Identificación de la flora bacteriana en la tortuga lora(Lepidochelys kempii)en el ejido Barra Galindo, Tuxpan, Veracruz, México

Identification of the bacterial flora in Kemp's Ridley sea turtle(Lepddochelys kempii)in Barra Galindo, Tuxpan, Veracruz, México

Arturo Serrano,¹ Laura Vázquez-Castán,¹ Claudia G. Sánchez Silva,¹ Agustín de Jesús Basañez-Muñoz² y Celina Naval-Ávila¹

¹ Laboratorio de Mamíferos Marinos, Universidad Veracruzana, Tuxpan, Veracruz, México, km 7.5 Carretera Tuxpan-Tampico, México. E-mail: arserrano@uv.mx

² Laboratorio de Preservación y Conservación de Ecosistemas, Universidad Veracruzana, km 7.5 Carretera Tuxpan-Tampico, Col. Universitaria. Tuxpan, Veracruz, 92850. México.

Recibido: 5 de septiembre de 2011.
Aceptado: 3 de julio de 2012.

RESUMEN

La tortuga lora (Lepidochelyskempii) es una especie considerada en peligro de extinción por las leyes mexicanas y por varios organismos internacionales. Una de las principales amenazas a la existencia de este quelonio, es su captura indiscriminada y la destrucción de sus nidos por parte de los seres humanos. Un peligro adicional son los agentes etiológicos virales, bacterianos o micóticos. El presente estudio se llevó a cabo en el área de conservación "Campamento tortuguero Ejido Barra Galindo", Tuxpan, Veracruz. Se tomaron muestras de hembras anidadoras, de crías y de los nidos. En total se obtuvieron 14 especies de bacterias, de las cuales 10 fueron Gram negativas y cuatro Gram positivas. Las especies identificadas fueron: Aeromonas hydrophila, Bacillus sp., Citrobactersp., Edwardsiella sp., Enterobacter sp., Escherichia coli, Flavobacterium sp., Mycobacterium sp., Proteus sp., Pseudomonas sp., Salmonella sp., Staphylococcus sp., Streptococcus aureus y Vibrio alginolyticus. Las cuatro bacterias más frecuentes fueron: Edwardsiella sp., Escherichia coli., Salmonella sp. y Vibrio alginolyticus. Este tipo de estudios permitirá conocer el papel que juegan las bacterias patógenas en las enfermedades infecciosas de las tortugas marinas y cómo estas afectan la sobrevivencia de sus poblaciones en condiciones naturales.

Palabras clave: Flora bacteriana, Golfo de México, Lepidochelys kempii, tortuga lora, tortugas marinas.

ABSTRACT

Kemp's Ridley turtle (Lepidochelys kempii) is considered as critically endangered by Mexican laws and by several international organizations. One of the main dangers is the indiscriminate capture and destruction of nests by humans, and a second source of mortality are viral, as well as bacterial or fungal infections. This study took place in the conservation area "Campamento tortuguero Ejido Barra Galindo", Tuxpan, Veracruz. Samples were obtained from nesting females, hatchlings, and nests. In total 14 bacterial species were identified, 10Gram negative and four Gram positive. The species identified were: Aeromonas hydrophila, Bacillus sp., Citrobacter sp., Edwardsiella sp., Enterobacter sp., Escherichia coli, Flavobacterium sp., Mycobacterium sp., Proteussp., Pseudomonas sp., Salmonella sp., Staphylococcus sp., Streptococcus aureus and Vibrio alginolyticus. The four more frequent were: Edwardsiella sp., Escherichiacoli, Salmonella sp. and Vibrio alginolyticus. This type of studies may allow an understanding of the role played by microorganisms in infectious diseases of marine turtles and how they may affect the survival of natural populations of these animals under natural conditions.

INTRODUCCIÓN

La tortuga lora (Lepidochelys kempii Garman, 1880) es una especie considerada en peligro de extinción por las leyes mexicanas (SEMARNAT, 2010) y por varios organismos internacionales (IUCN, 2011; CITES, 2011). Una de las principales amenazas a su existencia es la captura indiscriminada y la destrucción de sus nidos por parte de los seres humanos (Eckert et al., 2000). Existen otras causas que han mermado la población de la tortuga marina, como la pesca incidental por palangre o trasmallo y la destrucción de sus sitios de alimentación, descanso y anidación (Eckert et al., 2000). Otra amenaza son las infecciones por agentes virales, bacterianos o micóticos, que actúan directa o indirectamente, desencadenando patologías graves (Ruiz et al., 2000; Orós et al., 2005; Gamez et al., 2009; Sarmiento-Ramírez et al., 2010).

El nivel de la contaminación microbiana de la arena de playas de anidación varía constantemente por efecto de factores climáticos, de las mareas, de las excavaciones de animales y de la concentración de materia orgánica, entre otros (Acuña et al., 2000). Se ha sugerido que el aumento de la contaminación microbiana de la arena contribuye a la disminución de la viabilidad de los huevos, motivo por el cual es importante desarrollar estudios sobre patologías en tortugas y sus huevos.

Algunas patologías son procesos que ocurren de forma natural, ya que la calidad de vida en el hábitat de las tortugas marinas predispone al padecimiento de diversas enfermedades (Orós, 2004). Los estudios bacteriológicos en tortugas silvestres son importantes, puesto que permiten conocer el papel que juegan estos microorganismos en las enfermedades infecciosas y cómo afectan la sobrevivencia de las poblaciones de tortugas marinas en condiciones naturales (Santoro et al., 2006). El objetivo del presente trabajo fue identificar algunas de las bacterias que se encuentran en hembras anidadoras de la especie L. kempii en las playas del ejido Barra Galindo, Tuxpan, Veracruz, México.

MATERIALES Y MÉTODOS

El área de conservación Barra Galindo se encuentra entre Tuxpan y Tamiahua, a 17 km del centro de Tuxpan. Se encuentra delimitada por las coordenadas (21° 1'59.33" N - 21°9'13.49" N y 97°20'17.05" O y 97°23'38.88" O) y tiene una extensión de 12 km de playa. La temporada de anidación de L. kempii es de abril a octubre, por lo que se realizaron recorridos en estos meses para buscar hembras anidadoras de la tortuga lora, sus nidos y sus crías.

Toma de datos: Se recorrieron 12 km de costa en un horario de 11:00 a 16:00 hrs. Una vez encontrada la hembra se observó, con sumo cuidado de no ser visto por la tortuga, en qué actividad se encontraba (haciendo el nido, ovopositando o cubriendo el nido). Cuando la tortuga se encontró ovopositando se procedió a tomar las muestras.

La técnica de tinción de membranas consiste en teñir con tintes específicos diversas muestras de bacterias en un portaobjetos para saber si se han teñido o no con dicho tinte. Una vez adicionado los tintes específicos en las muestras y hecho el lavado la muestra fue limpiada con unas gotas de alcohol etílico para eliminar el tinte de las bacterias, y es aquí donde se reconocen las bacterias: si la bacteria conserva el tinte, es Gram positiva, y en el caso de que el tinte no se mantenga, es Gram negativa. Cada colonia de bacterias fue aislada en placas de agar y finalmente identificadas con pruebas bioquímicas rutinarias establecidas por Bisping y Amtsberg (1988). Algunos colonias fueron identificadas hasta género y otras hasta especie.

Muestras bacteriológicas en hembras: Se tomaron dos muestras superficiales, a cada hembra, una de ojos y la otra de la cloaca. En total se tomaron muestras de 57 hembras. Estas muestras se tomaron con la ayuda de hisopos estériles con medio de transporte Stuart, eligiéndose estos dos órganos, debido a que son conductos de secreción externa y eliminación corporal de la tortuga.

Muestras bacteriológicas en nidos: La muestra fue tomada cuando se notaba la presencia de líquido amniótico en la arena después del desove. Cuando no se observaron hembras anidando, se siguió el rastro hasta encontrar la cama y con ayuda de una vara se procedió a buscar el nido, introduciéndola y empujándola suavemente en toda la zona de la cama (es importante mencionar que la cama es una parte del nido). Esta técnica se realizó para no romper algún huevo dentro del nido.

Muestras bacteriológicas en crías: En el momento de la eclosión, las crías fueron frotadas con hisopos, en un número correspondiente al 10% del total de crías por nido. Las crías fueron elegidas al azar. El frote se hizo a través de toda la cría (cabeza, caparazón y aletas) para obtener muestras de las bacterias presentes sobre su cuerpo.

RESULTADOS

Para la toma de muestras, se realizó un total de 14 recorridos en la playa Barra Galindo en busca de hembras anidadoras. En total se obtuvieron 154 muestras entre hembras, crías y nidos, de las cuales se aislaron 14 cepas (10 Gram negativas y cuatro Gram positivas; Fig. 1a), cuatro de las cuales se identificaron a nivel de especie y las 10 restantes sólo a nivel de género.

Las cepas identificadas fueron las siguientes: Aeromonas hydrophila (Chester) Stainer, Bacillus sp., Citrobacter sp., Edwardsiella sp., Enterobacter sp., Escherichia coli Migula, Flavobacterium sp., Mycobacterium sp., Proteus sp., Pseudomonas sp., Salmonella sp., Staphylococcus sp., S. aureus Rosenbach y Vibrio alginolyticus (Miyamoto) Sakazaki.

Del total de cepas encontradas, siete se obtuvieron de las muestras oculares, 12 de las muestras cloacales, 11 de los nidos y seis de las crías (Fig. 2): Las cuatro siguientes resultaron comunes a todos los tipos de muestra: Edwardsiella sp., E. coli., Salmonella sp. y V. alginolyticus (Fig. 1b-e).

Bacterias en muestras oculares: En estas muestras, se observaron Edwardsiella sp., E. coli, Flavobacterium sp., Proteus sp., Salmonella sp., S. aureus y V. alginolyticus. Entre estas, las que se observaron con mayor frecuencia fueron Salmonella sp. y E. coli, con un 21% cada una (Fig. 1b).

Muestras en cloacas: En las muestras analizadas se observaron A. hydrophila, Bacillus sp., Citrobacter sp., Edwardsiella sp., Enterobacter sp., E. coli, Flavobacterium sp., Proteus sp., Pseudomonas sp., Salmonella sp., S. aureus y V. alginolyticus, siendo las más frecuentes Citrobacter sp. y Flavobacterium sp. (Fig. 1c).

Bacterias en nidos: En las muestras obtenidas de los nidos se observaron las bacterias A. hydrophila, Bacillus sp., Edward-siella sp., Enterobacter sp., E. coli, Mycobacterium sp., Proteus sp., Pseudomonas sp., Salmonella sp., Staphylococcus sp. y V. alginolyticus, siendo las más frecuentes Pseudomonas sp. con un 17% de repeticiones, seguida por Enterobacter sp. con 15% (Fig. 1d).

Bacterias en crías: En las muestras tomadas de las crías se observó a Edwardsiella sp., Enterobacter sp., E. coli, Pseudomonas sp., Salmonella sp., Staphylococcus sp. y V. alginolyticus; siendo las más frecuentes E. coli y Salmonella sp. (Fig. 1e).

DISCUSIÓN

Los estudios de la flora bacteriana presente en poblaciones silvestres de tortugas marinas son de fundamental importancia, porque permiten evaluar la posible presencia de enfermedades infecciosas causadas por estos microorganismos, que pueden afectar la sobrevivencia de sus poblaciones en condiciones naturales.

Algunas de las bacterias identificadas en este estudio, como por ejemplo E. coli y Salmonella sp., son las causas principales de enfermedades o mortalidad de tortugas, ya que actúan directa o indirectamente, desencadenando patologías graves (Raidal et al., 1998). De acuerdo a Ruiz et al. (2000), las bacterias causantes de mortandad de tortugas por afecciones pulmonares son Staphilococcus, Vibrio y Aeromonas, las cuales fueron encontradas en este estudio.

Se ha observado que la mortalidad de organismos de la especie Chelonia mydas (Linnaeus 1758), se asocia en la mayoría de las veces a la acción de bacterias como Vibrio alginolyticus, Aeromonas hydrophila y Pseudomonas sp., ya que originan en muchos de los casos procesos sépticos (Ruiz et al., 2000), siendo las lesiones primarias cutáneas una puerta de entrada para estos microorganismos, que se diseminan a otros órganos. Las lesiones cutáneas tienen un origen traumático (mordedura, redes o aparejos de pesca) en casi todos los casos (Ruiz et al., 2000). En este trabajo, se encontró que estas mismas bacterias estuvieron presentes en las secreciones corporales de tortugas L. kempii,y por ende existe la posibilidad de que estas bacterias puedan generar condiciones patológicas en las tortugas, dependiendo del estado de estrés y otras patologías presentes en el organismo (Dickinson et al., 2001). Por otra parte Salmonella sp. se ha encontrado en un 94% de todas las especies de quelonios, ofidios y saurios estudiados con ese fin, y ha estado presente en las heces, fosas nasales, oculares y cloacas de las ocho especies de tortugas marinas como flora normal saprófita mencionándose que estas bacterias afectan el 90% de los jóvenes y crías de tortugas y el 18-24% de adultos (Raidal et al., 1998). En el presente estudio fue detectada la presencia de Salmonella sp., aunque no se observaron individuos con heridas. Esto indica que la colonización por esta bacteria no sólo se da a través de las heridas cutáneas, sino que las hembras se deben infectar de otra forma.

Actualmente las ocho especies de tortugas marinas se encuentran en peligro de extinción por diversos factores como la pesca incidental, caza y destrucción de hábitat, entre otros (Eckert et al., 2000). La capacidad de respuesta de estos animales frente a la exposición a un agente infeccioso o trauma físico está modulada por el estrés ambiental (Pereira-Zamora et al., 2007).

Durante las últimas décadas, ha habido un número creciente de informes de enfermedades en tortugas marinas. Además, en los últimos años, se han documentado casos de enfermedades que aparentemente están surgiendo en estas especies, donde la etiología y/o patogénesis siguen siendo desconocidas. Estos casos presentan un riesgo para la sobrevivencia de las tortugas marinas, y por tanto para la salud y la estabilidad de los ambientes marinos bentónicos en los que ellas viven (Flint et al., 2009). Por lo anterior se evidencia la necesidad de realizar nuevos estudios en los que se evalúen los efectos que tienen las bacterias encontradas en este estudio, sobre las poblaciones de tortugas lora en México.

AGRADECIMIENTOS

Estamos inmensamente agradecidos a los revisores del manuscrito y en especial al Dr. Domenico Voltolina por sus valiosos comentarios que ayudaron indiscutiblemente a mejorarlo. Agradecemos el apoyo del Laboratorio Médico Tuxpan, que facilitó sus instalaciones y equipo de investigación, parcialmente patrocinados por el Laboratorio de Mamíferos Marinos de la Universidad Veracruzana Campus Tuxpan, Veracruz.

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