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<journal-title><![CDATA[Agricultura técnica en México]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular de genotipos comerciales y elite de papa (Solanum tuberosum L.) en México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[During 2003, thirteen commercial cultivars and three elite potato clones were characterized by RAPD and SSR molecular techniques. With the RAPD technique forty primers were initially tested and three selected (Alpha DNA2, Alpha DNA23 y Alpha DNA30) for the characterization; Alpha DNA2 was used alone, while Alpha DNA23 and Alpha DNA30 were combined. With the SSR technique six primer pairs were tested and four selected (M1F/M2R, M3F/M4R, M5F/M6R and M7F/M8R). The genetic relationship among genotypes was calculated by the Genetic Similarity method. The distance matrix generated was used to produce a dendrogram by means of the cluster analysis (UPGMA). All genotypes were distinguished by the banding patterns obtained with both techniques used. With RAPD's, 26 bands were produced of which 69.23% were polymorphic, while with SSR's, 49 bands were observed, of which 83.67% were polymorphic. High genetic similarity was observed, among the potato cultivars as the maximum genetic distance between the groups was 0.19. The highest genetic relationship was observed between the cultivars Sancal and NAU-6 with a value of 88% in the Felsenstein confidence intervals. Groups of genotypes were of two kinds, some with genotypes closely related and other such as cv. Monserrat, geneticly distinct. This information will allow for the design of appropiate parental combinations in the breeding program.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n molecular de genotipos comerciales y elite de papa  (<i>Solanum tuberosum</i> L.) en M&eacute;xico*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Molecular characterization of commercial and elite genotypes of potato (<i>Solanum tuberosum</i> L.) in Mexico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Ferm&iacute;n Orona&#150;Castro<sup>1</sup>, V&iacute;ctor Pecina&#150;Quintero<sup>2</sup>, Mario Alberto Rocha&#150;Pe&ntilde;a<sup>3</sup>, Mateo Armando Cadena&#150;Hinojosa<sup>4</sup>, Octavio Mart&iacute;nez de la Vega<sup>5</sup> e Isidro Humberto Almeyda&#150;Le&oacute;n<sup>3,</sup><img src="/img/revistas/agritm/v32n2/a1s1.jpg"></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Campo Experimental Edzn&aacute;, INIFAP. Km 17 carretera Cayal&#150;Edzn&aacute;, Nhoyaxxhe, Campeche.</i> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup> <i>Campo Experimental R&iacute;o Bravo, INIFAP.</i> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>3</sup> <i>Campo Experimental General Ter&aacute;n, INIFAP.</i> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>4</sup> <i>Campo Experimental Valle de M&eacute;xico, INIFAP. </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>5</sup><i> Centro de Investigaci&oacute;n y Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional, Unidad&#150;Irapuato.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: Junio de 2005    <br>   Aceptado: Mayo de 2006</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><img src="/img/revistas/agritm/v32n2/a1s1.jpg">Autor para correspondencia: </b>    <br> e&#150;mail: <a href="mailto:halmeida@fcb.uanl.mx">halmeida@fcb.uanl.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante el 2003, se caracterizaron 13 variedades comerciales y tres l&iacute;neas elite de papa mediante las t&eacute;cnicas de RAPD y SSR. Con la t&eacute;cnica de RAPD se evaluaron 40 iniciadores y se seleccionaron tres (Alpha ADN2, Alpha ADN23 y Alpha ADN30); Alpha ADN2 se us&oacute; individualmente, mientras que Alpha ADN23 y Alpha ADN30 se usaron de manera combinada. Con la t&eacute;cnica de SSR se evaluaron seis pares de iniciadores y se seleccionaron cuatro (M1F/M2R, M3F/M4R, M5F/M6R y M7F/M8R). Las relaciones gen&eacute;ticas entre genotipos se calcularon por el m&eacute;todo de Similitud Gen&eacute;tica. La matriz de distancias generada se utiliz&oacute; para producir un dendrograma por medio de an&aacute;lisis de conglomerados (UPGMA). Todos los materiales fueron diferenciados por el patr&oacute;n de fragmentos obtenidos con las dos t&eacute;cnicas utilizadas; con la t&eacute;cnica de RAPD se observaron un total de 26 fragmentos, de los cuales 69.23% fueron polim&oacute;rficos y en SSR se obtuvieron un total de 49 fragmentos, de los cuales 83.67% fueron polim&oacute;rficos. Se observ&oacute; una gran similitud gen&eacute;tica entre los materiales ya que la m&aacute;xima distancia gen&eacute;tica entre los diferentes grupos fue de 0.19. Las relaciones gen&eacute;ticas m&aacute;s cercanas fueron entre las variedades Sancal y NAU&#150;6 con un valor de 88% en los intervalos de confianza de Felsenstein. Se identificaron ambos grupos de genotipos, unos estrechamente relacionados y otros, como la variedad Monserrat, gen&eacute;ticamente distintos. Esta informaci&oacute;n permitir&aacute; dise&ntilde;ar los cruzamientos adecuados en el programa de mejoramiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>An&aacute;lisis molecular, germoplasma, relaciones gen&eacute;ticas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">During 2003, thirteen commercial cultivars and three elite potato clones were characterized by RAPD and SSR molecular techniques. With the RAPD technique forty primers were initially tested and three selected (Alpha DNA2, Alpha DNA23 y Alpha DNA30) for the characterization; Alpha DNA2 was used alone, while Alpha DNA23 and Alpha DNA30 were combined. With the SSR technique six primer pairs were tested and four selected (M1F/M2R, M3F/M4R, M5F/M6R and M7F/M8R). The genetic relationship among genotypes was calculated by the Genetic Similarity method. The distance matrix generated was used to produce a dendrogram by means of the cluster analysis (UPGMA). All genotypes were distinguished by the banding patterns obtained with both techniques used. With RAPD's, 26 bands were produced of which 69.23% were polymorphic, while with SSR's, 49 bands were observed, of which 83.67% were polymorphic. High genetic similarity was observed, among the potato cultivars as the maximum genetic distance between the groups was 0.19. The highest genetic relationship was observed between the cultivars Sancal and NAU&#150;6 with a value of 88% in the Felsenstein confidence intervals. Groups of genotypes were of two kinds, some with genotypes closely related and other such as cv. Monserrat, geneticly distinct. This information will allow for the design of appropiate parental combinations in the breeding program.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>Genetic relationships, germplasm, molecular analysis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, anualmente se siembran alrededor de 63 762 ha de papa (<i>Solanum tuberosum</i> L.), con una producci&oacute;n de 1 500 000 t ha&#150;1 (SAGARPA, 2003). La mayor colecci&oacute;n de germoplasma de papa en el mundo se encuentra en Per&uacute;, que incluye m&aacute;s de 5000 materiales entre domesticados y silvestres (CIP, 2004). Sin embargo, se considera que existen bases gen&eacute;ticas reducidas, sobre todo en pa&iacute;ses tropicales y subtropicales, cuyos programas de mejoramiento gen&eacute;tico utilizan cultivares europeos obsoletos como progenitores y que generalmente est&aacute;n muy relacionados (Buso, 1990). La estrecha relaci&oacute;n gen&eacute;tica entre los cultivares de papa y la dificultad para obtener semilla biol&oacute;gica de muchos cruzamientos, sugiere que es necesario el cruzamiento entre genotipos que tengan la mayor divergencia gen&eacute;tica (Barbosa y Bered, 1998).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de que M&eacute;xico no forma parte de la zona de origen de la papa cultivada, existe una gran diversidad de germoplasma de este cultivo. Ferroni (1981) distingue tres grupos de variedades: genotipos de Holanda, de EE. UU. y las variedades mejoradas generadas por el Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). El primer grupo representa alrededor del 50% del cultivo a nivel nacional (variedad Alpha), 38% el segundo y el &uacute;ltimo alrededor del 8%. Los dos principales centros de diversidad y producci&oacute;n de papas criollas en M&eacute;xico son los valles aleda&ntilde;os al Nevado de Toluca y al Pico de Orizaba. El material gen&eacute;tico de ambas regiones ha dado origen a 17 cultivares de S. tuberosum, sin embargo, solo seis de los genotipos clonales presentan amplia adaptaci&oacute;n. La presencia de cultivares end&eacute;micos, as&iacute; como la gran diversidad morfol&oacute;gica en el Valle de Toluca y alrededor del Pico de Orizaba, sugieren que estas regiones son los primeros centros de variabilidad gen&eacute;tica de papa en M&eacute;xico (Ugent, 1968).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hist&oacute;ricamente, los an&aacute;lisis de diversidad o variabilidad gen&eacute;tica han estado relacionados con estudios de anatom&iacute;a comparativa, morfolog&iacute;a, embriolog&iacute;a y fisiolog&iacute;a. Sin embargo, la influencia ambiental y el reducido n&uacute;mero de caracter&iacute;sticas involucradas en este proceso han limitado el uso de estos marcadores (Gonz&aacute;lez y Simpson, 1997). Actualmente, los avances de la biolog&iacute;a molecular han permitido el uso de t&eacute;cnicas para detectar cambios en el genotipo mediante el diagn&oacute;stico del ADN (Gonz&aacute;lez y Simpson, 1997). Tambi&eacute;n se ha generado un gran n&uacute;mero de m&eacute;todos para identificar y analizar marcadores moleculares entre los que destacan los basados en la Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR), que permiten amplificar secuencias espec&iacute;ficas o al azar del ADN y requieren de peque&ntilde;as cantidades iniciales del mismo. Entre estos marcadores est&aacute;n los denominados polimorfismos del ADN amplificados al azar RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) y los SSR (Simple Sequence Repeats) o microsat&eacute;lites. Los RAPDs han sido utilizados para determinar la variaci&oacute;n intra e interespec&iacute;fica en h&iacute;bridos som&aacute;ticos de papa y para obtener huellas gen&eacute;ticas (Baird <i>et al.</i>, 1992; Gorg <i>et al.</i>, 1992; Demek y Adams, 1994; Carrasco <i>et al.</i>, 1998). Los SSR's o microsat&eacute;lites tambi&eacute;n han sido utilizados para establecer las relaciones gen&eacute;ticas entre cultivares de papa (Provan <i>et al.</i>, 1996; Milbourne <i>et al.</i>, 1997; Ashkenazi <i>et al.</i>, 2000) y de otras especies como soya y cebada (Akkaya <i>et al.</i>, 1992; Saghai <i>et al.</i>, 1994).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente existe un gran n&uacute;mero de colecciones de germoplasma con genotipos de un alto valor agron&oacute;mico que podr&iacute;an ser usados como progenitores en los programas de mejoramiento gen&eacute;tico; sin embargo, en muchas ocasiones se desconoce su grado de diversidad y la relaci&oacute;n existente entre materiales, lo que dificulta su utilizaci&oacute;n (Becerra y Paredes, 2000). La selecci&oacute;n de progenitores y la caracterizaci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica existente es decisiva en la eficiencia de los programas de mejoramiento gen&eacute;tico (Barbosa y Bered, 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo fue la caracterizaci&oacute;n molecular de tres l&iacute;neas elite y 13 variedades comerciales de papa y determinar sus relaciones gen&eacute;ticas utilizando dos tipos distintos de marcadores moleculares. Esta caracterizaci&oacute;n permitir&aacute; a los mejoradores la identificaci&oacute;n y utilizaci&oacute;n de progenitores no relacionados y complementarios en sus caracter&iacute;sticas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material gen&eacute;tico y extracci&oacute;n de ADN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El trabajo se realiz&oacute; durante el 2003, en la Unidad de Investigaci&oacute;n en Biolog&iacute;a Celular y Molecular del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP), ubicada en la Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas de la Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n. El material biol&oacute;gico utilizado en este estudio fue de 13 variedades comerciales y tres l&iacute;neas elite de papa (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). Para asegurar la pureza de los materiales evaluados, &eacute;stos se obtuvieron del banco de germoplasma del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias, ubicado en el Campo Experimental Valle de M&eacute;xico, en Texcoco, Estado de M&eacute;xico. En el presente trabajo se utilizaron tres plantas por variedad y se corrieron tres y cuatro ensayos diferentes en forma simult&aacute;nea para cada tipo de marcador, respectivamente. La extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico se realiz&oacute; utilizando la metodolog&iacute;a descrita por Almeyda (1997).</font></p>     <p align="center"><a name="c1"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/agritm/v32n2/a5c1.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis RAPD</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron 40 iniciadores y con base en el polimorfismo generado se seleccionaron tres con diferente contenido de guanina&#150;citosina (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El iniciador Alpha ADN2 se utiliz&oacute; de manera individual y los iniciadores Alpha ADN23 y Alpha ADN30 se usaron combinados. Las condiciones de reacci&oacute;n utilizadas fueron las reportadas por Pecina <i>et al.</i> (2001), con algunas modificaciones: en un volumen final de 25 &micro;l se mezcl&oacute; la soluci&oacute;n amortiguadora al 1X, 2 mM de MgCl<sub>2</sub>, 200 &micro;M de dNTP's, 0.5 &micro;M de cada iniciador, 2.5 unidades de Taq polimerasa, 2 &micro;l de ADN (50 ng) y 12.5 &micro;l de agua est&eacute;ril. Cuando se utiliz&oacute; la combinaci&oacute;n de dos iniciadores se agregaron 0.5 &micro;M de cada iniciador. Las condiciones de la Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR), fueron las siguientes: a) 3 min a 94 &deg;C; b) 35 ciclos de 1 min a 94 &deg;C; 1 min a 36 &deg;C y 1.5 min a 72 &deg;C, con una extensi&oacute;n final de 7 min a 72 &deg;C. Los productos amplificados se fraccionaron en geles de poliacrilamida al 6% y se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio para ser visualizados en una fuente de luz ultravioleta y ser fotografiados</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis SSR</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el an&aacute;lisis de microsat&eacute;lites inicialmente se evaluaron seis pares de iniciadores reportados por Ashkenazi <i>et al.</i> (2000) y Ghislain <i>et al.</i> (2000) y con base en el polimorfismo generado se seleccionaron cuatro (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Las condiciones de reacci&oacute;n utilizadas fueron: en un volumen final de 25 &micro;l se mezcl&oacute; soluci&oacute;n amortiguadora al 1X, 2 mM de MgCl<sub>2</sub>, 200 &micro;M de dNTP's, 0.5 &micro;M de cada iniciador, 2.5 unidades de Taq polimerasa, 2 &micro;l de ADN (50 ng) y 12.5 &micro;l de agua est&eacute;ril. Las condiciones de la PCR fueron las siguientes: a) 3 min a 94 &deg;C; b) 35 ciclos de 1 min a 94 &deg;C; 2 min a 47 &deg;C y 1.5 min a 72 &deg;C; con una extensi&oacute;n final de 5 min a 72 &deg;C. Los productos de amplificaci&oacute;n se fraccionaron en geles de poliacrilamida al 6% y se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio para ser visualizados en una fuente de luz ultravioleta y ser fotografiados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de datos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los geles se analizaron y las bandas polim&oacute;rficas fueron contabilizadas. Para crear la matriz binaria se asumi&oacute; que bandas que migran en el gel a la misma altura son similares. La presencia de una banda fue indicada por un n&uacute;mero uno (1) y la ausencia como cero (0). Las relaciones gen&eacute;ticas entre genotipos se calcularon por el m&eacute;todo de Similitud Gen&eacute;tica propuesto por Nei y Li (1979), usando el paquete de software S&#150;Plus Versi&oacute;n 4.0. La matriz de distancias generada se utiliz&oacute; para construir un dendrograma con el algoritmo UPGMA (Unweighted Pair Group Method with Arithmetic Averages). Para obtener el intervalo de confianza para los grupos formados en cada nodo del dendrograma se uso el m&eacute;todo reportado por Felsenstein (1985), para lo cual se realizaron 1000 repeticiones con muestreo con reemplazo de los datos originales.&nbsp;Los intervalos de confianza Felsenstein se refieren al porcentaje de veces que cada nodo del dendrograma es repetido en las 1000 muestras con reemplazo, lo que a su vez indica lo robusto de los grupos formados en cada nodo. Un porcentaje cercano a 100% sugiere que el grupo refleja la estructura de la poblaci&oacute;n y que el error de muestreo es m&iacute;nimo, mientras que bajos porcentajes (30% o menos) sugieren que existe variaci&oacute;n entre los genotipos de alg&uacute;n nodo en particular, cada vez que realiza un an&aacute;lisis, por lo que es necesario aumentar el tama&ntilde;o de muestra. Para estimar la utilidad de los sistemas de marcadores en papa, se calcularon algunos par&aacute;metros propuestos por Powell <i>et al.</i> (1996), como el &iacute;ndice de diversidad mediante la ecuaci&oacute;n: <img src="/img/revistas/agritm/v32n2/a5s2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">P<i><sub>i</sub></i>= Frecuencia de una banda dada en una poblaci&oacute;n y <i>S</i>=  N&uacute;mero total de bandas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La proporci&oacute;n m&uacute;ltiple efectiva (PME), es el producto de la divisi&oacute;n entre el n&uacute;mero de loci polimorficos y el n&uacute;mero total de loci amplificados y multiplicado por el n&uacute;mero de loci polim&oacute;rficos, para cada iniciador utilizado en cualquier sistema de marcadores. El &iacute;ndice de marcador (IM), cuya estimaci&oacute;n es usada para evaluar la utilidad total de cada sistema de marcadores y se define como el producto de los promedios del &iacute;ndice de diversidad para los fragmentos polim&oacute;rficos y el PME para cada an&aacute;lisis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis RAPD.</b> Las tres reacciones de amplificaci&oacute;n de RAPDs y las cuatro de SSR amplificaron un total de 75 productos lo que permiti&oacute; caracterizar el germoplasma evaluado. En general, el an&aacute;lisis RAPD amplific&oacute; un total de 26 fragmentos (en promedio 9.0 fragmentos por iniciador), de los cuales 18 (69.23%) fueron polim&oacute;rficos. El tama&ntilde;o de los fragmentos analizados fue de 200 a 2000 pb aproximadamente, aunque se observaron fragmentos de mayor y menor tama&ntilde;o (<a href="#f1">Figuras 1</a> y <a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f2.jpg" target="_blank">2</a>). No se detectaron diferencias significativas en el n&uacute;mero de fragmentos amplificados entre los iniciadores utilizados (datos no mostrados). En las mismas figuras se muestran dos repeticiones por cada genotipo evaluado para estar seguros que los resultados obtenidos son confiables y reproducibles, adem&aacute;s se demostr&oacute; que no hubo variaci&oacute;n dentro de las l&iacute;neas y variedades de papa.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis SSR. </b>Con la t&eacute;cnica de SSR se amplific&oacute; un total 49 fragmentos diferentes (12.25 fragmentos en promedio), 41 (83.67%) de ellos fueron polim&oacute;rficos. El tama&ntilde;o de los fragmentos observados estuvo en el &aacute;mbito de 150 a 850 pares de bases (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaciones gen&eacute;ticas.</b> Se formaron seis grupos diferenciales de genotipos (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). El A fue homog&eacute;neo e incluy&oacute; las variedades Sancal y NAU&#150;6 cuya distancia gen&eacute;tica fue de 0.15; el B solo incluy&oacute; la variedad Montserrat; el C fue heterog&eacute;neo y se incluyeron las variedades Alpha, Michoac&aacute;n, Lupita, Malinche y Norte&ntilde;a cuyas distancias gen&eacute;ticas fluctuaron entre 0.18 y 0.19; el D fue homog&eacute;neo e incluy&oacute; las variedades Lady Rosetta y Gigant donde las distancias gen&eacute;ticas fueron de 0.18 aproximadamente; el E solo incluy&oacute; la variedad Marciana y el F fue muy heterog&eacute;neo e incluy&oacute;, por un lado, las l&iacute;neas 4&#150;11 y 676008 Roja, y por otro, las variedades Zafiro, Granola y Sangema, donde las distancias gen&eacute;ticas oscilaron entre 0.17 a 0.18.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los grupos formados y con base en las genealog&iacute;as de los genotipos evaluados, se determin&oacute; que los materiales con distancias gen&eacute;ticas muy cercanas fueron las variedades Montserrat y Marciana que tienen una distancia gen&eacute;tica de 0.05, que a la vez fueron los genotipos m&aacute;s divergentes del resto de los materiales analizados (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con relaci&oacute;n a los an&aacute;lisis de remuestreo se observ&oacute; que &uacute;nicamente cuatro subgrupos tuvieron un valor superior al 30%. Sancal y NAU&#150;6 con 88%, Lupita y Michoac&aacute;n con 66%, Alpha, Lupita y Michoac&aacute;n con 39%, y Lady Rosetta y Gigant con 71% (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lo anterior indica que los materiales que conforman cada uno de estos subgrupos est&aacute;n estrechamente relacionados entre s&iacute;. El resto de los subgrupos mostraron porcentajes bajos en los intervalos de confianza de Felsenstein.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Comparaci&oacute;n de la utilidad de los tipos de marcadores. Con el fin de estimar la utilidad de cada sistema de marcadores se calcularon algunos par&aacute;metros reportados por Powell et al. (1996), como el &Iacute;ndice de Diversidad (ID), la Proporci&oacute;n M&uacute;ltiple Efectiva (PME) y el &Iacute;ndice de Marcador (IM) para cada iniciador o par de iniciadores evaluados por sistema de marcadores moleculares. Los altos o bajos niveles de polimorfismo determinan el ID gen&eacute;tica presente en un grupo de individuos. En este caso se observ&oacute; un ID de 44.7 y 62.7% en los genotipos evaluados para RAPD y SSR, respectivamente. En el <a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a> se muestra un resumen de las medias aritm&eacute;ticas para la PME de cada sistema de marcadores. El promedio de PME en RAPD fue de 6.32, mientras que para los SSR fue de 1. En el caso de los SSR esto fue debido a que este sistema de marcador s&oacute;lo revela un locus simple. En cuanto al IM fue de 2.91 y 0.627 para RAPD y SSR, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los iniciadores utilizados en esta investigaci&oacute;n se seleccionaron en una evaluaci&oacute;n previa de genotipos de papa (Orona <i>et al.</i>, 2003; Orona <i>et al.</i>, 2004). Se utilizaron tres clonas por variedad y se corrieron tres ensayos de RAPDs en forma simult&aacute;nea con resultados id&eacute;nticos, lo que indica la reproducibilidad de los resultados y sugiere que existe un manejo adecuado de las clonas en el incremento de semilla y almacenamiento, ya que no se detect&oacute; variaci&oacute;n dentro de la misma variedad. Lo mismo ocurri&oacute; con los microsat&eacute;lites como lo cita Ghislain <i>et al.</i> (2000). Adem&aacute;s, el n&uacute;mero de bandas y porcentajes de polimorfismos observados en ambas t&eacute;cnicas fueron similares a los reportados en otros estudios con otros cultivares (Milbourne <i>et al.</i>, 1997; Isenegger <i>et al.</i>, 2001, Silveira <i>et al.</i>, 2004), por lo que estos marcadores pueden ser usados como una herramienta para detectar diferencias gen&eacute;ticas entre genotipos relativamente cercanos (Ashkenazi <i>et al.</i>, 2000; Raker y Spooner, 2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las t&eacute;cnicas de SSR y RAPD utilizadas en el presente estudio diferenciaron los 16 genotipos evaluados y permitieron establecer las relaciones gen&eacute;ticas entre variedades a pesar de que la papa es un cultivo propagado clonalmente, por lo que la variaci&oacute;n dentro de la especie es muy bajo comparado con especies de reproducci&oacute;n sexual (Barbosa y Bered, 1998). El an&aacute;lisis de agrupamiento observado en la <a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>, refleja una correlaci&oacute;n entre los grupos definidos por Ferroni (1981), ya que los subgrupos en su mayor&iacute;a estuvieron formados por separado con materiales mexicanos y con materiales de origen europeo. Otros subgrupos estuvieron formados por materiales mexicanos y materiales de origen europeo mezclados, lo anterior no es nada sorprendente y puede deberse a que existe correlaci&oacute;n entre sus coancestros y refleja afinidad en su pedigr&iacute; (Demek <i>et al.</i>, 1996). Los valores de 88, 66 y 71% respectivamente, observados en el remuestreo con reemplazo (Felsenstein, 1985), en los subgrupos formados por los cultivares Sancal y NAU&#150;6; Michoac&aacute;n y Lupita, Lady Roseta y Gigant, confirman la estrecha relaci&oacute;n gen&eacute;tica entre estos pares de materiales y los cruzamientos entre ellos no son recomendables.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agrupamiento de unidades de distancias m&iacute;nimas y promedios aritm&eacute;ticos propuesto por Nei y Li (1979), permitieron distinguir las diferencias gen&eacute;ticas existentes entre los 16 genotipos, lo que concuerda con los resultados obtenidos en otros trabajos (Miller y Spooner, 1999) (<a href="#f1">Figuras 1</a>, <a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f2.jpg" target="_blank">2</a> y <a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f3.jpg" target="_blank">3</a>). As&iacute; mismo, el desarrollo de microsat&eacute;lites en <i>Solanum tuberosum</i> analizados con el modelo propuesto por Nei y Li (1979) (<a href="/img/revistas/agritm/v32n2/a5f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>), soportan las diferencias gen&eacute;ticas de la mayor&iacute;a de los genotipos, como ha sucedido en estudios reportados por Raker y Spooner (2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los bajos niveles de confiabilidad observados en algunos subgrupos por el an&aacute;lisis de remuestreo con reemplazo (Felsenstein, 1985), se atribuye al bajo n&uacute;mero de ensayos realizados tanto en RAPD como en SSR, sin embargo, esto no influy&oacute; en la caracterizaci&oacute;n gen&eacute;tica de los materiales como ha sido reportado en papa (Isenegger <i>et al.</i>, 2001; Bornet <i>et al.</i>, 2002; Silveira <i>et al.</i>, 2004). Los valores de confiabilidad se pueden mejorar, incrementando el n&uacute;mero de ensayos en ambas t&eacute;cnicas. Al comparar las relaciones gen&eacute;ticas entre los dos sistemas de marcadores aunque la correlaci&oacute;n entre ambos fue intermedia (r = 0.56) esta fue superior a la reportada en otros estudios (Milbourne <i>et al.</i>, 1997). Con ambas t&eacute;cnicas se observ&oacute; una estrecha relaci&oacute;n entre los grupos formados por las variedades Sancal y NAU&#150;6 as&iacute; como Sangema, Granola y Zafiro, a&uacute;n cuando no fue en el mismo orden. Con la t&eacute;cnica de SSR se logr&oacute; una mejor discriminaci&oacute;n entre genotipos, lo que coincide con lo reportado por varios investigadores, que le atribuyen a esta t&eacute;cnica mayor eficiencia para identificar variaci&oacute;n en sitios determinados (Powell <i>et al.</i>, 1996; Milbourne <i>et al.</i>, 1997; Ashkenazi <i>et al.</i>, 2000; Raker y Spooner, 2002). El hecho de que la variedad Montserrat fuera la m&aacute;s divergente y se desligara de los otros materiales tanto en RAPD como en SSR, es un indicador de la distancia gen&eacute;tica de este cultivar con el resto y que pudiera ser explotada en programas de mejoramiento donde se incluya esta variedad como progenitor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de diversidad gen&eacute;tica obtenida en los an&aacute;lisis RAPD y SSR (44.7 y 62.7 %), reflejan la variaci&oacute;n observada por cada sistema de marcador, y son comparables a los valores obtenidos por Milbourne <i>et al.</i> (1997). Mientras que para PME, los marcadores RAPD presentaron valores mayores que los SSR (6.32 y 1), lo cual es normal debido a que &eacute;stos revelan un solo locus, mientras que en el caso de los RAPD se asume que cada banda pertenece a un locus distinto. Por otra parte, si se considera que la papa es una especie tetraploide, se puede asumir que en un locus pueden existir cuatro alelos distintos, por lo tanto, en este caso es contradictorio se&ntilde;alar que en los an&aacute;lisis SSR s&oacute;lo se est&aacute; amplificando un solo locus. Por lo tanto, el valor de 1 asignado en PME para SSR incidi&oacute; en bajos valores de IM, a&uacute;n cuando pudieran utilizarse combinaciones de oligonucleotidos iniciadores que puedan revelar m&aacute;s de un locus (Milbourne <i>et al.</i>, 1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las t&eacute;cnicas de RAPD y SSR, fueron eficientes para caracterizar las variedades y clones mejorados de papa incluidos en el estudio; con SSR se logr&oacute; una mejor discriminaci&oacute;n entre genotipos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se identificaron ambos grupos de genotipos, unos estrechamente relacionados y otros, como la variedad Monserrat, gen&eacute;ticamente distintos. Esto permitir&aacute; dise&ntilde;ar los cruzamientos adecuados en el programa de mejoramiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Akkaya, M. S.; Bhagwat, A. A. and Cregan, P. B. 1992. Length polymorphisms of simple sequence repeat DNA in soybean. Genetics 132:1131&#150;1139.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494762&pid=S0568-2517200600020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Almeyda L., I. H. 1997. Detecci&oacute;n molecular de fitoplasmas y su uso en el diagn&oacute;stico del amarillamiento letal del cocotero. Tesis de Doctor en Ciencias. Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n, Divisi&oacute;n de Estudios de Postgrado. San Nicol&aacute;s de los Garza, N. L., M&eacute;xico. 88 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494763&pid=S0568-2517200600020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ashkenazi, V.; Chani, E.; Lavi, U.; Levy, D.; Hillel, J. and Veilleux, R. E. 2000. Development of microsatellite markers in potato and their use in phylogenetic and fingerprinting analysis. Genome 44:50&#150;62.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494764&pid=S0568-2517200600020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baird, E.; Coope, B. S.; Waugh, R.; De Maine, M. and Powell, W. 1992. Molecular characterization of inter&#150;specific and intra&#150;specific somatic hybrids of potato using randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) markers. Mol. Gen. Genetic. 233:469&#150;475.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494765&pid=S0568-2517200600020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barbosa N., J. F. and Bered, F. 1998. Marcadores moleculares e diversidade gen&eacute;tica no melhoramento de plantas. <i>In</i>: Milack, S. (ed.). Marcadores moleculares en plantas. Porto alegre UFRGS. p. 29&#150;41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494766&pid=S0568-2517200600020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Becerra V., V. y Paredes C., M. 2000. Uso de marcadores bioqu&iacute;micos y moleculares en estudios de diversidad gen&eacute;tica. Agric. T&eacute;c. (Chile) 60(3):270&#150;281.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494767&pid=S0568-2517200600020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bornet, B.; Goraguer, F.; Joly, G. and Branchard, M. 2002. Genetic diversity in european and argentinian cultivated potatoes (<i>Solanum tuberosum</i> subsp. Tuberosum detected by inter&#150;simple sequence repeats (ISSRs). Genome 45:481&#150;484.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494768&pid=S0568-2517200600020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Buso, J. A. 1990. Os programas de melhoramento gen&eacute;tico de batata no Brasil. In: Hidalgo, O. A. and Rinc&oacute;n, H. R. (eds.). Avances en el mejoramiento gen&eacute;tico de la papa en los pa&iacute;ses del Cono Sur. Centro Internacional de la Papa. Lima; Per&uacute;. p. 31&#150;34.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494769&pid=S0568-2517200600020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carrasco, A.; Ruiz de G, J. I. and Ritter, E. 1998. Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica, cariot&iacute;pica y molecular de tres somaclones de <i>Solanum tuberosum</i> L. obtenidos mediante cultivo de protoplastos. Invest. Agr. Prod. Prot. Veg. 13(3):385&#150;391.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494770&pid=S0568-2517200600020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Centro Internacional de la Papa. (CIP). 2004. About potatoes. Lima, Per&uacute;.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494771&pid=S0568-2517200600020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Demek, T. and Adams, R. P. 1994. The use of PCR&#150;RAPD analysis in plant taxonomic and evolution. <i>In</i>: Griffing, H. G. and Griffing, A. M. (eds.) PCT Technology Current Innovations. CRC Press. Norwich, U. K. p. 179&#150;214.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494772&pid=S0568-2517200600020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Demek, T.; Lynch, D. R.; Kawchuk, L. M.; Kosub, G. C. and Armstrong, J. D. 1996. Genetic diversity of potato determined by random amplified polymorfic DNA analysis. Plant Cell Rep. 15:662&#150;667.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494773&pid=S0568-2517200600020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Felsenstein, J. 1985. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evolution 39: 783&#150;791.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494774&pid=S0568-2517200600020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ferroni, M. A. 1981. El potencial de la papa como recurso alimenticio y como fuente de ingreso. Instituto Nacional de Investigaciones Agr&iacute;colas, Programa Regional Cooperativo de Papa. Toluca, Edo. de M&eacute;xico, M&eacute;xico. 30 p. (Publicaci&oacute;n Especial N&uacute;m. 1.).</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494775&pid=S0568-2517200600020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ghislain, M.; Rodr&iacute;guez, F.; Villam&oacute;n, F.; N&uacute;&ntilde;ez, J.; Waugh, R. and Bonierbale, M. 2000. Establishment of microsatellite assays for potato genetic identification. Centro Internacional de la Papa. Program Report. 1999&#150;2000. Lima, Per&uacute;. p. 167&#150;174.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494776&pid=S0568-2517200600020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez Ch., M. y Simpson, J. 1997. Diversidad gen&eacute;tica en hongos (origen y an&aacute;lisis). <i>In</i>: Mart&iacute;nez S., J. P. y Mart&iacute;nez E., A. D. (eds.) T&oacute;picos Selectos de Fitopatolog&iacute;a: Gen&eacute;tica Molecular. Centro de Investigaci&oacute;n y Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional&#150;Unidad Irapuato. Guanajuato, M&eacute;xico. p. 4&#150;23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494777&pid=S0568-2517200600020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gorg, R.; Schachtschabel, U.; Ritter, E.; Salamini, F. and Gebhardt, C. 1992. Discrimination among 136 tetraploid potato varieties by fingerprints using highly polymorphic DNA markers. Crop Sci. 32:815&#150;819.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494778&pid=S0568-2517200600020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Isenegger, D. A.; Taylor, P. W. J.; Ford, R.; Franz, P.; McGregor, G. R. and Hutchinson, J. F. 2001. DNA fingerprinting and genetic relationships of potato cultivars (<i>Solanum tuberosum</i> L.) commercially grown in Australia. Aust. J. Agr. Res. 52(9):911&#150;918.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494779&pid=S0568-2517200600020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Milbourne, D.; Meyer, R.; Bradshaw, J. E.; Baird, E.; Bonar, N.; Provan, J.; Powell, W. and Waugh, R. 1997. Comparison of PCR&#150;based marker systems for the analysis of genetics relationships in cultivated potato. Mol. 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Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 76:5269&#150;5273.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494782&pid=S0568-2517200600020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Orona C., F.; Pecina Q., V.; Rocha P., M. A.; Parga T., V. M. y Almeyda L., I. H. 2003. Caracterizaci&oacute;n molecular de 15 genotipos de papa (<i>Solanum tuberosum</i> L.) mediante RAPD's Y SSR's. In: D&eacute;cima Sexta Reuni&oacute;n Cient&iacute;fica Tecnol&oacute;gica Forestal y Agropecuaria, Veracruz 2003 y Primer Foro Regional de Discusi&oacute;n y An&aacute;lisis de la Investigaci&oacute;n Agropecuaria, Forestal y Pesquera. Resumen de Memorias. 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Fitopatol. 19(2):128&#150;139.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494785&pid=S0568-2517200600020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Powell, W.; Morgante, M.; Andre, C.; Hanaffey, M.; Vogel, J.; Tingey, S. and Rafalski, A. 1996. The comparisons of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) markers for germoplasm analysis. Mol. 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Chilean tetraploid cultivated potato, <i>Solanum tuberosum</i>, is distinct from the Andean populations: microsatellite data. Crop Sci. 42:1451&#150;1458.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494788&pid=S0568-2517200600020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n (SAGARPA). 2003. Servicio de informaci&oacute;n y estad&iacute;stica agroalimentaria y pesquera. Cultivo de papa. M&eacute;xico, D. 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USA 91:5466&#150;5470.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494790&pid=S0568-2517200600020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silveira C., E. A.; Choer, E. and da Silva, P. A. 2004. Characterization of potato genotypes using molecular markers. Pesq. Agropec. Bras. 39(9):871&#150;878.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494791&pid=S0568-2517200600020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ugent, D. 1968. The potato in Mexico: Geography and primitive culture. Econ. Bot. 22:108&#150;123.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=494792&pid=S0568-2517200600020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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