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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Bioenergética de juveniles de langosta de quelas rojas, Cherax quadricarinatus, alimentados con dos dietas artificiales]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The metabolic response of juvenile Australian red claw lobster, Cherax quadricarinatus, fed two artificial diets (Rangen with 35% protein and Cherax1 with 32% protein of vegetable substrate), acclimated to the preferred temperature of 28 ° C, was evaluated in a dynamic respirometer, measuring oxygen consumption and ammonia excretion during fasting and feeding. Survival and growth were also determined. The energy consumed by juveniles in the food (C) was (mean ± s): 3614.1 ± 591.3 and 1967 ± 493.8 (J day-1 g-1) with Cherax1 and Rangen respectively. Energy eliminated in the feces (F) equivalent to 42.6 Joules by organisms that were fed Cherax1 represented a low energy loss in the percentage distribution, with a higher metabolic efficiency compared to the diet Rangen. The highest percentage of protein supplied through the food was channeled to growth, for all treatments, in which lobsters used a mixture of lipid-protein as the main energy substrate to meet their metabolic requirements. There was no difference in survival, but the juveniles fed Cherax1 had a higher specific growth rate and a 2.2 times higher weight gain than those fed with Rangen. The results show that the experimental diet Cherax1, formulated with plant products, can be considered as a high quality, efficient feed for this species, and that it is a good potential replacement for various commercial diets.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font size="4" face="verdana"><b>Bioenerg&eacute;tica de juveniles de langosta de quelas rojas,<i> Cherax quadricarinatus,</i> alimentados con dos dietas artificiales</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font size="3" face="verdana"><b>Bioenergetics of juvenile red claw lobster, <i>Cherax quadricarinatus,</i> fed two artificial diets</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Eugenio D&iacute;az&#45;Iglesias,<sup>1</sup> V&iacute;ctor Meza Castillo,<sup>2</sup> Marysabel B&aacute;ez&#45;Hidalgo,<sup>1</sup> Ana Denise Re&#45;Araujo<sup>3</sup> y Antonio Silva&#45;Loera<sup>2</sup></b><sup></sup></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Departamento de Acuicultura, Centro de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y de Educaci&oacute;n Superior de Ensenada (CICESE), Carretera Ensenada&#45;Tijuana, No. 3918, Baja California, C.P. 22860. M&eacute;xico. </i> E&#45;mail: <a href="mailto:ediaz@cicese.mx">ediaz@cicese.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2 </sup>Facultad de Ciencias Marinas, Universidad Aut&oacute;noma de Baja California, Km 103, Carretera Tijuana&#45;Ensenada, Ensenada, Baja California, C.P. 22860, M&eacute;xico.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Departamento de Biotecnolog&iacute;a Marina, CICESE, B.C. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 17 de octubre de 2011.     <br> Aceptado: 15 de julio de 2012.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la respuesta metab&oacute;lica de juveniles de langosta australiana de quelas rojas, <i>Cherax quadricarinatus,</i> alimentados con dos dietas artificiales (Rangen con 35% de prote&iacute;na y Cherax1 con 32% de prote&iacute;na de sustrato vegetal), aclimatados a la temperatura preferida de 28 &deg;C en un respir&oacute;metro din&aacute;mico, midiendo el consumo de ox&iacute;geno y la excreci&oacute;n amoniacal durante el ayuno y la alimentaci&oacute;n, y determin&aacute;ndose adem&aacute;s la mortalidad y el crecimiento. La energ&iacute;a consumida por los juveniles en el alimento (C) fue de (3614.1 &#177; 591.3 y de 1967 &#177; 493.8 (J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup>) con Cherax1 y Rangen respectivamente. La energ&iacute;a eliminada en las heces (F) en los organismos que se alimentaron con Cherax1, equivalente a 42.6 Joules, represent&oacute; una baja p&eacute;rdida de energ&iacute;a en la distribuci&oacute;n porcentual, presentando una mayor eficiencia metab&oacute;lica en comparaci&oacute;n con la dieta Rangen. El mayor porcentaje de la prote&iacute;na suministrada a trav&eacute;s del alimento ingerido fue canalizado hacia el crecimiento, ya que en los diferentes tratamientos los organismos utilizaron una mezcla de l&iacute;pidos&#45;prote&iacute;nas como el principal sustrato energ&eacute;tico para cubrir sus requerimientos metab&oacute;licos. No se encontraron diferencias en la mortalidad, pero los juveniles alimentados con Cherax1 presentaron un mejor &iacute;ndice de rendimiento, una mayor tasa de crecimiento espec&iacute;fica y un incremento en peso 2.2 veces mayor. Los resultados obtenidos demuestran que la dieta experimental Cherax1 puede ser considerada como un alimento de buena calidad y eficiencia para esta especie, por lo que puede sustituir diversas dietas comerciales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Balance energ&eacute;tico, campo de crecimiento, <i>Cherax quadricarinatus,</i> dietas artificiales, respuesta metab&oacute;lica.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The metabolic response of juvenile Australian red claw lobster, <i>Cherax quadricarinatus,</i> fed two artificial diets (Rangen with 35% protein and Cherax1 with 32% protein of vegetable substrate), acclimated to the preferred temperature of 28 &deg; C, was evaluated in a dynamic respirometer, measuring oxygen consumption and ammonia excretion during fasting and feeding. Survival and growth were also determined. The energy consumed by juveniles in the food (C) was (mean &#177; s): 3614.1 &#177; 591.3 and 1967 &#177; 493.8 (J day<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup>) with Cherax1 and Rangen respectively. Energy eliminated in the feces (F) equivalent to 42.6 Joules by organisms that were fed Cherax1 represented a low energy loss in the percentage distribution, with a higher metabolic efficiency compared to the diet Rangen. The highest percentage of protein supplied through the food was channeled to growth, for all treatments, in which lobsters used a mixture of lipid&#45;protein as the main energy substrate to meet their metabolic requirements. There was no difference in survival, but the juveniles fed Cherax1 had a higher specific growth rate and a 2.2 times higher weight gain than those fed with Rangen. The results show that the experimental diet Cherax1, formulated with plant products, can be considered as a high quality, efficient feed for this species, and that it is a good potential replacement for various commercial diets.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Artificial diets, <i>Cherax quadricarinatus,</i> energy budget, metabolic response, scope for growth.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la acuicultura los estudios sobre la nutrici&oacute;n de organismos acu&aacute;ticos son de gran importancia para el &eacute;xito de la producci&oacute;n animal, lo que ha orientado a dise&ntilde;ar alimentos formulados con base en el conocimiento nutricional a nivel bioqu&iacute;mico y fisiol&oacute;gico de las especies a producir (Vega&#45;Villasante <i>et al.,</i> 1995; Villareal, 2002). Sin embargo, dietas especializadas para la langosta australiana de quelas rojas <i>(Cherax quadricarinatus</i> Von Martens, 1868), a&uacute;n no han sido desarrolladas (Garza de Yta <i>et al.,</i> 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las langostas australianas de agua dulce pertenecen a la Familia Parastacidae y se distribuyen &uacute;nicamente en la regi&oacute;n tropical del noreste de Australia (Jones, 1990). <i>Cherax quadricarinatus,</i> presenta un excelente potencial para el cultivo comercial y mercado internacional, ya que dentro de sus principales caracter&iacute;sticas se incluyen una tasa de crecimiento r&aacute;pido, desoves m&uacute;ltiples anuales, comportamiento poco agresivo, tolerancia a condiciones ambientales sub&oacute;ptimas y gran potencial para alcanzar altos precios de mercado (Medley <i>et al.,</i> 1994; Gu <i>et al.,</i> 1995; Meade &amp; Watts, 1995; Rouse, 1995). Debido a sus caracter&iacute;sticas biol&oacute;gicas y su importancia en los cultivos, esta especie ha sido introducida en pa&iacute;ses del sudeste de Asia, &Aacute;frica, Norteam&eacute;rica y el Caribe. En M&eacute;xico, existen las condiciones ambientales adecuadas para el cultivo de la especie, por lo que se ha contemplado su introducci&oacute;n como un buen recurso acu&iacute;cola con base en su r&aacute;pido crecimiento y su capacidad de tolerancia a condiciones adversas (Arredondo&#45;Figueroa <i>et al.,</i> 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la fecha, la producci&oacute;n de <i>Cherax</i> en M&eacute;xico ha sido limitada, obteni&eacute;ndose un promedio de 15 toneladas en el a&ntilde;o 2000 (Cort&eacute;s <i>et al.,</i> 2002). La investigaci&oacute;n realizada desde 1980 sugiere la necesidad de incluir en la dieta ciertos micronutrientes, en particular el colesterol y ciertos &aacute;cidos grasos que los crust&aacute;ceos no tienen, o que poseen una capacidad limitada para sintetizarlos; adem&aacute;s son de gran importancia las proporciones de prote&iacute;nas, l&iacute;pidos, carbohidratos y algunas sustancias esenciales como vitaminas y minerales (Lee &amp; Wickins, 1992; Villareal, 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El colesterol, es la base en la s&iacute;ntesis de varios esteroides vitales de los organismos; dicho compuesto no puede ser sintetizado por <i>C. quadricarinatus</i> por lo que debe incluirse en la dieta en una concentraci&oacute;n no mayor de 0.5% (Kondos, 1990). A pesar de estas investigaciones el conocimiento en la langosta de que&#45;las rojas enfocadas al estudio de su fisiolog&iacute;a y nutrici&oacute;n, as&iacute; como los procesos de alimentaci&oacute;n son todav&iacute;a escasos, lo cual ha limitado el desarrollo del cultivo de esta especie a nivel comercial (Anson &amp; Rouse, 1996).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La temperatura preferida u &oacute;ptima representa el intervalo de temperatura en donde los organismos pasan m&aacute;s tiempo y con la cual obtienen su mayor crecimiento, logrando que la mayor parte de las funciones fisiol&oacute;gicas se realicen con la mejor eficiencia posible; dicho intervalo puede ser estrecho &oacute; amplio dependiendo de la especie y puede ser afectado por las condiciones ambientales y factores antropog&eacute;nicos (Lagerspetz, 1974; Reynolds &amp; Casterlin, 1979).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la distribuci&oacute;n de energ&iacute;a que un organismo utiliza para cubrir sus requerimientos energ&eacute;ticos, se puede realizar un balance energ&eacute;tico. Dicho balance es necesario para conocer la eficiencia metab&oacute;lica de los organismos, las necesidades energ&eacute;ticas, la asimilaci&oacute;n y la transferencia de energ&iacute;a obtenida en el alimento consumido (Lucas, 1996). La ecuaci&oacute;n de balance energ&eacute;tico que puede utilizarse para describir el flujo de energ&iacute;a de los organismos fue propuesta por Klekowski y Duncan(1975). Nelson <i>et al.</i> (1985), incorporaron a la ecuaci&oacute;n de balance energ&eacute;tico, el costo energ&eacute;tico asociado con la digesti&oacute;n y utilizaci&oacute;n del alimento, que proporciona un incremento en la tasa metab&oacute;lica debido a los procesos de ingesti&oacute;n, asimilaci&oacute;n, transporte, tratamiento bioqu&iacute;mico e incorporaci&oacute;n del alimento; factor conocido como incremento de calor aparente (ICA).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se pronostica, que <i>Cherax quadricarinatus</i> canalizar&aacute; la energ&iacute;a contenida en la dieta experimental Cherax1 hacia el crecimiento, con mayor eficiencia que la dieta comercial camaroni&#45;na Rangen&reg; con 45% de prote&iacute;na animal. Esto se fundamenta en el hecho de buscar un contraste marcado en la respuesta metab&oacute;lica, al comparar una dieta comercial dise&ntilde;ada para camar&oacute;n con componentes de origen animal, y una dieta pr&aacute;ctica y econ&oacute;mica elaborada en el laboratorio basada fundamentalmente en elementos de origen vegetal.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los organismos juveniles de <i>Cherax quadricarinatus</i> fueron obtenidos de una granja de cultivo comercial de langosta de agua dulce "El Jicarero", ubicada en Cuernavaca, Morelos, y fueron transportados al laboratorio en cajas de polietileno.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los organismos se pusieron en mantenimiento en estanques ovalados de 2x10<sup>3</sup> L al exterior, a una temperatura fija de 28 &deg;C &#177; 1&ordm;C, correspondiente a la temperatura preferida para esta especie (Amador Cano, 2001) Dicha temperatura se mantuvo usando calentadores sumergibles de 1000 Watts conectados a termostatos, con sistema de recirculaci&oacute;n de agua dulce, provistos con aireaci&oacute;n constante y conectada a un filtro biol&oacute;gico. A los organismos se les proporcion&oacute; alimento comercial Rangen 35% dos veces al d&iacute;a y a una proporci&oacute;n del 10% del peso h&uacute;medo hasta que alcanzaron un peso de 1.5 &#45; 3.0 g.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De manera aleatoria se seleccionaron 80 juveniles de <i>Che&#45;rax,</i> que se marcaron y se distribuyeron de forma individual en cubetas de pl&aacute;stico las cuales fueron colocadas en cuatro estanques circulares de 500 L, poniendo 20 organismos en cada estanque. Los tratamientos consistieron en dos dietas con 32% y 45% de contenido de prote&iacute;na y un contenido similar de energ&iacute;a (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/html/a5t1.html" target="_blank">Tabla 1</a>). Cada una de las dietas se suministr&oacute; a dos lotes de organismos, predeterminados aleatoriamente; recibiendo el alimento por un periodo de 30 d&iacute;as, tiempo en el cual los organismos de ambos estanques se mantuvieron con aireaci&oacute;n, un flujo constante de agua dulce y un r&eacute;gimen de temperatura fija de 28 &deg;C &#177; 1&ordm;C.Duran&#45;te los experimentos, la temperatura se mantuvo pr&aacute;cticamente constante con variaciones de 0.5 &deg;C, mediante calentadores sumergibles de 1000 Watts, que se conectan a dispositivos reguladores colocados en los estanques circulares de 500 L, provistos de un term&oacute;metro digital.</font></p> 	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">Bas&aacute;ndose en lo se&ntilde;alado por Jones y Ruscoe (1996), en relaci&oacute;n al h&aacute;bito alimentario de origen vegetal que <i>Cherax</i> presenta en su ambiente natural, en el presente estudio se elabor&oacute; la dieta compuesta <i>Cherax</i>1, obteniendo el an&aacute;lisis bromatol&oacute;gico con ayuda del paquete MIXIT&#45;Win 95/98/NT/2000 &copy; 1995&#45;2001 Agricultural Software Consultans, Inc.; dicha dieta se elabor&oacute; usando un tratamiento que incluy&oacute; secado, extrusi&oacute;n y peletizaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tanto los ingredientes, como la dieta elaborada <i>Cherax</i> 1, fueron analizados con objeto de conocer su composici&oacute;n proximal y el contenido cal&oacute;rico, de acuerdo a los m&eacute;todos descritos m&aacute;s adelante. Los insumos disponibles fueron: 31.5% de harina de trigo, 11.6% de harina de pescado, 28.8% de pasta de soya, 7.3% de gluten de trigo, 1.7% de lecitina l&iacute;quida, 1.7% de aceite de soya, 0.35% de vitamina C, 0.25% de mezcla vitam&iacute;nica liquida Omniplus miscelado, 2.8% de alga <i>Spirulina</i> y 14% de zanahoria <i>(Daucus caarota</i> Linneo) como sustrato vegetal. Para determinar el alimento consumido, &eacute;ste fue proporcionado diariamente a los organismos durante 30 d&iacute;as, el alimento no consumido fue retirado 2 h despu&eacute;s de haberse suministrado por medio de un sif&oacute;n con una malla de 80 &#956;m colocado en el extremo distal del estanque. Dicho alimento remanente se coloc&oacute; en una estufa a 60 &deg;C para obtener el peso seco. De esta manera el alimento consumido por los organismos se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo gravim&eacute;trico considerando la diferencia entre el alimento suministrado y el remanente. El contenido cal&oacute;rico de las dietas artificiales se determin&oacute; empleando una bomba calorim&eacute;trica PARR.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las heces se recolectaron diariamente de forma individual despu&eacute;s de transcurridas 8 horas de haber recogido el alimento remanente y al d&iacute;a siguiente, antes de dar alimento a los organismos, para lo cual se utiliz&oacute; la misma t&eacute;cnica empleada en la recolecci&oacute;n del alimento remanente. Se obtuvo el peso seco de las heces y se colocaron en un refrigerador para su conservaci&oacute;n hasta realizar la determinaci&oacute;n del contenido cal&oacute;rico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las exuvias, producto de la ecdisis, fueron colectados durante todo el periodo experimental y pesadas para obtener su peso h&uacute;medo; adem&aacute;s, se etiquetaron y colocaron en una estufa a 60 &deg;C, durante 24 horas para obtener su peso seco. Tambi&eacute;n se mantuvieron en condiciones id&oacute;neas para su posterior an&aacute;lisis calorim&eacute;trico.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al t&eacute;rmino del periodo experimental se calcul&oacute; el alimento ingerido y la producci&oacute;n de heces durante los 30 d&iacute;as, analizando la respuesta metab&oacute;lica. Un d&iacute;a antes de comenzar con las mediciones, los organismos fueron colocados en el sistema respirom&eacute;trico permitiendo as&iacute; su aclimataci&oacute;n al mismo. Cada organismo fue colocado en un matraz de 1 L y conectado a un sistema semiabierto respirom&eacute;trico como el descrito por D&iacute;az&#45;Herrera (1989), para medir tanto el consumo de oxigeno de rutina como la excreci&oacute;n amoniacal, en organismos mantenidos en ayuno durante 48 horas, y tambi&eacute;n el incremento de calor aparente en organismos reci&eacute;n alimentados. Adicionalmente se colocaron dos matraces control que no conten&iacute;an organismos, con el fin de medir el consumo de ox&iacute;geno y la probable producci&oacute;n de amon&iacute;aco de los planctontes presentes en el sistema descrito.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa metab&oacute;lica fue determinada en forma indirecta a trav&eacute;s del consumo de ox&iacute;geno de los organismos mantenidos en la temperatura preferida, tomando muestras del agua donde se encontraban los organismos y empleando un ox&iacute;metro YSI 52 equipado con un sensor polarogr&aacute;fico, en organismos reci&eacute;n alimentados y en organismos con un d&iacute;a de ayuno, alimentando a los organismos durante 2 horas.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diferencia entre las concentraciones iniciales y finales de ox&iacute;geno fue considerada como el consumo de ox&iacute;geno de los organismos, el cual se expres&oacute; como miligramos de O<sub>2</sub> consumido hora<sup>&#45;1</sup>gr<sup>&#45;1</sup>. El consumo de ox&iacute;geno o respiraci&oacute;n (R) se determin&oacute; a partir del consumo de ox&iacute;geno de los organismos en ayuno.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La medici&oacute;n de la excreci&oacute;n amoniacal de los organismos, se realiz&oacute; de manera simult&aacute;nea a la determinaci&oacute;n del consumo de ox&iacute;geno y en el mismo sistema respirom&eacute;trico, tomando muestras iniciales y finales de 10 mL de agua, de cada uno de los matraces. La determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n amoniacal de las muestras se estim&oacute; con el m&eacute;todo de azul de indofenol, descrito por Rodier (1981), empleando un espectrofot&oacute;metro ELIPTICA 2000, en donde la intensidad del color de la muestra, le&iacute;do a una longitud de onda de 640 nm era directamente proporcional a la concentraci&oacute;n de amoniaco expresada en mg NH<sub>3</sub><sup>+</sup>h<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n del incremento de calor aparente (ICA), se realiz&oacute; calculando la diferencia entre el m&aacute;ximo consumo de ox&iacute;geno de los organismos alimentados y el consumo de oxigeno de los organismos en ayuno durante un periodo de 48 horas (Beamish &amp; Trippel, 1990). Al t&eacute;rmino del experimento respirom&eacute;trico, los organismos se pesaron para obtener su peso h&uacute;medo, despu&eacute;s se sacrificaron, etiquetaron, y colocaron en una estufa a 60 &deg;C para obtener su peso seco.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los datos de los organismos alimentados con las dos dietas expuestos a la temperatura preferida, se calcul&oacute; el campo de crecimiento, el cu&aacute;l fue estimado como la diferencia de la energ&iacute;a del alimento consumido, entre la suma de la energ&iacute;a eliminada en la producci&oacute;n de heces, la excreci&oacute;n amoniacal, el consumo de ox&iacute;geno&#45;respiraci&oacute;n, el incremento aparente de calor y las mudas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar del contenido cal&oacute;rico de las muestras obtenidas tanto del alimento suministrado a los organismos, las heces y las mudas, durante la fase experimental, se utiliz&oacute; una micro bomba calorim&eacute;trica PARR, previamente calibrada con &aacute;cido benzoico, realizando 3 repeticiones para cada muestra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El consumo de ox&iacute;geno de rutina (R) o respiraci&oacute;n y el incremento de calor aparente (ICA), fueron transformados a unidades de energ&iacute;a utilizando el equivalente oxical&oacute;rico de 3.53 cal mg<sup>&#45;1</sup> de ox&iacute;geno consumido (Elliot &amp; Davison, 1975). Los valores de excreci&oacute;n amoniacal se transformaron a energ&iacute;a empleando el equivalente nitr&oacute;&#45;cal&oacute;rico de 5.73 calor&iacute;as por gramo de amoniaco excretado (Clifford &amp; Brick, 1979), el consumo de ox&iacute;geno, el incremento de calor aparente, la excreci&oacute;n amoniacal, el alimento ingerido, la producci&oacute;n de heces y las mudas, se transformaron a Joules utilizando el factor de conversi&oacute;n de 1 calor&iacute;a equivalente a 4.1840 Joules (Gnaiger, 1983).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La raz&oacute;n at&oacute;mica ox&iacute;geno&#45;consumido y nitr&oacute;geno&#45;excretado (O:N) por los organismos se represent&oacute; como un &iacute;ndice para determinar cu&aacute;l de los sustratos metab&oacute;licos fue utilizado como fuente principal de energ&iacute;a para cubrir los requerimientos metab&oacute;licos de los organismos (Conover &amp; Corner, 1968). Dicho &iacute;ndice fue estimado mediante los valores del consumo de ox&iacute;geno y la excreci&oacute;n de amon&iacute;aco, obtenidos en el sistema respirom&eacute;trico. Las tasas fisiol&oacute;gicas determinadas en ambos ensayos experimentales fueron transformadas a &aacute;tomos&#45;gramo para el c&aacute;lculo de la raz&oacute;n O:N, utilizando los principios de la termoqu&iacute;mica respiratoria. Con ello, se estimaron las cantidades relativas de l&iacute;pidos, carbohidratos y prote&iacute;nas oxidadas que fueron utilizadas como fuente energ&eacute;tica por los juveniles de langostas de quelas rojas durante los experimentos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los &iacute;ndices de eficiencia de conversi&oacute;n bruta (K<sub>1</sub>) y de conversi&oacute;n neta (K<sub>2</sub>), utilizados para los organismos mantenidos en diferentes condiciones experimentales se estimaron con la siguiente f&oacute;rmula (Klekowski &amp; Duncan, 1975):</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v22n2/a5form1.jpg"></font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">K<sub>1</sub> = &iacute;ndice de eficiencia de conversi&oacute;n bruta;</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">K<sub>2</sub> = &iacute;ndice de eficiencia de conversi&oacute;n neta;</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">P = energ&iacute;a destinada a formaci&oacute;n de biomasa;</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">E = energ&iacute;a invertida en tejido eliminado (proceso de muda);</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">C = energ&iacute;a obtenida por el alimento consumido; y</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">F = energ&iacute;a gastada en la producci&oacute;n de heces.</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A los juveniles de <i>Cherax quadricarinatus</i> alimentados con las dietas balanceadas Rangen y Cherax 1, se les midieron las siguientes variables: peso h&uacute;medo inicial (g), peso h&uacute;medo final (g), incremento en peso h&uacute;medo (g), peso seco (g); y los siguientes &iacute;ndices:</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">a) Tasa de Crecimiento Espec&iacute;fica (TCE %): 100* (Ln P<i>t</i> &#45; P<i>i</i>)/t</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ln P<i>t:</i> Logaritmo natural del peso al tiempo <i>t</i> </font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ln P<i>i:</i> Logaritmo natural del peso inicial</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">b) Factor de Conversi&oacute;n Alimenticia (FCA %): 100* &#91;Alimento suministrado (g)/Incremento en peso (g)&#93;;</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">c) Intervalo de Muda (d&iacute;as)</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">d) Sobrevivencia (%):100* (n&uacute;mero final de organismos/n&uacute;mero inicial de organismos)</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v22n2/a5form2.jpg"></font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rendimiento (R g/d&iacute;a) (D&iacute;az&#45;Iglesias <i>et al.,</i> 1991): </font></p> 	      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">n<sub>i</sub> = n&uacute;mero inicial; </font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">n<sub>f</sub> = n&uacute;mero final; </font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">P<sub>i</sub> = Peso inicial en g; </font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">P<sub>f</sub> = Peso final en g; </font></p> 	      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>t</i> = tiempo en d&iacute;as.</font></p> </blockquote> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados se presentan con la media y el intervalo de confianza al 95%; observ&aacute;ndose normalidad y homogeneidad de varianza; las comparaciones de las variables medidas para ambas dietas se realizaron con la prueba "t" de Student (Zar, 1999), usando el programa Statistica 7.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables e &iacute;ndices biom&eacute;tricos que indican el desempe&ntilde;o biol&oacute;gico de las langostas de quelas rojas en los experimentos de bioenerg&eacute;tica, tales como el incremento en peso, el factor de conversi&oacute;n del alimento y la tasa de crecimiento especifica por tipo de dieta, indicaron que en los tres casos fue favorable la alimentaci&oacute;n con la dieta <i>Cherax 1,</i> como puede observarse en la <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los componentes de la ecuaci&oacute;n del balance energ&eacute;tico y los &iacute;ndices de eficiencia de conversi&oacute;n, los cuales muestran la eficiencia metab&oacute;lica de los juveniles de <i>Cherax</i> al utilizar la energ&iacute;a obtenida en el alimento consumido, se presentan en la <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de energ&iacute;a ingerida del alimento consumido por los organismos a los que se les proporcion&oacute; la dieta Cherax 1 fueron casi del doble (p&#60; 0.001) de los organismos alimentados con la dieta Rangen (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de sobrevivencia de los organismos mantenidos en ambas dietas artificiales durante el periodo experimental fue de 82.5% (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t4.jpg" target="_blank">Tabla 4</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La energ&iacute;a derivada al metabolismo de rutina en los juveniles alimentados con la dieta Rangen fue de 3.75%, mientras que los organismos alimentados con la dieta Cherax 1, demandaron 2.19% de la energ&iacute;a obtenida a trav&eacute;s del alimento, para cubrir el gasto energ&eacute;tico causado por la respiraci&oacute;n (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). No se encontraron diferencias significativas (p&#62; 0.05) en el gasto de la energ&iacute;a empleada para el metabolismo por consumo de ox&iacute;geno por parte de los organismos en las diferentes dietas experimentales (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los organismos mantenidos en las condiciones experimentales, la energ&iacute;a perdida a trav&eacute;s de la producci&oacute;n de heces (F) represent&oacute; el 1.13% para la dieta Rangen y de 1.18% para Cherax 1 (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). Entre ambas dietas se encontraron diferencias significativas <i>(p&#60;</i> 0.05) en la cantidad de energ&iacute;a eliminada en la producci&oacute;n de heces, obteni&eacute;ndose un valor cercano al doble en las heces de organismos alimentados con la dieta Cherax 1, en comparaci&oacute;n con la dieta Rangen, cuyos organismos presentaron un valor mucho menor de energ&iacute;a eliminado a trav&eacute;s de las heces (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La excreci&oacute;n de amon&iacute;aco (U) represent&oacute; un gasto de la energ&iacute;a consumida en el alimento de 0.43% para la dieta Rangen y de 0.36% con la dieta Cherax 1(<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). Asimismo, la excreci&oacute;n de amon&iacute;aco fue significativamente mayor <i>(p&#60;</i> 0.05) en los organismos alimentados con la dieta Cherax 1, que en los organismos que consumieron la dieta Rangen (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t5.jpg" target="_blank">Tabla 5</a> se puede apreciar que el metabolismo energ&eacute;tico de las dietas utilizadas (32 y 45 % de prote&iacute;na) expresaron diferencias significativas en el incremento de calor aparente (ICA), adem&aacute;s como la tasa de excreci&oacute;n nitrogenada postalimentaria (UPA) fue significativamente superior (p &#60; 0.05) para la dieta Cherax 1 con el menor contenido proteico</font>.</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n al proceso de muda, las exuvias de los juveniles de <i>Cherax</i> mostraron diferencias significativas (p &#60; 0.05) en la cantidad de energ&iacute;a destinada a este proceso entre ambas las dietas Rangen y Cherax 1, siendo los organismos alimentados con la dieta Cherax 1, los que utilizaron m&aacute;s energ&iacute;a para el desarrollo de este proceso (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La energ&iacute;a que los organismos utilizaron para la producci&oacute;n de tejido (P) fue del 91.79% en la dieta Rangen, y de 94.45% en la dieta Cherax 1, encontr&aacute;ndose diferencias significativas entre ambos valores (p &#60; 0.05; <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los juveniles de <i>Cherax</i> que se alimentaron con la dieta Rangen, convirtieron el 92.2 &#177; 1.2% de la energ&iacute;a ingerida en energ&iacute;a potencial para construcci&oacute;n de tejido, y tuvieron una eficiencia de conversi&oacute;n neta del 93.4 &#177; 1.2%. Para los organismos que se alimentaron con la dieta Cherax 1, la eficiencia de asimilaci&oacute;n bruta fue del 94.4 &#177; 1.0%, y convirtieron el 94.8 &#177; 0.9% de la energ&iacute;a digerida, en energ&iacute;a potencial para el crecimiento.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de la raz&oacute;n at&oacute;mica O:N, estimados para los juveniles de <i>Cherax</i> alimentados con la dieta artificial Rangen, fue de 32.8 &#177; 6.09 y de 28.2 &#177; 14.17 en los organismos alimentados con la dieta Cherax 1. Los valores de la raz&oacute;n at&oacute;mica encontrados en los organismos expuestos a las dietas artificiales Cherax 1 y Rangen, demostraron que en ambas condiciones experimentales los organismos presentaron un metabolismo oxidativo no&#45;proteico, utilizando una mezcla de l&iacute;pidos&#45;prote&iacute;nas como las principales fuentes de energ&iacute;a para cubrir sus requerimientos metab&oacute;licos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el g&eacute;nero <i>Cherax,</i> los resultados de alimentaci&oacute;n utilizando dietas semipurificadas de referencia han sido poco alentadores. Morrissy (1989) atribuy&oacute; los malos resultados en <i>C. tenuimanus</i> (Smith, 1912) al uso de nutrientes inadecuados para la especie en la dieta de referencia. Anson y Rouse (1996) indican que los requerimientos espec&iacute;ficos para <i>C. quadricarinatus</i> son distintos a las de otros crust&aacute;ceos. Villarreal y Pel&aacute;ez (1999) comentan que esta especie de origen australiano, es omn&iacute;vora y detrit&iacute;vora y se adapta a las condiciones de cautiverio, porque es tolerante a condiciones adversas de factores ambientales, consumiendo preferentemente alimento natural casi en descomposici&oacute;n.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Omnivor&iacute;a.</b> Estudios anteriores han revelado que la langosta <i>C. quadricarinatus</i> presenta altos niveles de asimilaci&oacute;n cuando la dieta se compone en su mayor parte de ingredientes vegetales. Hutchings y Villarreal (1996) y Villareal (2002), han indicado que hasta el 70% de los requerimientos nutricionales de juveniles de <i>Cherax,</i> son cubiertos por la productividad natural en piscinas de cultivo comercial con abundancia de crecimientos vegetales. Calow (1977) comenta que la ingesti&oacute;n de sustratos vegetales promueve el consumo de mayor cantidad y variedad de alimentos, lo que propicia una mejor eficiencia de asimilaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de la presente investigaci&oacute;n coinciden con los autores antes mencionados ya que al utilizar la dieta Cherax1 (con un nivel bajo de prote&iacute;na y alto contenido de materia vegetal), se observ&oacute; un crecimiento alto y una mejor relaci&oacute;n costo/ beneficio. Adem&aacute;s el Factor de conversi&oacute;n Alimenticia (FCA) con la dieta Cherax1, fue menor al obtenido con la dieta Rangen. Este resultado seguramente presentar&iacute;a mejores resultados, si se aplicara la sugerencia de Cort&eacute;s <i>et al.</i> (2002) (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t6.jpg" target="_blank">Tabla 6</a>), correspondiente a aumentar la frecuencia de alimentaci&oacute;n diaria, lo que reafirmar&iacute;a su calidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Consumo de alimento (C).</b> Este estudio mostr&oacute; valores altos en el consumo de alimento por parte de los organismos alimentados con ambas dietas, sin embargo, el porcentaje en el consumo de alimento con la dieta Cherax1, fue mayor que con la dieta Rangen, lo que permite inferir, que la ingesti&oacute;n del alimento Cherax1 fue m&aacute;s aceptada por los juveniles, proporcionando un mejor crecimiento (P) de los mismos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de la respuesta metab&oacute;lica de la langosta australiana de quelas rojas se relacionan con la hip&oacute;tesis propuesta por Jones y Ruscoe (1996), quienes argumentan que en el medio natural, los h&aacute;bitos alimenticios de esta especie se complementan con la ingesta de detritos, con un alto contenido de materia org&aacute;nica vegetal y animal en estado de descomposici&oacute;n.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n a la cantidad de alimento consumido y la utilizaci&oacute;n de la energ&iacute;a contenida en el mismo, se observaron diferencias importantes respecto lo obtenido por otros autores, lo cual pudo deberse a la composici&oacute;n nutricional y cantidad de energ&iacute;a de la dieta empleada, como lo muestra Escalante (2001) (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">Tabla 7</a>), observ&aacute;ndose que los organismos alimentados con la dieta Cherax1 consumieron mayor cantidad de alimento en comparaci&oacute;n con la dieta Rangen. Este porcentaje mayor se reflej&oacute; en altos valores en las tasas fisiol&oacute;gicas obtenidas, lo que sugiere que la proporci&oacute;n de energ&iacute;a ingerida en el alimento de la dieta Cherax1 fue mucho mayor; adem&aacute;s, las langostas alimentadas con &eacute;sta dieta presentaron un mejor rendimiento en el incremento de peso, lo que indica que la dieta Cherax 1 es m&aacute;s adecuada para esta especie de langosta, que la dieta Rangen (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tablas 3</a> y <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t5.jpg" target="_blank">5</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se han realizado varios estudios respecto al consumo de alimento de origen vegetal en acociles. Por ejemplo, Rodr&iacute;guez &amp; Carmona (2002), utilizando organismos de <i>Cambarellus montezumae</i> Saussure, 1857, alimentados con <i>Elodea canadensis </i>Michx sometida a un proceso de ensilaje, encontraron que la calidad del alimento no era adecuado para un r&aacute;pido crecimiento, lo que sugiere que los acociles necesitan de prote&iacute;na animal, sobre todo en sus estadios tempranos, y que los vegetales no son la fuente principal de los macronutrientes requeridos.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En otro trabajo, realizado con el fin de observar el efecto de la fibra diet&eacute;tica y tiempo de vaciado g&aacute;strico sobre el crecimiento de <i>Macrobrachium rosenbergii</i> De Man, 1879 (Gonz&aacute;lez&#45;Pe&ntilde;a <i>et al.,</i> 2002), se encontr&oacute; que la raz&oacute;n de crecimiento espec&iacute;fica y la raz&oacute;n de eficiencia proteica, provista a los diferentes niveles de fibra diet&eacute;tica, se incrementaron al aumentar el nivel de fibra y tambi&eacute;n al incrementarse el tiempo de residencia de nutrientes en el tracto gastrointestinal de los organismos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bar&oacute;n Sevilla <i>et al.</i> (1994) al alimentar a <i>Procambarus clarkii</i> Girard, 1852 con cuatro dietas formuladas con diferentes niveles de prote&iacute;na (20, 25, 30 y 35%) encontraron, que los valores m&aacute;s altos del campo de crecimiento se obtuvieron en los organismos alimentados con las dietas con 25 y 30% de contenido proteico.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Producci&oacute;n (P).</b> Uno de los componentes del balance energ&eacute;tico, que referido a la inversi&oacute;n de la energ&iacute;a que los organismos utilizan para la producci&oacute;n de tejido, es el que representa el campo de crecimiento, o Producci&oacute;n (P), que en este caso present&oacute; diferencias significativas entre ambas dietas suministradas durante un periodo de 30 d&iacute;as, mostrando un mayor aprovechamiento en las langostas alimentadas con la dieta Cherax1, que se reflej&oacute; en un mayor incremento del peso ganado por los organismos y en un valor m&aacute;s elevado en la tasa de crecimiento especifico (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>, <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">7</a>: <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En <i>C. quadricarinatus,</i> Thompson <i>et al.</i> (2003) observaron los efectos de alimentar langostas australianas con dietas artificiales con y sin suplementos de lecitina y/o colesterol; los resultados en el crecimiento sugirieron que una dieta conteniendo 25% de harina de pescado, 4.5% harina de soya, 2% de aceite de h&iacute;gado de bacalao y 1% de aceite de ma&iacute;z, fueron suficientes para satisfacer los requerimientos de lecitina y colesterol de los organismos, permitiendo con ello un menor gasto en la formulaci&oacute;n de dietas alimenticias; sin embargo los resultados obtenidos en ese estudio utilizando una dieta con el 40% de prote&iacute;na no parecer&iacute;a ser tan satisfactoria como para considerarla en producci&oacute;n de langosta australianas, debido al menor crecimiento obtenido en comparaci&oacute;n al obtenido con la dieta Cherax1 usada en el presente estudio conteniendo s&oacute;lo el 32% prote&iacute;na. Webster <i>et al.</i> (1994), evaluaron niveles de prote&iacute;na entre 25% y 55% en dietas alimenticias para juveniles de <i>Cherax quadricarinatus,</i> encontrando que la dieta conteniendo 33% de prote&iacute;na era la adecuada, debido a que produc&iacute;a un &oacute;ptimo crecimiento. Meade y Watts (1995), tambi&eacute;n evaluaron diferentes niveles de prote&iacute;na en las dietas obteniendo el resultado m&aacute;s favorable con el 30% de prote&iacute;na. Castillo <i>et al.</i> (2002), tambi&eacute;n indicaron que el nivel &oacute;ptimo de prote&iacute;na en la dieta de <i>Cherax</i> era del 31%, en comparaci&oacute;n con el 25 y el 43% de prote&iacute;na utilizado en otras dietas probadas. Los resultados de este experimento coinciden con Castillo <i>et al.</i> (2002) ya que al aplicar la dieta Cherax1, con 32% prote&iacute;na, el incremento en peso y la sobrevivencia de los organismos fue superior a lo obtenido con la dieta Rangen conteniendo 45% prote&iacute;na.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Los organismos de Cherax</i> destinan un gran porcentaje de la energ&iacute;a obtenida en su crecimiento, lo cual le confiere una ventaja sobre otras especies de langosta australiana con eficiencia de crecimiento menor (Arredondo&#45;Figueroa <i>et al.,</i> 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Villarreal (1991) menciona que <i>Cherax tenuimanus</i> (Smith, 1912), destina el 57.5% de la energ&iacute;a consumida hacia el crecimiento; por otra parte Woodland (1967) menciona que <i>Cherax destructor</i> Clark, 1936, destina aproximadamente el 50% de la energ&iacute;a ingerida en el crecimiento. D&iacute;az&#45;Herrera <i>et al.</i> (1992), obtuvieron un campo de crecimiento para <i>M. rosenbergii</i> de 68.01 y 86.67% para langostinos alimentados con las dietas Bovilac (37% prote&iacute;na) y Purina (44% prote&iacute;na) respectivamente. A pesar de que Anson y Rouse (1996) mencionan que los problemas en la calidad del agua se reducen al usar dietas peletizadas, mientras que los requerimientos nutricionales no se conozcan a plenitud, los alimentos naturales van a tener que seguir siendo necesarios como suplementos para alcanzar el mejor crecimiento y sobrevivencia de <i>Cherax.</i> Esos autores tambi&eacute;n han planteado que una combinaci&oacute;n de dietas que alternen el alimento artificial con el alimento natural para los juveniles, provee suficientes nutrientes para promover el crecimiento. En otro trabajo realizado evaluando la frecuencia de alimentaci&oacute;n en cuatro diferentes frecuencias, Cort&eacute;s <i>et al.</i> (2002) encontraron que para <i>Cherax</i> la frecuencia &oacute;ptima de alimentaci&oacute;n era de al menos 3 veces al d&iacute;a, y que la raz&oacute;n 4 veces/d&iacute;a incrementaba la biomasa total. Aunque tales resultados muestran ser satisfactorios, tomando en cuenta que su periodo de alimentaci&oacute;n fue de 60 d&iacute;as, en comparaci&oacute;n con los presentados en este trabajo, cuyo periodo fue de 30 d&iacute;as, en una raci&oacute;n/d&iacute;a, el crecimiento de <i>Cherax</i> al alimentarse con la dieta Cherax1, ser&iacute;a mayor que la encontrada por tal autor, sugiri&eacute;ndose que al aumentar la frecuencia de alimentaci&oacute;n con la dieta Cherax1 el crecimiento ser&iacute;a todav&iacute;a mayor.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente trabajo se obtuvieron mejores resultados al alimentar a <i>Cherax quadricarinatus</i> con la dieta Cherax1 con 32% de prote&iacute;na y alto contenido de materia org&aacute;nica de origen vegetal; por tanto se podr&iacute;a recomendar el uso de dietas con contenido de prote&iacute;na de alrededor del 32% con caracter&iacute;sticas proximales similares a la dieta Cherax1, para alimentar acociles, a pesar de que para la langosta de quelas rojas no haya un alimento formulado en el mercado con esas caracter&iacute;sticas. Huner y Meyer (1979), se&ntilde;alan que los alimentos balanceados para crust&aacute;ceos producen una inadecuada pigmentaci&oacute;n, sin embargo, este se&ntilde;alamiento no coincide con los resultados del presente estudio, en los cuales no se observaron cambios en la coloraci&oacute;n de los organismos al usar distintas dietas. Adem&aacute;s se encontr&oacute; que <i>Cherax quadricarinatus</i> aprovecha de manera &oacute;ptima los componentes de la dieta y adem&aacute;s, presenta valores bajos de p&eacute;rdidas metab&oacute;licas, canalizando la mayor&iacute;a de la energ&iacute;a hacia el crecimiento, y aunque no se les suministr&oacute; alimento natural, la dieta Cherax1 prob&oacute; ser un alimento balanceado con gran potencial para incrementar el crecimiento de la especie cultivada a nivel comercial.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Energ&iacute;a eliminada (H).</b> La eliminaci&oacute;n de energ&iacute;a v&iacute;a producci&oacute;n de heces fecales (H) en los juveniles de <i>Cherax quadricarinatus</i> no excedi&oacute; el 2 % del total de la energ&iacute;a incorporada con el alimento ingerido, al exponerse a ambos alimentos. En los organismos mantenidos en condiciones experimentales, la energ&iacute;a eliminada a trav&eacute;s de la producci&oacute;n de heces represent&oacute; el 1.13% al alimentarse con la dieta Rangen, y el 1.18% con la dieta Cherax1. Esta tasa fisiol&oacute;gica represent&oacute; una cantidad de energ&iacute;a eliminada por los organismos alimentados con la dieta Cherax1 de cerca del doble de la cantidad de los organismos alimentados con la dieta Rangen, encontr&aacute;ndose diferencias significativas entre ambas dietas (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). En juveniles de <i>Cherax,</i> Escalante (2001), obtuvo que la producci&oacute;n de heces de organismos expuestos a condiciones experimentales con una temperatura constante de 28 &deg;C, aliment&aacute;ndose con Rangen 35% prote&iacute;na, representaron un 3.2% del total de la energ&iacute;a incorporada del alimento ingerido, mientras que en un r&eacute;gimen de temperatura fluctuante de 25&#45;33 &deg;C, se obtuvo un valor de energ&iacute;a eliminada de 4.2% del total del alimento (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">Tabla 7</a>). En <i>Cherax tenuimanus,</i> Villareal <i>et al.</i> (1991), obtuvo que la producci&oacute;n de heces estuvo relacionada inversamente con el tama&ntilde;o de los organismos, la cantidad de alimento ingerido y el contenido de prote&iacute;na en la dieta (del 17 al 48%), la tasa de producci&oacute;n fecal diaria fue de 0.318 &#177; 0.031 mg g<sup>&#45;1</sup> h<sup>&#45;1</sup>, equivalente al 7% del alimento ingerido por los organismos. Otros autores tuvieron resultados similares al trabajar con adultos de <i>Procambarus clarkii</i> Girard,1852 (Bar&oacute;n Sevilla <i>et al.,</i> 1994) y postlarvas y juveniles de <i>Macrobrachium rosenbergii</i> De Man, 1879 (D&iacute;az&#45;Herrera <i>et al.,</i> 1992).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diferencia entre la p&eacute;rdida de energ&iacute;a v&iacute;a producci&oacute;n de heces en <i>Cherax</i> con relaci&oacute;n a los resultados obtenidos por otros autores puede ser atribuida al tipo y calidad de los alimentos proporcionados, ya que una dieta con niveles altos de fibra, incrementa la producci&oacute;n de heces; la dieta Rangen utilizada en este trabajo conten&iacute;a m&aacute;s del doble de fibra que la dieta Cherax1, sin embargo los resultados obtenidos difirieron en la cantidad de energ&iacute;a perdida por este proceso. En el presente estudio se obtuvo cerca del doble en producci&oacute;n de heces en los organismos alimentados con la dieta Cherax1; lo cual pudo deberse a la gran cantidad de energ&iacute;a ingerida contenida en la misma.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Respiraci&oacute;n (R).</b> La energ&iacute;a invertida en el metabolismo de rutina por los juveniles de <i>Cherax quadricarinatus,</i> a los cuales se le suministraron las diferentes dietas, fue menor (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>, <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>) que los valores obtenidos por P&eacute;rez&#45;Cruz <i>et al.</i> (1995) en <i>Macrobrachium rosenbergii</i> (107.6 a 174.2 J d&iacute;a<sup>1</sup> g<sup>1</sup> p.s.). Escalante (2001), report&oacute; valores similares en juveniles de <i>Cherax quadricarinatus</i> (107.5 &#177; 12.0 J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s.) a los obtenidos por P&eacute;rez&#45;Cruz <i>et al.</i> (1995) en condiciones de temperatura constante y alimento artificial Rangen para camar&oacute;n (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">Tabla 7)</a>. Meade <i>et al.</i> (1994, 2002) sugieren que los organismos de <i>M. rosembergii</i>expuestos a tensiones menores a 10 kPa Po<sub>2</sub>, evitan un estr&eacute;s potencial causado por condiciones an&oacute;xicas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el actual trabajo, los juveniles de <i>Cherax</i> mantenidos en un r&eacute;gimen de temperatura preferida, presentaron valores similares en el metabolismo de rutina al suministrarle las diferentes dietas, pero al analizar la energ&iacute;a porcentual derivada para este proceso, se encontr&oacute; una diferencia marcada entre ambas dietas, porque los organismos que se alimentaron con Rangen derivaron la energ&iacute;a en un 3.75% de la energ&iacute;a extra&iacute;da del alimento, mientras que los juveniles que se alimentaron con Cherax1 lo hicieron en un 2.19% (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">Tabla 7</a> , <a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). Lo anterior sugiere que los organismos alimentados con la dieta Cherax 1 utilizaron menos energ&iacute;a para este proceso fisiol&oacute;gico. Ambas dietas utilizadas indican que la digesti&oacute;n del alimento por los juveniles fue eficiente en ambos casos, pero para este estudio con las langostas de quelas rojas, la dieta Cherax1 result&oacute; ser mejor en costo energ&eacute;tico ya que al utilizar menor cantidad de energ&iacute;a, conserv&oacute; la mayor parte de la energ&iacute;a resultante, la cual probablemente pudo ser destinada para el crecimiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Excreci&oacute;n nitrogenada (U).</b> El valor de la excreci&oacute;n amoniacal obtenido en los juveniles de <i>Cherax,</i> utilizando la dieta artificial Rangen en condiciones de temperatura constante, fue de 8.4 J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s, el cual fue muy similar a lo reportado por Escalante (2001), bajo las mismas condiciones experimentales de temperatura constante (7.9 &#177; 1.0 J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s). Sin embargo, en un r&eacute;gimen de temperatura fluctuante el resultado fue de 20.0 (J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s) (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">Tabla 7</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para los juveniles de <i>Cherax</i> alimentados con la dieta Cherax1 el valor de excreci&oacute;n amoniacal a trav&eacute;s de la orina fue de 13.1 &#177; 3.6 J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s, mayor a la energ&iacute;a excretada en organismos con la dieta Rangen (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para <i>Macrobrachium rosenbergii,</i> P&eacute;rez&#45;Cruz <i>et al.</i> (1995) reportaron valores de excreci&oacute;n nitrogenada menores (0.8 a 4.9 J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p.s). A este respecto Sierra&#45;Uribe <i>et al.</i> (1997) reportan valores de 0.0014 y 0.0013 J d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> g<sup>&#45;1</sup> p. s. para machos y hembras de <i>Procambarus clarkii</i> respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaci&oacute;n O:N.</b> Los cambios en los valores de la raz&oacute;n O:N reflejan el tipo de sustrato metab&oacute;lico oxidado seg&uacute;n diferentes factores, entre los que se encuentran el estadio de desarrollo y el estado fisiol&oacute;gico de los organismos, as&iacute; como el tipo de dieta proporcionada. Este &iacute;ndice tambi&eacute;n es indispensable para estimar la relaci&oacute;n metab&oacute;lica entre los organismos y el alimento consumido, ya que refleja el efecto de los niveles de prote&iacute;na y de la relaci&oacute;n energ&iacute;a&#45;prote&iacute;na de la dieta sobre los organismos. Mayzaud y Conover (1988) mencionan que valores de 3 a 16 son indicativos de oxidaci&oacute;n de prote&iacute;nas, de 16 a 25 corresponden a la utilizaci&oacute;n de una mezcla de l&iacute;pidos y prote&iacute;nas, de 25 a 60 indican catabolismo de l&iacute;pidos y carbohidratos y por &uacute;ltimo valores superiores a 60 ocurren cuando hay empleo de carbohidratos. Los valores de la raz&oacute;n at&oacute;mica O:N estimada para los juveniles de <i>Cherax</i> alimentados con las dos dietas artificiales bajo condiciones experimentales, demostraron que los organismos no utilizaron prote&iacute;na como sustrato metab&oacute;lico, manteni&eacute;ndose el &iacute;ndice en el intervalo considerado como catabolismo no netamente proteico y presentando un metabolismo oxidativo, utilizando una mezcla de l&iacute;pidos y prote&iacute;nas como la principal fuente de energ&iacute;a para cubrir sus requerimientos metab&oacute;licos. Lo anterior podr&iacute;a indicar que la mayor&iacute;a de las prote&iacute;nas obtenidas de ambas dietas (Rangen y Cherax1) fueron utilizadas anab&oacute;licamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste con estos resultados, el crecimiento de los organismos present&oacute; diferencias significativas, creciendo los organismos alimentados con la dieta Cherax1 cerca del doble de los alimentados con Rangen, lo que hace suponer que la composici&oacute;n de Cherax1, cumpli&oacute; de forma m&aacute;s satisfactoria los requerimientos nutricionales de los juveniles de quelas rojas, destin&aacute;ndose la mayor cantidad de energ&iacute;a a la producci&oacute;n de tejido y con ello produciendo un mayor crecimiento. Los valores obtenidos en este estudio para la relaci&oacute;n O:N utilizando dietas artificiales k fueron muy similares (25.6 y 23.3) a los obtenidos para la misma especie por D&iacute;az&#45;Herrera <i>et al.</i> (2006) utilizando dieta Rangen, manteniendo a los organismos en temperatura constante y fluctuante; y de 33.7 y 24.3 para acociles alimentados con dieta Purina, mantenidos en reg&iacute;menes de temperatura constante y fluctuante. Tambi&eacute;n se han reportado valores similares de O:N (25.50 a 46.82) para <i>Macrobrachium rosenbergii,</i> para <i>Palaemonetes varians</i> Leach, 1814 (34.2), y para <i>Homarus americanus</i> Milne&#45;Edwards, 1837 (22.1 a 26.7) (D&iacute;az&#45;Herrera <i>et al.,</i> 1992; Capuzzo &amp; Lancaster, 1979).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az&#45;Iglesias <i>et al.</i> (2002) evaluaron la bioenerg&eacute;tica de alimentos naturales y artificiales en juveniles de langosta espinosa <i>Panulirus argus</i> (Latreille, 1804A encontrando que la relaci&oacute;n O:N del alimento basado en quit&oacute;n, disminuy&oacute; a 12.9, indicando catabolismo de prote&iacute;nas puras, confirm&aacute;ndose los h&aacute;bitos carn&iacute;voros estrictos de esta especie. Resultados similares se han obtenido en estudios con la langosta espinosa <i>Panulirus interruptus</i> (D&iacute;az&#45;Iglesias <i>et. al.,</i> 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No en todos los casos las prote&iacute;nas son utilizadas como sustrato energ&eacute;tico, estas sustancias s&oacute;lo contribuyen al metabolismo energ&eacute;tico cuando en la dieta se proporciona una mezcla de l&iacute;pidos y prote&iacute;nas insuficiente.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incremento de calor aparente (ICA).</b> El consumo de ox&iacute;geno en los juveniles de <i>Cherax</i> aument&oacute; por la ingesti&oacute;n de alimento, constituyendo un ICA de 79% para los organismos alimentados con la dieta Rangen y representando un gasto del 2.9% de la energ&iacute;a ingerida en el alimento. Para los organismos alimentados con la dieta Cherax1, el ICA fue de 76.6%, utilizando el 1.82% de la energ&iacute;a total consumida en el alimento (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha establecido que el ICA est&aacute; relacionado con el metabolismo y desaminaci&oacute;n de las prote&iacute;nas, en esta investigaci&oacute;n estos valores difirieron de los encontrados por Escalante (2001), para juveniles de <i>Cherax</i> mantenidos en un r&eacute;gimen de temperatura constante de 28 &deg;C en el cual se report&oacute; un incremento del 39.6 y 45.1% en el consumo de oxigeno de los organismos despu&eacute;s de ser alimentados con las dietas Rangen y Purina respectivamente (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5t7.jpg" target="_blank">Tabla 7</a>).</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jobling (1983, 1994) menciona, que el incremento en el consumo de ox&iacute;geno, como producto del consumo de alimento, puede tener dos explicaciones: 1) la s&iacute;ntesis de prote&iacute;na (crecimiento), en tal caso una relaci&oacute;n del ICA con la producci&oacute;n de amon&iacute;aco no deber&iacute;a existir, 2) la oxidaci&oacute;n de amino&aacute;cido y por tanto la producci&oacute;n de nitr&oacute;geno excretado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de energ&iacute;a invertida en la producci&oacute;n de exuvias por el proceso de la muda en juveniles de crust&aacute;ceos ha sido poco estudiada. En este estudio, la formaci&oacute;n de las exuvias &oacute; mudas de juveniles de <i>Cherax,</i> requirieron el 1.54% de la energ&iacute;a ingerida en el alimento Rangen y el 1.38% de la energ&iacute;a ingerida con la dieta Cherax1 (<a href="/img/revistas/hbio/v22n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). El intervalo de muda no mostr&oacute; diferencias significativas en el n&uacute;mero de d&iacute;as sucedidos para el proceso de muda.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conversi&oacute;n de energ&iacute;a (CE).</b> En este estudio, la eficiencia de conversi&oacute;n de la energ&iacute;a absorbida de las dietas artificiales por los juveniles, se expresan como tasas de asimilaci&oacute;n bruta (K<sub>1</sub>) y neta (K<sub>2</sub>) (Klekowski &amp; Duncan, 1975.). Los juveniles de <i>Cherax</i> que se alimentaron con la dieta Rangen, convirtieron el 92.2% de la energ&iacute;a ingerida en energ&iacute;a potencial para construcci&oacute;n de tejido, y tuvieron una eficiencia de conversi&oacute;n neta del 93.4%. Por otra parte en los organismos alimentados con la dieta Cherax1, la eficiencia de asimilaci&oacute;n bruta fue del 94.4%, convirtiendo el 94.8% de la energ&iacute;a digerida en energ&iacute;a potencial para su crecimiento. La eficiencia de conversi&oacute;n obtenida para los organismos en las diferentes dietas no mostr&oacute; una diferencia muy marcada, sin embargo, existi&oacute; una notable diferencia en la tasa de ingesti&oacute;n, incremento en peso, tasa de crecimiento especifico, as&iacute; como en la cantidad de energ&iacute;a canalizada hacia el crecimiento por los organismos expuestos a las diferentes dietas artificiales suministradas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del presente experimento concordaron con lo reportado por Lemos <i>et al.</i> (2001) en postlarvas de <i>Farfantepenaeus paulensis</i> (P&eacute;rez&#45;Farfante &amp; Kinsley, 1997) cuya tasa de asimilaci&oacute;n neta (K2), demostr&oacute; que la energ&iacute;a invertida en el crecimiento fue del 52.2 al 56.3%, cuando los organismos se expusieron a condiciones de salinidad de 5 a 25 ups, y que al mantenerlos en una condici&oacute;n de 34 ups, este &iacute;ndice disminuy&oacute; (44%). Tambi&eacute;n Valdez (2002), reporta que al trabajar a diferentes salinidades y la dieta Rangen (con 40% de prote&iacute;na), los juveniles de <i>Litopenaeus vannamei</i> Boone, 1931, presentaron una eficiencia de conversi&oacute;n bruta (K<sub>1</sub>) del 52.05 a 55.32% de la energ&iacute;a ingerida para el crecimiento, mientras que en juveniles aclimatados a 26 ups de salinidad , la eficiencia de conversi&oacute;n neta (K<sub>2</sub>) indic&oacute; un 60.71 al 66% de la energ&iacute;a absorbida. Considerando la evidencia anterior, se puede afirmar que la tasa de asimilaci&oacute;n de crust&aacute;ceos parece estar influenciada por factores ambientales.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Iacute;ndice de rendimiento.</b> El &iacute;ndice de rendimiento tambi&eacute;n denominado incremento relativo en biomasa (D&iacute;az&#45;Iglesias <i>et al., </i>1991), se ha empleado en cr&iacute;as de postlarvas de langosta <i>Panulirus argus</i> en diversas densidades, aislamiento, temperaturas y alimentaci&oacute;n con dietas artificiales en condiciones de laboratorio y los resultados han indicado que al trabajar con una menor densidad de cr&iacute;as, se obtiene la mayor sobrevivencia junto con una tendencia a disminuir el crecimiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio trabajo se utiliz&oacute; el &iacute;ndice de rendimiento, seg&uacute;n el periodo de tiempo transcurrido en experimentaci&oacute;n, para los organismos juveniles de <i>Cherax;</i> encontr&aacute;ndose que el rendimiento obtenido del tratamiento con la dieta experimental Cherax1, present&oacute; valores superiores en comparaci&oacute;n con la dieta artificial Rangen, lo cual se observ&oacute; reflejado en la obtenci&oacute;n de m&aacute;s del doble del incremento en peso en organismos alimentados con la dieta Cherax1 por un periodo de 30 d&iacute;as, as&iacute; como en una tasa de crecimiento especifica superior. Por lo anterior se concluye que la dieta Cherax1, cumpli&oacute; de manera satisfactoria los requisitos metab&oacute;licos necesarios para las langostas de quelas rojas, aunque la sobrevivencia fue similar en ambos tratamientos. Para otras especies de crust&aacute;ceos, como <i>Litopenaeus setiferus</i> (Linnaeus, 1767) (Taboada <i>et al.,</i> 1998), al trabajar en el efecto de diferentes niveles de prote&iacute;na (10, 20, 30, 40 y 50%) en organismo con un peso inicial de 0.19 g, se obtuvo un &iacute;ndice de rendimiento en el crecimiento de los camarones de 0.81 g en 45 d&iacute;as y una tasa de sobrevivencia del 81% al ser alimentados con una dieta con un nivel de prote&iacute;na del 30%,considerandola como la dieta &oacute;ptima.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los juveniles de <i>Cherax quadricarinatus</i> alimentados con la dieta artificial Cherax1 con 32% de prote&iacute;na, formulada especialmente para esta especie seg&uacute;n sus h&aacute;bitos alimenticios, derivaron al campo de crecimiento el 94.45% de la energ&iacute;a ingerida del alimento, equivalente a 3,357.8 Joules, siendo 1.8 veces mayor que la energ&iacute;a destinada por los organismos mantenidos con la dieta comercial Rangen &reg;, con 45 % de prote&iacute;na y 1,798 J.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Asimismo los juveniles de langostas de quelas rojas, alimentados con la dieta Cherax1, presentaron una mayor tasa de crecimiento especifica, que se reflej&oacute; en una mayor tasa de consumo de alimento, un mejor &iacute;ndice de rendimiento; as&iacute; como en una mayor eficiencia en la utilizaci&oacute;n de la energ&iacute;a incorporada en el alimento. Adem&aacute;s, los organismos alimentados con la dieta Che&#45;rax1, presentaron una p&eacute;rdida de energ&iacute;a menor en la producci&oacute;n de heces fecales (F), equivalente a 42.6 J, y el metabolismo de rutina (R), tambi&eacute;n expres&oacute; un gasto menor de energ&iacute;a, todo lo cual indica una mayor eficiencia metab&oacute;lica. Asimismo la excreci&oacute;n nitrogenada (U), reflej&oacute; valores menores en el consumo de la dieta Cherax 1, indicando un uso m&aacute;s anab&oacute;lico de las prote&iacute;nas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por &uacute;ltimo, se concluye que el sustrato metab&oacute;lico determinado por la relaci&oacute;n at&oacute;mica O:N, indic&oacute; que preferentemente se consume una mezcla de l&iacute;pidos&#45;prote&iacute;nas equivalente a un valor de 30, no encontrando diferencias significativas entre las dietas</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">ensayadas, por lo que el mayor porcentaje de las prote&iacute;nas suministradas fue canalizado hacia el crecimiento.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Amador&#45;Cano, G. 2001. Termorregulaci&oacute;n de juveniles y adultos de la langosta de quelas rojas <i>Cherax quadricarinatus.</i> Tesis de Maestr&iacute;a. CICESE. Ensenada, B.C. M&eacute;xico, 50 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097544&pid=S0188-8897201200020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anson, K. J. &amp; D. B. Rouse. 1996. Evaluation of several commercial feeds and a crustacean diet juvenile Australian redclaw crayfish <i>Cherax quadricarinatus. Journal of Applied Aquaculture</i> 6: 65&#45;76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097546&pid=S0188-8897201200020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arredondo&#45;Fig&uuml;eroa, J. L., A. Incl&aacute;n S&aacute;nchez, J. T. Palafox &amp; C. R. Campos. 1994. <i>Desarrollo cient&iacute;fico y tecnol&oacute;gico del cultivo de la langosta de agua dulce</i> Cherax quadricarinatus. Secretar&iacute;a de Pesca. Convenio SEPESCA/UAM&#45;1. 90 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097548&pid=S0188-8897201200020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bar&oacute;n Sevilla, B., F. D&iacute;az Herrera &amp; L. F. B&uuml;ckle Ram&iacute;rez. 1994. Energy budget for the red swamp crawfish <i>Procambarus clarkii</i> (Crustacea: Cambaridae). <i>Rivista Italiana di Acquacoltura</i> 29:103&#45;107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097550&pid=S0188-8897201200020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Beamish, F. W. H. &amp; E. A. Trippel. 1990. Heat increment: a static or dynamic dimension in bioenergetic models ? <i>Transactions of the American Fisheries Society</i> 119: 649&#45;661.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097552&pid=S0188-8897201200020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Calow, P. 1977. Conversion efficiencies in heterotrophic organisms. <i>Biological Reviews</i> 52: 385&#45;409.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097554&pid=S0188-8897201200020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Capuzzo, J. M. &amp; B. A. Lancaster. 1979. Some physiological and biochemical considerations of larval development in the American lobster, <i>Homarus americanus. Journal Experimental Marine Biology and Ecology</i> 40:53&#45;62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097556&pid=S0188-8897201200020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castillo, C. E., L. M. Cisneros, S. L. Ortiz &amp; C. M. Jover. 2002. Evaluaci&oacute;n de dietas proteicas en precr&iacute;as de langosta de agua dulce <i>(Cherax quadricarinatus). I Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura</i> (CIVA), pp. 1&#45;5. (<a href="http://www.civa2002.org" target="_blank">httw.civa2p://ww002.org</a>).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097558&pid=S0188-8897201200020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --> Clifford, H. C. &amp; R. W. Brick. 1979. A physiological approach to the study of growth and bioenergetics in the freshwater shrimp <i>Macrobrachium rosenbergii. Proccedings. World Mariculture Society</i> 10: 710&#45;719.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097559&pid=S0188-8897201200020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Conover, R. J. &amp; E. Corner. 1968. Respiration and nitrogen excretion by some marine zooplankton in relation to their live cycles. <i>Journal Marine Biological Association of United Kingdom</i> 48: 49&#45;75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097561&pid=S0188-8897201200020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cort&eacute;s, J. E., C. H.Villarreal &amp; R. M. Rend&oacute;n. 2002. Efecto de la frecuencia alimenticia en el crecimiento y sobrevivencia de juveniles de langosta de agua dulce <i>Cherax quadricarinatus</i> (Decapoda: Parastacidae). <i>I Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura (CIVA),</i> pp. 882&#45;890. (<a href="http://www.civa2002.org" target="_blank">http://www.civa2002.org</a>).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097563&pid=S0188-8897201200020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az&#45;Herrera, F. 1989. Estudio ecofisiol&oacute;gico del langostino gigante <i>Macrobrachium rosenbergii.</i> Tesis Doctoral. Facultad de Ciencias UNAM. M&eacute;xico. 110 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097565&pid=S0188-8897201200020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az&#45;Herrera, F., G. Escalante, A. D. Re &amp; E. Sierra. 2006. Fisiolog&iacute;a energ&eacute;tica de <i>Cherax quadricarinatus</i> (von Martens, 1868) alimentado con dos dietas, expuesto a un r&eacute;gimen constante y fluctuante de temperatura. <i>Hidrobiol&oacute;gica</i> 16 (1): 35&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097567&pid=S0188-8897201200020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az&#45;Herrera, F., G. Ju&aacute;rez Castro, E. P&eacute;rez&#45;Cruz &amp; L. F. B&uuml;ckle Ram&iacute;rez. 1992. Balance energ&eacute;tico de postlarvas y juveniles de langostino malayo <i>Macrobrachium rosenbergii</i> de Man (Crust&aacute;cea: Palaemonidae). <i>Ciencias Marinas</i> 18: 19&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097569&pid=S0188-8897201200020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az&#45;Iglesias, E., R. Brito&#45;P&eacute;rez &amp; M. B&aacute;ez&#45;Hidalgo. 1991. Cr&iacute;a de postlarvas de langosta <i>Panulirus argus</i> en condiciones de laboratorio. <i>Revista de Investigaciones Marinas</i> 12 (1&#45;3): 323&#45;331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097571&pid=S0188-8897201200020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az&#45;Iglesias, E., M. B&aacute;ez Hidalgo, E. Perera Bravet &amp; I. Fraga Castro. 2002. Respuesta metab&oacute;lica de la alimentaci&oacute;n natural y artificial en juveniles de la langosta espinosa, <i>Panulirus argus</i> (Latreille, 1804). <i>Hidrobiol&oacute;gica</i> 12 (2):101&#45;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097573&pid=S0188-8897201200020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diaz Iglesias E., A. K., Robles Murillo , R. J., Buesa&#45;M&aacute;s., M. B&aacute;ez&#45;Hidalgo &amp; M. L&oacute;pez&#45;Zenteno. 2011. Bioenergetics of red spiny lobster <i>Panulirus interruptus</i> (Randall, 1840) juveniles fed with mollusc. <i>Aquaculture</i> 318 (1): 207&#45;212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097575&pid=S0188-8897201200020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Elliot, J. M. &amp; W. Davison. 1975. Energy equivalents of oxygen consumption in animal energetics. <i>Oecologia</i> 19: 195&#45;201.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097577&pid=S0188-8897201200020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Escalante Almada, G. 2001. Fisiolog&iacute;a energ&eacute;tica de <i>Cherax quadricarinatus:</i> Efecto de la temperatura y dietas. Tesis de Maestr&iacute;a. CICESE. Ensenada, B. C. M&eacute;xico, 41 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097579&pid=S0188-8897201200020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garza de Yta, A., D. Davis, D. Ro&uuml;se, J. Ghanawi &amp; I. P. Sao&uuml;d. 2012. Evaluation of practical diets containing various terrestrial protein sources on survival and growth parameters of redclaw crayfish <i>Cherax quadricarinatus. Aquaculture Research</i> 43 (1): 84&#45;90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097581&pid=S0188-8897201200020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gnaiger, E. 1983. Calculation of energetic and biochemical equivalents of respiratory oxygen consumption. In: Gnaiger, E. &amp; H. Forstner (Eds.). <i>Polarographic oxygen sensor.</i> Springer. Berl&iacute;n, Alemania. pp. 337345.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097583&pid=S0188-8897201200020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Pe&ntilde;a, M., S. G&oacute;mez &amp; G. Moreira. 2002. Effects of dietary fiber on growth and gastric emptying time of the freshwater prawn <i>Macrobrachium rosenbergii</i> (De Man, 1879). <i>Journal World Aquaculture Society</i> 33: 441&#45;447.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097585&pid=S0188-8897201200020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gu, H., P. B. Mather &amp; M. F. Capra. 1995. Juvenile growth performance among stocks and families of red claw crayfish, <i>Cherax quadricarinatus</i> (von Martens,1864). <i>Aquaculture</i> 134: 29&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097587&pid=S0188-8897201200020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Huner J. V. &amp; S. P. Meyer. 1979. Dietary protein requirements of the red crayfish <i>Procambarus clarkii,</i> grown in a closed system. <i>Proccedings World Mariculture Society</i> 10: 751&#45;760.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097589&pid=S0188-8897201200020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hutchings, R. W. &amp; H. Villarreal. 1996. Biolog&iacute;a y cultivo de la langosta de agua dulce <i>Cherax quadricarinatus</i> (redclaw). <i>Manual de Producci&oacute;n. Navimar,</i> S.A. Guayaquil, Ecuador. 374 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097591&pid=S0188-8897201200020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jobling, M. 1983. Towards and explanation of specific dynamic actino (SDA). <i>Journal. Fisheries Biology</i> 23: 549&#45;555.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097593&pid=S0188-8897201200020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jobling, M. 1994. Fish bioenergetics. <i>Fish and fisheries series13.</i> Primera edici&oacute;n. Chapman &amp; Hall. London. 309 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097595&pid=S0188-8897201200020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jones, C. M. &amp; I. M. R&uuml;scoe. 1996. Production Technology for Red claw Cray&#45;fish <i>(Cherax quadricarinatus). Freshwater Fisheries and Aquaculture Centre Walkamin.</i> Australia. 155 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097597&pid=S0188-8897201200020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jones, C. M. 1990. <i>The biology and aquaculture potential of the tropical freshwater crayfish Cherax quadricarinatus.</i> Information Series, vol. Q190028. Queensland Department of Primary Industries, Brisbane. 109 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097599&pid=S0188-8897201200020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Klekowski, R. Z. &amp; A. Duncan. 1975. Parameters of an energy budget. In: Grodzinski, W., R. Z. Klekowski &amp; A. Duncan (Eds.). <i>Methods for ecological bioenergetics.</i> Blackwell Scientific Publications. Primera edici&oacute;n. Oxford, Inglaterra, pp. 97&#45;149.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097601&pid=S0188-8897201200020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kondos, A. 1990. Supplementary feed essential for crayfish. <i>Australian Fisheries</i> 49 (11): 28&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097603&pid=S0188-8897201200020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lagerspetz, K. H. 1974. Temperature acclimation and the nervous system. <i>Biological Review</i>49: 477&#45;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097605&pid=S0188-8897201200020000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lee, D. 0. &amp; J. F. Wickins. 1992. <i>Crustacean Farming.</i> John Wiley &amp; Sons Inc. New York, 392 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097607&pid=S0188-8897201200020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lemos, D., V. N. Phan &amp; G. &Aacute;lvarez. 2001. Growth, oxigen consumption, ammonia&#45;N excretion, biochemical composition and energy content of <i>Farfantepenaeus paulensis</i> (Crust&aacute;cea, Dec&aacute;poda, Penaeidae) early postlarvae in different salinities. <i>Journal Experimental Marine Biology and Ecology.</i> 261: 55&#45;74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097609&pid=S0188-8897201200020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lucas, A. 1996. <i>Bioenergetics of aquatic animals.</i> Taylor &amp; Francis publications. United Kingdom, 169 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097611&pid=S0188-8897201200020000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mayzaud, P. &amp; R. J. Conover. 1988. O:N atomic ratio as a tool to describe zoo&#45;plankton metabolism. <i>Marine Ecology Progress Series</i> 45: 289302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097613&pid=S0188-8897201200020000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meade, M. E, J. Doeller, D. Kraus, &amp; S. Watts. 1994. Heat and oxigen flux as a function of <i>P<sub>O2</sub></i> in juvenile australian crayfish <i>Cherax quadricarinatus. Journal of Experimental Zoology</i> 270 (5): 460&#45;466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097615&pid=S0188-8897201200020000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meade, M. E. &amp; S. A. Watts. 1995. Weight gain and survival of juvenile Australian crayfish <i>Cherax quadricarinatus</i> fed formulated feeds. <i>Journal of the World Aquaculture Society</i> 26 (4): 469&#45;474.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097617&pid=S0188-8897201200020000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meade, M. E., J. Doeller, D. Kraus &amp; S. Watts. 2002. Effects of temperature and salinity on weight gain, oxigen consumption rate, and growth efficiency in juvenile red claw crayfish <i>Cherax quadricarinatus. Journal of the World Aquaculture Society</i> 33: 188&#45;198.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097619&pid=S0188-8897201200020000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morrissy, N. M. 1989. A reference standard diet for crustacean nutrition research. IV. Growth of freshwater crayfish <i>Cherax tenuimanus. Journal of the World Aquaculture Society</i> 20: 103&#45;109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097621&pid=S0188-8897201200020000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nelson, S. G., M. A. Simmons &amp; A. W. Knight. 1985. Calorigenic effect of diets on the grass shrimp <i>Crangon fransiscorum</i> (Crustacea:Crango&#45;nidae). <i>Comparative Biochemical and Physiology</i> 82: 373&#45;376.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097623&pid=S0188-8897201200020000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Cruz, E., F. D&iacute;az&#45;Herrera &amp; J. Luna&#45;Figueroa. 1995. Effect of unilateral eyestalk ablation and photoperiod on energy budget of <i>Macrobrachium rosenbergii</i> (Crustacea:Palaemonidae). <i>Rivista Italiana di Acquacoltura</i> 30: 87&#45;91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097625&pid=S0188-8897201200020000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Farfante, I. &amp; B. Kensley. 1997. Penaeoid and Sergestoid Shrimps and Prawns of the World: Keys and Diagnoses for the Families and Genera. Washington, D.C.: <i>National Museum of Natural History.</i> ISBN 2&#45;85653&#45;510&#45;0.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097627&pid=S0188-8897201200020000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reynolds, W. W. &amp; M. E. Casterlin. 1979. Behavioral termoregulation and activity in <i>Homarus americanus. Comparative Biochemical and Phisiology</i> 64A: 25&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097629&pid=S0188-8897201200020000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodier, J. 1981. <i>An&aacute;lisis de las aguas: aguas naturales, aguas residuales y agua de mar.</i> Omega, Barcelona, Espa&ntilde;a. pp. 138&#45;140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097631&pid=S0188-8897201200020000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez, S. M. &amp; 0. C. Carmona. 2002. Balance energ&eacute;tico de Acocil <i>Cambarellus montezumae</i> (Saussure) (Crustacea:Astacidae:Cambaridae): Perdida de energ&iacute;a en la tasa metab&oacute;lica. <i>I Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura (CIVA).</i> pp. 932&#45;938. (<a href="http://www.civa2002.org" target="_blank">http://www.civa2002.org</a>).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097633&pid=S0188-8897201200020000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rouse, D. B. 1995 Australian crayfish culture in the Americas. <i>Journal of Shellfish Research</i> 14: 569&#45;572.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097635&pid=S0188-8897201200020000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sierra&#45;Uribe, E., F. D&iacute;az&#45;Herrera &amp; L. F. B&uuml;ckle&#45;Ram&iacute;rez. 1997. Effect of unilateral eyestalk ablation on the physiological energetics of <i>Pro&#45;cambarus clarkii</i> (Decapoda:Cambaridae) <i>Rivista Italiana di Acquacoltura</i> 32: 105&#45;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097637&pid=S0188-8897201200020000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taboada, G., G. Gaxiola, R. Pedroza, A. S&aacute;nchez, A. Soto &amp; C. Rosas. 1998. Oxigen consumption and ammonia&#45;N excretion related to protein requirements for growth of white shrimp, <i>Penaeus setiferus</i> (L.), juveniles. <i>Aquaculture Research</i> 29: 823&#45;833.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097639&pid=S0188-8897201200020000500049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thompson, K., L. Muzinic, D. Tracey &amp; C. Webster. 2003. Effect on growth, survival, and fatty acid composition of australian red claw crayfish <i>Cherax quadricarinatus</i> fed practical diets with and without suplemental lecithin and/or colesterol. <i>Journal of the World Aquaculture Society</i> 34: 1&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097641&pid=S0188-8897201200020000500050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Valdez S&aacute;nchez, G. 2002. Determinaci&oacute;n de la preferencia t&eacute;rmica y fisiolog&iacute;a energ&eacute;tica de juveniles de <i>Litopenaeus vannamei</i>aclimatados a diferentes salinidades. Tesis de Maestr&iacute;a. CICESE. Ensenada, B. C. M&eacute;xico, 68 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097643&pid=S0188-8897201200020000500051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vega&#45;Villasante F., H. Nolasco &amp; R. Civera. 1995. The digestive enzymes of the Pacific Brown shrimp <i>Penaeus californiensis</i> .II. Properties of protease activity in the whole digestive tract. <i>Comparative Biochemical and Physiology</i> 112B (1): 123&#45;29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097645&pid=S0188-8897201200020000500052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Villareal, H. 1991. A partial energy budget for the Australian crayfish, <i>Cherax tenuimanus. Journal World Aquaculture Society</i> 22: 252259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097647&pid=S0188-8897201200020000500053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Villarreal, H. &amp; J. Pel&aacute;ez. 1999. Nutrici&oacute;n y alimentaci&oacute;n de redclaw. <i>Memorias del Curso Te&oacute;rico&#45;Pr&aacute;ctico de Cultivo de redclaw en Mexico. </i>pp. 1&#45;21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097649&pid=S0188-8897201200020000500054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Villarreal, H. 2002. Avances en la nutrici&oacute;n de <i>Cherax quadricarinatus.</i> In: Cruz&#45;Su&aacute;rez, L. E., D. Ricque&#45;Marie, M. Tapia&#45;Salazar, M. G. Gaxiola&#45;Cort&eacute;s &amp; N. Simoes. (Eds.). <i>Avances en Nutrici&oacute;n Acu&iacute;cola VI.</i> Memorias del VI Simposium Internacional de Nutrici&oacute;n Acu&iacute;cola. Canc&uacute;n, Q. R, M&eacute;xico. 593 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097651&pid=S0188-8897201200020000500055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Webster, C. D., L. S. Goodgame&#45;Tiu, J. H. Tidwell &amp; D. B. Rouse. 1994. Evaluation of practical feed formulations with different protein levels for juvenile red claw crayfish <i>(Cherax quadricarinatus). Transactions Kentucky Academic Science</i> 55: 108&#45;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097653&pid=S0188-8897201200020000500056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Woodland, D. J. 1967. Population study of a freshwater crayfish, <i>Cherax albidus</i> Clark. Ph. D. Thesis, University of New England. 221 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097655&pid=S0188-8897201200020000500057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zar, J. H. 1999. <i>Biostatiscal Analysis.</i> Prentice Hall. Sexta edici&oacute;n. USA. pp. 25&#45;150.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4097657&pid=S0188-8897201200020000500058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>       ]]></body><back>
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