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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Sistema enzimático antisenescencia, catalasa-superóxido dismutasa, de frutos de pitahaya (Hylocereus undatus) almacenados con frío]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this investigation was to evaluate the effect of low temperatures on the anti-senescence catalase (EC. 1.11.1.6; CAT)-superoxide dismutase (EC. 1.15.1.1; SOD) enzymatic system of pitahaya (Hylocereus undatus) fruit during storage. Groups of fruits from Tehuacan, Puebla, were stored four days at room temperature (22±1 °C), and at 3, 7 and 11±1 °C for 7, 14 and 21 days, and after each cold-storage period they were kept for four days at 22±1 °C. Catalase and SOD activity was evaluated in fruit pulp from 20 treatments, including a control without storage. Four days at 22±1 °C did not modify CAT nor SOD activity (18.75 y 3.25 U·g-1, respectively) compared with the control. Cold storage significantly diminished CAT activity, relative to the control. Inhibition of CAT activity was not dependent on cold storage temperature or time, but mean inhibition in fruits stored at 11±1 °C (13.07 U·g-1) was slightly lower than at 3 and 7±1 °C (12.39 U·g-1). After cold storage, CAT inhibition was partially or totally reverted after four days of storage at 22±1 °C. SOD activity was not significantly affected by low temperatures, and in general, after cold storage, it was activated with complementary storage at 22±1 °C. CAT activity is inhibited by cold storage, but SOD activity, which diminishes the process of senescence generated by oxidative stress, is activated in the pitahaya fruits.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Sistema enzim&aacute;tico antisenescencia, catalasa&#150;super&oacute;xido dismutasa, de frutos de pitahaya <b> (<i>Hylocereus undatus</i>)</b> almacenados con fr&iacute;o</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Antisenesence anzymatic system, catalase&#150;superoxide dismutase, in pitahaya <b>(<i>Hylocereus undatus</i>)</b> fruits stored at low temparatures</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>R. Balois&#150;Morales<sup>1*</sup>, M. T. Colinas&#150;Le&oacute;n<sup>2</sup>, C. B. Pe&ntilde;a&#150;Valdivia<sup>1</sup>, S. H. Ch&aacute;vez&#150;Franco<sup>1</sup> y </b><b>I. Alia&#150;Tejacal<sup>3</sup></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Recursos Gen&eacute;ticos y Productividad, Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo, Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco, Km. 36.5. Montecillo, Estado de M&eacute;xico. C. P. 56230. M&eacute;xico. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:rosendobm@colpos.mx">rosendobm@colpos.mx</a> <i>(*Autor responsable).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Fitotecnia, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Km. 36.5 Carretera M&eacute;xico&#150; Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, C. P. 56230. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Aut&oacute;noma del Estado de Morelos, Av. Universidad 1001, Cuernavaca, Morelos. C. P. 62210. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 3 de julio, 2007    <br> Aceptado: 30 de abril, 2008</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue evaluar efecto del fr&iacute;o en el sistema enzim&aacute;tico antisenescencia catalasa (EC. 1.11.1.6; CAT)&#150;super&oacute;xido dismutasa (EC. 1.15.1.1; SOD) de frutos de pitahaya (<i>Hylocereus undatus</i>) durante el almacenamiento con fr&iacute;o y temperatura ambiente. Lotes de frutos, cosechados en Tehuac&aacute;n, Puebla, fueron almacenados cuatro d&iacute;as a 22&plusmn;1 &deg;C, y a 3, 7 y 11&plusmn;1 &deg;C durante 7, 14 y 21 d&iacute;as, y cuatro d&iacute;as a 22&plusmn;1 &deg;C al concluir cada per&iacute;odo de frigoalmacenamiento. Se determin&oacute; la actividad CAT y SOD en la pulpa de los frutos de 20 tratamientos que incluy&oacute; un testigo sin almacenamiento. Cuatro d&iacute;as de almacenamiento a 22&plusmn;1 &deg;C no modificaron la actividad CAT o SOD (18.75 y 3.25 U&#183;g<sup>&#150;1</sup>, respectivamente), respecto al testigo. El almacenamiento con fr&iacute;o disminuy&oacute; significativamente la actividad CAT, respecto al testigo. La inhibici&oacute;n de la actividad CAT no mostr&oacute; una tendencia dependiente de la temperatura o tiempo de almacenamiento con fr&iacute;o; pero la inhibici&oacute;n media en los frutos almacenados a 11&plusmn;1 &deg;C (13.07 U&#183;g<sup>&#150;1</sup>) fue ligeramente menor a la alcanzada con el almacenamiento a 3 y 7&plusmn;1 &deg;C (12.39 U&#183;g<sup>&#150;1</sup>). La inhibici&oacute;n de la actividad CAT fue revertida parcial o totalmente con el almacenamiento a 22&plusmn;1 &deg;C por cuatro d&iacute;as despu&eacute;s del frigoalmacenamiento. La actividad SOD no se afect&oacute; significativamente con el fr&iacute;o y, en general, fue incrementada con el almacenamiento a 22&plusmn;1 &deg;C, complementario al frigoalmacenamiento. En respuesta al almacenamiento con fr&iacute;o, la actividad CAT es inhibida, pero SOD, que apoya la disminuci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de senescencia, generados por el estr&eacute;s oxidativo, se activa en los frutos de pitahaya.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave </b>: estr&eacute;s, frigoalmacenamiento, senescencia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of this investigation was to evaluate the effect of low temperatures on the anti&#150;senescence catalase (EC. 1.11.1.6; CAT)&#150;superoxide dismutase (EC. 1.15.1.1; SOD) enzymatic system of pitahaya (<i>Hylocereus undatus</i>) fruit during storage. Groups of fruits from Tehuacan, Puebla, were stored four days at room temperature (22&plusmn;1 &deg;C), and at 3, 7 and 11&plusmn;1 &deg;C for 7, 14 and 21 days, and after each cold&#150;storage period they were kept for four days at 22&plusmn;1 &deg;C. Catalase and SOD activity was evaluated in fruit pulp from 20 treatments, including a control without storage. Four days at 22&plusmn;1 &deg;C did not modify CAT nor SOD activity (18.75 y 3.25 U&#183;g<sup>&#150;1</sup>, respectively) compared with the control. Cold storage significantly diminished CAT activity, relative to the control. Inhibition of CAT activity was not dependent on cold storage temperature or time, but mean inhibition in fruits stored at 11&plusmn;1 &deg;C (13.07 U&#183;g<sup>&#150;1</sup>) was slightly lower than at 3 and 7&plusmn;1 &deg;C (12.39 U&#183;g<sup>&#150;1</sup>). After cold storage, CAT inhibition was partially or totally reverted after four days of storage at 22&plusmn;1 &deg;C. SOD activity was not significantly affected by low temperatures, and in general, after cold storage, it was activated with complementary storage at 22&plusmn;1 &deg;C. CAT activity is inhibited by cold storage, but SOD activity, which diminishes the process of senescence generated by oxidative stress, is activated in the pitahaya fruits.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>stress, cold&#150;storage, senescence.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los frutos de pitahaya (<i>Hylocereus undatus</i>) son considerados ex&oacute;ticos por su sabor y aroma exquisito (Rodr&iacute;guez, 2000), color atractivo de su c&aacute;scara y probablemente, tambi&eacute;n por la oferta reducida de ellos en el mercado, tanto nacional como internacional.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de fr&iacute;o durante el manejo postcosecha de frutos tropicales, como <i>H. undatus</i>, mantiene su calidad, pues disminuyen su metabolismo y prolonga la vida de anaquel. Aunque, las temperaturas bajas retardan la senescencia, se ha se&ntilde;alado que los frutos de algunas especies con origen tropical y subtropical son notablemente sensibles al fr&iacute;o, por lo que la temperatura de almacenamiento puede causar da&ntilde;os, deteriorar el tejido y disminuir el valor comercial (Alia&#150;Tejacal <i>et al</i>., 2000; Wismer, 2003). El oscurecimiento del tejido puede acelerarse durante el almacenamiento con fr&iacute;o y es una de las causas principales de las p&eacute;rdidas durante la poscosecha. El oscurecimiento desarrollado en estas condiciones ha sido relacionado con la acci&oacute;n de la polifenol oxidasa (EC. 1.14.18.1; PFO) y peroxidasa (EC. 1.11.1.7; POD), sobre los fenoles, mientras que los eventos que conducen a la senescencia de los tejidos y la necrosis en los frutos se han vinculado con la formaci&oacute;n y acci&oacute;n de las denominadas especies reactivas de ox&iacute;geno (radicales super&oacute;xido, ox&iacute;geno "singlete", radicales hidroxilo y per&oacute;xido de hidr&oacute;geno).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La maduraci&oacute;n y senescencia pueden ser consideradas como fen&oacute;menos oxidativos, activados al inicio de la senescencia; as&iacute;, la actividad SOD y de otras enzimas, como CAT disminuye y el super&oacute;xido o peroxido de hidr&oacute;geno, podr&iacute;an acumularse hasta niveles t&oacute;xicos para las c&eacute;lulas, y desarrollar da&ntilde;os irreversibles en los tejidos (Masia, 1998). Por lo que, si al menos una de las enzimas est&aacute; activa, existe la posibilidad de que los da&ntilde;os de la senescencia en los frutos se retarden. Con relaci&oacute;n a esto, experimentalmente se ha demostrado la conveniencia de cuantificar la actividad de algunas enzimas, como CAT y SOD, que catalizan las reacciones que disminuyen las concentraciones de las especies reactivas de ox&iacute;geno, que en el caso de los frutos de origen tropical y subtropical es incrementada por el fr&iacute;o, durante el almacenamiento (Lafuente y Sala, 2000; Aquino&#150;Bola&ntilde;os y Mercado&#150;Silva, 2004; Baquero <i>et al</i>., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue evaluar el efecto del fr&iacute;o en el sistema enzim&aacute;tico antisenescencia CAT &#150; SOD de frutos de pitahaya (<i>Hylocereus undatus</i>) durante el almacenamiento con fr&iacute;o y temperatura ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material vegetal</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron frutos de pitahaya cosechados en el Valle de Tehuac&aacute;n, Puebla, en septiembre de 2004, con un &iacute;ndice de cosecha Grado III de acuerdo con la clasificaci&oacute;n de Centuri&oacute;n <i>et al</i>. (2000), se colocaron en cajas de polietileno, con capacidad para 20 kg (previamente desinfectadas) y se transportaron al laboratorio, en un tiempo de 20 horas. En el laboratorio, los frutos fueron seleccionados y se descartaron aquellos con da&ntilde;os. Al final se obtuvo una muestra de 170 frutos, que se separ&oacute; en cinco lotes. Uno fue analizado inmediatamente y fue considerado testigo sin almacenamiento. Los otros cuatro fueron almacenados a 3 &plusmn; 1 &deg;C, 7 &plusmn; 1 &deg;C, 11 &plusmn; 1 &deg;C y temperatura ambiente (22 &plusmn; 1 &deg;C); los lotes almacenados con fr&iacute;o fueron muestreados a los 7, 14 y 21 d&iacute;as y una parte de esas muestras se mantuvo a temperatura ambiente, por cuatro d&iacute;as, y otra fue analizada en ese momento. El lote de almacenamiento a 22 &plusmn; 1 &deg;C se analiz&oacute; despu&eacute;s de cuatro d&iacute;as; similarmente, las muestras transferidas a temperatura ambiente, despu&eacute;s del almacenamiento con fr&iacute;o, se analizaron despu&eacute;s de cuatro d&iacute;as. As&iacute;, se generaron 20 tratamientos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue un completamente al azar, con cinco repeticiones y un fruto como unidad experimental. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico incluy&oacute; ANOVA, y comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias mediante el m&eacute;todo de la prueba de Tukey a una <i>P</i>&#8804;0.5 y fue realizado con el paquete estad&iacute;stico SAS (SAS, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaciones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Catalasa (EC. 1.11.1.6; CAT)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la catalasa se evalu&oacute; con el m&eacute;todo descrito por Blackwell <i>et al</i>. (1990), con modificaciones. La enzima se extrajo a partir de 2 g de pulpa fresca con 5 mililitros de soluci&oacute;n extractora Trizma HCl (triz&#150;HCl) fr&iacute;a, 10 mM (pH 8.5) que conten&iacute;a 1% de polivinil pirrolidona (PVP), la pulpa en la soluci&oacute;n triz&#150;HCl se tritur&oacute; durante 30 segundos en un homogeneizador de tejidos y luego se centrifug&oacute; durante 20 minutos a 10 000 x <i>g </i>a 4 &deg;C. El sobrenadante se utiliz&oacute; para determinar el cambio de absorbancia en 2.83 minutos, a 240 nm en un espectrofot&oacute;metro digital. La actividad enzim&aacute;tica se evalu&oacute; en un volumen total de tres mililitros, de los cuales 2.8 fueron del amortiguador triz&#150;HCl 10 mM (pH 8.5), 0.1 de peroxido de hidr&oacute;geno al 88% (en agua destilada v:v) en triz&#150;HCl 100 mM y 0.1 del sobrenadante. El ensayo se realiz&oacute; a temperatura de entre 20 y 22 &plusmn; 1 &deg;C. La actividad enzim&aacute;tica se presenta en unidades internacionales por gramo de peso fresco de tejido (U&#183;g<sup>&#150;1</sup>), cada unidad de actividad enzim&aacute;tica representa la descomposici&oacute;n de 1 &#956;mol&#183;min<sup>&#150;1</sup> de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Super&oacute;xido dismutasa (EC. 1.15.1.1; SOD)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de SOD se evalu&oacute; con el m&eacute;todo propuesto por Beyer y Fridovich (1987) con modificaciones. La enzima se extrajo a partir de dos gramos de pulpa fresca con cinco mililitros de soluci&oacute;n extractora (amortiguadora de fosfatos) 0.1 M (pH 7.8). La pulpa en soluci&oacute;n amortiguadora se tritur&oacute; durante 30 segundos, con un homogeneizador de tejidos; luego, la mezcla se centrifug&oacute; durante 20 minutos a 12 500 x <i>g </i>a 4 &deg;C. El sobrenadante se utiliz&oacute; para evaluar el cambio de absorbancia en 2.83 minutos a 560 nm en el espectrofo&#150;t&oacute;metro digital. A tres mililitros de una soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos 0.1 M pH 7.8 &#91;con EDTA 0.01 mM, 3.66 ml de L&#150;metionina, 2.44 ml de NBT y 1.83 ml de Triton X&#150;100 en un volumen final de 66 ml&#93; se les adicion&oacute; 0.5 ml del sobrenadante y 0.03 ml de riboflavina, esta mezcla de reacci&oacute;n se ilumin&oacute; durante siete minutos con una l&aacute;mpara con luz fluorescente de 20 watts Grolux y se procedi&oacute; a leer la absorbancia. El ensayo se realiz&oacute; a temperatura de entre 20 y 22 &plusmn; 1&deg;C. El incremento de la absorbancia, debido a la formaci&oacute;n de azul de nitro tetrazolium formazan por unidad de tiempo determina la velocidad de reacci&oacute;n. La actividad enzim&aacute;tica es presentada en unidades internacionales por gramo de peso fresco (U&#183;g<sup>&#150;1</sup>), cada unidad de SOD es igual a la cantidad del sobrenadante que fotoinhibe la formaci&oacute;n de 50% de azul de nitro tetrazolium formazan.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad CAT y SOD se mantuvo sin cambio significativo despu&eacute;s de cuatro d&iacute;as de almacenamiento a 22 &plusmn; 1 &deg;C (<a href="#cuadro1">Cuadro 1</a>). Este resultado indica que ambas enzimas son notablemente estables durante los primeros d&iacute;as de la postcosecha, en los frutos de pitahaya a temperatura ambiente. La estabilidad de la actividad de CAT en los frutos almacenados a 22 &plusmn; 1 &deg;C contrasta con lo observado en frutos de mamey (<i>P. sapota</i>) por Alia <i>et al. </i>(2005), quienes determinaron que durante el cambio de madurez fisiol&oacute;gica a madurez de consumo, a 20 &deg;C por 12 d&iacute;as, la actividad CAT se increment&oacute; significativamente. Estas diferencias pueden ser dependientes de la especie, momento fisiol&oacute;gico de cosecha, tiempo de almacenamiento, entre otros factores.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="cuadro1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a10c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El almacenamiento con fr&iacute;o disminuy&oacute; significativamente la actividad CAT, respecto a los frutos reci&eacute;n cosechados. El almacenamiento a 3 &plusmn; 1 &deg;C (durante 14 d&iacute;as) gener&oacute; la m&aacute;xima inhibici&oacute;n de todos los tratamientos (mayor al 50%) de la actividad CAT de los frutos (<a href="#figura1">Figura 1</a>). La inhibici&oacute;n de la actividad CAT no mostr&oacute; una tendencia dependiente de la temperatura o tiempo de almacenamiento con fr&iacute;o; pero la inhibici&oacute;n media en los frutos almacenados a 11 &plusmn; 1 &deg;C (13.07 U&middot;g<sup>&#150;1</sup>) fue ligeramente menor a la alcanzada con el almacenamiento a 3 y 7 &plusmn; 1 &deg;C (12.39 U&middot;g<sup>&#150;1</sup>). La inhibici&oacute;n de la actividad CAT por el fr&iacute;o puede estar asociada al proceso de senescencia, con la consecuente acumulaci&oacute;n de especies qu&iacute;micas reactivas, como O<sub>2</sub><sup>&#150;</sup> y H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, que propician el incremento de los s&iacute;ntomas del denominado estr&eacute;s oxidativo.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a10f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La CAT es una enzima antioxidante involucrada en los mecanismos de protecci&oacute;n contra el estr&eacute;s por fr&iacute;o en los frutos, como la mandarina (Lafuente y Sala, 2000). Los frutos de pitahaya almacenados a 7 &plusmn; 1 &deg;C durante 7, 14 y 21 d&iacute;as no mostraron una variaci&oacute;n significativa en la actividad CAT, inclusive cuando fueron transferidos a temperatura ambiente, su actividad enzim&aacute;tica fue similar entre los tratamientos (<a href="#figura1">Figura 1 B</a>). En contraste, la actividad CAT si mostr&oacute; tendencia a aumentar en los frutos transferidos a temperatura ambiente por cuatro d&iacute;as despu&eacute;s de ser almacenados con fr&iacute;o durante el per&iacute;odo m&aacute;s prolongado, el de 21 d&iacute;as (<a href="#figura1">Figura 1 B</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la SOD se afect&oacute; poco con el fr&iacute;o durante el almacenamiento; al contrario, el almacenamiento a 11 &plusmn; 1 &deg;C increment&oacute; significativamente la actividad de esta enzima. En general, la transferencia de los frutos a la temperatura ambiente, almacenados previamente con fr&iacute;o, increment&oacute; la actividad de la SOD (<a href="#figura2">Figura 2</a>). Estos resultados indican que en respuesta al almacenamiento con fr&iacute;o, al menos una de las enzimas que apoyan la disminuci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de senescencia, activados por el estr&eacute;s oxidativo, se activa en los frutos de pitahaya.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a10f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La maduraci&oacute;n y senescencia son procesos bioqu&iacute;mico&#150;fisiol&oacute;gicos naturales de los frutos, pero pueden ser acelerados por diversos factores, y ambos incluyen procesos oxidativos; estos, son activados notablemente al inicio de la senescencia. As&iacute;, durante la senescencia la actividad SOD y otras enzimas, como CAT disminuye, el super&oacute;xido o peroxido de hidr&oacute;geno son acumulados hasta niveles t&oacute;xicos para las c&eacute;lulas y se desarrollan da&ntilde;os irreversibles en los tejidos (Masia, 1998). Por lo que, si al menos una de las enzimas est&aacute; activa, podr&iacute;an retardarse los da&ntilde;os de la senescencia en los frutos. Los resultados del presente estudio refuerzan la idea de que la evaluaci&oacute;n de la actividad SOD y CAT en un mayor n&uacute;mero de variantes de pitahaya podr&iacute;a ayudar a seleccionar aquellas que toleren mayormente el almacenamiento postcosecha con fr&iacute;o y en consecuencia con mayor potencial de comercializaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El almacenamiento de los frutos de pitahaya a 22 &plusmn; 1 &deg;C, durante cuatro d&iacute;as, no modifica significativamente la actividad del sistema enzim&aacute;tico anti&#150;senescencia, representado por CAT y SOD. Sin embargo, el mismo sistema anti&#150;senescencia es afectado parcialmente por el fr&iacute;o durante el almacenamiento, pues la actividad CAT es significativamente sensible al fr&iacute;o. La inhibici&oacute;n de la actividad CAT se incrementa con las temperaturas menores, y es parcialmente revertida con la transferencia de los frutos a la temperatura ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste con la actividad CAT, la actividad SOD es insensible al fr&iacute;o durante el almacenamiento de los frutos. En respuesta al almacenamiento con fr&iacute;o, al menos una de las enzimas (SOD) que apoyan la disminuci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de senescencia, generados por el estr&eacute;s oxidativo, se activa en los frutos de pitahaya.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALIA, TEJACAL, I.; COLINAS LE&Oacute;N, M. T.; MART&Iacute;NEZ DAMI&Aacute;N, M. T.; SOTO, H. M. R. 2005. Da&ntilde;os por fr&iacute;o en zapote mamey (<i>Pouteria sapota </i>(Jacq.) H.E. Moore and Stearn) II: Cambios en fenoles totales y actividad enzim&aacute;tica. Rev. Fitotec. Mex. Vol. 28(1): 25&#150;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650152&pid=S1027-152X200800030001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALIA&#150;TEJACAL, I.; SAUCEDO&#150;VELOZ, C.; MART&Iacute;NEZ&#150;DAMI&Aacute;N, M. T.; COLINAS&#150;LE&Oacute;N, M. T. 2000. Temperaturas de almacenamiento y maduraci&oacute;n en frutos de mamey (<i>Pouteria sapota </i>(Jacq.) H. E. Moore and Stearn). Rev. Chapingo serie Horticultura 6(1): 73&#150;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650154&pid=S1027-152X200800030001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AQUINO&#150;BOLA&Ntilde;OS, E. N.; MERCADO&#150;SILVA, E 2004. Effects of poliphenol oxidase and preoxidase activity, phenolics and lignin content on the browning of cut jicama. Postharvest Biology and Technology 33: 275&#150;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650156&pid=S1027-152X200800030001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BAQUERO, D. L. E.; CASTRO, R. J. A.; NARV&Aacute;EZ, C. C. E. 2005. Catalasa, peroxidasa y polifenoloxidasa de pitaya amarilla (<i>Acanthocereus pitajaya</i>): maduraci&oacute;n y senescencia. Acta Biol&oacute;gica Colombiana 10: 49&#150;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650158&pid=S1027-152X200800030001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BEYER, W. F.; FRIDOVICH, I. 1987. Assaying for superoxide dismutase activity: some large consequences of minor changes in conditions. Anal. Biochem. Biochem. 161: 559&#150;566.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650160&pid=S1027-152X200800030001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BLACKWELL, R. D.; MURRAY, A. J. S.; LEA, P. J. 1990. Enzymes of pho&#150;torespiratory carbon pathway. <i>In</i>: Methods in Plant Biochemistry. P. J. Lea (ed). Academic Press. USA. pp. 129&#150;144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650162&pid=S1027-152X200800030001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CENTURI&Oacute;N, Y. A.; P&Eacute;REZ, R. V.; SOL&Iacute;S, P.; B&Aacute;EZ, S. R; MERCADO, S. E.; SAUCEDO, V. C.; SAURI, D. E. 2000. Crecimiento, desarrollo y comercializaci&oacute;n de la pitahaya (<i>Hylocereus undatus</i>) durante la postcosecha. Rev. Iber. Hort. Mex. 7(3): 419&#150;425.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650164&pid=S1027-152X200800030001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LAFUENTE, M. T.; SALA, J. M. 2000. Catalasa enzyme activity is related to tolerance of mandarin fruits to chilling. Postharvest Biology and Technology 20:81&#150;89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650166&pid=S1027-152X200800030001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MASIA, A. 1998. Superoxide dismutase and catalase activities in apple fruit during ripening and post&#150;harvest and with special reference to ethylene. Physiol. Plant. 104: 668&#150;672.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650168&pid=S1027-152X200800030001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS. 2000. SAS. User&acute;s guide: statistics. Versi&oacute;n 8.1. SAS. Institute Inc. Cary, NC. USA. 1290 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650170&pid=S1027-152X200800030001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WISMER, W. V. 2003. Low temperature as a causative agent of oxidative stress in postharvest crops. pp. 55&#150;68. <i>In</i>: HODGES M., D. (ed). Postharvest Oxidative Stress in Horticultural Crops. Food Products Press. New York.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6650172&pid=S1027-152X200800030001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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