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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de mastitis bovina subclínica por micoplasmosis mediante ELISA indirecta y aislamiento]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El objetivo de este trabajo fue determinar la efectividad de una prueba de ELISA en suero para el diagnóstico de la mastitis bovina subclínica causada por Mycoplasma bovis, teniendo como prueba de referencia el aislamiento del microorganismo a partir de muestras de leche. Se obtuvieron 225 muestras de sangre y de leche provenientes de hatos del Estado de México, Coahuila e Hidalgo, todos en México. Ciento treinta y nueve muestras (61.8%) resultaron positivas a mastitis subclínica mediante la prueba de Wisconsin, y de ellas sólo en seis se aisló M. bovis. A través de la prueba de ELISA, 72 muestras resultaron positivas (32.0%). Todos los animales con aislamiento positivo también fueron positivos a la prueba de ELISA. Con un punto de corte mayor o igual a 100, se obtuvo sensibilidad de 83.3% y especificidad de 83.56%, aunque el valor predictivo (VP) (+) fue de 12.2%, y el VP (-) de 99.46%. El bajo VP (+) se asoció con baja prevalencia. La técnica de ELISA podría ser utilizada como prueba tamiz para la detección de mastitis asociada con M. bovis, particularmente en hatos con frecuencias elevadas (> a 10%), esto con el fin de mejorar un valor predictivo positivo, lo que permitiría establecer mejores diagnósticos en casos donde las pruebas más comunes no dan un resultado concreto, sobre todo si se considera que la prueba de ELISA es práctica, rápida y económica.]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[Mycoplasma bovis]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Detecci&oacute;n de mastitis bovina subcl&iacute;nica por micoplasmosis mediante ELISA indirecta y aislamiento*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Detection of subclinical bovine mastitis caused by mycoplasmosis by indirect ELISA test and isolation</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>C&eacute;sar N&uacute;&ntilde;ez D** Elizabeth Morales Salinas<sup>**</sup> Jos&eacute; Juan Mart&iacute;nez Maya<sup>***</sup> Laura Hern&aacute;ndez A.</b><img src="/img/revistas/vetmex/v39n2/a1s1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Este trabajo forma parte de la tesis de licenciatura del primer autor.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>** Departamento de Patolog&iacute;a, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 04510, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>*** Departamento de Medicina Preventiva y Salud P&uacute;blica, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 04510, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><img src="/img/revistas/vetmex/v39n2/a1s1.jpg">Centro Nacional de Investigaci&oacute;n en Microbiolog&iacute;a, Km 15.5, Carretera Libre M&eacute;xico&#150;Toluca, Colonia Palo Alto, 05110, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 24 de octubre de 2006     <br> Aceptado el 20 de febrero de 2008.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of this study was to determine the effectiveness of ELISA test in serum, for the diagnosis of subclinical bovine mastitis caused by <i>Mycoplasma bovis, </i>having as a reference test, the isolation of the microorganism in milk samples. Two hundred and twenty five blood and milk samples were obtained from herds from the State of Mexico, Coahuila and Hidalgo, all of them in Mexico. Using the Wisconsin test, 139 samples (61.8%) were positives to subclinical mastitis but only in six of them, <i>Mycoplasma bovis </i>was isolated. By ELISA test, 72 samples were positives (32.0%). All animals with positive isolation were also positive to the ELISA test. With a cut point higher or equal to 100, sensitivity and specificity were 83.3% and 83.56%, respectively, although the positive predictive value (PV) (+) was 12.2% and the negative predictive value (PV) (&#150;) was 99.46%. The low PV (+) was associated to a low prevalence. ELISA test could be used as a screen test to detect mastitis associated to <i>Mycoplasma bovis, </i>particularly in herds with high frequencies (&gt; 10%), this with the purpose to improve a positive predictive value (PV), which would allow to establish better diagnoses in cases where the most common tests do not give a specific result, mostly if ELISA test is considered as practical, fast and economic.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: <i>Mycoplasma bovis, </i>Mastitis, Diagnostic Tests, Serology.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo fue determinar la efectividad de una prueba de ELISA en suero para el diagn&oacute;stico de la mastitis bovina subcl&iacute;nica causada por <i>Mycoplasma bovis, </i>teniendo como prueba de referencia el aislamiento del microorganismo a partir de muestras de leche. Se obtuvieron 225 muestras de sangre y de leche provenientes de hatos del Estado de M&eacute;xico, Coahuila e Hidalgo, todos en M&eacute;xico. Ciento treinta y nueve muestras (61.8%) resultaron positivas a mastitis subcl&iacute;nica mediante la prueba de Wisconsin, y de ellas s&oacute;lo en seis se aisl&oacute; <i>M. bovis. </i>A trav&eacute;s de la prueba de ELISA, 72 muestras resultaron positivas (32.0%). Todos los animales con aislamiento positivo tambi&eacute;n fueron positivos a la prueba de ELISA. Con un punto de corte mayor o igual a 100, se obtuvo sensibilidad de 83.3% y especificidad de 83.56%, aunque el valor predictivo (VP) (+) fue de 12.2%, y el VP (&#150;) de 99.46%. El bajo VP (+) se asoci&oacute; con baja prevalencia. La t&eacute;cnica de ELISA podr&iacute;a ser utilizada como prueba tamiz para la detecci&oacute;n de mastitis asociada con <i>M. bovis, </i>particularmente en hatos con frecuencias elevadas (&gt; a 10%), esto con el fin de mejorar un valor predictivo positivo, lo que permitir&iacute;a establecer mejores diagn&oacute;sticos en casos donde las pruebas m&aacute;s comunes no dan un resultado concreto, sobre todo si se considera que la prueba de ELISA es pr&aacute;ctica, r&aacute;pida y econ&oacute;mica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: <i>Mycoplasma bovis, </i>Mastitis, Pruebas Diagn&oacute;sticas, Serolog&iacute;a.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La micoplasmosis es una enfermedad infecciosa que afecta a varias especies animales. Es causada por microorganismos del g&eacute;nero <i>Mycoplasma, </i>que pertenece a la clase Mollicutes, orden Mycoplasmatales y familia Mycoplasmatacea.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los micoplasmas son microorganismos pleom&oacute;rficos, carecen de pared celular, miden de 200 a 500 nm, crecen en medios s&oacute;lidos y l&iacute;quidos, y utilizan glucosa como fuente de energ&iacute;a. Para su crecimiento se utilizan medios adicionados de prote&iacute;nas y complejos nutrimentales, tambi&eacute;n se utiliza penicilina y acetato de talio como inhibidores de bacterias contaminantes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En ganado bovino es posible aislar varias especies de <i>Mycoplasma, </i>de ellas, <i>Mycoplasma alkalences, M. bovigenitalum, M. bovis, M. californicum </i>y <i>M. canadense </i>provocan mastitis, artritis, neumon&iacute;as, otitis y problemas reproductivos, entre otras manifestaciones.<sup>1,</sup><sup>3 </sup>Sin embargo, <i>M. bovis </i>es el principal agente que causa mastitis.<sup>1&#150;5</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, &Aacute;vila <i>et al.</i><i><sup>6</sup></i> informaron sobre el aislamiento de <i>Micoplasma </i>spp en un hato lechero ubicado en el Estado de M&eacute;xico; Hern&aacute;ndez <i>et al. </i>describieron un brote de mastitis causado por <i>M. bovis </i>en un hato lechero del mismo estado; Barajas <i>et al.</i><i><sup>8</sup></i> observaron prevalencia de <i>M. bovis </i>mayor a 50% en bovinos en el tr&oacute;pico de M&eacute;xico; Castro<sup>9</sup> informa del aislamiento de <i>M. </i>spp proteol&iacute;tico de un brote de mastitis en un hato lechero en Tizayuca, Hidalgo, M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre las mastitis causadas por los micoplasmas, <i>M. bovis </i>es el m&aacute;s frecuente, adem&aacute;s se le encuentra en mucosas y en secreciones de los tractos respiratorio y urogenital.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La infecci&oacute;n puede ser introducida al hato por un animal infectado, o aparecer como consecuencia de la infecci&oacute;n en gl&aacute;ndula mamaria a trav&eacute;s del equipo de orde&ntilde;o; despu&eacute;s se puede propagar por medio de los orde&ntilde;adores, las pezoneras de las orde&ntilde;adoras mec&aacute;nicas y por soluciones que usualmente se emplean para el lavado de las ubres.<sup>2,4,5</sup> Las &eacute;pocas o condiciones fr&iacute;as y h&uacute;medas aumentan la incidencia de la infecci&oacute;n, ya que los micoplasmas pueden sobrevivir m&aacute;s tiempo en esas condiciones.<sup>10</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los signos cl&iacute;nicos de mastitis aparecen d&iacute;as despu&eacute;s de la infecci&oacute;n, la cual puede darse en cualquier fase de lactancia; el antecedente es una mastitis aguda en uno o m&aacute;s cuartos, que a la palpaci&oacute;n se perciben calientes, hinchados, edematosos o duros, las secreciones var&iacute;an en su aspecto.<sup>2</sup> Por lo regular, la primera secreci&oacute;n puede ser acuosa y tener "copos" de un material arenoso.<sup>11</sup> Transcurridos varios d&iacute;as, las secreciones se pueden convertir en un exudado purulento. Si la enfermedad progresa, los conductos galact&oacute;foros desarrollan metaplasia escamosa, y algunos conductos y acinis se llenan de exudado granulomatoso.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mastitis aguda por <i>M. bovis </i>se disemina en un periodo corto, la producci&oacute;n de leche disminuye dr&aacute;sticamente, salvo en los casos subcl&iacute;nicos.<sup>1,2</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tradicionalmente, el &uacute;nico m&eacute;todo de diagn&oacute;stico de rutina ha sido el aislamiento e identificaci&oacute;n de <i>M. bovis, </i>que requiere de dos a diez d&iacute;as. En la actualidad existen otras t&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico: reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), hibridaci&oacute;n <i>in situ. </i>Asimismo, hay t&eacute;cnicas inmunoenzim&aacute;ticas (ELISA) para detectar ant&iacute;genos y anticuerpos contra <i>M. bovis.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La t&eacute;cnica de ELISA para detectar anticuerpos es r&aacute;pida, requiere de uno a dos d&iacute;as para obtener resultados, su alta especificidad y sensibilidad es mayor a otros m&eacute;todos como la inhibici&oacute;n de la hemoaglutina&#150;ci&oacute;n.<sup>12,13</sup> Existen paquetes comerciales de la t&eacute;cnica de ELISA que utilizan ant&iacute;genos de prote&iacute;nas variables de superficie (PVS), en particular la prote&iacute;na variable de superficie "A" (PVSA), que es espec&iacute;fica para toda infecci&oacute;n provocada por <i>M. bovis.<sup>1</sup>4 </i>La prueba detecta anticuerpos de los 13 a los 720 d&iacute;as posinfecci&oacute;n. La especificidad no revela reactividad cruzada con sueros hiperinmunes de otras especies de <i>Mycoplasma, </i>excepto una peque&ntilde;a reacci&oacute;n con <i>Mycoplasma arginini.<sup>15</sup> </i>Con reactivos comerciales de ELISA para detectar anticuerpos en contra de otras especies de <i>Mycoplasma, </i>se ha observado sensibilidad de 96% y especificidad de 98%.<sup>16</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El diagn&oacute;stico de mastitis asociada con <i>M. bovis </i>representa un problema, ya que por lo regular suele realizarse s&oacute;lo hasta despu&eacute;s de haber descartado otras etiolog&iacute;as; adem&aacute;s, el tiempo que transcurre para ello hace que generalmente cuando se determina la causa, ya existen signos cl&iacute;nicos y lesiones graves, por lo que resulta m&aacute;s complicado y costoso su tratamiento. Por esta raz&oacute;n, es necesario buscar alternativas de diagn&oacute;stico que identifiquen la infecci&oacute;n en casos de mastitis subcl&iacute;nicas, de manera f&aacute;cil, r&aacute;pida y econ&oacute;mica. Por lo anterior, se busc&oacute; evaluar una prueba de ELISA indirecta, para determinar su efectividad en el diagn&oacute;stico de mastitis subcl&iacute;nica asociada con <i>M. bovis.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Ubicaci&oacute;n espacial y temporal</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio se realiz&oacute; en el primer trimestre de 2004 en tres hatos lecheros ubicados en lugares diferentes: <i>a) </i>en Torre&oacute;n, Coahuila, <i>b) </i>en Melchor Ocampo, Estado de M&eacute;xico, ambos con antecedentes de micoplasmosis; <i>c) </i>en Atitalaquia, Hidalgo, que no ten&iacute;a ese tipo de antecedente.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Obtenci&oacute;n de muestras </b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los tres hatos evaluados y durante el orde&ntilde;o, se realiz&oacute; la prueba de Wisconsin modificada a todas las vacas en producci&oacute;n.<sup>1</sup>7 A las que resultaron con cuartos positivos a mastitis subcl&iacute;nica (&gt; 500 000 c&eacute;lulas som&aacute;ticas) se les tom&oacute; una muestra de leche para realizar el aislamiento. En los casos donde la mastitis subcl&iacute;nica involucr&oacute; m&aacute;s de un cuarto, se tom&oacute; la muestra al azar de cualquier cuarto, adem&aacute;s se obtuvo una muestra de sangre de 10 mL de la vena cocc&iacute;gea; la sangre se centrifug&oacute; para la obtenci&oacute;n de suero. Como testigos se tomaron 86 muestras de sangre de animales con conteos normales de c&eacute;lulas som&aacute;ticas (&lt; 500 000 c&eacute;lulas som&aacute;ticas), por lo que se consideraron negativos a la prueba de Wisconsin.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Detecci&oacute;n de anticuerpos contra </b></i><b>M. bovis</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a name="r1" id="r1"></a>La detecci&oacute;n de anticuerpos contra M. bovis se realiz&oacute; mediante la prueba de ELISA indirecta utilizando el reactivo Checkit,<sup><a href="#1">*</a></sup> siguiendo las instrucciones seg&uacute;n lo especificado por el fabricante; esta prueba incluye sueros testigo positivos y negativos, con los cuales se puede determinar el punto de corte.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Aislamiento de </b></i><b>M. bovis <i>en leche</i></b><i></i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el aislamiento e identificaci&oacute;n de <i>M. bovis </i>en leche se tomaron 10 mL de leche de cada cuarto que result&oacute; positivo a la prueba de Wisconsin modificada. La toma de muestra se realiz&oacute; en tubos de ensayo est&eacute;riles y se conservaron entre 2&deg;C&#150;4&deg;C.<sup>18</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aislamiento del microorganismo se realiz&oacute; en el Centro Nacional de Investigaciones en Microbiolog&iacute;a Veterinaria (CENID&#150;Microbiolog&iacute;a), del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). Las muestras de leche se sembraron en medio l&iacute;quido de Friis modificado y se realizaron diluciones de 1:10 y 1:100, se incubaron a 37&deg;C y se examinaron diariamente. A los siete d&iacute;as se cultivaron en medio s&oacute;lido de Friis y se incubaron a 37&deg;C en atm&oacute;sfera h&uacute;meda, con 5% a 10% de CO2. El crecimiento caracter&iacute;stico con aspecto de "huevo frito" se observ&oacute; en un microscopio estereosc&oacute;pico. La identificaci&oacute;n de la especie <i>Mycoplasma </i>se realiz&oacute; mediante la prueba de digitonina,<sup>19</sup> para diferenciarla de <i>Acholeoplasma. </i>Adem&aacute;s se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n serol&oacute;gica con la prueba de inhibici&oacute;n del crecimiento con antisueros de <i>M. bovis, M. bovigenitalum </i>y <i>Acholeoplasma laidlawii.</i><sup>20</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>An&aacute;lisis de resultados</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; la concordancia entre el aislamiento del microorganismo y la prueba de ELISA a trav&eacute;s del estad&iacute;stico Kappa. Con el fin de determinar si hubo un mejor punto de corte que el referido en el reactivo comercial, los resultados serol&oacute;gicos de densidad &oacute;ptica (DO) se agruparon en grupos con intervalos de 5%. Adem&aacute;s se determin&oacute; para cada estrato los valores estimados de sensibilidad (Se), especificidad (Es), valor predictivo positivo (Vp(+)) y valor predictivo negativo (Vp(&#151;)). Se busc&oacute; el mejor punto de corte mediante la elaboraci&oacute;n de una curva con caracter&iacute;sticas operantes de receptor (ROC). <sup>21</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron 225 muestras de sangre y leche, de las cuales 98 (43.6%) proven&iacute;an del hato del Estado de M&eacute;xico, 77 (34.2%), de Coahuila y 50 (22.2%) de Hidalgo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Prueba de Wisconsin modificada</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las 225 muestras evaluadas, 139 (61.8%) resultaron positivas a mastitis subcl&iacute;nica (&gt; a 500 000 c&eacute;lulas som&aacute;ticas); se registr&oacute; mayor positividad en el hato del Estado de M&eacute;xico (80.6%) (P &lt; 0.01) (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a5c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Prueba de ELISA indirecta para la identificaci&oacute;n de anticuerpos contra </b></i><b>M. bovis</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del total de las muestras, 72 fueron positivas (32.0%) y con cuatro sospechas (1.8%) (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a5c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). En relaci&oacute;n con los lugares de procedencia, el porcentaje de positividad fue mayor en el hato del Estado de M&eacute;xico (38.8%), aunque no hubo diferencia estad&iacute;stica significativa entre los grupos (P&gt;0.05)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Aislamiento e identificaci&oacute;n de </b></i><b>M. bovis</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las 139 muestras positivas a la prueba de Wisconsin, s&oacute;lo se aisl&oacute; <i>M. bovis </i>en seis muestras (4.3%), de las cuales tres proven&iacute;an del Estado de M&eacute;xico y tres de Coahuila. Los seis aislamientos que se obtuvieron de animales tambi&eacute;n fueron positivos a la prueba de ELISA (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a5c3.jpg" target="_blank">Cuadros 3</a> y <a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a5c4.jpg" target="_blank">4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Determinaci&oacute;n de la sensibilidad y especificidad de la prueba de ELISA indirecta evaluada en suero para la detecci&oacute;n de </b></i><b>M. bovis <i>en leche</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el punto de corte recomendado por el fabricante (80%), se obtuvo sensibilidad de 83.3%, especificidad de 72.15%, valor predictivo positivo de 7.58% y valor predictivo negativo de 99.37%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al agrupar los resultados de la prueba de ELISA en rangos de 5%, se encontr&oacute; que un mejor punto de corte fue igual a 100, con el cual se present&oacute; sensibilidad de 83.3% y especificidad de 83.56%. Aun as&iacute;, el valor predictivo positivo fue de 12.2% y el valor predictivo negativo de 99.46%, la proporci&oacute;n obtenida bajo la curva del an&aacute;lisis ROC fue de 0.9075 (<a href="#f1">Figura 1</a>)</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n2/a5f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mastitis subcl&iacute;nica registrada con la prueba de Wiscosin (61.8%) fue mayor en comparaci&oacute;n con otros estudios realizados en M&eacute;xico, como el efectuado en Tres Mar&iacute;as, Morelos, donde se encontr&oacute; prevalencia que vari&oacute; de 19.6% a 52.9%,<sup>22</sup> o en el Complejo Agroindustrial de Tizayuca, Hidalgo, donde se observ&oacute; frecuencia de 20.82%.<sup>23</sup> En Estados Unidos de Am&eacute;rica, se han informado frecuencias de 48.5% en Nueva York y Pennsilvania.<sup>24</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el hato del Estado de M&eacute;xico, el alto porcentaje de mastitis subcl&iacute;nica (80.6%) se asocia con pr&aacute;cticas inadecuadas de higiene y desinfecci&oacute;n, adem&aacute;s del mal manejo y falta de mantenimiento de la orde&ntilde;adora mec&aacute;nica. A este respecto, Jaramillo <i>et al.<sup>23 </sup></i>encontraron que la instrumentaci&oacute;n de pr&aacute;cticas de higiene y desinfecci&oacute;n contribuyeron a bajar la prevalencia de 17.1% a 14.26% en dos establos con diferentes sistemas de manejo. Asimismo, en ese estudio se inform&oacute; que el mal manejo de la unidad orde&ntilde;adora, principalmente por sobreorde&ntilde;o, provoc&oacute; aumento de la prevalencia de mastitis subcl&iacute;nica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de positividad (32%) de la prueba de ELISA indirecta result&oacute; menor al encontrado por Barajas <i>et al.,<sup>8</sup> </i>quienes observaron prevalencia de 50% en un estudio realizado con animales de Veracruz, y de 43% seg&uacute;n los resultados de Ghadersohi <i>et al. </i>en ganado lechero de Townsville, Australia.<sup>25</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de aislamientos obtenidos de animales con mastitis subcl&iacute;nica en este estudio (4.3%) fue mayor en comparaci&oacute;n con el porcentaje (0.1%) encontrado por Wilson <i>et al.<sup>24</sup> </i>en 105 083 vacas estudiadas en Nueva York y Pennsylvania, y al porcentaje (1.8%) obtenido por Gonz&aacute;lez <i>et al.<sup>26</sup> </i>en 9 884 muestras en Nueva York,; en ambos estudios las muestras proven&iacute;an de vacas con mastitis subcl&iacute;nica. Sin embargo, es menor al porcentaje notificado (19.8%) por Ghadersohi <i>et al.<sup>27</sup> </i>en 202 muestras de leche de vacas con mastitis subcl&iacute;nica en Australia. Un porcentaje similar (19.64%) fue registrado por Hern&aacute;ndez <i>et al.<sup>7</sup> </i>en 56 animales con mastitis cl&iacute;nica provenientes del Estado de M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El escaso n&uacute;mero de aislamientos puede estar relacionado con diversos factores. Al respecto, Nicholas y Ayling<sup>28</sup> encontraron que en casos de mastitis cr&oacute;nicas el uso de antimicrobianos dificulta el aislamiento. Miranda <i>et al.<sup>29</sup> </i>mencionan que bajas cantidades de micoplasmas en la muestra dificultan el aislamiento. Asimismo, Ghadersohi <i>et al.<sup>25</sup> </i>indicaron que t&iacute;tulos altos de anticuerpos en la leche inhiben el desarrollo de <i>M. bovis, </i>aunado a la acci&oacute;n del complemento provocan lisis de &eacute;ste.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sensibilidad (83.3%) y especificidad (67.58%) de la prueba de ELISA para la detecci&oacute;n de mastitis por <i>M. bovis, </i>con base en el punto de corte del fabricante podr&iacute;a considerarse razonable, ello concuerda con los resultados de Brank <i>et al.,<sup>14</sup> </i>quienes elaboraron una prueba de ELISA indirecta a base de ant&iacute;genos recombinantes que consisten en PvsA, que les permiti&oacute; obtener una prueba serol&oacute;gica sensible, espec&iacute;fica y r&aacute;pida para la detecci&oacute;n de <i>M. bovis </i>en sus diferentes manifestaciones. Gadhersohi <i>et al.<sup>25</sup> </i>desarrollaron otra prueba de ELISA indirecta a base de anticuerpos monoclonales, para detectar anticuerpos de <i>M. bovis </i>en suero de animales con manifestaciones cl&iacute;nicas de mastitis y problemas respiratorios, y en animales infectados experimentalmente mediante esponjas nasales encontraron alta especificidad y buena sensibilidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A trav&eacute;s de la curva ROC, la relaci&oacute;n entre ambas pruebas fue razonablemente buena (0.9075). El punto de corte pudo mejorarse, como lo recomiendan Greenberg <i>et al.<sup>30</sup> </i>y Fletcher <i>et al.,<sup>21</sup> </i>ya que el resultado mantuvo la sensibilidad, pero se mejor&oacute; la especificidad (67.58% a 79%), lo que permiti&oacute; obtener la medici&oacute;n global del rendimiento de la prueba. Sin embargo, con este punto de corte, uno de los seis aislamientos queda como negativo a la prueba.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El valor predictivo positivo se asoci&oacute; con el n&uacute;mero de aislamientos, por lo que no significa que la prueba sea mala, pues por definici&oacute;n una baja prevalencia de la enfermedad se refleja de igual manera en el valor predictivo positivo,<sup>31</sup> por lo que ser&iacute;a recomendable realizar un n&uacute;mero mayor de muestreos y aislamientos con la finalidad de encontrar el mejor rendimiento de la prueba. Ghadersohi <i>et al.<sup>25</sup> </i>realizaron un estudio similar, pero en lugar de aislamientos se compar&oacute; la prueba de ELISA con la t&eacute;cnica de PCR para detectar <i>M. bovis. </i>La prueba de ELISA fue altamente espec&iacute;fica, suficientemente sensible y la correlaci&oacute;n fue significativa entre ambas pruebas (Kappa = 0.44, P = 0.0456).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identificaci&oacute;n mediante PCR es altamente sensible, espec&iacute;fica y r&aacute;pida; sin embargo, se requiere de equipo y de personal especializado, adem&aacute;s de que el costo por muestra es m&aacute;s elevado,<sup>8</sup> por lo que las condiciones que presentan los laboratorios de diagn&oacute;sticos en el pa&iacute;s permiten instrumentar con mayor facilidad la prueba de ELISA.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en los resultados de la prueba de ELISA, &eacute;sta podr&iacute;a ser buena alternativa para el diagn&oacute;stico de mastitis por <i>M. bovis; </i>sin embargo, se requiere emprender m&aacute;s estudios con un mayor n&uacute;mero de muestras que permitan mayor cantidad de aislamientos, obteniendo con ello mejores indicadores de la especificidad y sensibilidad y de los valores predictivos. Con los resultados obtenidos, la sensibilidad y especificidad son aceptables; aun con el punto de corte propuesto en este estudio, uno de los seis aislamientos queda como falso negativo, y tomando en cuenta la capacidad de <i>M. bovis </i>para diseminarse en un periodo corto entre los animales del hato,<sup>1,2,7</sup> se recomienda tomar como sospechosas las muestras que queden entre los puntos de corte (100%&#150;60%), y tomar luego nuevas muestras de suero y leche para volver a analizarlas con la prueba de ELISA y aislamiento, con el fin de confirmar el diagn&oacute;stico. Finalmente, la prueba podr&iacute;a ser utilizada para la detecci&oacute;n de ganado bovino con mastitis asociada a <i>M. bovis, </i>particularmente en hatos con frecuencias elevadas (&gt; al 10%), con el fin de garantizar un valor predictivo razonablemente alto, o como en este caso, donde la frecuencia fue de 2.66%, podr&iacute;a utilizarse como prueba tamiz, sumado a que la t&eacute;cnica de ELISA es pr&aacute;ctica, r&aacute;pida y econ&oacute;mica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece a la MVZ Tatiana Ch&aacute;vez Heres su apoyo en la revisi&oacute;n de este trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Hirsh DC, Zee YC. Veterinary Microbiology. 2<sup>nd</sup> ed. USA (Massachusetts): Blackwell Science, 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166217&pid=S0301-5092200800020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Rebhun WC, Guard C, Richards MC. Diseases of Diary Cattle. Philadelphia: Lippincott Williams &amp; Wilkins, 1995.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166218&pid=S0301-5092200800020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Jones TC, Hunt RD. Veterinary Pathology of Domestic Animals. 6th ed. Philadelphia: Lea &amp; Febiger, 1997.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166219&pid=S0301-5092200800020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Kirk HJ. <i>Mycoplasma </i>mastitis in Dairy Cows, The Compedium 1994; 16:541&#150;546.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166220&pid=S0301-5092200800020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Gourlay RN, Thomas LH, Howar CJ. Pneumonia and arthritis in gnotobiotic calves following inoculation with <i>Mycoplasma agalactiae </i>subsp bovis. Vet Rec 1976; 98:506&#150;507.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166221&pid=S0301-5092200800020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. &Aacute;vila S, Dom&iacute;nguez J, Ruiz H, Valdivieso A, De la Pe&ntilde;a A. Evaluaci&oacute;n de un brote de mastitis por <i>Mycoplasma bovis </i>y otros agentes etiol&oacute;gicos en un hato productor de leche. Memorias del IX Congreso Nacional de Buiatr&iacute;a; 1983 Junio 21&#150;23; Puebla (Puebla) M&eacute;xico. M&eacute;xico (DF): Asociaci&oacute;n Mexicana de M&eacute;dicos Veterinarios Especialistas en Bovinos, AC,1983:118&#150;124.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166222&pid=S0301-5092200800020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Hern&aacute;ndez AL, Gonz&aacute;lez GA, Campos RV, Payan RM, Jaramillo ML, P&eacute;rez DM. Reporte de un caso de mastitis provocado por <i>Mycoplasma bovis </i>en un hato lechero. Memorias del X Congreso Nacional de Buiatr&iacute;a; 1984 Agosto  19&#150;22; Acapulco   (Guerrero)  M&eacute;xico. M&eacute;xico (DF): Asociaci&oacute;n Mexicana de M&eacute;dicos Veterinarios Especialistas en Bovinos, AC,1984:608&#150;609.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166223&pid=S0301-5092200800020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Barajas RJA, Riemann HP, Franti CE. Application of enzyme  linked immunosorbent assay for  epidemiological studies of diseases of livestock in the tropics of Mexico. Rev Sci Tech Off Epiz 1993;12:717&#150;732.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166224&pid=S0301-5092200800020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Castro MMJ. Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria en 3 antimicrobianos probados con cepas de <i>Mycoplasma</i>spp. proteol&iacute;ticas aisladas de mastitis bovina (tesis de licenciatura). M&eacute;xico (DF) M&eacute;xico: Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia (FMVZ) Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico,1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166225&pid=S0301-5092200800020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Bayoumi FA, Farver TB, Bushnell B, Oliveria M. Enzootic <i>Mycoplasma </i>mastitis in a large dairy during and eightyear period. Cornell Vet 1992; 82:29&#150;40.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166226&pid=S0301-5092200800020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Busnell RB. <i>Mycoplasma mastitis. </i>Vet Clin North Am (large Anim Pract) 1984; 6:301&#150;312.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166227&pid=S0301-5092200800020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Sacase K, Pf&uuml;tzner H, Hotzem H. Comparison of various diagnostic methods for the detection <i>of Mycoplasma bovis. </i>Rev Sci Tech Off Epiz 1993; 12:571&#150;580.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166228&pid=S0301-5092200800020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Grand D&#150;le, Calavas D, Brank M, Citti C, Rosentgarten R, Bezille P. Serological prevalence of <i>Mycoplasma bovis </i>infection in suckling beef cattle in France. 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An&aacute;lisis serol&oacute;gico de granjas porcinas tecnificadas ubicadas en tres estados de la Rep&uacute;blica Mexicana con respecto a <i>Mycoplasma hyopneumoniae </i>(tesis de licenciatura.). Estado de M&eacute;xico (M&eacute;xico): Universidad Aut&oacute;noma del Estado de M&eacute;xico, 1987.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166232&pid=S0301-5092200800020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Blanco O M. Diagn&oacute;stico de mastitis subcl&iacute;nica bovina. Memorias de III Congreso Nacional de Mastitis y Calidad de la Leche; 2001 Junio 21&#150;23; Le&oacute;n (Guanajuato) M&eacute;xico. 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Comparaci&oacute;n de tres t&eacute;cnicas para el diagn&oacute;stico de mastitis causada por <i>Mycoplasma bovis </i>(tesis de licenciatura). Estado de M&eacute;xico (M&eacute;xico): Facultad de Estudios Superiores Cuautitl&aacute;n (FES&#150;C) Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico,1987.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166236&pid=S0301-5092200800020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Fletcher HR,  Fletcher WS,  Wagner HE.  Epidemiolog&iacute;a cl&iacute;nica aspectos fundamentales. 2&ordf; ed. Espa&ntilde;a (Madrid): Masson&#150;Williams &amp; Wilkins, 1998</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166237&pid=S0301-5092200800020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. D&iacute;az RO. Eficacia del digluconato de clorhexidina al 0.5% utilizado como desinfectante despu&eacute;s del orde&ntilde;o considerando   la  prevalencia   de   mastitis   subcl&iacute;nica (tesis de licenciatura). M&eacute;xico (DF) M&eacute;xico: Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166238&pid=S0301-5092200800020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Jaramillo DC. Prevalencia de mastitis en un hato lechero y su relaci&oacute;n con las pr&aacute;cticas de orde&ntilde;o, manejo y medicina preventiva (tesis de licenciatura). M&eacute;xico (DF) M&eacute;xico: Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 1979.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166239&pid=S0301-5092200800020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Wilson  DJ,  Gonzalez RN,  Das HH.  Bovine mastitis pathogens in New York and Pennsylvania: Prevalence and effects on somatic cell count and milk production. J Dairy Sci 1997; 80: 2592&#150;2598.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166240&pid=S0301-5092200800020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Ghadersohi A, Fayazi Z, Hirst RG. Development of a monoclonal blocking ELISA for the detection of antibody to <i>Mycoplasma bovis </i>in dairy cattle and comparison to detection by PCR. Vet Immunol Immunopathol 2005; 104,183&#150;193.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166241&pid=S0301-5092200800020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Gonzalez RN, Sears PM, Merril RA, Hayes GL. Mastitis due to <i>Mycoplasma </i>in the state of New York during the period 1972&#150;1990.Cornell Vet 1992;82:9&#150;40</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166242&pid=S0301-5092200800020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Ghadersohi A, Hirs RG, Forbes&#150;Faulkener J, Coelen RJ. Preliminary studies on the prevalence of <i>Mycoplasma </i><i>bovis </i>mastitis in dairy in cattle in Australia. Vet Microbiol 1999; 65:85&#150;194.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166243&pid=S0301-5092200800020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Nicholas  RA, Ayling  RD.  <i>Mycoplasma bovis: </i>disease, diagnosis and control. Res Vet Sci 2003; 74: 105&#150;112.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166244&pid=S0301-5092200800020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Miranda MR. Patogenicidad de <i>Mycoplasmas </i>involucrados en la mastitis bovina (tesis de maestr&iacute;a). M&eacute;xico (DF)   M&eacute;xico:   Universidad  Nacional  Aut&oacute;noma  de M&eacute;xico, 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166245&pid=S0301-5092200800020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Greenberg  RS,  Flanders WD,  Eley JW,  Dariels SR, Boring JR. Epidemiolog&iacute;a m&eacute;dica. 3&ordf; ed. M&eacute;xico DF: Manual Moderno, 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166246&pid=S0301-5092200800020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Riegelman RK, Hirsch RP. C&oacute;mo estudiar un estudio y probar una prueba: Lectura cr&iacute;tica de literatura m&eacute;dica. 2 ed. Washington DC: OPS&#150;OMS,1992.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10166247&pid=S0301-5092200800020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NOTAS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><a name="1" id="1"></a>*</sup> Bomeli, Intervet, Suiza. <a href="#r1">regresar</a> </font></p>      ]]></body><back>
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