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<journal-title><![CDATA[Agricultura técnica en México]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Producción de Lecanicillium (= Verticillium) lecanii en diferentes sustratos y patogenicidad]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Production of Lecanicillium (= Verticillium) lecanii in different media and pathogenicity]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The conidial production of the fungus Lecanicillium lecanii cultivated in different substrates (nutrition media + supports) and its pathogenicity were determined. The evaluated media were: sorghum, rice grain, broken rice grain ("granillo"), rice polish ("pulido") and as supports sugar cane leftover "bagazo", rice husk and corn cob "olote". The combination of media and supports provided twelve treatments plus a control constituted by rice alone. The production of conidia displayed statistical differences (p< 0.05) among treatments; those with larger conidia production were sugar cane leftover (bagazo) + rice (839.7 ± 1.2 x 10(6) g-1) and sorghum + corn cob (825.8 ± 1.7 x 10(6) g-1). Although polished of rice was the less efficient medium for production, all combinations where it was included resulted superior to rice alone. Rice showed the smallest production of conidia (265.4 ± 1 x 10(6) g-1). Also, the media and support where it was produced affected the pathogenicity of L. lecanii on Toxoptera aurantii and Aphis gossypii. The aeration favored by the support marked the difference between treatments and the control. Results indicated that the culture medium is important for the massive production of L. lecanii; besides, they indicate that the pathogenicity of the fungus was also affected by the culture medium.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Nota de Investigaci&oacute;n</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>PRODUCCI&Oacute;N DE </b><i>Lecanicillium (= Verticillium) lecanii </i><b>EN</b> <b>DIFERENTES SUSTRATOS Y PATOGENICIDAD</b><b>*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>PRODUCTION OF <i>Lecanicillium </i>(= <i>Verticillium) lecanii </i>IN DIFFERENT MEDIA AND PATHOGENICITY </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Hip&oacute;lito Cortez&#150;Madrigal<sup>1<img src="/img/revistas/agritm/v33n1/a9s1.jpg"></sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Colegio de Postgraduados&#150;Campus Tabasco. Carretera libre C&aacute;rdenas a Coatzacoalcos, Km 21, poblado C27. 86500 C&aacute;rdenas, Tabasco, M&eacute;xico</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><b><img src="/img/revistas/agritm/v33n1/a9s1.jpg"></b></sup><b> Autor para correspondencia: </b><a href="mailto:madri60@hotmail.com" target="_blank">    <br> madri60@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: Septiembre de 2005     <br> Aceptado: Marzo de 2007</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en 2001 en C&aacute;rdenas, Tabasco, M&eacute;xico. Se estudi&oacute; la relaci&oacute;n entre producci&oacute;n conidial del hongo <i>Lecanicillium lecanii </i>en diferentes sustratos (medios nutritivos y soporte) y su patogenicidad. Como medios se evaluaron: sorgo, grano de arroz, grano de arroz quebrado ("granillo") polvo de arroz ("pulido"), y como soportes: bagazo de ca&ntilde;a, cascarilla de arroz y "olote" de ma&iacute;z. La combinaci&oacute;n de medios y soportes proporcion&oacute; doce tratamientos m&aacute;s un testigo constituido solo por arroz. La producci&oacute;n conidial de los tratamientos mostr&oacute; diferencias significativas (<i>p<u>&lt;</u></i> 0.05). Los sustratos con mayor producci&oacute;n de conidios fueron bagazo de ca&ntilde;a y arroz (839.7 &plusmn; 1.2 x 106 g&#150;1) y sorgo y olote (825.8 &plusmn; 1.7 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>). Aunque el pulido fue el medio menos eficiente, la producci&oacute;n conidial en todas sus combinaciones fue superior a la del arroz solo, que mostr&oacute; la menor producci&oacute;n conidial (265.4 &plusmn;1 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>). La patogenicidad de <i>L. lecanii </i>sobre <i>Toxoptera aurantii </i>y <i>Aphis gossypii </i>tambi&eacute;n se vio afectada por el medio y el soporte en que se produjo. La aireaci&oacute;n proporcionada por el soporte marc&oacute; la diferencia entre los tratamientos y el testigo. Los resultados se&ntilde;alan que el medio de cultivo es importante en la producci&oacute;n masiva de <i>L. lecanii </i>e indican que la patogenicidad del hongo tambi&eacute;n fue afectada por el mismo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Aphis gossypii, Lecanicillium lecanii, Toxoptera aurantii, </i>hongos entomopat&oacute;genos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The conidial production of the fungus <i>Lecanicillium lecanii </i>cultivated in different substrates (nutrition media + supports) and its pathogenicity were determined. The evaluated media were: sorghum, rice grain, broken rice grain ("granillo"), rice polish ("pulido") and as supports sugar cane leftover "bagazo", rice husk and corn cob "olote". The combination of media and supports provided twelve treatments plus a control constituted by rice alone. The production of conidia displayed statistical differences <i>(p<u>&lt;</u> </i>0.05) among treatments; those with larger conidia production were sugar cane leftover (bagazo) + rice (839.7 &plusmn; 1.2 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>) and sorghum + corn cob (825.8 &plusmn; 1.7 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>). Although polished of rice was the less efficient medium for production, all combinations where it was included resulted superior to rice alone. Rice showed the smallest production of conidia (265.4 &plusmn; 1 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>). Also, the media and support where it was produced affected the pathogenicity of <i>L. lecanii </i>on <i>Toxoptera aurantii </i>and <i>Aphis gossypii. </i>The aeration favored by the support marked the difference between treatments and the control. Results indicated that the culture medium is important for the massive production of <i>L. lecanii; </i>besides, they indicate that the pathogenicity of the fungus was also affected by the culture medium.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Aphis gossypii, Lecanicillium lecanii, Toxoptera aurantii, </i>entomogenous fungi.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, los hongos entomopat&oacute;genos se producen comercialmente con grano de arroz de primera calidad. El inter&eacute;s cada vez mayor en su producci&oacute;n (Tanada y Kaya, 1993; Khachatourians <i>et al., </i>2002), hace urgente la identificaci&oacute;n de medios de cultivo econ&oacute;micos y eficientes. Pocos trabajos han sido documentados al respecto (Cisneros y Vera, 2000); sin embargo, existen evidencias de la factibilidad de producir estos hongos por medio de sustratos m&aacute;s econ&oacute;micos que los tradicionales (Puzari <i>et al., </i>1997; L&oacute;pez&#150;Llorca y Carbonell, 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El medio de cultivo es importante para la producci&oacute;n masiva de hongos entomopat&oacute;genos (Easwaramoorthy y Jayaraj, 1977), por lo que el &eacute;xito en su producci&oacute;n depender&aacute; del medio utilizado y de la especie y/o raza del hongo en cuesti&oacute;n. Cortez <i>et al. </i>(2003) encontraron diferencias importantes en la producci&oacute;n masiva de 15 cepas poliesp&oacute;ricas y monosp&oacute;ricas del hongo <i>Verticillium lecanii </i>en grano de arroz. Recientemente renombrado como <i>Lecanicillium lecanii </i>(Zare y Gams, 2001), este hongo es un importante biorregulador de insectos, principalmente &aacute;fidos, coccidos y aleyrodidos (Hall, 1981), por lo que es uno de los hongos entomopat&oacute;genos con mayor potencial en el manejo de plagas agr&iacute;colas. Los objetivos de la presente investigaci&oacute;n fueron: evaluar la producci&oacute;n de <i>L. lecanii en </i>diferentes sustratos y medios nutritivos y su patogenicidad sobre &aacute;fidos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n y conservaci&oacute;n del hongo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la cepa monosp&oacute;rica C(3) del hongo <i>L. lecanii, </i>previamente identificada por Cortez <i>et al. </i>(2003) como de mayor potencial para el manejo del &aacute;fido <i>Toxoptera aurantii, </i>plaga del cacao <i>(Theobroma cacao </i>L.) en Tabasco, M&eacute;xico. La cepa se conserva en el Laboratorio de Entomolog&iacute;a del Centro Interdisciplinario de Investigaci&oacute;n para el Desarrollo Integral Regional del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional (CIIDIR&#150;IPN) Jiquilpan, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico. La cepa se cultiv&oacute; inicialmente en medio Agar&#150;Dextrosa&#150; Sabouraud + 0.1 % de extracto de levadura (ADS+EL). Se incub&oacute; durante 10 d&iacute;as a 25 &plusmn; 1 &deg;C y fotoper&iacute;odo de 12:12 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de sustratos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los sustratos se conformaron por dos componentes: medios nutritivos y soportes en una proporci&oacute;n 1:1. Se evalu&oacute; grano de sorgo, arroz entero y sus subproductos industriales, grano de arroz quebrado ("granillo") y polvo de arroz ("pulido"), como medios nutritivos. Como soporte se utilizaron: "olote" de ma&iacute;z, "bagazo" de ca&ntilde;a de az&uacute;car y "cascarilla" de arroz. La combinaci&oacute;n entre medios y soportes dio origen a doce tratamientos. Como testigo se us&oacute; el grano de arroz entero solo. Los materiales se colocaron en bolsas de polipapel y se esterilizaron en autoclave a 120 &deg;C durante 15 min; se inocularon con 10 mL de una suspensi&oacute;n de 1x10<sup>6</sup> conidios mL<sup>&#150;1</sup> de <i>L. lecanii </i>y se incubaron a 25 &plusmn; 1 &deg;C y un fotoper&iacute;odo de 12:12 h. A los 10 d&iacute;as se evalu&oacute; la producci&oacute;n y viabilidad de conidios. Se tom&oacute; 1 g del sustrato y se suspendi&oacute; en 10 mL de agua destilada est&eacute;ril. El n&uacute;mero de conidios se calcul&oacute; mediante un hematocit&oacute;metro y la concentraci&oacute;n (esporas mL<sup>&#150;1</sup>) se calcul&oacute; con la f&oacute;rmula propuesta por Lipa y Slizynski (1973).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">C= (Cc)(4 x 10<sup>6</sup>)(Fd)/80</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">C= N&uacute;mero de conidios mL<sup>&#150;1</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cc= N&uacute;mero promedio de conidios contados en el hematocit&oacute;metro y</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fd= Factor de diluci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, se calcul&oacute; la producci&oacute;n de conidios por gramo de sustrato. Los resultados se sometieron al an&aacute;lisis de varianza (ANVA) en un dise&ntilde;o experimental completamente al azar en arreglo factorial A x B donde A= Medio, B= Soporte; A tuvo 4 niveles, B tuvo 3 niveles.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de patogenicidad</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La patogenicidad de los conidios cosechados de cada tratamiento se evalu&oacute; en los &aacute;fidos <i>T. aurantii </i>y <i>Aphis gossypii. </i>En ambos casos se utilizaron recipientes de pl&aacute;stico y en su interior se coloc&oacute; una placa de agar&#150;agua (Hall, 1976); sobre ella una hoja de c&iacute;trico o de chile, seg&uacute;n el &aacute;fido utilizado. <i>T. aurantii </i>se colect&oacute; de plantaciones de cacao y se mantuvo sobre hojas de c&iacute;trico. <i>A. gossypii </i>se desarrollo en plantas de chile. Por tratamiento se utilizaron 20 &aacute;fidos adultos, mismos que fueron inmersos por 5 s en una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>6</sup> conidios mL<sup>&#150;1</sup> y posteriormente secados y colocados en los recipientes se&ntilde;alados e incubados a 25 &deg;C. La variable respuesta fue el n&uacute;mero de &aacute;fidos muertos desde el segundo hasta el sexto d&iacute;a y se incluy&oacute; un testigo sin tratar. El experimento se repiti&oacute; tres veces. Transformados los datos con la expresi&oacute;n arcoseno de la proporci&oacute;n (Little y Hills, 1976; Soper <i>et al., </i>1988), se sometieron al ANVA.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las medias se separaron mediante la prueba de Tukey <i>(p= </i>0.05).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de sustratos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico revel&oacute; diferencias significativas (<i>p</i><u>&lt;</u>0.05) entre las combinaciones de soportes y medios nutritivos evaluados para la producci&oacute;n del hongo. El bagazo proporcion&oacute; las mejores condiciones para la producci&oacute;n conidial de <i>L. lecanii </i>(605.6 &plusmn; 154.8). Este material est&aacute; disponible en los ingenios azucareros, en donde constituye actualmente una fuente de contaminaci&oacute;n al no tener un uso espec&iacute;fico. Una desventaja que present&oacute; fue que ocasionalmente perfor&oacute; las bolsas en donde se cultiv&oacute; el hongo y ocasion&oacute; contaminaci&oacute;n del material. Situaci&oacute;n parecida se observ&oacute; con la cascarilla de arroz, que adem&aacute;s fue el soporte menos eficiente en la producci&oacute;n de conidios (278.8&plusmn;20.6) (<a href="#c1">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agritm/v33n1/a9c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los mejores medios nutritivos fueron arroz (563.4 &plusmn; 246.8) y sorgo (561.9 &plusmn; 232.5), mientras que el menos favorable fue el pulido de arroz (3 85.8 &plusmn; 62.6). Todas las combinaciones de soportes y medios proporcionaron mayor producci&oacute;n conidial <i>(p<u>&lt;</u> </i>0.05) que el arroz solo (265.4 &plusmn; 1.0) (<a href="#c1">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cuanto a la interacci&oacute;n del soporte con los medios (sustratos), los resultados indicaron diferencias significativas <i>(p<u>&lt;</u> </i>0.05) en los tratamientos. Las combinaciones de sustrato de arroz + bagazo de ca&ntilde;a (839.67 &plusmn; 1.2 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>) y sorgo + olote (825.8 &plusmn; 1.7 x 10<sup>6</sup> g<sup>&#150;1</sup>) mostraron la mayor producci&oacute;n conidial. El sustrato menos eficiente fue el de arroz solo (265.4 &plusmn; 1.0 x 106 g&#150;1) (<a href="/img/revistas/agritm/v33n1/a9f1.jpg" target="_blank">Figura. 1</a>). Al parecer, el efecto de los soportes en la producci&oacute;n del hongo fue solamente f&iacute;sico, ya que en pruebas preliminares donde se sembr&oacute; el hongo en el soporte solo, &eacute;ste no se desarroll&oacute;.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es probable que todos los sustratos produjeran m&aacute;s conidios que el testigo (arroz solo) por la menor compactaci&oacute;n de la mezcla soporte y medio en comparaci&oacute;n con el testigo. Cortez (2001) indic&oacute; que la baja producci&oacute;n de conidios de la cepa C(3) de <i>L. lecanii </i>pudo deberse a la alta compactaci&oacute;n que ejerce el hongo sobre el arroz como medio, lo que evita que exista aireaci&oacute;n interna y, consecuentemente, se reduzca la producci&oacute;n conidial. Los resultados obtenidos demuestran que el hongo L. <i>lecanii </i>produce mayor cantidad de conidios cuando se cultiva en sustratos que le permiten mayor aireaci&oacute;n. Dado que 1 g de los sustratos evaluados tiene mayor volumen y &aacute;rea de crecimiento que 1 g de arroz, tambi&eacute;n tiene mayor producci&oacute;n conidial g<sup>&#150;1</sup>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ventaja de este sistema de cultivo es que abarata costos de producci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos. Los resultados obtenidos sugieren que, al contar con medios m&aacute;s eficientes y econ&oacute;micos para producir hongos entomopat&oacute;genos, el precio final del bioinsecticida ser&aacute; menor y competir&aacute; con los insecticidas organosint&eacute;ticos. Contar con productos m&aacute;s econ&oacute;micos y eficientes facilita que los productores de bajos recursos puedan incorporarlos a sus sistemas agr&iacute;colas. Pocos trabajos han descrito la producci&oacute;n de medios econ&oacute;micos de hongos entomopat&oacute;genos. Puzari <i>et al. </i>(1997) consignan la producci&oacute;n de un bioinsecticida a base del hongo <i>Beauveria bassiana </i>cultivado en un medio con cascarilla de arroz, pulido de arroz y aserr&iacute;n, con una mortalidad en plagas del arroz cercana a 80%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Patogenicidad del hongo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n de la patogenicidad de los conidios sobre el &aacute;fido <i>T. aurantii, </i>mostr&oacute; diferencias significativas <i>(p<u>&lt;</u> </i>0.05) entre los tratamientos, donde los mejores fueron los producidos en sorgo y olote (100.0 &plusmn; 0.0), arroz y bagazo (95.0 &plusmn; 5.0), granillo y olote (91.7 &plusmn; 2.8) y todas las combinaciones con cascarilla de arroz. La combinaci&oacute;n menos eficiente fue pulido y bagazo (43.3&plusmn;5.7), incluso menor al arroz solo (73.3 &plusmn; 7.6) (<a href="/img/revistas/agritm/v33n1/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el &aacute;fido <i>A. gossypii </i>se observ&oacute; una tendencia similar a la registrada con <i>T. aurantii </i>(<a href="/img/revistas/agritm/v33n1/a9c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), confirm&aacute;ndose la importancia del medio de cultivo en la calidad de los conidios del hongo <i>L. lecanii. </i>Por lo tanto, es importante no s&oacute;lo conocer el proceso y eficiencia de producci&oacute;n de conidios sino tambi&eacute;n la calidad de &eacute;stos en cuanto a su patogenicidad. Los resultados sugieren que la mayor o menor patogenicidad de los conidios obtenidos con los diferentes sustratos posiblemente se deba a la calidad nutritiva de los medios, pero tambi&eacute;n puede obedecer a la influencia de los soportes: cuando el hongo se cultiv&oacute; en arroz solo, la patogenicidad fue menor que cuando se cultiv&oacute; en arroz + bagazo, lo que sugiere que en este caso la aireaci&oacute;n proporcionada por el soporte juega un importante papel en esta caracter&iacute;stica de <i>L. lecanii. </i>En general, los medios con part&iacute;culas m&aacute;s peque&ntilde;as (pulido, granillo y sorgo) fueron mejores cuando se combinaron con la cascarilla de arroz que con los otros soportes. Aunque se ha mencionado que <i>L. lecanii </i>se desarrolla en casi cualquier medio de cultivo (Hall, 1981), los resultados obtenidos en el presente estudio complementan los de trabajos previos (Easwaramoorthy y Jayaraj, 1977; Cortez <i>et al., </i>2003), al respecto de la relaci&oacute;n entre la producci&oacute;n y calidad de los conidios obtenidos de <i>L. lecanii </i>y el medio de cultivo usado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados indican que se obtuvieron sustratos m&aacute;s econ&oacute;micos y eficientes que el tradicional (arroz) para la producci&oacute;n masiva del hongo L. <i>lecanii. </i>Al abatir el costo de producci&oacute;n, se abren perspectivas para su mayor uso como biorregulador de insectos nocivos para la agricultura.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACYT)&#150;Sistema Golfo (SIGOLFO), y a la Fundaci&oacute;n PRODUCE&#150;Tabasco, M&eacute;xico por el apoyo econ&oacute;mico brindado para el desarrollo de la presente investigaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cisneros, F. and Vera, A. 2000. Mass&#150;producing <i>Beauveria brongniartii </i>inoculum, an economical, farm&#150;level method. Program Report, Centro Internacional de la Papa. Lima, Per&uacute;. p 155&#150;160.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498160&pid=S0568-2517200700010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cortez&#150;Madrigal, H. 2001. Selecci&oacute;n de aislamientos del hongo <i>Verticillium lecanii </i>(Zimm.) Viegas para el manejo del pulg&oacute;n negro del cacao <i>Toxoptera aurantii </i>Boyer en Tabasco, M&eacute;xico. Tesis Doctoral, Colegio de Postgraduados, Montecillo, Texcoco, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico. 110 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498161&pid=S0568-2517200700010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cortez&#150;Madrigal, H.; Alatorre&#150;Rosas, R; Mora&#150;Aguilera, G.; Bravo&#150;Mojica, H.; Ortiz&#150; Garc&iacute;a, C.F. y Aceves&#150;Navarro, L. A. 2003. Caracterizaci&oacute;n cultural y patog&eacute;nica de diferentes aislamientos del hongo <i>Lecanicillium </i>(= <i>Verticillium) lecanii. </i>Rev. Mex. de Fitopatol. 21:161&#150;167.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498162&pid=S0568-2517200700010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Easwaramoorthy, S., and Jayaraj, S. 1977. The effect of temperature, pH, and media on the growth of the fungus <i>Cephalosporioum lecanii </i>J. Invert. Pathol. 29:399&#150;400.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498163&pid=S0568-2517200700010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hall, R. A. 1976. A bioassay of the pathogenicity of <i>Verticillium lecanii </i>conidiospores on the aphid, <i>Macrosiphoniella sanborni. </i>J. Invert. Pathol. 27:41&#150;48.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498164&pid=S0568-2517200700010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hall, R. A. 1981. The fungus <i>Verticillium lecanii </i>as a microbial insecticide against aphids and scales. <i>In: </i>Burges, H. D. (ed.). Microbial Control of Pests and Plants Disease. Academic Press, New York. p. 483&#150;498.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498165&pid=S0568-2517200700010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khachatourians, G. G.; Valencia, E. P. and Miranpuri, G. S. 2002. <i>Beauveria bassiana </i>and other entomopathogenic fungi in the management of insect pests. <i>In: </i>Opender, K. and Dhaliwal, G. S. (ed.) Microbial Biopesticides. New Delhi. p. 279&#150;275.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498166&pid=S0568-2517200700010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lipa, J. J. and K. Slizynsky. 1973. Wskaz&oacute;wki metodyczne I. Terminolog&oacute;a do wyznaczania srednej dawki smiertelnej (LD<sub>50</sub>) W Patologia Owadow I Tksykologia. Prace Navkome Instytutu ochrony Roslin Tom. XV, Seszyti: 59&#150;83.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498167&pid=S0568-2517200700010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Little, T. M. y F. J. Hills. 1976. M&eacute;todos estad&iacute;sticos para la investigaci&oacute;n en la agricultura. Trad. de la 1a. ed. Paula&#150;Crespo. Trillas, M&eacute;xico. pp. 125&#150;143.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498168&pid=S0568-2517200700010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&oacute;pez&#150;Llorca, L. V. and Carbonell, T. 1998. Use of almond mesocarp for production of entomopathogenic fungus <i>Verticillium lecanii. </i>Can. J. Microbiol. 44:886&#150;895.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498169&pid=S0568-2517200700010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Puzari, K. C.; Sarma, D. K. and Hazarika, L. K. 1997. Medium for mass production <i>of Beauveria bassiana </i>(Balsamo) Vuillemin. J. Biol. Contr. 11:97&#150;100.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498170&pid=S0568-2517200700010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Soper, R. S.; M. Shimazu; R. A. Humber; M. E. Ramos; and A. E. Hajek. 1988. Isolation and characterization of <i>entomophaga Maimaiga </i>sp. nov., a fungal pathogen of gypsy moth, <i>Lymantria dispar, </i>from Japan. J. Invert. Pathol. 51:229&#150;241.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498171&pid=S0568-2517200700010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tanada, Y.; and Kaya, H. K. 1993. Insect Pathology. Academic Press. San Diego, USA. 666 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498172&pid=S0568-2517200700010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zare, R. and Gams, W. 2001. A revision of <i>Verticillium </i>sect. <i>Prostata. </i>IV. The genera <i>Lecanicillium </i>and <i>Simplicillium </i>gen nova. Nova Hedwigia 73:1&#150;50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=498173&pid=S0568-2517200700010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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