<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0568-2517</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Agricultura técnica en México]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Agric. Téc. Méx]]></abbrev-journal-title>
<issn>0568-2517</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0568-25172009000200007</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Influencia de Glomus fasciculatum en el crecimiento y desarrollo de Lilium sp. cv orange pixie]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Influence of Glomus fasciculatum in growth and development of Lilium sp. cv orange pixie]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rubí Arriaga]]></surname>
<given-names><![CDATA[Martín]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Olalde Portugal]]></surname>
<given-names><![CDATA[Victor]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Reyes Reyes]]></surname>
<given-names><![CDATA[Bernardo Gabriel]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[González Huerta]]></surname>
<given-names><![CDATA[Andrés]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A04"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Aguilera Gómez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Luis Isaac]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A05"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma del Estado de México Campus Universitario El Cerrillo Programa de Postgrado en Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturales]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Toluca Estado de México]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Centro de Investigación y de estudios avanzados del Instituto Politécnico Nacional Unidad Irapuato Departamento de Biotecnología y Bioquímica]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Irapuato Guanajuato]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma del Estado de México Instituto de Ciencias Agropecuarias y Rurales ICAR ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Toluca Estado de México]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A04">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma del Estado de México Campus Universitario el Cerrillo Facultad de Ciencias Agrícolas]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A05">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma del Estado de México Campus Universitario el Cerrillo Facultad de Ciencias]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Toluca Estado de México]]></addr-line>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2009</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2009</year>
</pub-date>
<volume>35</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>201</fpage>
<lpage>210</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0568-25172009000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0568-25172009000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0568-25172009000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Los objetivos del presente estudio fueron determinar la susceptibilidad del Lilium sp. cv Orange Pixie a la colonización simbiótica por el hongo Glomus fasciculatum y el efecto de éste sobre la absorción de fósforo, desarrollo y calidad de la flor. La investigación se realizó de junio a septiembre de 2006 en el campus El Cerrillo de la Universidad Autónoma del Estado de México (UAEM). Se plantaron bulbos con y sin inoculación de hongos micorrízicos arbusculares con 0, 22 y 44 µg ml-1 P en solución nutritiva Long Ashton modificada. Se utilizó un diseño experimental completamente al azar con arreglo bifactorial 2x3, con 10 repeticiones, se efectuó prueba de comparación de medias y análisis multivariado. Los parámetros estudiados fueron: altura de planta, diámetro del tallo, días a apertura de botón floral, número de botones florales, longitud y diámetro del botón floral, vida útil de la flor, peso seco de raíz, tallo y flores, porcentaje de colonización y contenido de fósforo en el tallo. Los resultados mostraron que Lilium sp. cv Orange Pixie es susceptible a la colonización por G. fasciculatum y que a su vez incrementó el diámetro del tallo, la longitud y el diámetro del botón, el peso seco y la vida de la flor. Con la inoculación de G. fasciculatum y 22 µg ml-1 de P. se obtuvo la mayor calidad comercial de flor y se adelantó la floración. La inoculación podría reducir el uso de fertilizantes químicos en 50%.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aims of this study were to determinate the susceptibility of Lilium sp. to be colonized by Glomus fasciculatum and the effect of the fungi in phosphorus absorption, plant development and flower quality. The study was carried out from June to September 2006 at El Cerrillo campus of the State of Mexico Autonomous University. Inoculated and noninoculated bulbs of Lilium sp. cv Orange Pixie were planted and irrigated with a modified Long Ashton nutrient solution with 0, 22 and 44 µg ml-1 P. A completely randomized block design under a bifactorial 2x3 arrangement with 10 replicates was utilized. The studied parameters were: plant height, stem diameter, days to bud opening, number of flower buds, length and diameter of buds, flower lifespan, root, stem and flower dry weight, percent of colonization and phosphorus content in stem. Results showed that Lilium sp. cv. Orange Pixie is susceptible to Glomus fasciculatum colonization, which enhanced stem diameter, bud length and diameter, flower dry weight and flower lifespan. The best commercial flower quality was obtained with the inoculation with G. fasciculatum and 22 µg ml-1 P. Inoculation contributed to an early bud opening and would reduce the use of chemical fertilizers up to 50% with the consequent benefits to Lilium producers.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[fósforo]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[micorrizas]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[ornamentales]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[mycorrizal fungi]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[ornamentals]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[phosphorus]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Influencia de <i>Glomus fasciculatum</i> en el crecimiento y desarrollo de <i>Lilium</i> sp. cv orange pixie*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Influence of <i>Glomus fasciculatum</i> in growth and development of  <i>Lilium</i> sp. cv orange pixie </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mart&iacute;n Rub&iacute; Arriaga<sup>1&sect;</sup>, Victor Olalde Portugal<sup>2</sup>, Bernardo Gabriel Reyes Reyes<sup>3</sup>, Andr&eacute;s Gonz&aacute;lez Huerta<sup>4</sup> y Luis Isaac Aguilera G&oacute;mez<sup>5</sup>.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Programa de Postgrado en Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturales, Campus Universitario El Cerrillo, Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico. El Cerrillo Piedras Blancas. Toluca, Estado de M&eacute;xico, km 15.5 carretera Toluca&#150;Ixtlahuaca, C. P. 50200. </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup> <i>Laboratorio de Bioqu&iacute;mica Ecol&oacute;gica. Departamento de Biotecnolog&iacute;a y Bioqu&iacute;mica. Cinvestav&#150;IPN. Unidad Irapuato. km 9.6 Libramiento norte carretera Irapuato&#150;Le&oacute;n, C. P. 36500, Irapuato, Guanajuato.</i> e&#150;mail: <a href="mailto:v_Olalde@yahoo.com.mx">v_Olalde@yahoo.com.mx</a>. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>3</sup> <i>Instituto de Ciencias Agropecuarias y Rurales ICAR. Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico. km 14.5 carretera Toluca&#150;Atlacomulco. San Cayetano de Morelos. Toluca Estado de M&eacute;xico, C. P. 50200.</i> e&#150;mail: <a href="mailto:b_gabrielrr@yahoo.com.mx">b_gabrielrr@yahoo.com.mx</a>. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>4</sup> <i>Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas, Centro de Investigaci&oacute;n de Estudios Avanzados en Fitomejoramiento, Campus Universitario el Cerrillo, Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico. El Cerrillo, Piedras Blancas. Toluca, Estado de M&eacute;xico, km 15.5 carretera Toluca&#150;Ixtlahuaca, C. P. 50200.</i> e&#150;mail: <a href="mailto:agonzalezh@uaemex.com.mx">agonzalezh@uaemex.com.mx</a>. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>5</sup> <i>Facultad de Ciencias. Campus Universitario el Cerrillo, Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico. El Cerrillo Piedras Blancas. Toluca, Estado de M&eacute;xico, km 15.5 carretera Toluca&#150;Ixtlahuaca, C. P. 50200.</i>  e&#150;mail: <a href="mailto:luishalc@mailcity.com">luishalc@mailcity.com</a>. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&sect;Autor para correspondencia:     <br> </b><a href="mailto:m_rubi65@yahoo.com.mx">m_rubi65@yahoo.com.mx</a>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: Octubre, 2008    <br> Aceptado: Abril, 2009</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los objetivos del presente estudio fueron determinar la susceptibilidad del <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie a la colonizaci&oacute;n simbi&oacute;tica por el hongo <i>Glomus fasciculatum</i> y el efecto de &eacute;ste sobre la absorci&oacute;n de f&oacute;sforo, desarrollo y calidad de la flor. La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; de junio a septiembre de 2006 en el campus El Cerrillo de la Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico (UAEM). Se plantaron bulbos con y sin inoculaci&oacute;n de hongos micorr&iacute;zicos arbusculares con 0, 22 y 44 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> P en soluci&oacute;n nutritiva Long Ashton modificada. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar con arreglo bifactorial 2x3, con 10 repeticiones, se efectu&oacute; prueba de comparaci&oacute;n de medias y an&aacute;lisis multivariado. Los par&aacute;metros estudiados fueron: altura de planta, di&aacute;metro del tallo, d&iacute;as a apertura de bot&oacute;n floral, n&uacute;mero de botones florales, longitud y di&aacute;metro del bot&oacute;n floral, vida &uacute;til de la flor, peso seco de ra&iacute;z, tallo y flores, porcentaje de colonizaci&oacute;n y contenido de f&oacute;sforo en el tallo. Los resultados mostraron que <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie es susceptible a la colonizaci&oacute;n por <i>G. fasciculatum</i> y que a su vez increment&oacute; el di&aacute;metro del tallo, la longitud y el di&aacute;metro del bot&oacute;n, el peso seco y la vida de la flor. Con la inoculaci&oacute;n de <i>G. fasciculatum</i> y 22 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup>  de P. se obtuvo la mayor calidad comercial de flor y se adelant&oacute; la floraci&oacute;n. La inoculaci&oacute;n podr&iacute;a reducir el uso de fertilizantes qu&iacute;micos en 50%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> f&oacute;sforo, micorrizas, ornamentales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The aims of this study were to determinate the susceptibility of <i>Lilium</i> sp. to be colonized by <i>Glomus fasciculatum</i> and the effect of the fungi in phosphorus absorption, plant development and flower quality. The study was carried out from June to September 2006 at El Cerrillo campus of the State of Mexico Autonomous University. Inoculated and noninoculated bulbs of <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie were planted and irrigated with a modified Long Ashton nutrient solution with 0, 22 and 44 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> P. A completely randomized block design under a bifactorial 2x3 arrangement with 10 replicates was utilized. The studied parameters were: plant height, stem diameter, days to bud opening, number of flower buds, length and diameter of buds, flower lifespan, root, stem and flower dry weight, percent of colonization and phosphorus content in stem. Results showed that <i>Lilium</i> sp. cv. Orange Pixie is susceptible to <i>Glomus fasciculatum</i> colonization, which enhanced stem diameter, bud length and diameter, flower dry weight and flower lifespan. The best commercial flower quality was obtained with the inoculation with <i>G. fasciculatum</i> and 22 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> P. Inoculation contributed to an early bud opening and would reduce the use of chemical fertilizers up to 50% with the consequent benefits to <i>Lilium</i> producers.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> mycorrizal fungi, ornamentals, phosphorus.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, la horticultura ornamental se ha convertido en uno de los detonadores econ&oacute;micos m&aacute;s significativos del sector agr&iacute;cola. El Estado de M&eacute;xico es la entidad federativa de mayor importancia en la producci&oacute;n de flor de corte con 40% del total de la superficie sembrada a nivel nacional, principalmente con crisantemo (<i>Chrysanthemun indicum</i>), gladiola (<i>Gladiolus</i> sp.), clavel (<i>Dianthus caryophyllus</i>), rosa (<i>Rosa gigantea</i> y <i>R. chinensis</i>), gerbera (<i>Gerbera jamesonni</i>) y lily (<i>Lilium</i> spp).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <i>Lilium</i> o lily, proviene de regiones fr&iacute;as, presenta amplia diversidad de cultivares con buena aceptaci&oacute;n en el mercado nacional e internacional, por lo que su cultivo es altamente rentable. La superficie cultivada con esta especie ha sido una de las que m&aacute;s se ha incrementado en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas a nivel nacional y mundial. En 2007 en el corredor horto&#150;flor&iacute;cola del Estado de M&eacute;xico se ubic&oacute; entre los cinco cultivos de mayor demanda (Beltr&aacute;n, 2008), por lo que su producci&oacute;n se efect&uacute;a en forma intensiva.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo el esquema de producci&oacute;n intensiva, la floricultura requiere cambios en los componentes f&iacute;sicos, qu&iacute;micos y biol&oacute;gicos del sustrato y en la aplicaci&oacute;n de insumos inorg&aacute;nicos, (Amaya <i>et al</i>., 2005), los que a largo plazo reducen el rendimiento e incrementan el costo de producci&oacute;n (Gaur y Adholeya, 2000; Jeffries <i>et al</i>., 2003). Las alternativas de fertilizaci&oacute;n que sean econ&oacute;micas, eficientes y con enfoque biol&oacute;gico, pueden contribuir significativamente a la soluci&oacute;n de estos problemas (Jeffries <i>et al</i>., 2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas cultivadas y las ornamentales forman asociaciones con hongos micorrizicos, particularmente con los de tipo arbuscular, lo que origina simbiosis mutualistas relacionadas con la nutrici&oacute;n mineral de las plantas (Gaur y Adholeya, 2005) lo que los convierte en un recursos biol&oacute;gico con potencial para incrementar la productividad con menor uso de fertilizantes qu&iacute;micos (Amaya <i>et al</i>., 2003). El estudio de la interacci&oacute;n entre las micorrizas y la fertilizaci&oacute;n con f&oacute;sforo o el efecto individual de ambos puede estudiarse por medio de la t&eacute;cnica multivariada descrita por Gonz&aacute;lez <i>et al</i>. (2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n con micorrizas mejora la absorci&oacute;n de nutrientes, favorece el crecimiento, la ramificaci&oacute;n, la &eacute;poca de floraci&oacute;n, el n&uacute;mero y la calidad de las flores de diferentes especies ornamentales (Sohn <i>et al</i>., 2003; Gaur y Adholeya, 2005). Vanderploeg <i>et al</i>. (1974), Ames y Linderman (1978) y Anushri <i>et al</i>. (2002) observaron que plantas de <i>Lilium</i> sp. cultivadas en invernadero se beneficiaron con la asociaci&oacute;n con micorrizas arbusculares.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, se conoce poco sobre la inoculaci&oacute;n de <i>Lilium</i> con hongos micorr&iacute;zicos arbusculares. Esta especie ornamental posee un bulbo con br&aacute;cteas escamosas que sirven de almac&eacute;n de nutrientes y doble sistema radical en el que la ra&iacute;z primaria es de tipo adventicio caulinar, emerge de un disco basal y es la responsable de absorber nutrientes durante las primeras tres semanas despu&eacute;s de la plantaci&oacute;n; del disco emerge una yema con escamas que al brotar forma el tallo, el que al emerger del suelo desarrolla en la parte inferior el sistema radical adventicio secundario, que substituyen en 90% las funciones de la ra&iacute;z primaria a partir de la cuarta semana de plantaci&oacute;n (Ba&ntilde;&oacute;n <i>et al</i>., 1993).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo continuo de nuevos h&iacute;bridos y la pr&aacute;ctica de producci&oacute;n en ciclos de cultivo fuera de su &eacute;poca natural causan que los nutrientes almacenados en el bulbo y el aporte de las ra&iacute;ces primaria y secundaria sean insuficientes para obtener flor con la calidad que demanda la norma comercial, lo que se hace necesaria la fertilizaci&oacute;n qu&iacute;mica adicional que incrementa el costo de producci&oacute;n (Betancourt <i>et al</i>., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La asociaci&oacute;n micorr&iacute;zica ofrece posibilidades de gran inter&eacute;s para reducir el costo de producci&oacute;n; sin embargo, las particularidades de este cultivo dificultan su estudio. Por lo anterior, los objetivos del presente trabajo fueron: determinar la susceptibilidad de <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie a la colonizaci&oacute;n por <i>Glomus fasciculatum</i>, la eficiencia de este microsimbionte en la absorci&oacute;n de de f&oacute;sforo por la planta y su efecto en el crecimiento, desarrollo, producci&oacute;n y calidad de flor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio se desarroll&oacute; de junio a septiembre de 2006 en el Campus Universitario "El Cerrillo" de la Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico (UAEM), localizado a 19&deg; 26' 00" latitud norte y 99&deg; 43' 00" longitud oeste, a 2656 msnm bajo condiciones de invernadero con temperatura ambiente promedio de 32/10 &deg;C d&iacute;a/noche.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los bulbos vernalizados calibre 14/16 de <i>Lilium</i> sp. cv Orange pixie del grupo asi&aacute;tico, importados de Holanda se plantaron en contenedores de pl&aacute;stico con capacidad de 1 kg, los cuales fueron previamente lavados y desinfectados con una soluci&oacute;n de Cloramina T al 2% durante 5 min. Como sustrato se utiliz&oacute; una mezcla 1:1 de suelo y arena de r&iacute;o con pH de 6.8, 2.8% de contenido de materia org&aacute;nica y 18.4 &micro;g g<sup>&#150;1</sup> de P, esterilizado a una presi&oacute;n de 120 kg cm&#150;2 durante una hora en tres d&iacute;as consecutivos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n se realiz&oacute; al momento de plantaci&oacute;n, a cada bulbo se le retir&oacute; la ra&iacute;z primaria para evitar la presencia de micorrizas nativas. Se utilizaron m&aacute;s de 1000 esporas y fragmentos de ra&iacute;z (100 g de in&oacute;culo) de <i>Glomus fasciculatum</i> por contenedor. En cada contenedor se colocaron 250 g de sustrato, se aplicaron 50 g de in&oacute;culo y el bulbo se ubic&oacute; a una profundidad de 10 cm de la superficie, &eacute;ste se cubri&oacute; con 500 g de sustrato, el resto del in&oacute;culo se deposit&oacute; en el sitio donde surge el sistema radical secundario y finalmente se adicionaron 250 g del sustrato restante.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El riego se aplic&oacute; desde la plantaci&oacute;n, con 100 ml de agua destilada aplicados cada tercer d&iacute;a, hasta la emisi&oacute;n de ra&iacute;ces secundarias, ocurrida a los 15 d&iacute;as de la plantaci&oacute;n, momento en que se inici&oacute; la fertilizaci&oacute;n con la soluci&oacute;n nutritiva Long Ashton (LANS) (Hewitt, 1966).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los seis tratamientos se evaluaron en un dise&ntilde;o experimental completamente al azar con arreglo bifactorial (3x2); en el factor A se incluyeron plantas inoculadas y no inoculadas con micorrizas, mientras que en el factor B se incluyeron tres niveles de f&oacute;sforo en la soluci&oacute;n LANS (0, 22 y 44 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> de P). Se consideraron 10 repeticiones por tratamiento en las que cada contenedor con una planta fue una repetici&oacute;n y una unidad experimental (UE). El n&uacute;mero de UE por tratamiento fue diferente; para altura de planta, di&aacute;metro del tallo, n&uacute;mero de botones y d&iacute;as a brotaci&oacute;n fue de 60, para longitud y di&aacute;metro de bot&oacute;n, d&iacute;as a apertura de bot&oacute;n y vida de la flor fue de 54, para peso seco de ra&iacute;z, tallo y flor fue de 30 y para porciento de colonizaci&oacute;n, micelio extraradical y contenido de P fue de 24.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables evaluadas fueron altura de planta (de la base del tallo hasta el &aacute;pice, registrada a los 50 d&iacute;as de la plantaci&oacute;n), di&aacute;metro de tallo (en la base del tallo con un vernier digital mod. CD&#150;6" C Mitutoyo, determinado a los 50 d&iacute;as de plantaci&oacute;n), d&iacute;as a apertura de botones florales (de la plantaci&oacute;n hasta la apertura de bot&oacute;n), n&uacute;mero de botones florales (registrado en cada unidad experimental a los 40 d&iacute;as de la plantaci&oacute;n), longitud y di&aacute;metro del bot&oacute;n, y vida de la flor (de la apertura del bot&oacute;n hasta marchitez de la flor, cuando los p&eacute;talos se debilitaron y cambiaron de color y el ped&uacute;nculo tom&oacute; consistencia fl&aacute;cida), peso seco de ra&iacute;z, tallo y flores (a los 60 d&iacute;as de la plantaci&oacute;n, la ra&iacute;z, el tallo y las flores fueron separados y colocados en bolsas de papel, se secaron en un horno de circulaci&oacute;n forzada a 75 &deg;C por 72 hs y el peso seco se determin&oacute; con una balanza electr&oacute;nica anal&iacute;tica Sartorius i 1800). El porciento de colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z se determin&oacute; en una muestra de ra&iacute;z colectada de cuatro unidades experimentales por tratamiento con el m&eacute;todo descrito por Phillips y Hayman (1970) y el micelio extraradical se determin&oacute; con el m&eacute;todo de Davies <i>et al</i>. (2005)&#93;. El contenido de f&oacute;sforo en tallos se determin&oacute; a partir de la digesti&oacute;n h&uacute;meda del material seco con una mezcla de &aacute;cido percl&oacute;rico y n&iacute;trico (Alc&aacute;ntar y Sandoval, 1999); los extractos obtenidos fueron procesados en un equipo de espectroscop&iacute;a de emisi&oacute;n at&oacute;mica (ICP&#150;AES. Varion, Mod. Liberty II).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para cada variable se realiz&oacute; el an&aacute;lisis de varianza combinado y las medias de cada factor de estudio fueron comparadas con la prueba de Tukey al nivel de significancia del 5%. Los procedimientos para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico fueron descritos por Mart&iacute;nez (1988). Para el an&aacute;lisis de tratamiento por variable se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica del biplot, descrita por Gonz&aacute;lez <i>et al</i>. (2007). Esta metodolog&iacute;a multivariada permite el estudio de la estructura de una matriz de datos compuesta de unidades taxon&oacute;micas (arregladas en hileras) y los valores de las variables que las describen (arregladas en columnas). Su prop&oacute;sito es reemplazar los an&aacute;lisis individuales en los que los dos primeros componentes principales representan tratamientos, variables o cuadros de coeficientes de correlaci&oacute;n. La representaci&oacute;n gr&aacute;fica permite el estudio de ambos criterios de clasificaci&oacute;n y de la interacci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crecimiento de planta</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Di&aacute;metro del tallo. Se observaron diferencias altamente significativas en este par&aacute;metro por efecto de la aplicaci&oacute;n de micorrizas (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El di&aacute;metro promedio de las plantas inoculadas fue de 1.29 cm en comparaci&oacute;n con 0.95 cm en las no inoculadas (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Estos resultados fueron similares a los reportados por Vanderploeg <i>et al</i>. (1974) y Ames y Linderman (1978), quienes se&ntilde;alaron que en plantas de <i>Lilium</i> longiflorum Thumb producidas en invernadero se favoreci&oacute; el crecimiento por efecto de la asociaci&oacute;n con hongos micorr&iacute;zicos arbusculares. En otro trabajo orientado a mejorar el desempe&ntilde;o de plantas obtenidas por micro propagaci&oacute;n de esta especie, la inoculaci&oacute;n tambi&eacute;n mostr&oacute; efectos positivos (Anushri <i>et al</i>., 2002). En <i>Anthurium</i> andreanum (Stancato y Parada, 2006) y en <i>Chrysanthemum morifolium</i> (Sohn <i>et al</i>., 2003), se ha observado que la inoculaci&oacute;n endomicorrizica puede modificar el desarrollo de la planta, debido a que los HMA excretan enzimas que solubilizan nutrientes del suelo que de otra manera no est&aacute;n disponibles para la absorci&oacute;n, entre ellos el P (Tawaraya <i>et al</i>., 2006), lo que incrementa la eficiencia de la utilizaci&oacute;n de este elemento; adem&aacute;s, la extensa red de hifas que conforman el micelio extraradical explora mayor volumen de suelo que los pelos radicales aumentando la proporci&oacute;n del sistema radical y la eficiencia de absorci&oacute;n de nutrientes (Ferrol <i>et al</i>., 2002).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Altura de planta</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores observados para este par&aacute;metro no fueron diferentes (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Estos resultados son similares a los reportados por Ames y Linderman (1978), quienes inocularon con  Acalauspora trappei plantas de <i>Lilium</i> sp. y observaron mayor altura en plantas provenientes de semilla que de bulbo debido a que estas no dependen de las micorrizas como las pl&aacute;ntulas originadas de semilla, porque tienen mayor reserva de nutrientes y pueden abastecer la demanda durante la etapa de crecimiento. En otras especies como <i>Salvia splendens</i> F., <i>Impatiens walleriana</i> H., <i>Tagetes patula</i> L., <i>Petunia xhybrida</i> Hort., <i>Coleus xhybridus</i> V., <i>Viola xwittrockiana</i> G. e <i>Ipomoea carnea</i> spp. <i>Fistulosa</i>, no se observaron efectos significativos sobre el crecimiento del tallo (Koide <i>et al</i>., 1999; Amaya <i>et al</i>., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Peso seco de ra&iacute;z, tallo y flores</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n micorr&iacute;zica increment&oacute; significativamente (p <u>&lt;</u>0.01) el peso seco de ra&iacute;z, tallo y flores mientras que entre los tratamientos de f&oacute;sforo se observ&oacute; diferencia en el peso seco de ra&iacute;z. Resultados similares fueron reportados por Pedraza <i>et al</i>. (2000) y Sohn <i>et al</i>. (2003) en crisantemo <i>Dendrathema glandiflora</i> Tzevelev y <i>Chrysanthemum morifolium</i> Ramat, respectivamente. Gaur <i>et al</i>. (2000) estudiaron <i>Petunia hybrida</i>, <i>Callistephus chinensis</i> e <i>Impatiens balsamina</i>, mientras que Amaya <i>et al</i>. (2005) lo hicieron con <i>Ipomoea carnea</i> ssp. <i>fistulosa</i> y Stancato y Parada (2006) en <i>Anthurium andreanum</i>; en ambos estudios se observ&oacute; que la fertilizaci&oacute;n mineral combinada con la inoculaci&oacute;n con HMA increment&oacute; la producci&oacute;n de materia seca en diferentes &oacute;rganos, debido a una mayor absorci&oacute;n de elementos nutritivos como el f&oacute;sforo y al incremento en la superficie de la ra&iacute;z y ser m&aacute;s activa para explorar y traslocar nutrimentos (Amaya <i>et al</i>., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracter&iacute;sticas de floraci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Longitud y di&aacute;metro de bot&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observ&oacute; diferencia significativa (p <u>&lt;</u> 0.01) en longitud y di&aacute;metro de bot&oacute;n para el factor micorriza, pero no para el factor f&oacute;sforo. En el par&aacute;metro di&aacute;metro de bot&oacute;n se detect&oacute; significancia (p <u>&lt;</u> 0.01) para cada factor. En ambas variables la interacci&oacute;n AxB no fue significativa (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). La aplicaci&oacute;n de micorrizas tuvo un efecto significativo sobre ambas variables. Para di&aacute;metro de bot&oacute;n, (importante porque determina el di&aacute;metro y calidad de la flor), la concentraci&oacute;n de 44 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> de P super&oacute; estad&iacute;sticamente al control sin P pero no a la de 22 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> P. Estos resultados sugieren que es posible obtener un adecuado tama&ntilde;o de flor al combinar la inoculaci&oacute;n con micorrizas y el nivel de 22 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> P, como lo reportaron Ames y Linderman (1978) para especies como Petunia hybrida, Callistephus chinensis e Impatiens balsamina. Marshner y Dell (1994). Davies <i>et al</i>. (2005) concluyeron que estos resultados se deben a la absorci&oacute;n de nutrimentos, particularmente de f&oacute;sforo, que favorece el crecimiento de la planta a trav&eacute;s de mejorar la eficiencia fotosint&eacute;tica y el transporte de fotosintatos destinados a tallos, flores y frutos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados anteriores sugieren que la aplicaci&oacute;n de <i>Glomus fasciculatum</i> podr&iacute;a reducir 50% la aplicaci&oacute;n de P. En producci&oacute;n comercial de <i>Lilium</i> es importante reducir el costo de producci&oacute;n para mantener la rentabilidad del cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>D&iacute;as a apertura de bot&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se detect&oacute; significancia (p <u>&lt;</u> 0.01) en ambos factores y en la interacci&oacute;n AxB, lo que hace evidente el comportamiento diferencial que present&oacute; el <i>Lilium</i> en funci&oacute;n de la dosis de f&oacute;sforo y de la aplicaci&oacute;n de micorrizas (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). La inoculaci&oacute;n con micorrizas acort&oacute; en cinco d&iacute;as la apertura de bot&oacute;n. Las concentraciones de 22 y 44 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> P produjeron resultados similares pero superaron estad&iacute;sticamente al testigo; la mejor combinaci&oacute;n fue con inoculaci&oacute;n y 22 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> P (apertura de botones a los 30.8 d&iacute;as de plantado el bulbo versus 37.4 d&iacute;as para el testigo), lo que equivale a 21.4% de adelanto para alcanzar esta etapa fenol&oacute;gica. Estos resultados coinciden con los de Anushri <i>et al</i>. (2002) quienes evaluaron el efecto de la inoculaci&oacute;n de tres micorrizas arbusculares y cuatro niveles de f&oacute;sforo; la mezcla de especies nativas de micorrizas y 13.9 ppm de P, adelantaron la floraci&oacute;n 30 d&iacute;as en comparaci&oacute;n con las plantas no inoculadas, respuesta que vari&oacute; en funci&oacute;n de la especie de hongo y el nivel de P.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En <i>Gerbera jamesonni</i> (Pedraza <i>et al</i>. 2001), <i>Chrysanthemum morifolium</i> (Sohn <i>et al</i>., 2003), <i>Petunia hybrida</i>, <i>Callistephus chinensis</i> e <i>Impatiens balsamina</i> (Gaur <i>et al</i>., 2000) reportaron resultados similares a los observados en el presente estudio, ya que la inoculaci&oacute;n micorrizica modific&oacute; significativamente el per&iacute;odo de iniciaci&oacute;n floral, las plantas inoculadas florecieron antes y 22 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> P produjeron significativamente mayor n&uacute;mero de flores y prolongaron el per&iacute;odo de floraci&oacute;n. Tisdale <i>et al</i>. (1990) observaron que el adecuado suministro de P en las primeras etapas del ciclo de la planta acelera el crecimiento de las estructuras reproductivas, lo que se puede relacionar con el efecto del simbionte sobre la absorci&oacute;n de P y en consecuencia adelanta la formaci&oacute;n de flores.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Vida &uacute;til de la flor</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observaron diferencias significativas para los factores de estudio y la interacci&oacute;n (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). La inoculaci&oacute;n micorrizica increment&oacute; el tiempo de anaquel de las flores, pero &eacute;sta tambi&eacute;n vari&oacute; con el nivel de P. Con la dosis de 22 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> de P m&aacute;s micorrizas se increment&oacute; en cinco d&iacute;as en comparaci&oacute;n con el testigo. Resultados similares fueron observados con la aplicaci&oacute;n de diferentes fuentes de HMA en otras especies de flor de corte como <i>Chrysanthemum morifolium</i> Ramat (Shon <i>et al</i>., 2003) y <i>Antirrhinum majus</i> L. (Besmer y Koide, 1999). Estos resultados se han relacionado con el incremento en la capacidad de transporte de nutrimentos proporcionado por los HMA (Ferrol <i>et al</i>., 2002), as&iacute; como a la reducci&oacute;n en la s&iacute;ntesis de etileno (Besmer y Koide, 1999). Gaur <i>et al</i>. (2000) estudiaron el crecimiento y la floraci&oacute;n en <i>Petunia hybrida, Callistephus chinensis</i> e <i>Impatiens balsamina</i> inoculadas con una mezcla de micorrizas nativas y la adici&oacute;n de fertilizantes qu&iacute;micos en suelos con bajo nivel de P; reportaron que la inoculaci&oacute;n micorrizica prolong&oacute; el per&iacute;odo de floraci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En promedio se observaron 5.4 botones en plantas sin inoculaci&oacute;n y 5.3 en plantas inoculadas; estos valores coinciden conc&oacute;n lo establecido en el cat&aacute;logo de cultivares de <i>Lilium</i>, en el que se indica 6 botones en promedio por planta para bulbos de calibre 14&#150;16 del cv. Orange Pixie. Lo anterior, podr&iacute;a atribuirse a que el n&uacute;mero de botones es una caracter&iacute;stica determinada gen&eacute;ticamente y est&aacute; estrechamente relacionada con las dimensiones del bulbo. Aunque en especies como <i>Chrysanthemum morifolium</i> (Sohn <i>et al</i>., 2003) y Tagetes spp. Linderman y Davies (2004) observaron incremento en la cantidad de unidades florales por efecto de la inoculaci&oacute;n, lo que refleja una respuesta diferencial entre especies de plantas y hongos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Simbiosis micorrizica y colonizaci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porcentaje de colonizaci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados mostraron significancia estad&iacute;stica (p â‰¤ 0.01) para ambos factores y para su interacci&oacute;n (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>), lo cual indica que el porcentaje de colonizaci&oacute;n en ra&iacute;z de <i>Lilium</i> sp. cv. Orange Pixie vari&oacute; con el nivel de f&oacute;sforo. Las plantas inoculadas superaron a las no inoculadas. Para la especie y cultivar en estudio la mayor respuesta se observ&oacute; con la combinaci&oacute;n de <i>Glomus fasciculatum</i> y 22 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> de P, con 68.24% de colonizaci&oacute;n, mientras que con 44 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> de P fue 35.33%, lo que refleja un efecto adverso del alto niveles de P. Estos resultados permiten establecer que <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie es susceptible a colonizaci&oacute;n por <i>Glomus fasciculatum</i> y que existe un importante efecto del nivel de P sobre la colonizaci&oacute;n por HMA. Ames y Linderman (1977) evaluaron en campo la presencia de hongos micorrizicos arbusculares en <i>Lilium</i> longiflorum Thumb e identificaron cuatro especies colonizando la ra&iacute;z, siendo las m&aacute;s abundantes Acaulospora trappei y <i>Glomus fasciculatum</i>, que alcanzaron porcentajes de colonizaci&oacute;n hasta 75%. Los mismos autores (1978) estudiaron el efecto de la colonizaci&oacute;n micorrizica bajo condiciones de invernadero en plantas provenientes de bulbo y de semilla de <i>Lilium</i> longiflorum Thumb con dos dosis de aplicaci&oacute;n de hongos micorrizicos arbusculares y tres niveles de fertilizaci&oacute;n y observaron que la dosis alta de inoculo produjo mayor infecci&oacute;n en los dos niveles de fertilizaci&oacute;n; sin embargo, la diferencia no fue significativa cuando no se aplic&oacute; fertilizante, es decir, el nivel de fertilizante influenci&oacute; la colonizaci&oacute;n de ra&iacute;z, la cual promedi&oacute; 63% y 13% con bajo y alto nivel de fertilizante, respectivamente. Cuando utilizaron pl&aacute;ntulas provenientes de semilla (que carec&iacute;an de los nutrientes de reserva del bulbo), fertilizadas con el nivel bajo de fertilizaci&oacute;n e inoculadas con A. trappei, se registr&oacute; 75% de colonizaci&oacute;n, valor que refleja la mayor dependencia de las plantas provenientes de semilla comparadas con las de bulbo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anushri <i>et al</i>. (2002) incorporaron tres fuentes de hongos MA en combinaci&oacute;n con cuatro niveles de P en la producci&oacute;n de plantas micropropagadas de Lilium sp. y observaron que el porcentaje de colonizaci&oacute;n micorrizica de cada in&oacute;culo vari&oacute; con el nivel de P; la mezcla de micorrizas nativas y Glomus intraradices aislado puro mostraron la colonizaci&oacute;n mas alta (23.5 y 20.8%, respectivamente) cuando se desarrollaron con 13.6 ppm de P disponible, mientras que Glomus intraradices comercial mostr&oacute; la m&aacute;xima colonizaci&oacute;n de ra&iacute;z (23.8%) a 12.53 ppm de P. El porcentaje de colonizaci&oacute;n de ra&iacute;z disminuy&oacute; con 14.6 ppm de P para los tres in&oacute;culos. Resultados similares fueron reportados en otras especies bulbosas ornamentales como narciso y azafr&aacute;n (Chilvers y Daft, 1981), <i>Chrysanthemum</i> (Pedraza <i>et al</i>., 2000; Sohn <i>et al</i>., 2003), <i>Petunia hybrida, Tagetes erecta</i>, <i>Callistephus chinensis</i>, <i>Papaver rhoeas</i> y <i>Dianthus caryophyllus</i> (Gaur y Adholeya, 2005); la mayor colonizaci&oacute;n se observ&oacute; con niveles medios de f&oacute;sforo dado que los niveles altos indujeron un efecto supresivo sobre el n&uacute;mero de esporas, el desarrollo del tubo germinativo primario, la ramificaci&oacute;n y la longitud total de las hifas extraradicales, as&iacute; como el n&uacute;mero de hifas que penetran la ra&iacute;z.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas y morfol&oacute;gicas del sistema radical pueden influir en la colonizaci&oacute;n micorrizica, lo que refleja una variaci&oacute;n significativa entre especies, la concentraci&oacute;n de P, la &eacute;poca de colonizaci&oacute;n, la capacidad del micosimbionte, densidad, composici&oacute;n y origen del in&oacute;culo, del genotipo y la fenolog&iacute;a de la planta, as&iacute; como de la compatibilidad entre el hongo y la planta y la temperatura en el invernadero (Linderman y Davies, 2004; Amaya <i>et al</i>., 2005; Gaur y Adholeya, 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La dosis de 44 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> de P aplicada en el presente experimento, que aparentemente inhibi&oacute; la colonizaci&oacute;n micorrizica, es menor a la que emplean algunos de los productores de <i>Lilium</i>, lo que puede dar idea del riesgo que se corre con las altas aplicaciones de estos productos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Micelio extraradical</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observaron diferencias altamente significativas (p <u>&lt;</u> 0.01) en ambos factores y la interacci&oacute;n (p <u>&lt;</u> 0.05) (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). La inoculaci&oacute;n super&oacute; estad&iacute;sticamente al control. Las dosis de 22 y 44 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> de P fueron estad&iacute;sticamente iguales entre si, y, superaron significativamente al testigo, por lo que el mejor resultado se asoci&oacute; a la combinaci&oacute;n de inoculaci&oacute;n con <i>Glomus fasciculatum</i> y 22 &micro;g ml <sup>&#150;1</sup> de P. Resultados similares fueron reportados por Davies <i>et al</i>. (2005) en papa (<i>Solanum tuberosum</i> L.), donde la colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica mejora la agregaci&oacute;n de las part&iacute;culas del suelo a trav&eacute;s de la hifa extraradical y por exudaci&oacute;n de la glicoproteina glomalina que une los microagragados del suelo en estructuras largas (Rilling y Mummey, 2004). La formaci&oacute;n de agregados mejora la aireaci&oacute;n y la percolaci&oacute;n del agua y facilita el transporte del agua y nutrientes hacia la ra&iacute;z.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El nivel de P no se relacion&oacute; con el micelio extraradical dado que este es caracter&iacute;stico de las micorrizas, lo que este resultado refleja es el mayor desarrollo de la ra&iacute;z por efecto de este elemento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de f&oacute;sforo en tallo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de micorrizas y de f&oacute;sforo no modific&oacute; en forma significativa el contenido de este elemento en el tallo (<a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadros 1</a>, <a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c2.jpg" target="_blank">2</a>, <a href="/img/revistas/agritm/v35n2/a7c3.jpg" target="_blank">3</a>), lo cual pudo deberse a el mayor desarrollo de la planta, como lo demuestran los resultados observados en el di&aacute;metro de bot&oacute;n, d&iacute;as a apertura de botones, d&iacute;as de duraci&oacute;n de la flor y peso seco de ra&iacute;z, en los que el f&oacute;sforo juega un papel preponderante (Marschner y Dell, 1994). Estos resultados difieren de los de Vanderploeg <i>et al</i>. (1974), Ames y Linderman (1978) y Anushri <i>et al</i>. (2002), quienes reportaron que el contenido de P en los tejidos de plantas de <i>Lilium</i> sp. inoculadas con micorrizas fue mayor que en las no inoculadas, aunque este resultado vari&oacute; en funci&oacute;n del nivel de fertilizaci&oacute;n. Ferrol <i>et al</i>. (2002) y Tawaraya <i>et al</i>. (2006) coincidieron en se&ntilde;alar que los HMA contribuyen al crecimiento de la planta al mejorar la absorci&oacute;n de iones con bajo coeficiente de difusi&oacute;n, como el P.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La influencia de los HMA en la absorci&oacute;n de nutrientes var&iacute;a con la fuente y cantidad de P aplicado y con las especies de HMA que coloniza la ra&iacute;z (Linderman y Davies, 2004; Amaya <i>et al</i>., 2005). La ra&iacute;z induce cambios en el pH de la riz&oacute;sfera que pueden afectar de manera importante la disponibilidad y la absorci&oacute;n de P causados por la absorci&oacute;n diferencial de aniones y cationes, por la respiraci&oacute;n de la ra&iacute;z y la exudaci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos por las hifas (Tawaraya <i>et al</i>., 2006). Estos factores podr&iacute;an estar relacionados con los resultados observados en el presente estudio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la regi&oacute;n flor&iacute;cola del Estado de M&eacute;xico, los suelos sometidos a agricultura intensiva presentan una reducci&oacute;n importante en la capacidad de colonizaci&oacute;n con HMA; la fertilizaci&oacute;n excesiva tambi&eacute;n puede afectar el establecimiento de la simbiosis y el desarrollo de la planta; consecuentemente, los cultivos tienden a depender de los fertilizantes inorg&aacute;nicos como prerrequisito para obtener alta producci&oacute;n, por lo que se puede deducir que las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas basadas en el uso intensivo de fertilizantes qu&iacute;micos son en general nocivas para los HMA, mientras que el uso de &eacute;stos en dosis &oacute;ptimas bajo un esquema de agricultura sustentable mejoran la simbiosis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis tratamiento x variable</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los componentes principales 1 (82.5%) y 2 (9.3 %) explicaron 91.9% de la variabilidad observada, por lo que las correlaciones aproximadas que se observaron en el biplot pueden interpretarse confiablemente. Los tratamientos sin micorrizas con 0, 22 y 44 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> de P se asociaron negativamente con la componente principal 1 y los tratamientos con micorrizas se asociaron con ambas componentes principales: d&iacute;as a apertura de bot&oacute;n (DAB), di&aacute;metro de tallo (DT), longitud de bot&oacute;n (LB), di&aacute;metro de bot&oacute;n (DB), altura de planta (AP), micelio extraradical (ME), d&iacute;as a duraci&oacute;n de flor (DDF), peso seco de ra&iacute;z (PSR), peso seco de flor (PSF), peso seco de tallo (PST), porcentaje de colonizaci&oacute;n (PC) y f&oacute;sforo en el tallo (P), explicaron el componente principal 1, mientras que n&uacute;mero de botones (NB) se correlacion&oacute; positivamente con la componente principal 2 (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agritm/v35n2/a7f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observ&oacute; que NB y DAB se correlacionaron entre s&iacute; y que los tratamientos sin micorrizas en los tres niveles de P incrementaron los promedios aritm&eacute;ticos en las dos variables. La combinaci&oacute;n micorrizas y 22 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> de P contribuy&oacute; al incremento de ME, DDF, PSR, PC, PST, P y PSF, mientras que los tratamientos con micorrizas y 0 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> P y micorrizas con 44 &micro;g ml<sup>&#150;1</sup> de P favorecieron la mayor expresi&oacute;n de DT, LB, DB y AP (<a href="#f1">Figura 1</a>). Estos resultados indican que NB dependi&oacute; de DAB, pero a 44 &micro;g mg<sup>&#150;1</sup> de P se inhibi&oacute; el efecto de las micorrizas y la expresi&oacute;n de estas variables y de ME, DDF, PSR, PC, PST, P y PSF.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie es susceptible a la colonizaci&oacute;n por <i>Glomus fasciculatum</i> y la simbiosis tiene efectos favorables sobre el di&aacute;metro de tallo, la longitud y el di&aacute;metro del bot&oacute;n, el peso seco y la vida &uacute;til de la flor, que en conjunto contribuyen a mejorar la calidad comercial de la flor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El per&iacute;odo de inoculaci&oacute;n, el tipo de aislado del hongo, as&iacute; como la fuente y concentraci&oacute;n del fertilizante qu&iacute;mico, deben considerarse para maximizar los beneficios de la simbiosis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n de <i>Lilium</i> sp. cv Orange Pixie con <i>Glomus fasciculatum</i>.<i> G. fasciculatum</i> adelanta la floraci&oacute;n, mejora la calidad de la flor y permite reducir el uso de fertilizantes qu&iacute;micos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alc&aacute;ntar, G. G. y Sandoval, M. V. 1999. Manual de an&aacute;lisis qu&iacute;mico de tejido vegetal. Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo, A. C. Chapingo, M&eacute;xico. Publicaci&oacute;n Especial 10.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510276&pid=S0568-2517200900020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Amaya, C. L.; Davies Jr., F. T. and Arnold, M. A. 2003. Effect of commercial arbuscular mycorrhizal fungi on growth, survivability, and subsequent landscape performance of select container growth nursery crops. J. Environ. Hort. 21(4):190&#150;195.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510277&pid=S0568-2517200900020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Amaya, C. L.; Davies Jr., F. T. and Arnold, M. A. 2005. Arbuscular mycorrhizal fungi and inorganic controlled&#150;release fertilizer: Effect on growth and leachate of container&#150;grown Bush Morning Glory (<i>Ipomea carnea</i> ssp. <i>fistulosa</i>) under high production temperatures. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 130(1):131&#150;139.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510278&pid=S0568-2517200900020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ames, R. N. and Linderman, R. G. 1977. Vesicular&#150;arbuscular mycorrhizae of easter lily in the northwestern Unites States. Can. J. Microbiol. 23(12):1663&#150;1668.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510279&pid=S0568-2517200900020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ames, R. N. and Linderman, R. G. 1978. The growth of easter lily (<i>Lilium longiflorum</i>) as influenced by vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal fungi, <i>Fusarium oxisporium</i> and fertility level. Can. J. Bot. 56(21):2773&#150;2780.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510280&pid=S0568-2517200900020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anushri, V. M.; Sharma, P.; Adholeya, A.; Dhawan, V. and Srivastava, P. S. 2002. Enhanced growth of micropropagated bulblets of <i>Lilium</i> sp. inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi at different P fertility levels in an alfisol. J. of Hort. Sci. &amp; Tech. 77(3):258&#150;263</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510281&pid=S0568-2517200900020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ba&ntilde;&oacute;n, A. S.; Cifuentes, R. D.; Gonz&aacute;lez, B. G. A. y Fern&aacute;ndez, H. I. 1993. <i>Lilium</i> In: Gerbera, <i>Lilium</i>, Tulip&aacute;n y Rosa. Segunda edici&oacute;n. Ediciones Mundi&#150;Prensa. Madrid, Espa&ntilde;a. p. 71&#150;158.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510282&pid=S0568-2517200900020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Beltr&aacute;n, M. A. 2008. El futuro de la industria flor&iacute;cola de M&eacute;xico. Reporte de actividades del Consejo Mexicano de la Flor. Villa Guerrero, M&eacute;xico. 10 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510283&pid=S0568-2517200900020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Besmer, Y. L. and Koide, R. T. 1999. Effect of mycorrizal colonization and phosphorus on ethylene production by snapdragon (<i>Antirrhinum majus</i> L.) flowers. Mycorrhiza. 9:161&#150;166.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510284&pid=S0568-2517200900020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Betancourt, O. M.; Rodr&iacute;guez, M. M. N.; Sandoval, V. M. y Gayt&aacute;n, A. E. A. 2005. Fertilizaci&oacute;n foliar una herramienta en el desarrollo del cultivo de <i>Lilium</i> cultivar Stargazer. Revista Chapingo Serie Horticultura 11(2):371&#150;378.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510285&pid=S0568-2517200900020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chilvers, M. T. and Daft, M. F. J. 1981. Mycorrhizas of the Liliflorae. II. Mycorrhiza formation and incidence of root hairs in field grown <i>Narcissus</i> L., <i>Tulipa</i> L. and <i>Crocus</i> L. cultivars. New Phytol. 89:247&#150;261.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510286&pid=S0568-2517200900020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Davies Jr., F. T.; Calderon, C. M. and Huaman, Z. 2005. Influence of arbuscular mycorrhizae indigenous to Peru and flavonoid on growth, yield and leaf elemental concentration of Yungay potatoes. Hort. Sci. 40(2):381&#150;385.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510287&pid=S0568-2517200900020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ferrol, N.; Barea J., M. and Aguilar C., A. 2002. Mechanisms of nutrient transport across interfaces in arbuscular mycorrhizas. Plant and Soil. 244:231&#150;237.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510288&pid=S0568-2517200900020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gaur, A. and Adholeya, A. 2000. Growth and flowering in petunia hibrida, Callistephus chinensis and Impatients balsamina inoculated with mixed AM inocula or chemical fertilizers in a soil of low P fertility. Sci. Hort. 84:151&#150;162.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510289&pid=S0568-2517200900020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gaur, A. and Adholeya, A. 2005. Diverse response of five ornamental plant species to mixed indigenous and single isolate arbuscular mycorrhizal inocula in marginal soil attended with organic matter. J. of Plant Nutr. 28(4):707&#150;723.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510290&pid=S0568-2517200900020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez, H. A.; V&aacute;zquez, G. L. M.; Sahag&uacute;n, C. J.; Rodr&iacute;guez, P. J. E. y P&eacute;rez, L. D. J. 2007. Rendimiento del ma&iacute;z de temporal y su relaci&oacute;n con la pudrici&oacute;n de mazorca. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 33(1):33&#150;42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510291&pid=S0568-2517200900020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hewitt, E. J. 1966. Sand and water culture methods used in the study of plant nutrition. Commonwealth Agricultural Bureau of Horticulture. Tech. Commun. 22. 340 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510292&pid=S0568-2517200900020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jeffries, P.; Gianinazzi, S.; Perotto, S.; Rutnau, K. and Barea, J. M. 2003. The contribution of arbuscular mycorrhizal fungi in sustainable maintenance of plant health and soil fertility. Biol. Fert. Soil. 37:1&#150;16.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510293&pid=S0568-2517200900020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koide, R. T.; Landherr, L. L.; Besmer, L. Y.; Detweiler, J. M. and Holcomb, E. J. 1999. Strategies for mycorrhizal inoculation of six annual bedding plant species. HotScience 34(7):1217&#150;1220.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510294&pid=S0568-2517200900020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Linderman, R. G. and Davies, E. A. 2004. Varied response of marigold (<i>Tagetes</i> spp.) genotypes to inoculation with different arbuscular mycorhizal fungi. Sci. Hort. 99:67&#150;78.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510295&pid=S0568-2517200900020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marschner, H. and Dell, B. 1994. Nutrient uptake in mycorrhizal simbiosis. Plant and Soil. 159(1):89&#150;102.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510296&pid=S0568-2517200900020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez, G. A. 1988. Dise&ntilde;os experimentales. M&eacute;todos y elementos de teor&iacute;a. 1&ordf; ed.Trillas, M&eacute;xico.756 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510297&pid=S0568-2517200900020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedraza, S. M. E.; Ja&eacute;n, C. D.; Guti&eacute;rrez, E. M. A.; Colinas, L. T., and L&oacute;pez, P. C. 2000. Growth and nutrition of <i>chrysanthemum</i> micro plants inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi. HortScience. 35:3446.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510298&pid=S0568-2517200900020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedraza, S. M. E.; Ja&eacute;n, C. D.; Guti&eacute;rrez, E. M. A.; Colinas, L. T. y L&oacute;pez, P. C. 2001. Crecimiento y nutrici&oacute;n de micro plantas de gerbera inoculadas con hongos micorr&iacute;zicos arbusculares. Agrociencia. 35 (2):149&#150;158.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510299&pid=S0568-2517200900020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phillips, J. M. and Hayman, D. S. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of interaction. Trans. Br. Mycol. Soc. 55:158&#150;161.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510300&pid=S0568-2517200900020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rilling, C. M. and Mummey, L. D. 2004. Mycorrhizal and soil structure. New Phytol. 171:41&#150;53.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510301&pid=S0568-2517200900020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sohn, B. K.; Kim, K. Y.; Chung, S. J.; Kim, W. S.; Park, S. M.; Kang, J. G.; Rim, S., Y.; Cho, J. S.; Kim, T. H. and Lee, J. H. 2003. Effect of the different timing of AMF inoculation on plant growth and flower quality of Chysanthemum. Sci. Hort. 98:173&#150;183.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510302&pid=S0568-2517200900020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stancato, G. C. and Parada, D. A. 2006. Mycorrhizal fungi and micropropagated cultivars of <i>Anthurium</i> associations. Bragantia. 65(3):1&#150;9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510303&pid=S0568-2517200900020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tawaraya, K.; Naito, M. and Wagatsuma, T. 2006. Solubilization of insoluble inorganic phosphate by hifal exudates of arbuscular mycorrhizal fungi. J. Plant Nutr. 29(4):657&#150;665.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510304&pid=S0568-2517200900020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tisdale, L. S.; Nelson, L W. and Beaton, D J. 1990. Soil Fertility and Fertilizer. Fourth edition. Maxwell Macmillan International Editions. Republic Singapore. 754 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510305&pid=S0568-2517200900020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vanderploeg, J. F.; Lighty, R. W. and Sasser, M. 1974. Mycorrhizal association between <i>Lilium</i> taxa and endogone. HortScience. 9:383&#150;384.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=510306&pid=S0568-2517200900020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Alcántar]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sandoval]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Manual de análisis químico de tejido vegetal]]></source>
<year>1999</year>
<volume>10</volume>
<publisher-name><![CDATA[Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo, A. C.]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Amaya]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Davies]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Arnold]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of commercial arbuscular mycorrhizal fungi on growth, survivability, and subsequent landscape performance of select container growth nursery crops]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Environ. Hort.]]></source>
<year>2003</year>
<volume>21</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>190-195</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Amaya]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Davies]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Arnold]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Arbuscular mycorrhizal fungi and inorganic controlled-release fertilizer: Effect on growth and leachate of container-grown Bush Morning Glory (Ipomea carnea ssp. fistulosa) under high production temperatures]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Amer. Soc. Hort. Sci.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>130</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>131-139</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ames]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Linderman]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Vesicular-arbuscular mycorrhizae of easter lily in the northwestern Unites States]]></article-title>
<source><![CDATA[Can. J. Microbiol.]]></source>
<year>1977</year>
<volume>23</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>1663-1668</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ames]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Linderman]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The growth of easter lily (Lilium longiflorum) as influenced by vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi, Fusarium oxisporium and fertility level]]></article-title>
<source><![CDATA[Can. J. Bot.]]></source>
<year>1978</year>
<volume>56</volume>
<numero>21</numero>
<issue>21</issue>
<page-range>2773-2780</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Anushri]]></surname>
<given-names><![CDATA[V. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sharma]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Adholeya]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dhawan]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Srivastava]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Enhanced growth of micropropagated bulblets of Lilium sp. inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi at different P fertility levels in an alfisol]]></article-title>
<source><![CDATA[J. of Hort. Sci. & Tech.]]></source>
<year>2002</year>
<volume>77</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>258-263</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bañón]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cifuentes]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[B. G. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[H. I.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Lilium]]></article-title>
<source><![CDATA[Gerbera, Lilium, Tulipán y Rosa]]></source>
<year>1993</year>
<edition>Segunda</edition>
<page-range>71-158</page-range><publisher-loc><![CDATA[Madrid ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Ediciones Mundi-Prensa]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Beltrán]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[El futuro de la industria florícola de México. Reporte de actividades del Consejo Mexicano de la Flor]]></source>
<year>2008</year>
<page-range>10</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Besmer]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y. L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Koide]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. T.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of mycorrizal colonization and phosphorus on ethylene production by snapdragon (Antirrhinum majus L.) flowers]]></article-title>
<source><![CDATA[Mycorrhiza]]></source>
<year>1999</year>
<volume>9</volume>
<page-range>161-166</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Betancourt]]></surname>
<given-names><![CDATA[O. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rodríguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. M. N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sandoval]]></surname>
<given-names><![CDATA[V. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gaytán]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. E. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Fertilización foliar una herramienta en el desarrollo del cultivo de Lilium cultivar Stargazer]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Chapingo Serie Horticultura]]></source>
<year>2005</year>
<volume>11</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>371-378</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chilvers]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Daft]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. F. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizas of the Liliflorae. II: Mycorrhiza formation and incidence of root hairs in field grown Narcissus L., Tulipa L. and Crocus L. cultivars]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytol.]]></source>
<year>1981</year>
<volume>89</volume>
<page-range>247-261</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Davies]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Calderon]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Huaman]]></surname>
<given-names><![CDATA[Z.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Influence of arbuscular mycorrhizae indigenous to Peru and flavonoid on growth, yield and leaf elemental concentration of Yungay potatoes]]></article-title>
<source><![CDATA[Hort. Sci.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>40</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>381-385</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ferrol]]></surname>
<given-names><![CDATA[N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barea]]></surname>
<given-names><![CDATA[J., M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aguilar C.]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mechanisms of nutrient transport across interfaces in arbuscular mycorrhizas]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant and Soil]]></source>
<year>2002</year>
<volume>244</volume>
<page-range>231-237</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gaur]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Adholeya]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Growth and flowering in petunia hibrida, Callistephus chinensis and Impatients balsamina inoculated with mixed AM inocula or chemical fertilizers in a soil of low P fertility]]></article-title>
<source><![CDATA[Sci. Hort.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>84</volume>
<page-range>151-162</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gaur]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Adholeya]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Diverse response of five ornamental plant species to mixed indigenous and single isolate arbuscular mycorrhizal inocula in marginal soil attended with organic matter]]></article-title>
<source><![CDATA[J. of Plant Nutr.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>28</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>707-723</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[H. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vázquez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. L. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sahagún]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rodríguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. J. E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pérez]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. D. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Rendimiento del maíz de temporal y su relación con la pudrición de mazorca]]></article-title>
<source><![CDATA[Agric. Téc. Méx.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>33</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>33-42</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hewitt]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Sand and water culture methods used in the study of plant nutrition. Commonwealth Agricultural Bureau of Horticulture]]></article-title>
<source><![CDATA[Tech. Commun.]]></source>
<year>1966</year>
<volume>22</volume>
<page-range>340</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jeffries]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gianinazzi]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Perotto]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rutnau]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barea]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The contribution of arbuscular mycorrhizal fungi in sustainable maintenance of plant health and soil fertility]]></article-title>
<source><![CDATA[Biol. Fert. Soil.]]></source>
<year>2003</year>
<volume>37</volume>
<page-range>1-16</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Koide]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Landherr]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Besmer]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. Y.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Detweiler]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Holcomb]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Strategies for mycorrhizal inoculation of six annual bedding plant species]]></article-title>
<source><![CDATA[HotScience]]></source>
<year>1999</year>
<volume>34</volume>
<numero>7</numero>
<issue>7</issue>
<page-range>1217-1220</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Linderman]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Davies]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Varied response of marigold (Tagetes spp.) genotypes to inoculation with different arbuscular mycorhizal fungi]]></article-title>
<source><![CDATA[Sci. Hort.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>99</volume>
<page-range>67-78</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Marschner]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dell]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Nutrient uptake in mycorrhizal simbiosis]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant and Soil]]></source>
<year>1994</year>
<volume>159</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>89-102</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Diseños experimentales. Métodos y elementos de teoría]]></source>
<year>1988</year>
<edition>1ª</edition>
<page-range>756</page-range><publisher-name><![CDATA[Trillas]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pedraza]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. M. E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jaén]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gutiérrez]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. M. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Colinas]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[López]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Growth and nutrition of chrysanthemum micro plants inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi]]></article-title>
<source><![CDATA[HortScience]]></source>
<year>2000</year>
<volume>35</volume>
<page-range>3446</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pedraza]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. M. E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jaén]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gutiérrez]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. M. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Colinas]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[López]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Crecimiento y nutrición de micro plantas de gerbera inoculadas con hongos micorrízicos arbusculares]]></article-title>
<source><![CDATA[Agrociencia]]></source>
<year>2001</year>
<volume>35</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>149-158</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Phillips]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hayman]]></surname>
<given-names><![CDATA[D. S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of interaction]]></article-title>
<source><![CDATA[Trans. Br. Mycol. Soc.]]></source>
<year>1970</year>
<volume>55</volume>
<page-range>158-161</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rilling]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mummey]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. D.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal and soil structure]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytol.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>171</volume>
<page-range>41-53</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sohn]]></surname>
<given-names><![CDATA[B. K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kim]]></surname>
<given-names><![CDATA[K. Y.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chung]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kim]]></surname>
<given-names><![CDATA[W. S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Park]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kang]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rim]]></surname>
<given-names><![CDATA[S., Y.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cho]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kim]]></surname>
<given-names><![CDATA[T. H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lee]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. H.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of the different timing of AMF inoculation on plant growth and flower quality of Chysanthemum]]></article-title>
<source><![CDATA[Sci. Hort.]]></source>
<year>2003</year>
<volume>98</volume>
<page-range>173-183</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stancato]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. C.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Parada]]></surname>
<given-names><![CDATA[D. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal fungi and micropropagated cultivars of Anthurium associations]]></article-title>
<source><![CDATA[Bragantia]]></source>
<year>2006</year>
<volume>65</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>1-9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tawaraya]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Naito]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wagatsuma]]></surname>
<given-names><![CDATA[T.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Solubilization of insoluble inorganic phosphate by hifal exudates of arbuscular mycorrhizal fungi]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Plant Nutr.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>29</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>657-665</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tisdale]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nelson]]></surname>
<given-names><![CDATA[L W.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Beaton]]></surname>
<given-names><![CDATA[D J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Soil Fertility and Fertilizer]]></source>
<year>1990</year>
<edition>Fourth</edition>
<page-range>754</page-range><publisher-loc><![CDATA[Republic Singapore ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Maxwell Macmillan International Editions]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Vanderploeg]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lighty]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. W.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sasser]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal association between Lilium taxa and endogone]]></article-title>
<source><![CDATA[HortScience]]></source>
<year>1974</year>
<volume>9</volume>
<page-range>383-384</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
