, los materiales se identificaron y se mantuvieron con el color de flor caracter&iacute;stico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La investigaci&oacute;n comprendi&oacute; dos fases: La primera consisti&oacute; en establecer dos lotes de polinizaci&oacute;n, en &aacute;reas distantes entre s&iacute; unos 600 m aproximadamente, dentro del Campo Agr&iacute;cola Experimental de la Universidad Aut&oacute;noma Chapingo (CAEUACh), durante el ciclo agr&iacute;cola primavera&#150;verano de 1999.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los dos lotes de polinizaci&oacute;n se establecieron plantas de un mes de nacidas, las cuales germinaron y crecieron en charolas en invernadero y cuya semilla fue sembrada el 12 de mayo. La operaci&oacute;n de trasplante se realiz&oacute; el 12 de junio ubicando, en el primer lote, de forma alternada en surcos, plantas que dar&iacute;an flores de color morado con plantas que al florecer presentar&iacute;an flores de color blanco, ambas de la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a de Acatic. El lote de polinizaci&oacute;n incluy&oacute; ocho surcos de 9 m de largo, con separaci&oacute;n entre surcos de 0.8 m y entre plantas de 25 cm. El mismo arreglo topol&oacute;gico se estableci&oacute; en el segundo lote con la diferencia de que en &eacute;ste se pusieron de forma alternada en surcos, plantas que se sab&iacute;a tendr&iacute;an flores moradas, del cultivar de ch&iacute;a de Acatic, con otras que se conoc&iacute;a dar&iacute;an flores azules, de la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a silvestre de Sinaloa. En un extremo de cada lote se colocaron dos cajas de abejas para asegurar un alto flujo de polen al momento de la floraci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La segunda fase se realiz&oacute; en el lote SM&#150;17 del CAEUACh, en el ciclo primavera&#150;verano del 2000. De la semilla cosechada en los dos lotes de polinizaci&oacute;n del ciclo anterior, se seleccion&oacute; la de 50 plantas del genotipo de flor blanca y la de 42 plantas de flor azul de Sinaloa. El 6 de junio, de cada planta se sembraron, a "chorrillo", tres gramos de semilla por surco; &eacute;stos fueron de 8 m de largo y 0.8 m de separaci&oacute;n entre ellos. Con la finalidad de mantener la mayor cantidad de plantas que permitiera registrar los eventos de cruzamiento, a&uacute;n en progenies de plantas con una escasa frecuencia de cruzamiento natural, no se realiz&oacute; aclareo. A la floraci&oacute;n, se registr&oacute; el n&uacute;mero total de plantas y el n&uacute;mero de plantas de flor morada en cada surco. Por las referencias bibliogr&aacute;ficas sobre la herencia del color de flor, se consider&oacute; el color morado como dominante sobre el color azul y blanco y, por lo tanto, como gene marcador.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para precisar las diferencias en las caracter&iacute;sticas de la estructura floral entre poblaciones de ch&iacute;a de diferente origen geogr&aacute;fico y su posible efecto en la frecuencia de cruzamiento natural; as&iacute; como para la caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de la progenie obtenida del cruzamiento natural entre la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a cultivada de Acatic, Jalisco y la poblaci&oacute;n silvestre de Sinaloa, en una muestra de 22 plantas de cada uno de los dos progenitores y 22 plantas de su progenie, se registraron las siguientes variables: el di&aacute;metro del tallo (mm), medido a nivel del primer nudo; la longitud (L) y el ancho (A) del limbo (cm), en una hoja ubicada en el quinto nudo del tallo; la relaci&oacute;n L/A del limbo de hoja y el n&uacute;mero de inflorescencias en toda la planta. En dos flores de la parte media de la inflorescencia principal, de cada planta, se registr&oacute;: la longitud total del c&aacute;liz (mm), medida a partir de la base del mismo; el color de la flor, la longitud total del tubo de la corola (mm); el ancho del labio inferior de la corola (mm); el largo y el ancho (mm) de las dos br&aacute;cteas ubicadas en la parte basal del primer verticilo. A la inflorescencia principal de cada planta se le midi&oacute;: la longitud (cm), el n&uacute;mero de verticilos y el n&uacute;mero de flores desarrolladas en el primer verticilo; se identific&oacute; el tipo de c&aacute;liz al madurar: abierto y que expulsa la semilla (dehiscente) o cerrado y que retiene la semilla (indehiscente). Finalmente, en dos muestras de cada planta se obtuvo el peso promedio de 100 semillas (g) utilizando una balanza electr&oacute;nica marca Ohaus modelo TS400D con precisi&oacute;n de 0.001 g.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La estimaci&oacute;n de la fecundaci&oacute;n cruzada natural se hizo mediante el registro de la frecuencia de fenotipos dominantes (flor morada) en progenies de plantas recesivas (flor blanca en la variedad cultivada de Acatic o flor azul en el material silvestre de Sinaloa). Las frecuencias de cruzamiento obtenidas fueron agrupadas en clases para observar la variaci&oacute;n entre las progenies. Las variables medidas en el cultivar de Acatic, en el material silvestre de Sinaloa y en sus h&iacute;bridos se analizaron formando dos contrastes (contraste 1: h&iacute;brido vs. progenitor silvestre; contraste 2: h&iacute;brido vs. progenitor cultivado) utilizando una prueba de t con 0.01 de probabilidad (Infante y Z&aacute;rate de Lara, 1986).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cruzamiento natural intrapoblacional</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El rango de cruzamiento natural en la ch&iacute;a de Acatic, observado en el color de flor, vari&oacute; de 10.54 a 42.74%, con una media general de 22.17% (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n3/a15c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El 36% de las progenies de plantas con flor blanca presentaron un intervalo de cruzamiento natural de 10.54 a 20%; mientras que la mayor&iacute;a de las progenies (64%) presentaron valores mayores al 20%, con un m&aacute;ximo de 42.74%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La media y el rango de cruzamiento natural obtenidos indican que el tipo de fecundaci&oacute;n, en la variedad cultivada de <i>S. hispanica </i>de Acatic, es del tipo intermedio o mixto; en este tipo de apareamiento la autofecundaci&oacute;n ocurre dentro de un intervalo de cruzamiento natural que var&iacute;a de 20 a 80% (Schemske y Lande, 1985) o de 10 a 90% (Clegg, 1980).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En especies entom&oacute;filas como <i>S. hispanica </i>ciertas caracter&iacute;sticas del ambiente como la abundancia del polinizador, las fluctuaciones de la actividad del insecto y la densidad de plantas pueden influir en los patrones de flujo de polen y por tanto, en las frecuencias de cruzamiento como lo reportado por Clegg (1980); Schemske y Lande (1985) y Wolff <i>et al</i>. (1988). La frecuencia de cruzamiento natural en la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a de Acatic obtenida en esta investigaci&oacute;n es diferente a la que presenta en su zona de origen. A nivel experimental se estableci&oacute; un arreglo uniforme entre plantas, que producen flores blancas y moradas alternadas a igual distancia y se le proporcion&oacute; una mayor abundancia de polinizadores (dos cajas de abejas en una superficie de 57.6 m<sup>2</sup>); en Acatic, Jalisco se ha estimado un porcentaje de cruzamiento natural entre 10 a 15%, en siembras a "chorrillo" y con sus polinizadores nativos. En Acatic se utiliz&oacute; el color de la testa de la semilla como marcador gen&eacute;tico; el cruzamiento natural se estim&oacute; con el porcentaje de semilla de color negro en la progenie F<sub>1</sub> de plantas con semilla de color blanco, seleccionadas en las parcelas de cultivo y su semilla sembrada por separado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de l&iacute;mites variables de cruzamiento natural en estos genotipos indica que la autocompatibilidad est&aacute; presente en <i>Salvia hispanica </i>como lo sugieren Haque y Goshal (1981); en otras especies autocompatibles, ciertas caracter&iacute;sticas como la protandria (Mann, 1959; Schoen, 1982) o la presencia de plantas androest&eacute;riles (Wolff et al., 1988), pueden impedir la autofecundaci&oacute;n. En <i>S. hispanica</i>, la presencia de plantas androest&eacute;riles determina una mayor frecuencia de cruzamiento natural o baja producci&oacute;n de semilla en ausencia de los polinizadores (Haque y Goshal, 1981).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de tres fenotipos (flor morada, azul y blanca) en la F<sub>1</sub> del cruzamiento de plantas que producen flor blanca con plantas que producen flor morada, ambas de la variedad cultivada de Acatic, no es consistente con la hip&oacute;tesis de que el color de flor es monog&eacute;nico, siendo el color morado completamente dominante sobre el color blanco, como lo reportan en otras especies Donnelly (1958), Miranda (1969), Weiss (1949) y Sangwan y Lodhi (1998). No pudo haber contaminaci&oacute;n de polen de plantas de ch&iacute;a tipo Sinaloa, de flores azules, ubicadas en el segundo lote de polinizaci&oacute;n; ya que, el distanciamiento establecido entre los dos lotes de polinizaci&oacute;n est&aacute; dentro del l&iacute;mite de aislamiento recomendado para ciertas especies entom&oacute;filas como la alfalfa (<i>Medicago sativa</i>) (100&#150;400 m) (SARH, 1980) y adem&aacute;s, las plantas de flor azul que aparecieron en la F<sub>1</sub> presentaron las otras caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas propias de la variedad cultivada de Acatic; entre ellas el car&aacute;cter indehiscente, que es recesivo. Se sugiere, por lo tanto, que probablemente los genes que determinan el color de flor en <i>S. hispanica </i>pueden estar ubicados en m&aacute;s de un locus, con diferente acci&oacute;n g&eacute;nica, donde el color blanco de la flor es la expresi&oacute;n del homocigote recesivo, como lo sugieren Hartwig y Hinson (1963) y Clark y Donnelly (1964) para otras especies. Considerando el sistema de apareamiento mixto o intermedio que caracteriza al cultivar de ch&iacute;a de Acatic, es probable que el genotipo de algunas plantas de flor morada, utilizadas en el lote de polinizaci&oacute;n, fuera heterocig&oacute;tico para uno o m&aacute;s loci, y esto gener&oacute; segregaci&oacute;n, apareciendo plantas con flor azul en las progenies. Lo planteado hipot&eacute;ticamente es posible confirmarlo a trav&eacute;s de la cruza de plantas homocig&oacute;ticas para color de flor, la autofecundaci&oacute;n de la F<sub>1</sub> obtenida y la evaluaci&oacute;n de las frecuencias fenot&iacute;picas en la progenie de la F<sub>2</sub>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cruzamiento natural interpoblacional</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a tipo Sinaloa se sembr&oacute; alternadamente con la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a de Acatic, los l&iacute;mites de fecundaci&oacute;n cruzada en la ch&iacute;a tipo Sinaloa fueron de 0 a 7.47%, con una media general de 1.59% (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n3/a15c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Los l&iacute;mites de cruzamiento natural en el 78.6% de las progenies fueron de 0.1 a 3% y s&oacute;lo en cuatro progenies, no hubo indicios de fecundaci&oacute;n cruzada. Cahill (2004) reporta, en <i>S. hispanica</i>, un 0.24% de cruzamiento natural entre una poblaci&oacute;n silvestre colectada en Cuescomapa, Guerrero y una domesticada procedente de Nicaragua. Los valores de cruzamiento menores al 10% son caracter&iacute;sticos de poblaciones con un sistema de apareamiento principalmente aut&oacute;gamo (Clegg, 1980).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el <a href="#cuadro3">Cuadro 3</a> se observa que las plantas de ch&iacute;a cultivada de Acatic presentan flores de mayor tama&ntilde;o y un mayor n&uacute;mero de inflorescencias con m&aacute;s verticilos y flores que las de ch&iacute;a silvestre de Sinaloa; estas caracter&iacute;sticas indicar&iacute;an una mayor producci&oacute;n de polen en la poblaci&oacute;n de Acatic que deber&iacute;a haber generado mayor frecuencia de fecundaci&oacute;n cruzada. Sin embargo, en el mismo cuadro se registra que las flores en la poblaci&oacute;n de Sinaloa son m&aacute;s peque&ntilde;as y de color menos intenso; el labio inferior de la corola es m&aacute;s angosto, y la menor diferencia entre la longitud del tubo de la corola y la del c&aacute;liz indica que el c&aacute;liz envuelve m&aacute;s a la flor, lo que pudo haber propiciado un comportamiento preferencial del polinizador hacia las flores de la ch&iacute;a de Acatic, favoreciendo una mayor frecuencia de autofecundaci&oacute;n en las plantas de ch&iacute;a de Sinaloa. Seg&uacute;n Ennos y Clegg (1983), los polinizadores son atra&iacute;dos por flores de coloraci&oacute;n m&aacute;s intensa y para Levin (1971) las flores peque&ntilde;as, con menos se&ntilde;ales visuales, est&aacute;n relacionadas con especies aut&oacute;gamas; en <i>S. hispanica</i>, Haque y Goshal (1981) afirman que la autofecundaci&oacute;n se presenta en flores peque&ntilde;as y homost&iacute;licas.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="cuadro3"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a15c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El h&aacute;bitat natural de las poblaciones silvestres de <i>S. hispanica </i>es el bosque de pino (<i>Pinus </i>spp.), de encino (<i>Quercus </i>spp.) o de pino&#150;encino de la Sierra Madre Occidental, del Eje Neovolc&aacute;nico Transversal y de la Sierra Madre del Sur. Las grandes diferencias orogr&aacute;ficas y clim&aacute;ticas que caracterizan al paisaje monta&ntilde;oso han dado origen a un aislamiento geogr&aacute;fico y gen&eacute;tico de dichas poblaciones. Seg&uacute;n Stebbins (1957) y Jain (1976) esta condici&oacute;n es un factor ambiental que favorece la autofecundaci&oacute;n y para Ramamoorthy y Elliot (1998), la fragmentaci&oacute;n geogr&aacute;fica y la autofecundaci&oacute;n ha conducido a la diversificaci&oacute;n y evoluci&oacute;n de las especies de <i>Salvia</i>. En condiciones naturales no existe hibridaci&oacute;n intraespec&iacute;fica entre la ch&iacute;a silvestre y cultivada porque desarrollan en regiones geogr&aacute;ficas diferentes; en cambio, las cruzas controladas entre ellas producen progenie f&eacute;rtil (Cahill, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el <a href="/img/revistas/rcsh/v14n3/a15c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a> se presentan algunas caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas comparativas entre los h&iacute;bridos y sus progenitores. El tama&ntilde;o del c&aacute;liz es la &uacute;nica caracter&iacute;stica en la que no existen diferencias significativas entre el h&iacute;brido y sus progenitores; en cambio, el h&iacute;brido presenta valores intermedios y diferentes (<i>P</i>&#8804;0.01) a los de sus progenitores en la longitud y ancho del limbo de la hoja, la longitud de la corola, el ancho del labio inferior de la corola y el peso de la semilla. El h&iacute;brido no se diferencia de su progenitor cultivado en el di&aacute;metro del tallo, el color de la flor, la longitud de la inflorescencia, las flores en el primer verticilo y el n&uacute;mero de inflorescencias; pero el c&aacute;liz al madurar es abierto (dehiscente) como su progenitor silvestre.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ladizinsky (1985) menciona que la autofecundaci&oacute;n es una barrera para el intercambio gen&eacute;tico entre un cultivo y sus parientes silvestres. Cuando la hibridaci&oacute;n tiene lugar, existe un mayor efecto sobre la poblaci&oacute;n silvestre. La selecci&oacute;n natural act&uacute;a en favor de la dehiscencia del fruto y de la dormancia de la semilla, que aseguran adaptaci&oacute;n en los ambientes naturales; pero tambi&eacute;n hacia caracter&iacute;sticas del progenitor cultivado, como el vigor de la planta y la producci&oacute;n de progenie abundante y de r&aacute;pido crecimiento que confieren adaptabilidad a h&aacute;bitats artificiales. El principal resultado de este proceso puede ser la formaci&oacute;n de razas con alto potencial de dispersi&oacute;n y colonizaci&oacute;n de &aacute;reas naturales diferentes a su ambiente original; algunas de estas razas pueden ser seleccionadas artificialmente y mantenerse bajo cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mayor promedio de cruzamiento natural observado en el cultivar de ch&iacute;a de Acatic, en comparaci&oacute;n con la poblaci&oacute;n de ch&iacute;a silvestre, podr&iacute;a indicar que el sistema de apareamiento de <i>S. hispanica </i>se ha modificado bajo condiciones de cultivo; en <i>Nicotiana rutica</i>, Breese (1959) demostr&oacute; que es posible modificar por selecci&oacute;n la morfolog&iacute;a y el desarrollo de la flor y en consecuencia afectar el sistema reproductivo. La obtenci&oacute;n experimental de h&iacute;bridos de ch&iacute;a, aunque escasos, indica que los progenitores son subespecies o razas de <i>S. hispanica</i>, sin mecanismos de aislamiento reproductivo intraespec&iacute;ficos, por lo que, el intercambio gen&eacute;tico es posible a&uacute;n entre genotipos silvestres y cultivados de origen geogr&aacute;fico diferente. Por lo mismo y siendo subespecies de tipo alop&aacute;trico, se puede decir que su separaci&oacute;n evolutiva es relativamente reciente. Para Harlan <i>et al. </i>(1973) la evoluci&oacute;n bajo domesticaci&oacute;n raramente conduce a la formaci&oacute;n de nuevas especies; las diferencias gen&eacute;ticas entre razas cultivadas y silvestres no son grandes, porque s&oacute;lo pocos genes est&aacute;n implicados en el proceso de domesticaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El intercambio gen&eacute;tico entre tipos de ch&iacute;a pudo haber sido m&aacute;s intenso en la &eacute;poca prehisp&aacute;nica, cuando, dada la importancia de esta planta en la cultura mesoamericana, los genotipos silvestres y cultivados pudieron convivir a lo largo de la zona de distribuci&oacute;n natural de esta especie. Aunque en la &eacute;poca colonial se increment&oacute; el deterioro del germoplasma y del conocimiento tecnol&oacute;gico de la ch&iacute;a, es probable que en ambientes naturales o artificiales hayan permanecido los individuos segregantes de las constantes hibridaciones y hayan dado origen, por selecci&oacute;n, a ciertos materiales cultivados que se utilizan en la actualidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, para ampliar el conocimiento sobre el tipo de polinizaci&oacute;n de la especie es conveniente desarrollar investigaci&oacute;n sobre la estructura floral de las poblaciones, el grado de protandria o de androesterilidad en los genotipos, el comportamiento del insecto polinizador y el efecto bajo condiciones de cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerando las condiciones experimentales y ambientales de este trabajo, las conclusiones fueron:</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los genotipos de <i>Salvia hispanica </i>de Acatic presentan un sistema de apareamiento intermedio o mixto, con un promedio de cruzamiento natural de 22.17% y l&iacute;mites de fecundaci&oacute;n cruzada de 10.54 a 42.74%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es probable que el color de flor en el cultivar de Acatic, est&eacute; controlado por m&aacute;s de un par de genes con acci&oacute;n g&eacute;nica diferente a la dominancia completa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando la poblaci&oacute;n silvestre de <i>S. hispanica</i>, tipo Sinaloa, se cruz&oacute; con la poblaci&oacute;n cultivada de Acatic, se estim&oacute; una media de fecundaci&oacute;n cruzada natural de 1.51% y un intervalo de 0.0 a 7.47%, lo que indica un sistema de apareamiento principalmente aut&oacute;gamo en la silvestre.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No existe aislamiento reproductivo entre la ch&iacute;a silvestre de Sinaloa y el cultivar de Acatic, Jalisco, de diferente origen geogr&aacute;fico y grado de domesticaci&oacute;n, lo cual indica que se trata de subespecies o razas pertenecientes a <i>Salvia hispanica</i>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los h&iacute;bridos obtenidos entre las dos subespecies son vigorosos y de alta capacidad reproductiva, como su progenitor cultivado, pero presentan frutos dehiscentes, como el progenitor silvestre.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al ingeniero Guillermo Orozco de Rosas, Departamento de proyectos, Fundaci&oacute;n Produce, Jalisco por habernos donado el material de ch&iacute;a de flor blanca de Acatic.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BREESE, E. L. 1959. Selection for differing degrees of out&#150;breeding in <i>Nicotiana rustica. </i>Annals of Botany, N.S. 23(90): 331&#150;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650820&pid=S1027-152X200800030001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BRETTING, P. K.; WIDRLECHNER, M. P. 1995. Genetic markers and plant genetic resource management, pp. 11&#150;86. <i>In</i>: Plant Breeding Reviews. Volume 13. JANICK, J. (ed.). John Wiley &amp; Sons, Inc.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650822&pid=S1027-152X200800030001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BUKASOV, S. M. 1963. Las plantas cultivadas de M&eacute;xico, Guatemala y Colombia. Publicaci&oacute;n miscel&aacute;nea # 20. Instituto Interamericano de Ciencias Agr&iacute;colas de la OEA. Zona Andina, Lima, Per&uacute;. pp. 193&#150;194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650824&pid=S1027-152X200800030001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CAHILL, J. P. 2004. Genetic diversity among varieties of chia (<i>Salvia hispanica </i>L.). Genetic Resources and Crop Evolution 51: 773&#150;781.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650826&pid=S1027-152X200800030001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CLARK, E. M.; DONNELLY, E. D. 1964. <i>Vicia</i>. Inheritance of plant color and recessive epistasis in flower color. Crop Science 4: 661&#150;662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650828&pid=S1027-152X200800030001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CLEGG, M. T. 1980. Measuring plant mating systems. BioScience 30(12): 814&#150;818.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650830&pid=S1027-152X200800030001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DONNELLY, E. D. 1958. Inheritance of white flower color in common vetch, <i>Vicia sativa</i>. Agronomy Journal 50: 763&#150;764.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650832&pid=S1027-152X200800030001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ENNOS, R. A.; CLEGG, M. T. 1983. Flower color variation en the morning glory, <i>Ipomoea purpura</i>. The Journal of Heredity 74: 247&#150;250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650834&pid=S1027-152X200800030001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAEGRI, K.; VAN DER PIJL, L. 1979. The Principles of Pollination Ecology. Tercera edici&oacute;n revisada. Pergamon press. London. 244 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650836&pid=S1027-152X200800030001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HAQUE, M. S.; GHOSHAL, K. K. 1981. Floral biology and breeding system in the genus <i>Salvia </i>L. Proc. Indian Natn. Sci. Acad. B47 (5): 716&#150;724.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650838&pid=S1027-152X200800030001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HARLAN, J. R.; DE Wet, J. M. J.; PRICE, E. G. 1973. Comparative evolution in cereals. Evolution 27: 311&#150;325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650840&pid=S1027-152X200800030001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HARTWIG, E. E.; HINSON, K. 1963. Inheritance of flower color of soybeans. Crop Science 3: 152&#150;153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650842&pid=S1027-152X200800030001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">INFANTE, G. S.; Z&Aacute;RATE DE LARA, G. P. 1986. M&eacute;todos Estad&iacute;sticos. Segunda reimpresi&oacute;n, Editorial Trillas, M&eacute;xico. 643 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650844&pid=S1027-152X200800030001500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JAIN, S. K. 1976. The evolution of inbreeding in plants. Ann. Rev. Ecol. Syst. 7: 469&#150;495.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650846&pid=S1027-152X200800030001500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LADIZINSKY, G. 1985. Founder effect in crop&#150;plant evolution. Economic Botany. 39(2): 191&#150;199.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650848&pid=S1027-152X200800030001500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LEVIN, D. A. 1971. The origin of reproductive isolating mechanisms in flowering plants. Taxon 20(1): 91&#150;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650850&pid=S1027-152X200800030001500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MANN, P. 1959. Systematics of flowering plants. Methuen and Co. Ltd. London. pp. 254&#150;255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650852&pid=S1027-152X200800030001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MARTIN, C.; GERATS, T. 1993. The control of flower coloration, pp. 219&#150;255. <i>In</i>: The Molecular Biology of Flowering. B.R. JORDAN (ed.). C.A.B. Internacional, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650854&pid=S1027-152X200800030001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MART&Iacute;NEZ, M. 1959. Plantas &Uacute;tiles de la Flora Mexicana. Ediciones de Botas. M&eacute;xico. pp. 198&#150;202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650856&pid=S1027-152X200800030001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MIRANDA COL&Iacute;N, S. 1969. Estudio sobre la herencia de tres caracteres de frijol. Agrociencia 4(1): 115&#150;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650858&pid=S1027-152X200800030001500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">RAMAMOORTHY, T. P. 1985. <i>Salvia </i>L., pp. 298&#150;310. <i>In</i>: Flora Faner&oacute;gama del Valle de M&eacute;xico. Volumen II (Dicotiled&oacute;neas). RZEDOWSKI, J.; DE RZEDOWSKI, G.C. (eds.). Instituto Polit&eacute;cnico Nacional. M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650860&pid=S1027-152X200800030001500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">RAMAMOORTHY, T. P.; ELLIOT, M. 1998. Lamiaceae de M&eacute;xico: diversidad, distribuci&oacute;n, endemismo y evoluci&oacute;n, pp. 501&#150;526. <i>In</i>: RAMAMOORTHY, T.P.; BYE, R.; LOT, A.; FA, J. (eds.). Diversidad Biol&oacute;gica de M&eacute;xico: Or&iacute;genes y Distribuci&oacute;n. Primera edici&oacute;n en espa&ntilde;ol. Universidad Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, M&eacute;xico, D. F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650862&pid=S1027-152X200800030001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SANGWAN, R. S.; LODHI, G. P. 1998. Inheritance of flower and pod colour in cowpea (<i>Vigna unguiculata </i>L. Walp.). Euphytica 102: 191&#150;193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650864&pid=S1027-152X200800030001500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SARH. 1980. Normas para la certificaci&oacute;n de semillas. Direcci&oacute;n General de Agricultura, M&eacute;xico. 91 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650866&pid=S1027-152X200800030001500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SCHEMSKE, D. W.; LANDE, R. 1985. The evolution of self&#150;fertilization and inbreeding depression in plants. II. Empirical observations. Evolution 39(1): 41&#150;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650868&pid=S1027-152X200800030001500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SCHOEN, D. J. 1982. The breeding system of <i>Gilia achilleifolia</i>: Variation in floral characteristics and outcrossing rate. Evolution 36(2): 352&#150;360.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650870&pid=S1027-152X200800030001500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">STEBBINS, G. L. 1957. Self&#150;fertilization and population variation in the higher plants. Amer. Natur. 91: 337&#150;354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650872&pid=S1027-152X200800030001500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WEISS, M. G. 1949. Soybeans. Advances in Agronomy 1: 77&#150;157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650874&pid=S1027-152X200800030001500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WOLFF, K.; FRISO, B.; VAN DAMME, J. M. M. 1988. Outcrossing rates and male sterility in natural populations of <i>Plantago coronopus</i>. Theor. Appl. Genet. 76: 190&#150;196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650876&pid=S1027-152X200800030001500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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