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<journal-title><![CDATA[Agricultura técnica en México]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Acondicionamiento osmótico de semillas de tomate de cáscara]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma Chapingo Departamento de Fitotecnia ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this study was to evaluate the effect of osmopriming on the physiological quality of husk tomato seeds. The experiment was carried out at the Seed Analysis Laboratory of the Colegio de Postgraduados at Montecillo, State of Mexico, Mexico, during September 2004 to May 2005. Husk tomato seeds of cv. Rendidora were osmoprimed with KNO3, polyethylene glycol 8000 and KCl as osmotic agents, at -5, -10, -15 and -20 atm during 48, 72 and 96 h. After primed, the seeds were stored during 0, 7, 90 and 180 days in order to evaluate the persistence of the osmopriming treatments. Seed physiological quality was evaluated by determining the percentage of germination, abnormal seedlings, latent seeds, death seeds, time to reach 50% germination and seedling dry weight. The osmopriming effects depended on the osmotic agent, the osmotic pressure and the duration of the treatment. Seed storage after osmopriming increased germination and reduced the percentage of latent seeds. Osmopriming with KCl at -15 atm during 48 h or with KNO3 at -20 atm during 48 h improved the physiological quality of husk tomato seeds cv. Rendidora, improvement that persisted up to 180 days after treatment.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[germinación]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>ACONDICIONAMIENTO OSM&Oacute;TICO DE SEMILLAS DE TOMATE DE C&Aacute;SCARA*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>OSMOTIC CONDITIONING OF HUSK TOMATO SEEDS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Jos&eacute; Mar&iacute;n S&aacute;nchez<sup>1<img src="/img/revistas/agritm/v33n2/a1s1.jpg"></sup>, Jos&eacute; Apolinar Mej&iacute;a Contreras<sup>1</sup>, Adrian Hern&aacute;ndez Livera<sup>1</sup>, Aureliano Pe&ntilde;a Lomel&iacute;<sup>2</sup> y Aquiles Carballo Carballo<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Producci&oacute;n de Semillas, Recursos Gen&eacute;ticos y Productividad, Colegio de Postgraduados. Km. 35.5, carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. 56230 Montecillo, Texcoco, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico</i>. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Fitotecnia, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. </i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agritm/v33n2/a1s1.jpg"><b>Autor para correspondencia:</b>     <br> <a href="mailto:josem@colpos.mx">josem@colpos.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: Agosto de 2005    <br> Aceptado: Abril de 2007</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el objetivo de evaluar el efecto del acondicionamiento osm&oacute;tico sobre la calidad fisiol&oacute;gica de semillas de tomate de c&aacute;scara, se realiz&oacute; un experimento en el Laboratorio de An&aacute;lisis de Semillas del Colegio de Postgraduados en Montecillo, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico, en el per&iacute;odo septiembre de 2004 a mayo de 2005. La semilla de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora fue osmoacondicionada con KNO<sub>3</sub>, KCl y polietilen glicol&#150;8000 a &#150;5, &#150;10, &#150;15 y &#150;20 atm durante 48, 72 y 96 h y posteriormente se almacen&oacute; durante 0, 7, 90 y 180 d&iacute;as. Los par&aacute;metros evaluados fueron: porciento de germinaci&oacute;n, pl&aacute;ntulas anormales, semillas latentes y semillas muertas, tiempo para alcanzar 50% de germinaci&oacute;n y peso seco de pl&aacute;ntula. El efecto del acondicionamiento osm&oacute;tico sobre las variables de germinaci&oacute;n vari&oacute; en funci&oacute;n del agente osm&oacute;tico y su potencial, y la duraci&oacute;n del tratamiento. El almacenamiento favoreci&oacute; el porciento de germinaci&oacute;n y redujo el de semillas latentes. El acondicionamiento osm&oacute;tico con KCl a &#150;15 atm durante 48 h o con KNO<sub>3</sub> a &#150;20 atm durante 48 h, mejoraron la calidad fisiol&oacute;gica de la semilla de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora, efecto que persisti&oacute; hasta por 180 d&iacute;as despu&eacute;s del tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Physalis ixocarpa </i>Brot., germinaci&oacute;n, osmoacondicionamiento, vigorizaci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of this study was to evaluate the effect of osmopriming on the physiological quality of husk tomato seeds. The experiment was carried out at the Seed Analysis Laboratory of the Colegio de Postgraduados at Montecillo, State of Mexico, Mexico, during September 2004 to May 2005. Husk tomato seeds of cv. Rendidora were osmoprimed with KNO<sub>3</sub>, polyethylene glycol 8000 and KCl as osmotic agents, at &#150;5, &#150;10, &#150;15 and &#150;20 atm during 48, 72 and 96 h. After primed, the seeds were stored during 0, 7, 90 and 180 days in order to evaluate the persistence of the osmopriming treatments. Seed physiological quality was evaluated by determining the percentage of germination, abnormal seedlings, latent seeds, death seeds, time to reach 50% germination and seedling dry weight. The osmopriming effects depended on the osmotic agent, the osmotic pressure and the duration of the treatment. Seed storage after osmopriming increased germination and reduced the percentage of latent seeds. Osmopriming with KCl at &#150;15 atm during 48 h or with KNO<sub>3</sub> at &#150;20 atm during 48 h improved the physiological quality of husk tomato seeds cv. Rendidora, improvement that persisted up to 180 days after treatment.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Physalis ixocarpa </i>Brot., germination, invigoration, osmopriming.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La prolongada latencia de la semilla de tomate de c&aacute;scara <i>(Physalis ixocarpa </i>Brot.) se debe a la presencia de un embri&oacute;n inmaduro que requiere de un per&iacute;odo corto de almacenamiento para completar su desarrollo y germinar adecuadamente (Ordu&ntilde;a 1989). La calidad de la semilla se compone de varios elementos uno de ellos es la calidad fisiol&oacute;gica que se eval&uacute;a mediante pruebas de germinaci&oacute;n y viabilidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acondicionamiento osm&oacute;tico se ha reportado como un m&eacute;todo eficaz para mejorar la calidad fisiol&oacute;gica de la semilla a trav&eacute;s de la uniformidad y porciento de germinaci&oacute;n. El m&eacute;todo consiste en la inmersi&oacute;n de la semilla en una soluci&oacute;n de concentraci&oacute;n determinada por un per&iacute;odo dado; hidratada la semilla, se activa su metabolismo en forma controlada, de tal manera que la germinaci&oacute;n no ocurre (Bradford <i>et al., </i>1990). El grado de hidrataci&oacute;n de la semilla se controla por medio del equilibrio osm&oacute;tico que se presenta entre el potencial h&iacute;drico de la soluci&oacute;n y el interior de la semilla (Akers y Kevin, 1986), en esta condici&oacute;n, las semillas se mantiene en un estado germinativo avanzado durante el per&iacute;odo de osmoacondicionamiento. Como resultado, las semillas con germinaci&oacute;n "lenta" tienden a alcanzar a las "r&aacute;pidas", por lo que cuando las semillas osmoacondicionadas se siembran en campo germinan con mayor rapidez y uniformidad que las no tratadas. Este efecto es m&aacute;s evidente cuando se presentan condiciones adversas como pueden ser las ambientales o las de contenido de humedad en el suelo (Bradford, 1986).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un estudio similar al presente, Tetepa (1997) acondicion&oacute; semillas de tomate de c&aacute;scara con polietilen glicol 200 a cinco potenciales osm&oacute;ticos: 0, &#150;5, &#150;10, &#150;15 y &#150;20 atm durante cinco per&iacute;odos de tratamiento: 0, 8, 16, 24 y 32 h. En los de 0 y &#150;5 atm y 24 y 32 h observ&oacute; 81% de germinaci&oacute;n, lo que super&oacute; significativamente al testigo. No obstante estos resultados, se desconoce si los efectos ben&eacute;ficos del acondicionamiento osm&oacute;tico persisten despu&eacute;s de almacenar la semilla de tomate de c&aacute;scara a mediano plazo. En este contexto, el presente estudio se estableci&oacute; con el siguiente objetivo: conocer el efecto y la persistencia del acondicionamiento osm&oacute;tico con tres agentes osm&oacute;ticos en tres concentraciones durante cuatro per&iacute;odos de tratamiento y cinco de almacenamiento posterior, sobre la calidad fisiol&oacute;gica de semillas de tomate de c&aacute;scara.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se condujo en el Laboratorio de An&aacute;lisis de Semillas del Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo, Texcoco, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico. Se inici&oacute; en septiembre de 2004 y se concluy&oacute; en Mayo de 2005. Se utilizaron semillas de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora previamente almacenadas durante un a&ntilde;o a 10 &deg;C, envases de cristal de 100 ml para el acondicionamiento osm&oacute;tico, dos bombas de aire peque&ntilde;as, term&oacute;metro, papel filtro y cajas de petri, c&aacute;mara de germinaci&oacute;n iluminada, refrigerador, estufa de secado y balanza digital; nitrato de potasio KNO<sub>3</sub>, cloruro de potasio KCl y polietilen glicol 8000, (PEG&#150;8000); agua destilada para la preparaci&oacute;n de las soluciones y las pruebas de germinaci&oacute;n, tetrazolio para pruebas de viabilidad y fungicida "Captan 500" (i.a. captan) a dosis de 5 gL<sup>&#150;1</sup> de agua.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se realiz&oacute; con un arreglo factorial en un dise&ntilde;o completamente al azar con cuatro repeticiones, los factores de variaci&oacute;n fueron: tres agentes osm&oacute;ticos KNO<sub>3</sub>, PEG&#150;8000 y KCl, cuatro potenciales osm&oacute;ticos &#150;5, &#150;10, &#150;15 y &#150;20 atm y tres per&iacute;odos de acondicionamiento osm&oacute;tico 48, 72 y 96 h. Como testigos se incluyeron, agua destilada como agente osm&oacute;tico, 0 atm y 0 h de per&iacute;odo de acondicionamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las soluciones con PEG&#150;8000 se prepararon de acuerdo con la ecuaci&oacute;n propuesta por Michel (1983):</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#91;PEG&#93;=&#91;4&#150;(5.16&Psi;</sup>T&#150;560&Psi;+16)/(2)&#93;/&#91;2.58T&#150;280&#93;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">T= Temperatura de preparaci&oacute;n de la soluci&oacute;n en &deg;C</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Psi;= Potencial osm&oacute;tico requerido en bares</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#91;PEG&#93;= Kilogramos de PEG por litro de agua destilada.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las soluciones de KNO<sub>3</sub> y KCl se prepararon de acuerdo con la ecuaci&oacute;n propuesta por Wiggans y Gardner (1959):</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">G= (PVm) / (RT)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">G= Gramos de soluto a utilizar</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">P= Presi&oacute;n osm&oacute;tica deseada (atm)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">V= Volumen en litros</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">m= Peso molecular del soluto</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">R= Constante igual a 0.0825 atm 1 mol<sup>&#150;1</sup> &deg; K<sup>&#150;1</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">T= Temperatura a la que se prepara la soluci&oacute;n (&deg;K).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las soluciones se vaciaron en los envases de vidrio donde fueron sumergidas las semillas durante la duraci&oacute;n de los tratamientos. Se utiliz&oacute; un sistema de oxigenaci&oacute;n con dos bombas de aire, manguera de 8 mm de di&aacute;metro y micro tubos como lo sugieren Welbaum <i>et al. </i>(1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s del acondicionamiento osm&oacute;tico se evalu&oacute; el porciento de semillas germinadas, mismas que se lavaron con agua corriente para eliminar los residuos de los agentes utilizados durante el tratamiento; enseguida, se les asperj&oacute; el fungicida como preventivo de enfermedades, sec&aacute;ndolas a 18 &deg;C y se almacenaron a 10 &deg;C por cuatro per&iacute;odos, 0, 7, 90 y 180 d&iacute;as.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s del per&iacute;odo de almacenamiento se realizaron pruebas de germinaci&oacute;n. Se tomaron 100 semillas de cada tratamiento, formando cuatro submuestras de 25 semillas cada una, se colocaron en caj as petri con papel filtro h&uacute;medo. Se introdujeron en la c&aacute;mara de germinaci&oacute;n a 22 &deg;C. Durante la prueba se realizaron dos conteos para evaluar el porciento de germinaci&oacute;n, el primero al d&iacute;a 7 y el segundo al d&iacute;a 28 (ISTA, 2004). Las variables evaluadas fueron: porcentaje de germinaci&oacute;n, pl&aacute;ntulas anormales, semillas latentes, semillas muertas, tiempo (en h) para alcanzar 50% de germinaci&oacute;n (G50) y peso seco de pl&aacute;ntulas. Se realiz&oacute; la prueba de viabilidad con tetrazolio al 0.1 % (ISTA, 2004) a las semillas que permanecieron sin emitir la rad&iacute;cula para verificar que estaban vivas y considerarlas como latentes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los datos obtenidos se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza, contrastes ortogonales entre los tratamientos y el testigo y en aquellas que mostraron diferencia significativa se realiz&oacute; la prueba de Tukey (&infin; = 0.05) con el uso del paquete estad&iacute;stico SAS (SAS Institute, 1999). En lo que se refiere a las interacciones, s&oacute;lo se consideraron las relevantes de acuerdo con los objetivos planteados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se observaron semillas germinadas durante los per&iacute;odos de acondicionamiento osm&oacute;tico en los tratamientos evaluados. Seg&uacute;n Akers y Kevin (1986), esto se debe a que la presi&oacute;n osm&oacute;tica de la soluci&oacute;n y semilla llegan a un equilibrio, con lo que se interrumpe el flujo de agua hacia el interior de la semilla y la germinaci&oacute;n no llega a ocurrir.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de los agentes osm&oacute;ticos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para este factor se observaron diferencias significativas en las variables: porcentaje de germinaci&oacute;n, porcentaje de pl&aacute;ntulas anormales, porcentaj e de semillas muertas, tiempo para alcanzar 50% de germinaci&oacute;n y peso seco de pl&aacute;ntula (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, los tres agentes osm&oacute;ticos utilizados superaron al testigo en el porcentaje de germinaci&oacute;n: mostraron un menor n&uacute;mero de pl&aacute;ntulas anormales y semillas latentes y mayor peso seco de pl&aacute;ntulas. Las semillas osmoacondicionadas con KNO<sub>3</sub> mejoraron en 22% la tasa de germinaci&oacute;n, redujeron en 10% el n&uacute;mero de pl&aacute;ntulas anormales, en 12% las semillas latentes y en 52 h el tiempo para alcanzar 50% de germinaci&oacute;n con respecto al testigo; sin embargo, con este agente se observ&oacute; el valor m&aacute;s bajo de peso seco de pl&aacute;ntula respecto a KCl y PEG&#150;8000, aunque super&oacute; al testigo (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Potenciales osm&oacute;ticos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observaron diferencias significativas en todas las variables evaluadas correspondientes a este factor (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). En general, todos los potenciales osm&oacute;ticos utilizados mostraron mayor porcentaje de germinaci&oacute;n, menor porciento de pl&aacute;ntulas anormales y semillas latentes, mayor rapidez en la germinaci&oacute;n y mayor peso seco de pl&aacute;ntula que el testigo (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). De los potenciales osm&oacute;ticos utilizados, el de &#150;15 atm, obtuvo el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n, los menores porcientos de semillas muertas, latentes y pl&aacute;ntulas anormales, adem&aacute;s de lograr 50% de germinaci&oacute;n en el per&iacute;odo m&aacute;s corto. Este resultado difiere de los de Tetepa (1997) quien obtuvo resultados positivos con potenciales m&aacute;s altos (0 y &#150;5 atm); sin embargo, coincide con los de Parera y Cantliffe (1994), quienes determinaron que acondicionar osm&oacute;ticamente a potenciales bajos permite obtener una germinaci&oacute;n m&aacute;s r&aacute;pida.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Per&iacute;odo de acondicionamiento osm&oacute;tico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las siguientes variables: porciento de pl&aacute;ntulas anormales, G50 y peso seco de pl&aacute;ntula se observaron diferencias significativas (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Todos los per&iacute;odos de acondicionamiento osm&oacute;tico superaron al testigo en todas las variables de germinaci&oacute;n evaluadas (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el per&iacute;odo de 48 h de tratamiento se observaron los mejores resultados en coincidencia con los de M&ouml;ller y Smith (1998), quienes reportaron que el per&iacute;odo de acondicionamiento osm&oacute;tico debe ser corto; con per&iacute;odos prolongados existe el riesgo de que los iones de los agentes osm&oacute;ticos penetren la semilla y da&ntilde;en el embri&oacute;n. Estos resultados concuerdan con los de Tetepa (1997), quien al acondicionar osm&oacute;ticamente semillas de tomate de c&aacute;scara obtuvo la mejor calidad fisiol&oacute;gica con 32 h de tratamiento. Por su parte Haigh y Barlow (1986) observaron que al prolongar el per&iacute;odo de acondicionamiento osm&oacute;tico se redujo el porcentaje de germinaci&oacute;n con relaci&oacute;n al testigo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Per&iacute;odos de almacenamiento</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acondicionamiento osm&oacute;tico de las semillas es una pr&aacute;ctica comercial exitosa que mejora el proceso de germinaci&oacute;n (Bruggink <i>et al., </i>1999); sin embargo, reduce el per&iacute;odo de almacenamiento, lo que representa una limitante de esta tecnolog&iacute;a. Lo anterior es el resultado de interacciones complejas entre factores f&iacute;sicos y bioqu&iacute;micos que desestabilizan las prote&iacute;nas (Wolkers <i>et al., </i>1999). Adem&aacute;s, con el osmoacondicionamiento se incrementa la susceptibilidad del ADN a sufrir da&ntilde;os durante el almacenamiento debido a que se modifica la cantidad de prote&iacute;nas que codifica (Boubriak <i>et al., </i>2000 y Chiatante y Onelli, 1993). Gurusinghe y Bradford (2001) coincidieron con lo se&ntilde;alado anteriormente e indicaron que la semilla de varias especies osmoacondicionadas durante per&iacute;odos cortos reducen el tiempo de almacenamiento. Sin embargo, en esta investigaci&oacute;n ocurri&oacute; lo contrario, ya que la calidad fisiol&oacute;gica de la semilla de tomate de c&aacute;scara mejor&oacute; a medida que se prolong&oacute; el per&iacute;odo de almacenamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los per&iacute;odos de almacenamiento de 90 y 180 d&iacute;as mostraron el m&aacute;s alto porciento de germinaci&oacute;n y el menor porciento de semillas latentes en comparaci&oacute;n con el testigo (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Estos resultados difieren con los de Atherton y Faroque (1983), quienes observaron que los efectos ben&eacute;ficos del acondicionamiento osm&oacute;tico pueden perderse durante el almacenamiento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Interacciones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agente osm &oacute;tico x potencial osm&oacute;tico. </b>En esta interacci&oacute;n se observ&oacute; que tanto el agente como el potencial osm&oacute;tico interact&uacute;aron sobre las variables de germinaci&oacute;n evaluadas, lo cual coincide con lo se&ntilde;alado por Cantliffe (1981).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los mayores porcentajes de germinaci&oacute;n 87.4 y 90.5 y los menores porcentajes de semillas muertas 7.6 y 7.4, se obtuvieron con KNO<sub>3</sub> a &#150;15 y &#150;20 atm, respectivamente, en comparaci&oacute;n con PEG&#150;8000 que obtuvo el menor y mayor valor para esas variables, respectivamente (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>). Estos resultados difieren con los de Parera y Cantliffe (1994) quienes mencionaron que el polietilen glicol tiene ventajas sobre las sales inorg&aacute;nicas por ser una substancia inerte sin efectos t&oacute;xicos en el embri&oacute;n, debido a que el tama&ntilde;o de la mol&eacute;cula del PEG&#150;8000 no le permite entrar en la semilla. Respecto al peso seco de pl&aacute;ntula, el valor mayor de 1.14 mg y estad&iacute;sticamente superior a los dem&aacute;s se obtuvo con PEG&#150;8000 a &#150;5 atm, lo cual coincide con los resultados de Tetepa (1997), qui&eacute;n observ&oacute; incrementos en el peso seco de pl&aacute;ntulas de tomate de c&aacute;scara despu&eacute;s de tratar las semillas en una soluci&oacute;n de PEG&#150;200 a &#150;5 atm.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agente osm&oacute;tico </b>x <b>per&iacute;odo de almacenamiento. </b>Se observ&oacute; significancia para los porcientos de germinaci&oacute;n y semillas muertas, G50 y peso seco de pl&aacute;ntula (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El osmoacondicionamiento de semilla con KNO<sub>3</sub> y su posterior almacenamiento durante 90 y 180 d&iacute;as, mostraron el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n, el menor porciento de pl&aacute;ntulas anormales, semillas latentes y muertas en comparaci&oacute;n con el resto de las combinaciones (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agente osm&oacute;tico </b>x <b>per&iacute;odo de acondicionamiento. </b>En esta interacci&oacute;n se observ&oacute; significancia para todas las variables evaluadas (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El mayor porciento de germinaci&oacute;n se observ&oacute; en el tratamiento con KNO<sub>3</sub> durante 96 y 72 h (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Per&iacute;odo de almacenamiento x per&iacute;odo de </b><b>acondicionamiento. </b>Se observ&oacute; significancia para las variables porciento de germinaci&oacute;n, semillas muertas, tiempo en alcanzar 50% de germinaci&oacute;n y peso seco de pl&aacute;ntula (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El mayor porcentaje de germinaci&oacute;n se obtuvo con los per&iacute;odos de almacenamiento de 90 y 180 d&iacute;as para los tres de acondicionamiento evaluados. En general, en la semilla osmoacondicionada durante 48 h y almacenada durante 180 d&iacute;as se observaron los mejores resultados en las variables evaluadas (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agente osm&oacute;tico </b>x <b>potencial osm&oacute;tico x per&iacute;odo de acondicionamiento x per&iacute;odo de almacenamiento. </b>Esta interacci&oacute;n permiti&oacute; detectar con precisi&oacute;n el efecto conjunto de los tratamientos sobre las variables estudiadas. De manera general, la semilla osmoacondicionada con KCl a &#150;15 atm durante 48 h y con 90 y 180 d&iacute;as de almacenamiento; as&iacute; como, con KNO<sub>3</sub> a &#150;20 atm durante 72 y 180 d&iacute;as de almacenamiento, superaron al testigo en todas las variables estudiadas (<a href="/img/revistas/agritm/v33n2/a1c7.jpg" target="_blank">Cuadro 7</a>) y en 17% a los resultados obtenidos por Tetepa (1997), quien despu&eacute;s de acondicionar osm&oacute;ticamente semilla de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora con PEG&#150;200 obtuvo como m&aacute;ximo 81% de germinaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, se observ&oacute; mayor calidad fisiol&oacute;gica en semillas acondicionadas que en el testigo. De acuerdo con Szafirowska et al. (1981), el osmoacondicionamiento mejora la movilidad de las reservas de la semillas hacia el embri&oacute;n, lo cual influye en la uniformidad y velocidad de germinaci&oacute;n. McDonald (2000), mencion&oacute; que el acondicionamiento osm&oacute;tico ha sido exitoso en especies de semilla peque&ntilde;a como zanahoria, pimienta, apio, tomate, cebolla y lechuga; sin embargo, en especies de semilla grande como soya y ma&iacute;z no ha sido significativo. Tambi&eacute;n se&ntilde;ala que existe evidencia suficiente para afirmar que el osmoacondicionamiento facilita la reparaci&oacute;n de da&ntilde;os asociados a perturbaciones en las membranas, oxidaci&oacute;n, disfunci&oacute;n mitocondrial, e inactivaci&oacute;n enzim&aacute;tica; lo cual ocurri&oacute; en esta investigaci&oacute;n ya que se observ&oacute; un menor n&uacute;mero de pl&aacute;ntulas anormales con el osmoacondicionamiento que en el testigo. Por su parte, Khan <i>et al., </i>(1978) refieren que en semillas osmoacondicionadas se reduce el tiempo de imbibici&oacute;n requerido para iniciar la diferenciaci&oacute;n celular y crecimiento, lo que favorece la velocidad de germinaci&oacute;n. En esta investigaci&oacute;n al osmoacondicionar con KCl se obtuvo mayor uniformidad y rapidez en la germinaci&oacute;n (G50), en comparaci&oacute;n con el testigo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto del acondicionamiento osm&oacute;tico sobre las variables de germinaci&oacute;n estudiadas vari&oacute; en funci&oacute;n del agente osm&oacute;tico, potencial osm&oacute;tico y duraci&oacute;n del tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La semilla de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora no germin&oacute; durante los per&iacute;odos de acondicionamiento con los agentes osm&oacute;ticos y potenciales utilizados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El almacenamiento de la semilla de 90 a 180 d&iacute;as despu&eacute;s del acondicionamiento osm&oacute;tico favoreci&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n y redujo el porciento de semillas latentes de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acondicionamiento osm&oacute;tico con KCl a &#150;15 atm durante 48 h o con KNO<sub>3</sub> a &#150;20 atm durante 48 h mejor&oacute; la calidad fisiol&oacute;gica de la semilla de tomate de c&aacute;scara cv. Rendidora, efecto que persisti&oacute; hasta por 180 d&iacute;as.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Akers S., W. and Kevin H., E. 1986. SPS: A system for priming seed using aerated polyethylen glycol or salt solutions. Hort Sci. 21:529&#150;531.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498281&pid=S0568-2517200700020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Atherton J., G. and Faroque M., A. 1983. High temperature and termination in spinach. Effects of osmotic priming. Scientia Hort. 19:221&#150;228.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498282&pid=S0568-2517200700020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Boubriak L.; Vaunemko L. L. and Osborne D. J. 2000. Loss of viability in rye embryos at different levels of hydration: senescence with apoptotic nucleosome cleavage or death with random DNA fragmentation, pp. 205&#150;214. <i>In: </i>M. Black, K.J. Bradford, and J. V&aacute;zquez&#150;Ramos (eds.) Seed biology: Advances and applications. CABI Int., Wallingford, U.K.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498283&pid=S0568-2517200700020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bradford K., J. 1986. Manipulation of seed water relations via osmotic priming to improve germination under stress conditions. Hort Sci. 21(5): 1105&#150;1110.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498284&pid=S0568-2517200700020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bradford K., J.Steiner J., J. and Trawatha E., S. 1990. Seed priming influence on germination and emergence of pepper seed lots. Crop Sci. 30:718&#150;721.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498285&pid=S0568-2517200700020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bruggink G. T.; Ooms J. J. and Van der Toorn. 1999. Induction of longevity in primed seeds. Seed Sci. Res. 9:49&#150;53.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498286&pid=S0568-2517200700020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cantliffe D. J. 1981. Seed priming of lettuce for early and uniform emergence under conditions of environmental stress. Acta Hort. 122:29&#150;38.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498287&pid=S0568-2517200700020000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chiatante D. and Onelli E. 1993. Nuclear proteins and the onset of cell proliferation in root meristems of <i>Pisum sativum: </i>QP47 a novel acidic protein. Seed Sci. Res. 3:35&#150;42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498288&pid=S0568-2517200700020000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gurusinghe S. H. and Bradford K. J. 2001. Galactosyl&#150;sucrose oligosaccharides and potential longevity of primed seeds. Seed Sci. Res. 11:121&#150;133.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498289&pid=S0568-2517200700020000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Haigh M., A. and Barlow R., E. W. 1986. Field emergence of tomato, carrot and onion seeds primed in an aerated salt solution. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 111:660&#150;665.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498290&pid=S0568-2517200700020000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez L., A.; Estrada G.; Ju&aacute;rez C. y Ayala G. 1999. Influencia de la fertilizaci&oacute;n y del ambiente de almacenamiento en la calidad de semilla de cebolla. Rev. Fitot. M&eacute;x. 22:87&#150;97.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498291&pid=S0568-2517200700020000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">International Seed Testing Association (ISTA). 2004. International rules for seed testing. 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Seed priming. <i>In: </i>Seed technology and its biological basis. M. Black and Bewley (eds). Sheffield Academic Press Ltd. England. pp. 287&#150;325.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498294&pid=S0568-2517200700020000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Michel B., E. 1983. Evaluation of the water potentials of solutions of polyethylene glycol 8000 both in the absence and presence of other solutes. 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Germinaci&oacute;n en tomate de c&aacute;scara (<i>Physalis ixocarpa </i>Brot.). Tesis de Licenciatura. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo, Departamento de Fitotecnia. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico. p.1&#150;24.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498297&pid=S0568-2517200700020000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parera A., C. and Cantliffe D., J. 1994. Presowing priming. Horticultural Reviews 16:109&#150;141.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498298&pid=S0568-2517200700020000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Statistical Analysis System (SAS Institute). 1999. The SAS system for windows version eight. Cary, NC, USA.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498299&pid=S0568-2517200700020000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Szafirowska, A.; Khan A., A. and Peck H., N. 1981. Osmoconditioning of carrot seed to improve seedling establishment and yield in cold soil. Agron. J. 73:845&#150;848.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498300&pid=S0568-2517200700020000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tetepa A., C. 1997. Acondicionamiento osm&oacute;tico de semilla de tres especies hort&iacute;colas solan&aacute;ceas. Tesis de Licenciatura. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo, Departamento de Fitotecnia. Chapingo, M&eacute;xico. 76 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498301&pid=S0568-2517200700020000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Welbaum G., E.; Shen, Z.; Oluoch O., M. and Jett W., L. 1998. The evolution and effects of priming vegetable seeds. Seed and Technol. 20 (2) :209&#150;235.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498302&pid=S0568-2517200700020000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wiggans S., C. and Gardner P., F. 1959. Effectiveness of various solutions for simulating drought conditions as measured by germination and seedling growth. Agron. J. 51:315&#150;318.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498303&pid=S0568-2517200700020000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wolkers W., F.; Tetteroo, F. A.; Alberda, M. and Hoekstra, F. A. 1999. Changed properties of cytoplasmic matrix associated with desiccation tolerance of dried carrot somatic embryos. An <i>in situ </i>Fourier transforms infrared spectroscopic study. Plant Physiol. 120:153&#150;163.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498304&pid=S0568-2517200700020000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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