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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Producción masiva de Trichoderma harzianum Rifai en diferentes sustratos orgánicos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[One of the substrates used to reproduce Trichoderma spp., is the relatively high cost whole rice grain. In order to find an organic, economical and available substrate in the region, in which this fungus could have a good development and a high viable spores production, this research was established with the objective to evaluate 15 organic substrates for T. harzianum massive reproduction and spores viability, and to associate it with the nutrimental composition of the evaluated substrates. Husk tomato (flower calyx); rice (flower glumes, lemma and palea); garlic (coriaceous cataphyllary); cocoa (seed coat); sesame (fruit pericarp); peanut (fruit pericarp); coffee (fruit pericarp); bean sheath (fruit pericarp); corn cob (feminine inflorescence rachis); rice, sorghum, bird seed and corn grains; soybean and corn stubble were evaluated. A completely randomized design with eight replications was used. Spore number and viability percentage was quantified and it was correlated with the proximal chemical analysis. The corn cob was the best substrate for the T. harzianum production and spore germination with 4.43 x 10(8) ml-1 and 99.0% viability. Based on the proximal chemical analysis, the mycelium development, esporulation and spores viability, T. harzianum has a good production in those organic substrates that have high humidity percentage, low mineral, protein and fat content, and an intermediate fiber percentage.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Producci&oacute;n masiva de <b><i>Trichoderma harzianum</i></b> Rifai en diferentes sustratos org&aacute;nicos</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b><b><i>Trichoderma harzianum</i></b> Rifai</b> <b>mass production in different organic sustrates</b> </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>A. C. Michel&#150;Aceves<sup>1*</sup>, M. A. Otero&#150;S&aacute;nchez<sup>1</sup>, R. D. Mart&iacute;nez&#150;Rojero<sup>1</sup>, N. L. Rodr&iacute;guez&#150;Mor&aacute;n<sup>1</sup>, R. Ariza&#150;Flores<sup>2</sup> y  A. Barrios&#150;Ayala<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Centro de Estudios Profesionales del Colegio Superior Agropecuario del Estado de Guerrero, Av. Vicente Guerrero No. 81, Colonia Centro. Iguala, Guerrero. C. P. 40000. M&eacute;xico. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:amichelaceves@yahoo.com.mx">amichelaceves@yahoo.com.mx</a> <i>(*Autor responsable).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP&#150;Guerrero), Campo Experimental Chilpancingo. Av. Ruffo Figueroa S/N, Colonia Bur&oacute;cratas, Chilpancingo, Guerrero. C. P. 39090. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 14 de septiembre, 2005    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: 8 de enero, 2008 </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Uno de los sustratos utilizados para reproducir a <i>Trichoderma </i>spp., es el grano entero de arroz, el cual tiene costo relativamente alto. Con el prop&oacute;sito de encontrar un sustrato org&aacute;nico, econ&oacute;mico y de f&aacute;cil adquisici&oacute;n en la regi&oacute;n, en el cual este hongo tenga un buen desarrollo y una alta producci&oacute;n de esporas viables, se estableci&oacute; esta investigaci&oacute;n que tuvo como objetivos evaluar 15 sustratos org&aacute;nicos en la reproducci&oacute;n masiva y viabilidad de esporas de <i>T. harzianum </i>y asociarlo con la composici&oacute;n nutrimental de los sustratos. Se evaluaron c&aacute;scaras de tomate (c&aacute;liz maduro acrescente de la flor, que encierra al fruto); arroz (glumas, lemas y palea de la flor); ajo (cat&aacute;filas cori&aacute;ceas); cacao (testa de la semilla); ajonjol&iacute; (pericarpio del fruto); cacahuate (pericarpio del fruto); caf&eacute; (pericarpio del fruto); vaina de frijol (pericarpio del fruto); olote de ma&iacute;z (raquis de la inflorescencia femenina); granos de arroz, sorgo, alpiste y ma&iacute;z; rastrojo de soya y ma&iacute;z. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar, con ocho repeticiones. Se cuantific&oacute; el n&uacute;mero y porcentaje de viabilidad de las esporas y se correlacion&oacute; con el an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal. El olote fue el mejor sustrato, tanto en la producci&oacute;n como en la germinaci&oacute;n de esporas de <i>T. harzianum </i>con 4.43 x 10<sup>8</sup> ml<sup>&#150;1</sup> y 99.0% de viabilidad, respectivamente. Con base en el an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal, el desarrollo del micelio, esporulaci&oacute;n y viabilidad de las esporas, <i>T. harzianum </i>tiene un buena producci&oacute;n en aquellos sustratos org&aacute;nicos que tienen alto porcentaje de humedad, bajo contenido de minerales, prote&iacute;na y grasa, y un porcentaje intermedio de fibra.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>reproducci&oacute;n masiva, olote, an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal, agente de control biol&oacute;gico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">One of the substrates used to reproduce <i>Trichoderma </i>spp., is the relatively high cost whole rice grain. In order to find an organic, economical and available substrate in the region, in which this fungus could have a good development and a high viable spores production, this research was established with the objective to evaluate 15 organic substrates for <i>T. harzianum </i>massive reproduction and spores viability, and to associate it with the nutrimental composition of the evaluated substrates. Husk tomato (flower calyx); rice (flower glumes, lemma and palea); garlic (coriaceous cataphyllary); cocoa (seed coat); sesame (fruit pericarp); peanut (fruit pericarp); coffee (fruit pericarp); bean sheath (fruit pericarp); corn cob (feminine inflorescence rachis); rice, sorghum, bird seed and corn grains; soybean and corn stubble were evaluated. A completely randomized design with eight replications was used. Spore number and viability percentage  was quantified  and it was correlated with the proximal chemical analysis. The corn cob was the best substrate for the <i>T. harzianum </i>production and spore germination with 4.43 x 10<sup>8 </sup>ml<sup>&#150;1</sup> and 99.0%  viability. Based on the proximal chemical analysis, the mycelium development, esporulation and spores viability, <i>T. harzianum </i>has a good production in those organic substrates that have high humidity percentage, low mineral, protein and fat content, and an intermediate fiber percentage.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>massive reproduction, corn cob, chemical proximal analysis, biological control agent.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de las enfermedades de plantas generalmente se controlan con fungicidas qu&iacute;micos, los cuales se aplican al suelo, semillas, follaje y fruto. Las consecuencias negativas sobre la salud, la contaminaci&oacute;n del ambiente, la residualidad y el desarrollo de resistencia, ha generado la b&uacute;squeda de alternativas de reemplazo con la incorporaci&oacute;n de agentes biol&oacute;gicos. El control biol&oacute;gico (CB) utiliza organismos vivos; involucra tambi&eacute;n microorganismos cuya actividad biol&oacute;gica disminuye el da&ntilde;o causado por los pat&oacute;genos de las plantas (Herrera&#150;Estrella y Chet, 1998). Debido a este antagonismo se logra reducir o eliminar la incidencia del fitopat&oacute;geno. Independientemente de su actividad, un agente de biocontrol eficaz debe tener la capacidad de sobrevivir en el h&aacute;bitat donde es aplicado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El g&eacute;nero <i>Trichoderma </i>es un hongo cosmopolita, habitante natural del suelo y algunas de sus especies tienen la habilidad de producir enzimas que atacan o inhiben a hongos fitopat&oacute;genos y que lo hacen un excelente agente de biocontrol (Michel&#150;Aceves <i>et al., </i>2001). Gran parte del potencial de este hongo radica en el hecho de que presenta un amplio espectro de antagonismo con la capacidad de controlar muchos fitopat&oacute;genos como <i>Rhizoctonia, Pythium, Sclerotium </i>y <i>Phytophthora </i>entre otros, que afectan muchos cultivos de inter&eacute;s comercial como ma&iacute;z, cebolla, tomate, fr&iacute;jol, trigo, etc. (Chet <i>et al</i>., 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La necesidad de reducir el uso de fungicidas en el control fitosanitario hace necesario desarrollar tecnolog&iacute;as que permitan de forma f&aacute;cil, econ&oacute;mica y efectiva obtener productos a partir de microorganismos, con la calidad y cantidad suficiente para su aplicaci&oacute;n masiva en las &aacute;reas de cultivo. <i>Trichoderma </i>spp., se desarrolla bajo diferentes condiciones ambientales y de nutrientes; para su producci&oacute;n masiva en condiciones <i>in vitro </i>tiene la capacidad de cultivarse sobre diferentes sustratos de bajo costo (Hjeljord y Tronsmo, 1998). Los hongos antag&oacute;nicos poseen caracter&iacute;sticas que definen muy bien sus posibilidades como biocontroladores, por su alto poder patog&eacute;nico y capacidad de producir ep&iacute;fitas; sin embargo, su producci&oacute;n a escala comercial e industrial presenta algunos inconvenientes como el desconocimiento de sustratos alternativos eficientes, infraestructura y equipo m&iacute;nimo necesario; situaci&oacute;n que ha limitado su desarrollo y utilizaci&oacute;n a mayor escala. Existen diferentes m&eacute;todos para reproducir a <i>Trichoderma</i>; sin embargo, tienen un costo elevado. Uno de los sustratos m&aacute;s utilizados es el grano entero de arroz, el cual tiene un costo relativamente alto, por lo cual se pretende incorporar el uso de sustratos regionales para su reproducci&oacute;n (Fern&aacute;ndez&#150;Larrea, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en la problem&aacute;tica presentada, la finalidad de esta investigaci&oacute;n es encontrar un sustrato econ&oacute;mico y de f&aacute;cil adquisici&oacute;n, en el cual <i>Trichoderma </i>tenga un buen desarrollo y una elevada producci&oacute;n de esporas viables. Se establecieron los siguientes objetivos: a) Evaluar 15 sustratos org&aacute;nicos en la reproducci&oacute;n masiva de <i>T. harzianum. </i>b) Seleccionar el mejor sustrato en el que se obtenga la mayor cantidad de esporas. c) Medir la viabilidad de las esporas en cada uno de los sustratos y d) Determinar mediante un an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal, la composici&oacute;n nutrimental de los sustratos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; la cepa Thzcf&#150;12, la cual pertenece al cepario del laboratorio de Control Biol&oacute;gico de la Universidad de Colima y Fitopatolog&iacute;a del CSAEGRO. Se evaluaron 15 sustratos (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n2/a12c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). La cantidad utilizada de cada uno de los sustratos fue variable porque se consider&oacute; el mismo volumen; todos cubr&iacute;an una tercera parte del volumen de la bolsa de poliestireno de 25 cm de ancho por 34 cm de largo. Los 15 tratamientos se distribuyeron en un dise&ntilde;o completamente al azar, con ocho repeticiones. La unidad experimental estuvo formada por una bolsa de poliestireno con el sustrato. Se contabiliz&oacute; el n&uacute;mero de esporas por mililitro.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los sustratos se lavaron con agua de la llave para quitarles el polvo, se escurri&oacute; el exceso de agua, para posteriormente agregar agua destilada y el antibi&oacute;tico cloranfenicol a 500 ppm, hasta quedar sumergidos en su totalidad; se dej&oacute; reposar por 45 min. Despu&eacute;s se escurri&oacute; el agua con el antibi&oacute;tico y se llenaron bolsas con las cantidades antes indicadas, amarr&aacute;ndose en la parte superior con una liga, para su posterior esterilizaci&oacute;n en el autoclave durante 30 minutos a 15 libras de presi&oacute;n (Michel&#150;Aceves <i>et al., </i>2005b).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sustrato est&eacute;ril una vez fr&iacute;o se inocul&oacute; en condiciones as&eacute;pticas, agregando 5 ml de una suspensi&oacute;n de esporas de <i>Trichoderma harzianum </i>(Thzcf&#150;12) a una concentraci&oacute;n de 1 x 10<sup>3</sup>. Los sustratos inoculados se incubaron por un periodo de 21 d&iacute;as a 25 &plusmn; 2 &deg;C, suministr&aacute;ndoles aire dentro de la c&aacute;mara de aislamiento cada cinco d&iacute;as, para un buen crecimiento y esporulaci&oacute;n del hongo. Para la obtenci&oacute;n de esporas se agreg&oacute; inicialmente 250 ml de agua destilada est&eacute;ril a cada bolsa con la finalidad de separar el mayor n&uacute;mero de esporas, finalmente se afor&oacute; a 300 ml para cada tratamiento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n de esporas de cada suspensi&oacute;n obtenida se realiz&oacute; con la ayuda de una c&aacute;mara hematim&eacute;trica de Neubauer (Lumycite, Propper, Manufacturing Co. Inc. Long Island, NY). El conteo en la c&aacute;mara se realiz&oacute; cuatro veces para cada tratamiento y repetici&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la viabilidad de las esporas, en cajas Petri de 9.0 cm de di&aacute;metro con medio de cultivo papa dextrosa agar (PDA), se sembraron 100 esporas, a partir de una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>3</sup> se utiliz&oacute; 0.1 ml por caja. A las 48 horas posteriores a la siembra se contabiliz&oacute; el n&uacute;mero de unidades formadoras de colonias (ufc) germinadas. Los 15 tratamientos se distribuyeron en un dise&ntilde;o completamente al azar, con cuatro repeticiones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de materia seca, humedad, cenizas, extracto et&eacute;reo, fibra cruda y prote&iacute;na cruda, del an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal, se siguieron los m&eacute;todos oficiales de an&aacute;lisis qu&iacute;micos (A.O.A.C., 1980). Los 15 sustratos se molieron con la ayuda de un molino utilizando malla No. 20; posteriormente se utiliz&oacute; 1 y 2 g, dependiendo del sustrato y del an&aacute;lisis a realizar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A los resultados obtenidos de todas las variables se les realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) con el paquete estad&iacute;stico SAS (SAS, Institute, Inc. 1988), de acuerdo con el dise&ntilde;o completamente al azar; tambi&eacute;n se realiz&oacute; la prueba de Tukey (<i>P</i>&lt;0.05) y un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>N&uacute;mero de esporas por mililitro</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de varianza mostr&oacute; efectos estad&iacute;sticos altamente significativos entre los sustratos evaluados (<i>P</i>&#8804;0.0001); el rango de producci&oacute;n fue muy heterog&eacute;neo, vari&oacute; desde 0.25 a 4.43 x 10<sup>8</sup> esporas ml<sup>&#150;1</sup> para los sustratos ma&iacute;z quebrado y olote, respectivamente (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n2/a12c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Las esporas (conidios) de <i>Trichoderma </i>spp. son unicelulares de forma globosa a subglobosa o elipsoidal, de 5 &#956;m de largo y ancho (Michel&#150;Aceves <i>et al.</i>, 2001). Estos resultados son inferiores a los obtenidos por Guti&eacute;rrez&#150;Ochoa <i>et al., </i>citados por Michel&#150;Aceves <i>et al. </i>(2005b), quienes reportan 9.68 x 10<sup>8</sup> y 6.28 x 10<sup>8</sup> esporas ml<sup>&#150;1</sup>, al utilizar como sustrato cempas&uacute;chil <i>Tagetes erecta </i>L. y guam&uacute;chil <i>Pithecollobium dulce </i>(Roxb.) Benth.<i>, </i>respectivamente. Por su parte Michel&#150;Aceves <i>et al. </i>(2005b), con el sustrato que tradicionalmente se utiliza en la reproducci&oacute;n masiva de hongos entomopat&oacute;genos (grano entero de arroz) obtuvo 4.01 x 10<sup>8 </sup>esporas ml<sup>&#150;1</sup>, el cual es superado ligeramente por el olote en esta investigaci&oacute;n, a pesar de utilizar 150 g, lo cual puede deberse a la mayor superficie de contacto. <i>Trichoderma </i>spp., es un hongo muy vers&aacute;til, de f&aacute;cil manipulaci&oacute;n (Fern&aacute;ndez&#150;Larrea, 2001), que presenta la versatilidad de cultivarse y desarrollarse sobre muchos y diferentes sustratos (Hjeljord y Tronsmo, 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es importante considerar la concentraci&oacute;n de esporas que se aplica en el control biol&oacute;gico de fitopat&oacute;genos; entre mayor sean, los resultados son mejores. Generalmente en trabajos de invernadero y campo se utiliza al menos una concentraci&oacute;n de 1 x 10<sup>8</sup> esporas ml<sup>&#150;1</sup> (Cooney <i>et al</i>., 1997). La mayor&iacute;a de los sustratos evaluados en la presente investigaci&oacute;n alcanz&oacute; esta concentraci&oacute;n; sin embargo, tanto el arroz y el alpiste, a pesar de ser eficientes en la producci&oacute;n de esporas, son sustratos con un elevado valor econ&oacute;mico en el mercado, por lo cual no se recomendar&iacute;a su compra para estos fines, sobre todo existiendo sustratos regionales m&aacute;s econ&oacute;micos, considerando que se busca reducir los costos en la producci&oacute;n de esporas. Se corrobora lo indicado por Hjeljord y Tronsmo (1998), en el sentido de que <i>Trichoderma </i>spp., para su producci&oacute;n masiva en condiciones <i>in vitro </i>presenta facilidad de cultivarse sobre diferentes sustratos de bajo costo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porcentaje de viabilidad</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen efectos altamente significativos entre los tratamientos evaluados (<i>P</i>&#8804;0.0001). Los rangos del porcentaje de viabilidad son muy homog&eacute;neos, ya que la diferencia entre el mayor y el menor fue de 11.2%; el sustrato que tiene una excelente germinaci&oacute;n es el olote con un 99.0%, seguido por el grano de arroz (97.5%) y c&aacute;scara de arroz (97.0%) mientras que las cat&aacute;filas de ajo es el sustrato con el menor porcentaje (87.8%) de viabilidad (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n2/a12c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es importante mencionar que en todos los tratamientos el porcentaje de viabilidad es alto, lo que significa que en ning&uacute;n sustrato se generan sustancias que afecten negativamente la germinaci&oacute;n de las esporas, a pesar de su aroma fuerte como es el caso de la cat&aacute;fila de ajo y c&aacute;scara de caf&eacute; por presencia de metabolitos secundarios vol&aacute;tiles como la alicina en el ajo y &aacute;cido f&oacute;rmico y/o ac&eacute;tico, entre otros, en el caf&eacute;. Esta situaci&oacute;n se debe considerar al seleccionar al sustrato molido que se utiliza en la reproducci&oacute;n masiva (Fern&aacute;ndez&#150;Larrea, 2004). Existen sustancias que pueden tener los sustratos que pudieran tener efecto sobre las esporas. Tal es el caso del efecto de las enzimas quitinasas y glucanasas producidas por <i>Tri&#150;choderma </i>que tienen acci&oacute;n negativa sobre la viabilidad de esporas al reducir la germinaci&oacute;n hasta un 73.9% de <i>Fusarium oxysporum </i>(Michel&#150;Aceves <i>et al., </i>2005a), mientras que en los resultados de la presente investigaci&oacute;n las esporas de <i>Trichoderma </i>germinaron satisfactoriamente de 87.8 a 99.0%, lo que indica que los compuestos que tienen los diferentes sustratos no influyen negativamente en la viabilidad de las esporas producidas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis Qu&iacute;mico Proximal</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ANOVA realizado para cada componente del an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal detect&oacute; diferencias altamente significativas (<i>P</i>&#8804;0.0001) en todos los casos. Se har&aacute; menci&oacute;n del sustrato que mayor producci&oacute;n de esporas obtuvo y su correlaci&oacute;n con el contendido nutrimental de cada material utilizado como sustrato.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los rangos de materia seca y humedad son muy heterog&eacute;neos (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n2/a12c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>); el rango entre el mayor y el menor porcentaje de humedad es de 12.45%. El sustrato con la menor cantidad de materia seca y mayor humedad fue el grano de arroz (87.44 y 12.56%, respectivamente); mientras que la c&aacute;scara de arroz fue la de mayor materia seca y menor humedad (99.89 y 0.11%, respectivamente).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el olote se obtuvo significativamente mayor producci&oacute;n de esporas y present&oacute; 91.94% de humedad y 8.06% de materia seca. Con base en estos resultados, <i>Trichoderma harzianum </i>prefiere sustratos que contengan entre 7.0 y 11.5% de humedad para su buen desarrollo y producci&oacute;n de esporas. No se manifest&oacute; correlaci&oacute;n significativa en estas dos variables con el n&uacute;mero de esporas por mililitro producidas; sin embargo, s&iacute; existe correlaci&oacute;n positiva entre el porcentaje de viabilidad y materia seca, y negativa con humedad (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n2/a12c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>), por lo que un exceso de humedad en el sustrato repercute negativamente en la germinaci&oacute;n de esporas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, la mayor&iacute;a de los hongos requieren de humedad para la germinaci&oacute;n de esporas, pero los excesos son perjudiciales (Agosin y Aguilera, 1998). La mayor&iacute;a de las especies de <i>Trichoderma </i>son fotosensitivas, esporulan r&aacute;pida y abundantemente en muchos sustratos naturales o artificiales sobre los cuales forman anillos conc&eacute;ntricos de esporas en respuesta a la alternancia de luz y oscuridad, con bajos requerimientos de humedad, caracter&iacute;sticas inherentes a las especies agrupadas en esta categor&iacute;a (Papavizas, 1995).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes obtenidos de humedad para c&aacute;scara de cacahuate, alpiste y sorgo son superiores a los indicados por Crampton y Harris (1979) y Church y Pond (1997) quienes reportan de 5.3&#150;7.7, 8.7, y 11.0%, respectivamente; y son inferiores para el rastrojo de ma&iacute;z con 17.6% de humedad. En este sentido, Fuentes <i>et al</i>., 2001 realizaron un an&aacute;lisis qu&iacute;mico <i>in vitro </i>del rastrojo de ma&iacute;z y los valores obtenidos para la materia seca, humedad y prote&iacute;na cruda son similares a los reportados en la presente investigaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de cenizas representa la cantidad de minerales que contiene un sustrato o alimento (Tejada, 1992). Existe una diferencia entre el mayor y menor contenido de 20.04%; la c&aacute;scara de arroz tiene la mayor cantidad de cenizas con 22.22% y el olote la menor con 2.18% (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n2/a12c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Como el olote fue el mejor sustrato en la producci&oacute;n de esporas y el de menor contenido de ceniza o minerales, se pone de manifiesto que este hongo no es exigente en su nutrici&oacute;n, ya que con un m&iacute;nimo de nutrientes se desarrolla y forma esporas satisfactoriamente. Esta tendencia se corrobora con la correlaci&oacute;n negativa en la producci&oacute;n de esporas; concuerda con lo consignado por Fern&aacute;ndez&#150;Larrea (2001), en el sentido de que <i>Trichoderma </i>spp., se desarrolla bien en muchos sustratos y no exige muchos nutrientes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores que se obtienen en esta investigaci&oacute;n son altos comparados con los contenidos de cenizas que reporta Crampton y Harris (1979) y Church y Pond (1997) quienes mencionan de 4.3 a 7.0% en c&aacute;scara de cacahuate, 6.6% en alpiste, 1.7% en sorgo y 5.5% en el rastrojo de ma&iacute;z. Asimismo, Fuentes <i>et al., </i>(2001), reportan 6.83% de cenizas para el rastrojo de ma&iacute;z. Las diferencias pueden explicarse en funci&oacute;n de las diferencias propias de cada genotipo utilizado y el m&eacute;todo de siembra (Rivera y Taborda, 1997).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Alpiste presenta el mayor contenido de prote&iacute;na cruda (27.92%), mientras que el olote el menor valor (2.86%); el rango entre ambos es de 25.06%. Considerando que el olote fue el mejor sustrato en la producci&oacute;n de esporas y el de menor contenido de prote&iacute;na cruda, se pone nuevamente de manifiesto que este hongo no es exigente en su nutrici&oacute;n, ya que con un m&iacute;nimo de nutrientes crece y se desarrolla satisfactoriamente produciendo muchas esporas (Fernandez&#150;Larrea, 2001). La correlaci&oacute;n negativa en el n&uacute;mero y viabilidad de esporas nos confirma esta tendencia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de prote&iacute;na cruda obtenidos para la c&aacute;scara de cacahuate (6.14%), rastrojo de ma&iacute;z (4.92%) y sorgo (10.07%) son bajos y en el caso del alpiste altos (27.92%) al compararse con los valores 6.8 &#150; 7.7; 7.3, 11.0 y 8% respectivamente, reportados por Crampton y Harris (1979) y Church y Pond (1997). La variaci&oacute;n de estos datos puede deberse a que las variedades con las que se comparan son diferentes a las utilizadas en este trabajo y las reportadas por los autores antes citados. En este sentido, Rivera y Taborda (1997) compararon cuatro progenies del cultivar local de sorgo Criollo Blanco Alto en rendimiento de materia verde, materia seca y prote&iacute;na cruda sembrado a dos distancias entre hileras (0.60 y 0.80 m). Los resultados reportan una variaci&oacute;n no significativa desde 11.16 a 12.08%, por lo que tanto el genotipo utilizado como la densidad de siembra, entre otros factores influyen en variaci&oacute;n de los porcentajes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en los resultados obtenidos de cenizas y prote&iacute;na cruda que son bajos para el olote (2.18 y 2.86%, respectivamente) y sabiendo que fue el mejor productor de esporas, nuevamente se confirma lo expresado por Fern&aacute;ndez&#150;Larrea (2001), quien reporta que <i>Trichoderma </i>spp., es un hongo muy vers&aacute;til de f&aacute;cil manipulaci&oacute;n, que tiene la capacidad de adaptarse a condiciones microambientales y se desarrolla en muchos sustratos org&aacute;nicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con relaci&oacute;n al contenido de grasa, los valores var&iacute;an desde 47.86% en la c&aacute;scara de cacao y 0.75% de la c&aacute;scara de arroz. Se observa una diferencia de 47.11% entre el valor de grasa mayor y el menor. El olote fue el mejor sustrato en la producci&oacute;n de esporas y que contiene valores bajos de grasa (2.49%); nuevamente se pone de manifiesto que este hongo no es exigente en su nutrici&oacute;n, ya que con un m&iacute;nimo de ellos crece satisfactoriamente, produciendo muchas esporas (Fern&aacute;ndez&#150;Larrea, 2001). La correlaci&oacute;n negativa indica que a mayor contenido de grasa es menor la cantidad y viabilidad de las esporas producidas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en los porcentajes indicados por Crampton y Harris (1979) y Church y Pond (1997), los contenidos de grasa que obtuvimos son altos para la c&aacute;scara de cacahuate (2.27%), alpiste (5.0%) y rastrojo de ma&iacute;z (5.5%), mientras que para el sorgo son bajos (2.28%). Los porcentajes para los sustratos seg&uacute;n estos autores son: 1.3, 2, 2 y 2.8% respectivamente. Esta variaci&oacute;n en los resultados se puede explicar en funci&oacute;n de las diferencias propias de cada variedad utilizada y el m&eacute;todo de siembra entre otros factores que influyen en los porcentajes (Rivera y Taborda, 1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La c&aacute;scara de cacahuate es el sustrato que tuvo el mayor porcentaje de fibra cruda (76.06%), mientras que el sorgo el menor valor (1.60%); la diferencia entre ambos es de 74.46%. El olote fue el mejor sustrato en la producci&oacute;n de esporas y tiene un porcentaje intermedio de fibra (36.74%); no existe una tendencia definida de este hongo sobre este factor, ya que con un m&iacute;nimo de nutrientes crece y se desarrolla bien, que es lo que busca la reproducci&oacute;n masiva (Agosin y Aguilera, 1998). No se registr&oacute; correlaci&oacute;n con el n&uacute;mero y viabilidad de esporas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de fibra cruda que muestran Crampton y Harris (1979) y Church y Pond (1997) para la c&aacute;scara de cacahuate y rastrojo de ma&iacute;z son bajos, ellos obtuvieron datos de 54 a 60.4 y 21.3% respectivamente; sin embargo, para el alpiste son altos (31.3%) con respecto a los obtenidos en esta investigaci&oacute;n. La variaci&oacute;n de los resultados puede deberse a los genotipos que se utilizaron y al m&eacute;todo de siembra entre otros factores (Rivera y Taborda, 1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, los resultados obtenidos corroboran que la producci&oacute;n masiva de <i>Trichoderma </i>spp., en condiciones <i>in vitro </i>presenta la facilidad de cultivarse sobre diferentes sustratos org&aacute;nicos de bajo costo (Hjeljord y Tronsmo, 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De los 15 sustratos evaluados, el olote obtuvo mejores resultados en la producci&oacute;n y viabilidad de esporas de <i>T. harzianum </i>con 4.43 x 10<sup>8</sup> ml<sup>&#150;1</sup> y 99.0%, respectivamente. Con base en el an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal, el desarrollo del micelio, esporulaci&oacute;n y viabilidad de las esporas de <i>T. harzianum </i>es &oacute;ptimo con sustratos org&aacute;nicos con un alto porcentaje de humedad (8.06), bajo contenido de minerales (2.18), prote&iacute;na (2.86) y grasa (2.49), y un porcentaje intermedio de fibra (35.74).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">A.O.A.C. (Association of Official Analytical Chemists) 1980. Official methods of analysis of association of official agricultural chemist. Morwits, W. (Editor) 13th ed. Washington, D. C. 978 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648118&pid=S1027-152X200800020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AGOSIN, E.; AGUILERA, J. M. 1998. Industrial production of active propagules of <i>Trichoderma </i>for agricultural uses. pp. 205&#150;228. <i>In: Trichoderma </i>and <i>Gliocladium</i>. Vol. 2. HARMAN, G. E.; KUBICEK, C. P. (Eds.). Tylor &amp; Francis. Inc. Bristol, PA. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648120&pid=S1027-152X200800020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHET, I.; BENHAMOU, N.; HARAN, S. 1998. Mycoparasitism and lytic enzymes. pp. 153&#150;169. <i>In</i>: <i>Trichoderma and Gliocladium</i>. Vol. 2. HARMAN, G.E.; KUBICEK, C.P. (Eds.). Tylor &amp; Francis. Inc. Bristol, PA. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648122&pid=S1027-152X200800020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHURCH, D. C.; POND, W. G. 1997. Bases cient&iacute;ficas para la nutrici&oacute;n y alimentaci&oacute;n de los animales dom&eacute;sticos. Editorial Acribia. Zaragoza, Espa&ntilde;a. 462 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648124&pid=S1027-152X200800020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">COONEY, J. M.; LAUREN, D. R.; JENSEN, D. J.; PERRY&#150;MEYER, L. J. 1997. Effect of solid substrate, liquid supplement, and harvest time on 6&#150;n&#150;pentyl&#150;2h&#150;pyran&#150;2&#150;one (6PAP) production by <i>Trichoderma </i>spp<i>. </i>Journal of Agriculture and Food Chemistry 45: 531&#150;534.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648126&pid=S1027-152X200800020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CRAMPTON, E. W.; HARRIS, L. E. 1979. Nutrici&oacute;n animal aplicada. Segunda edici&oacute;n. Editorial Acribia. Zaragoza, Espa&ntilde;a. 756 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648128&pid=S1027-152X200800020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FERN&Aacute;NDEZ&#150;LARREA, V. O. 2001. Microorganismos antagonistas para el control fitosanitario. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 62: 96&#150;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648130&pid=S1027-152X200800020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FERN&Aacute;NDEZ&#150;LARREA, V. O. 2004. Tecnolog&iacute;as para la producci&oacute;n de biopesticidas a base de hongos entomopat&oacute;genos y su control de la calidad<i>. </i>Laboratorio de Hongos Entomopat&oacute;genos. Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV). La Habana Cuba. 10 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648132&pid=S1027-152X200800020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FUENTES, J.; MAGA&Ntilde;A, C.; SUAREZ, L.; PE&Ntilde;A, R., RODR&Iacute;GUEZ, S.; ORTIZ de la R. B. 2001. An&aacute;lisis qu&iacute;mico y digestibilidad <i>in Vitro </i>del rastrojo de ma&iacute;z (<i>Zea mays </i>L. Agronom&iacute;a Mesoamericana 12(2): 189&#150;192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648134&pid=S1027-152X200800020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERRERA&#150;ESTRELLA, A.; CHET, I. 1998. Biocontrol of bacteria and phytopathogenic fungi. pp. 263&#150;283. <i>In: </i>Agricultural Biotechnology. ALTMAN, A. (Ed.). Marcel Dekker, Inc. New York, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648136&pid=S1027-152X200800020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HJELJORD, L.; TRONSMO, A. 1998. <i>Trichoderma </i>and <i>Gliocladium </i>in biological control: an overview. pp. 153&#150;169. <i>In</i>: <i>Trichoderma </i>and <i>Gliocladium, </i>Vol. 2. HARMAN, G.E.; KUBICEK, C.P. (Eds.), Tylor &amp; Francis. Inc. Bristol, PA. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648138&pid=S1027-152X200800020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MICHEL&#150;ACEVES, A. C.; REBOLLEDO&#150;DOM&Iacute;NGUEZ, O.; LEZAMA&#150;GUTI&Eacute;RREZ, R.; OCHOA&#150;MORENO, M. E.; MESINA&#150;ESCAMILLA, J. C.; y SAMUELS, G. 2001. Especies de <i>Trichoderma </i>en suelos cultivados con mango afectados por "Escoba de bruja" y su potencial inhibitorio sobre <i>Fusarium oxysporum </i>y <i>F. subglutinans</i>. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 19(2): 154&#150;160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648140&pid=S1027-152X200800020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MICHEL&#150;ACEVES, A. C.; OTERO&#150;S&Aacute;NCHEZ, M. A.; REBOLLEDO&#150;DOM&Iacute;NGUEZ, O.; LEZAMA&#150;GUTI&Eacute;RREZ, R.; ARIZA&#150;FLORES, R.; BARRIOS&#150;AYALA, A 2005a. Producci&oacute;n y efecto antag&oacute;nico de quitinasas y glucanasas por <i>Trichoderma </i>spp., en la inhibici&oacute;n de <i>Fusarium subglutinans </i>y <i>Fusarium oxysporum in vitro</i>. Revista Chapingo, Serie Horticultura 11(12): 273&#150;278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648142&pid=S1027-152X200800020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MICHEL&#150;ACEVES, A. C.; REYES&#150;DE LA CRUZ, A.; OTERO&#150;S&Aacute;NCHEZ, M. A.; REBOLLEDO&#150;DOM&Iacute;NGUEZ, O. y LEZAMA&#150;GUTI&Eacute;RREZ, R. 2005b. Potencial Antag&oacute;nico de <i>Trichoderma </i>Pers.:Fr. spp., sobre <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>lycopersici </i>(Snyder y Hansen) y <i>Sclerotium rolfsii </i>(Sacc.) <i>in vitro </i>e Invernadero. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 23(3): 284&#150;291.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648144&pid=S1027-152X200800020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PAPAVIZAS, G. C. 1985. <i>Trichoderma </i>and <i>Gliocladium </i>: Biology, ecology, and potential for biocontrol. Annual Review of Phytopathology 23: 23&#150;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6648146&pid=S1027-152X200800020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">RIVERA, S. 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