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<journal-title><![CDATA[Veterinaria México]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[La inoculación de Lactobacillus casei en ratones NIH induce una respuesta protectora contra la infección por Trypanosoma cruzi (cepa Ninoa)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The inoculation of Lactobacillus casei in NIH mice induces a protective response against Trypanosoma cruzi(Ninoa strain) infection]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Parasitología Veterinaria ]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Instituto Politécnico Nacional Escuela Nacional de Ciencias Biológicas Departamento de Parasitología]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de Lactobacillus casei administrado por vía oral o intraperitoneal a ratones NIH, en la infección experimental con Trypanosoma cruzi cepa Ninoa. Se distribuyeron al azar 23 ratones NIH en tres grupos, los cuales fueron tratados siete días antes de la infección con 12 x 10(4) Trypanosoma cruzi, cepa Ninoa. Los animales en el grupo testigo (n = 7) recibieron solución salina estéril por vía intraperitoneal (ip); los del grupo Lc-O (n = 8), Lactobacillus casei vía oral, y los del grupo Lc-IP (n = 8) recibieron L. casei vía ip. Los ratones tratados con lactobacilos mostraron un número reducido de parásitos sanguíneos después de la confrontación, en comparación con el grupo testigo (P < 0.01). A su vez, los ratones tratados con L. casei vía ip mostraron un número total significativamente menor de parásitos sanguíneos después de la confrontación, que el observado en el grupo tratado con L. casei vía oral (P < 0.05). Los resultados sugieren que el tratamiento de ratones, tanto por vía oral como ip con L. casei, induce respuesta protectora contra la infección experimental con Trypanosoma cruzi cepa Ninoa.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>La inoculaci&oacute;n de <i>Lactobacillus casei en </i>ratones NIH induce una respuesta protectora contra la infecci&oacute;n por</b><b><i> Trypanosoma cruzi </i>(cepa Ninoa)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>The inoculation of <i>Lactobacillus casei in </i>NIH mice induces a protective response against <i>Trypanosoma cruzi</i></b><b>(Ninoa strain) infection</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Carlos Ram&oacute;n Bautista Garfias*      Mar&iacute;a del Carmen Torres &Aacute;lvarez** Federico Mart&iacute;nez G&oacute;mez**</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>*Centro Nacional de Investigaci&oacute;n Disciplinaria en Parasitolog&iacute;a Veterinaria, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias, Km 11.5, Carretera Federal Cuernavaca&#150;Cuautla, 62550, Jiutepec, Morelos, M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>**Departamento de Parasitolog&iacute;a, Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas, Instituto Polit&eacute;cnico Nacional, Prolongaci&oacute;n de Carpio y Plan de Ayala, 11340, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 6 de noviembre de 2006     <br> Aceptado el 7 de enero de 2008.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The aim of the present study was to evaluate the effect of <i>Lactobacillus casei </i>administered orally or intraperitoneally to NIH mice, on the experimental infection with <i>Trypanosoma cruzi </i>Ninoa strain. Twenty three NIH mice were randomly distributed into three groups, which were treated seven days before the infection with 12 x 10<sup>4</sup> <i>Trypanosoma cruzi, </i>Ninoa strain. The animals in the control group (n = 7) received sterile saline solution by intraperitoneal (ip) route; those in the Lc&#150;O group (n = 8) were treated with <i>Lactobacillus casei </i>by oral route, and those in the Lc&#150;IP group (n = 8) received <i>L. casei </i>by ip. The mice treated with the lactobacilli showed a reduced number of blood parasites after challenge, as compared with those of the control group (P &lt; 0.01). Similarly, the mice treated with <i>L. casei </i>by ip route showed a significant minor total number of parasites after challenge, than those of the group treated with <i>L. casei </i>by oral route (P &lt; 0.05). The results suggest that the treatment of mice with <i>L. casei, </i>both orally and intraperitoneally, induces a protective response against the experimental infection with <i>Trypanosoma cruzi </i>Ninoa strain.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: <i>Trypanosoma cruzi, Lactobacillus casei, </i>Adjuvant, Resistance.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de <i>Lactobacillus casei </i>administrado por v&iacute;a oral o intraperitoneal a ratones NIH, en la infecci&oacute;n experimental con <i>Trypanosoma cruzi </i>cepa Ninoa. Se distribuyeron al azar 23 ratones NIH en tres grupos, los cuales fueron tratados siete d&iacute;as antes de la infecci&oacute;n con 12 x 10<sup>4</sup> <i>Trypanosoma cruzi, </i>cepa Ninoa. Los animales en el grupo testigo (n = 7) recibieron soluci&oacute;n salina est&eacute;ril por v&iacute;a intraperitoneal (ip); los del grupo Lc&#150;O (n = <i>8), Lactobacillus casei v&iacute;a </i>oral, y los del grupo Lc&#150;IP (n = 8) recibieron <i>L. casei v&iacute;a </i>ip. Los ratones tratados con lactobacilos mostraron un n&uacute;mero reducido de par&aacute;sitos sangu&iacute;neos despu&eacute;s de la confrontaci&oacute;n, en comparaci&oacute;n con el grupo testigo (P &lt; 0.01). A su vez, los ratones tratados con <i>L. casei v&iacute;a </i>ip mostraron un n&uacute;mero total significativamente menor de par&aacute;sitos sangu&iacute;neos despu&eacute;s de la confrontaci&oacute;n, que el observado en el grupo tratado con <i>L. casei v&iacute;a </i>oral (P &lt; 0.05). Los resultados sugieren que el tratamiento de ratones, tanto por v&iacute;a oral como ip con <i>L. casei, </i>induce respuesta protectora contra la infecci&oacute;n experimental con <i>Trypanosoma cruzi </i>cepa Ninoa.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: <i>Trypanosoma cruzi, Lactobacillus casei, </i>Adyuvante, Resistencia.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Trypanosoma cruzi </i>es un protozoario par&aacute;sito que produce la infecci&oacute;n conocida como enfermedad de Chagas o tripanosomiasis americana, que es transmitida naturalmente por insectos vectores triatomineos hemat&oacute;fagos a cerca de 150 especies de mam&iacute;feros dom&eacute;sticos y silvestres. Esta enfermedad es una zoonosis que se encuentra presente en 18 pa&iacute;ses del continente americano en dos zonas ecol&oacute;gicas diferentes: la regi&oacute;n del Cono Sur y la regi&oacute;n de Centroam&eacute;rica y M&eacute;xico.<sup>1</sup> Entre las especies de animales dom&eacute;sticos que infecta <i>T. cruzi </i>se encuentran: bovinos,<sup>2</sup> cabras,<sup>3</sup> cerdos<sup>4</sup> y perros.<sup>4,5</sup> En 2002, la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud inform&oacute; que alrededor de 17.4 millones de personas estaban afectadas por la enfermedad de Chagas.<sup>6</sup> En 2001 se estim&oacute; que 156 488 personas en M&eacute;xico estaban infectadas con <i>T. cruzi.<sup>7</sup> </i>En 2003 se determin&oacute; una prevalencia de la infecci&oacute;n de 13 millones, de 3 a 3.3 millones de casos sintom&aacute;ticos e incidencia anual de 200 mil casos en 15 pa&iacute;ses.<sup>1</sup> Para 2005 se estim&oacute; que s&oacute;lo en Guanajuato estaban en riesgo de infectarse 3 755 380 individuos, con una incidencia anual de 3 500 casos nuevos.<sup>8</sup> Con base en lo anterior y en un an&aacute;lisis de informaci&oacute;n publicado en los &uacute;ltimos 76 a&ntilde;os, se considera que en M&eacute;xico la enfermedad de Chagas es de los males parasitarios m&aacute;s importantes.<sup>9</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tripanosomiasis es un problema de salud prioritario entre otras razones debido a: <i>a) </i>la necesidad de vigilancia y control en &aacute;reas donde los vectores silvestres pueden invadir las viviendas; <i>b) </i>los costos m&eacute;dicos y sociales del cuidado de la gente infectada, debido a la falta de una terapia bien tolerada, especialmente contra la forma cr&oacute;nica de la enfermedad.<sup>1 </sup>Asimismo, el tratamiento se debe administrar a los pacientes cuando la enfermedad se encuentra en la fase aguda, lo cual es muy dif&iacute;cil de detectar, no hay tratamiento preventivo, y hasta el momento no existe vacuna disponible,<sup>10</sup> por lo que es necesario buscar alternativas para su control.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diversos estudios han demostrado que es posible inducir resistencia no espec&iacute;fica contra la infecci&oacute;n por <i>Trichinella spiralis </i>y <i>Babesia microti </i>en ratones,<sup>11,12 </sup>y contra la infecci&oacute;n por tres especies de <i>Eimeria </i>en pollos de engorda,<sup>13</sup> por medio de la administraci&oacute;n de la bacteria <i>Lactobacillus casei. </i>En este trabajo se evalu&oacute; el efecto de dicha bacteria sobre la infecci&oacute;n por <i>Trypanosoma cruzi </i>en ratones NIH.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Animales experimentales</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el estudio se usaron ratones NIH hembras, de dos y tres meses de edad, con peso promedio de 20 g, a los que se les practic&oacute; un examen coproparasitosc&oacute;pico para verificar que no estuvieran parasitados. Luego, bajo condiciones adecuadas de bioterio, se alojaron en jaulas de acr&iacute;lico con aserr&iacute;n esterilizado y se les dio alimento comercial y agua <i>ad libitum.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Par&aacute;sito</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; la cepa Ninoa de <i>Trypanosoma cruzi </i>que se ha mantenido en criopreservaci&oacute;n en nitr&oacute;geno l&iacute;quido en el Departamento de Parasitolog&iacute;a de la Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas, del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional. Dicha cepa se reactiva regularmente por pases seriados en ratones NIH.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Microorganismos</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; la cepa ATCC7469 de <i>Lactobacillus casei </i>cultivada en medio MRS a 37&deg;C durante 18 h. Los microorganismos fueron cosechados por centrifugaci&oacute;n a 5 000 g por 10 min, se lavaron varias veces con soluci&oacute;n salina est&eacute;ril,<sup>11</sup> luego se determin&oacute; la cuenta viable y finalmente se ajust&oacute; a la concentraci&oacute;n deseada (ufc).<sup>11</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Dise&ntilde;o experimental</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Veintitr&eacute;s ratones NIH fueron distribuidos al azar en tres grupos: los del grupo I (n = 7) fungieron como testigo y recibieron soluci&oacute;n salina est&eacute;ril por v&iacute;a intraperitoneal (ip) el d&iacute;a 0. Los del grupo II (n = 8) fueron inoculados el d&iacute;a 0 por v&iacute;a ip con 1 x 10<sup>9</sup> ufc de <i>Lactobacillus casei, </i>cepa ATCC&#150;7469. A los animales del grupo III (n = 8) se les administr&oacute; la misma dosis de <i>L. casei, </i>pero por v&iacute;a oral, el d&iacute;a cero. Siete d&iacute;as despu&eacute;s del tratamiento, cada uno de los ratones de los tres grupos fue inoculado por v&iacute;a ip con 12 x 10<sup>4 </sup>tripomastigotes sangu&iacute;neos de <i>T. cruzi </i>cepa Ninoa, que se obtuvieron de animales previamente infectados y luego se cuantificaron (en c&aacute;mara de Neubauer) y se ajustaron con soluci&oacute;n salina est&eacute;ril a la concentraci&oacute;n indicada. A partir del d&iacute;a tres posinfecci&oacute;n (pi) se evalu&oacute; la parasitemia (n&uacute;mero de par&aacute;sitos/5 &micro;L de sangre) cada tercer d&iacute;a, por medio de la cuantificaci&oacute;n de par&aacute;sitos sangu&iacute;neos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Determinaci&oacute;n de tripomastigotes sangu&iacute;neos</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con Brener,<sup>14</sup> se recolectaron 5 mm<sup>3</sup> de sangre fresca de la cola de cada rat&oacute;n, que fueron comprimidos entre un portaobjetos y un cubreobjetos para formar una sola capa de c&eacute;lulas sangu&iacute;neas. El n&uacute;mero de tripanosomas en los 5 mm<sup>3</sup> (&micro;L) de sangre fue determinado contando los par&aacute;sitos observados en 50 campos en el microscopio &oacute;ptico y luego multiplicando ese n&uacute;mero por 70.<sup>14</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se practic&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (bloques al azar) con los datos obtenidos, y cuando hubo diferencias, &eacute;stas fueron sometidas a la prueba de Tukey.<sup>15</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados indicaron que el tratamiento de ratones con <i>Lactobacillus casei, </i>tanto oral como intraperitoneal, redujo el n&uacute;mero de par&aacute;sitos sangu&iacute;neos, en comparaci&oacute;n con el grupo testigo. Desde el d&iacute;a seis hasta el d&iacute;a 28 posconfrontaci&oacute;n, se observ&oacute; diferencia significativa (P &lt; 0.01) en el promedio de tripomastigotes sangu&iacute;neos en 5 &micro;L de sangre entre los ratones del grupo testigo y los de los grupos tratados con <i>Lactobacillus casei </i>(<a href="#f1">Figura 1</a>). El m&aacute;ximo n&uacute;mero promedio de par&aacute;sitos (tripomastigotes en 5 &micro;L de sangre) para los tres grupos se present&oacute; los d&iacute;as 18 (30 070 + EE 7 206), 20 (2 966 &plusmn; EE 501) y 24 (6 116 &plusmn; EE 3 800), para los grupos testigo, <i>L. casei</i>: intraperitoneal y <i>L. casei </i>oral, respectivamente (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n2/a3f1.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando se compar&oacute; el promedio total de par&aacute;sitos sangu&iacute;neos durante el periodo de parasitemia comprendido entre los d&iacute;as 10 y 28 posconfrontaci&oacute;n, entre los grupos Lc&#150;O (promedio: 3 820 + EE 1 351) y Lc&#150;IP (promedio: 1 842.6 + EE 651.4) se observ&oacute; diferencia significativa (P &lt; 0.05) (<a href="#f2">Figura 2</a>); este resultado indica que el tratamiento intraperitoneal con <i>L. casei </i>es m&aacute;s efectivo que el oral para generar resistencia contra <i>Trypanosoma cruzi </i>cepa Ninoa.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n2/a3f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha se&ntilde;alado que la respuesta inmunitaria innata del portador es esencial para el control de la infecci&oacute;n aguda por <i>Trypanosoma cruzi</i><sup>16</sup> y que es dependiente de los receptores tipo Toll (TLR, por sus siglas en ingl&eacute;s). Cabe se&ntilde;alar que los TLR son mol&eacute;culas fundamentales para la activaci&oacute;n de los mecanismos inmunitarios del portador, no s&oacute;lo de la respuesta inmunitaria innata sino tambi&eacute;n de la respuesta inmunitaria adquirida.<sup>17 </sup>Estudios realizados en ratones indican que la administraci&oacute;n oral de <i>Lactobacillus casei </i>estimula el sistema inmunitario a trav&eacute;s de la inmunidad innata, que involucra la activaci&oacute;n de los receptores tipo Toll.<sup>18</sup> Las c&eacute;lulas NK son importantes para la respuesta inmunitaria innata, pues desempe&ntilde;an un papel protector en la fase temprana de la infecci&oacute;n por <i>T. cruzi </i>al producir interfer&oacute;n gamma, citocina que presumiblemente controla la replicaci&oacute;n temprana del par&aacute;sito en los macr&oacute;fagos.<sup>19</sup> En este contexto, en estudios previos se ha demostrado que la inoculaci&oacute;n ip de <i>L. casei en </i>ratones antes de la infecci&oacute;n con <i>Trichinella spiralis </i>induce la producci&oacute;n de interfer&oacute;n gamma.<sup>20</sup> Con base en lo anterior, los resultados obtenidos aqu&iacute; sugieren que la protecci&oacute;n observada contra <i>T. cruzi </i>se debi&oacute; a la activaci&oacute;n de la respuesta inmunitaria innata por <i>L. casei </i>y son apoyados por otros estudios en los que se demostr&oacute; que la administraci&oacute;n de <i>L. casei </i>en pollos de engorda y en ratones NIH antes de la confrontaci&oacute;n con protozoarios intracelulares, genera respuesta protectora contra <i>Eimeria </i>spp<sup>13</sup> y <i>Babesia microti,<sup>12</sup> </i>respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La observaci&oacute;n de que la administraci&oacute;n de los lactobacilos por v&iacute;a intraperitoneal gener&oacute; mejor respuesta protectora que cuando fueron administrados por v&iacute;a oral, quiz&aacute; se deba a que el tejido linfoide asociado con el intestino (GALT, por sus siglas en ingl&eacute;s) fue directamente estimulado por las bacterias del in&oacute;culo intraperitoneal, mientras que los lactobacilos del in&oacute;culo oral estimularon al GALT de manera indirecta, o sea, la estimulaci&oacute;n se realiz&oacute; despu&eacute;s de que las bacterias que colonizaban la mucosa intestinal murieron y luego fueron procesadas por las c&eacute;lulas inmunocompetentes del GALT.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con los resultados del presente estudio, se concluye que la administraci&oacute;n de <i>Lactobacillus casei </i>por v&iacute;a oral o intraperitoneal a ratones NIH induce respuesta inmunitaria inespec&iacute;fica protectora contra la infecci&oacute;n experimental por <i>Trypanosoma cruzi, </i>cepa Ninoa. Asimismo, se sugiere que se lleven a cabo m&aacute;s estudios para esclarecer los mecanismos involucrados en la generaci&oacute;n de la respuesta protectora.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Morel CM, Lazdins J. Chagas disease. Nat Rev Microbiol 2003;1:14&#150;15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141709&pid=S0301-5092200800020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Guzm&aacute;n&#150;Bracho C. Enfermedad de Chagas en Progreso, Jiutepec, Mor. I. Encuesta seroepidemiol&oacute;gica (tesis de especialidad). M&eacute;xico DF: Instituto de Salubridad y Enfermedades Tropicales, Secretar&iacute;a de Salud, 1985.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141710&pid=S0301-5092200800020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Rozas M, Botto&#150;Mahan C, Coronado X, Ortiz S, Cattan PE, Solari A. Short report: <i>Trypanosoma cruzi </i>infection in wild mammals from a chagasic area of Chile. Am J Trop Med Hyg 2005;73:517&#150;519.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141711&pid=S0301-5092200800020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Salazar&#150;Schettino PM, Bucio MI, Cabrera M, Bautista J. First case of natural infection in pigs. Review of <i>Trypanosoma cruzi </i>reservoirs in Mexico. Mem Inst Oswaldo Cruz 1997;92:499&#150;502.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141712&pid=S0301-5092200800020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Beard CB, Pye G, Steurer FJ, Rodriguez R, Campman R, Peterson AT <i>et al. </i>Chagas disease in a domestic transmission cycle in southern Texas, USA. Emerg Infect Dis 2003;9:103&#150;105.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141713&pid=S0301-5092200800020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. World Health Organization. Control of Chagas disease: second report of the WHO expert committee. UNDP/ WHO. Geneva: The Organization, 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141714&pid=S0301-5092200800020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Guzman&#150;Bracho C. Epidemiology of Chagas disease in Mexico: an update. Trends Parasitol 2001;17:372&#150;376.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141715&pid=S0301-5092200800020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Lopez&#150;Cardenas J, Gonzalez FE, Salazar PM, Gallaga JC, Ramirez E, Martinez J <i>et al. </i>Fine&#150;scale predictions of distributions of Chagas disease vectors in the state of Guanajuato, Mexico. J Med Entomol 2005;42:1068&#150;1081.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141716&pid=S0301-5092200800020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Cruz&#150;Reyes A, Pickering&#150;Lopez JA. Chagas disease in Mexico: an analysis of geographical distribution during the past 76 years &#150; A review. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 2006;101:345&#150;354.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141717&pid=S0301-5092200800020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Anonimo.   Department of Health and Human  Services. Chagas disease. Centers for Disease Control and Prevention. Division of Parasitic Diseases. Facts sheet. 2004:1&#150;3.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141718&pid=S0301-5092200800020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Bautista&#150;Garfias   CR,   Ixta&#150;Rodriguez   O,   Martinez&#150;Gomez F, Lopez MG, Aguilar&#150;Figueroa BR. Effect of viable or dead <i>Lactobacillus casei </i>organisms administered orally to mice on resistance against <i>Trichinella spiralis </i>infection. Parasite 2001; 8: S226&#150;228.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141719&pid=S0301-5092200800020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Bautista&#150;Garfias CR, Gomez MB, Aguilar BR, Ixta O, Martinez F, Mosqueda J. The treatment of mice with <i>Lactobacillus casei </i>induces protection against <i>Babesia microti </i>infection. Parasitol Res 2005;97:472&#150;477.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141720&pid=S0301-5092200800020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Bautista&#150;Garfias CR, Arriola MT, Trejo L, Ixta O, Rojas EE. Comparative effect between <i>Lactobacillus casei </i>and a commercial vaccine against coccidiosis in broilers. T&eacute;c Pecu M&eacute;x 2003;41:317&#150;327.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141721&pid=S0301-5092200800020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Brener Z. Therapeutic activity and criterion of cure on mice experimentally infected with <i>Trypanosoma cruzi. </i>Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1962;4:389&#150;396.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141722&pid=S0301-5092200800020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Olivares S&aacute;enz E. Paquete de dise&ntilde;os experimentales. Mar&iacute;n (NL) M&eacute;xico: Facultad de Agronom&iacute;a. Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n, 1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141723&pid=S0301-5092200800020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Oliveira AC, Peixoto JR, de Arruda LB, Campos MA, Gazzinelli RT, Golenbock DT <i>et al. </i>Expression of functional TLR4 confers proinflammatory responsiveness to   <i>Trypanosoma  cruzi  </i>glycoinositolphospholipids  and higher resistance to infection with <i>T. cruzi. </i>J Immunol 2004;173:5688&#150;5696.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141724&pid=S0301-5092200800020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Bautista Garfias CR, Mosqueda JJ. Papel de los receptores tipo Toll y su implicaci&oacute;n en Medicina Veterinaria. Vet M&eacute;x 2005;36:453&#150;468.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141725&pid=S0301-5092200800020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Maldonado Galdeano C, Perdig&oacute;n G. The probiotic bacterium <i>Lactobacillus casei </i>induces activation of the gut mucosal immune system through innate immunity. Clin Vaccine Immunol 2006;13:219&#150;226.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141726&pid=S0301-5092200800020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Cardillo F, Voltarelli JC, Reed SG, Silva JS. Regulation of <i>Trypanosoma cruzi </i>infection in mice by gamma interferon and interleukin 10: role of NK cells. Infect Immun 1996;64:128&#150;134.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141727&pid=S0301-5092200800020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20, Bautista&#150;Garfias CR, Ixta O, Ordu&ntilde;a M, Martinez F, Aguilar B, Cortes A. Enhancement of resistance in mice treated with <i>Lactobacillus casei: </i>effect on <i>Trichinella spiralis </i>infection. Vet Parasitol 1999;80:251&#150;260.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10141728&pid=S0301-5092200800020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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