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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Sistema de temperatura, oxígeno y salinidad para la experimentación en ecofisiología]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this work was to build an infrastructure in which one could generate a gradient of temperature, salinity and dissolved oxygen in the water. With the control of these parameters and the combination of them is possible to carried out many experiments in the field of the ecophysiology. The tank was constructed with sheets of clear acrylic with walls 1.1 cm thick, 365 cm length, 31 cm wide, 26 cm high that harbors a volume of 220 L of water. With other systems added to the tank, the dissolved gases in the water can be extracted by mean of degasification or displace with nitrogen. With an electronic control, the temperature can be constant in ± 0.1 ºC or generate a temperature gradient adding chiller to the system. Salinity and dissolved oxygen can be maintained constant or generate a gradient. Another additional electronic control unit allows simulating different daily cycles of light/darkness to imitate circadian rhythms. This light/darkness system and those to control the temperature and the degasification unit were developed and build in the Institution.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="Verdana" size="4">Art&iacute;culo</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Sistema de temperatura, ox&iacute;geno y salinidad para la experimentaci&oacute;n en ecofisiolog&iacute;a</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>System for temperature, oxygen and salinity research in ecophysiology</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>L. Fernando B&uuml;ckle R.<sup>1</sup>, Benjam&iacute;n Bar&oacute;n S.<sup>1</sup>, M&oacute;nica Hern&aacute;ndez R.<sup>1</sup>, Armando Ledo M.<sup>1</sup>, Ricardo Sol&iacute;s A.<sup>2</sup>, Benjam&iacute;n P&eacute;rez E.<sup>2</sup> y Albino Hern&aacute;ndez S.<sup>3</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup>Departamento de Acuicultura, Laboratorio de Instrumentaci&oacute;n Electr&oacute;nica.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>Centro de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y Educaci&oacute;n Superior de Ensenada (C.I.C.E.S.E.), Km 107 Carretera Tijuana &#45; Ensenada. Apdo. Postal 2732, Baja California 22800, M&eacute;xico.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup>Universidad Tecnol&oacute;gica de la Mixteca, Oaxaca, M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 25 de abril de 2003.    <br> Aceptado: 4 de septiembre de 2003</font>.</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo fue construir una infraestructura en la cual se pudiera generar un gradiente de temperatura, salinidad y de ox&iacute;geno disuelto en el agua. El dise&ntilde;o del sistema permite controlar estos par&aacute;metros y con la combinaci&oacute;n de ellos se pueden realizar muchos experimentos en el campo de la ecofisiolog&iacute;a. El estanque horizontal que se utiliz&oacute; para hacer los experimentos fue construido de lamina de acr&iacute;lico transparente con paredes de 1.1 cm de espesor, 365 cm de largo, 31 cm de ancho, 26 cm de alto que alberga un volumen de 220 L de agua. Con otros agregados al sistema y el estanque se pueden extraer los gases disueltos en el agua o desplazarlos con nitr&oacute;geno. La temperatura del agua se puede conservar constante en &plusmn; 0.1 &ordm;C con un control electr&oacute;nico o generar un gradiente de temperatura adicionando un enfriador de agua al sistema. La salinidad y el ox&iacute;geno se pueden mantener de manera uniforme o formar un gradiente. Otra unidad de control electr&oacute;nico adicional permite simular diferentes ciclos diarios de luz/oscuridad para configurar ritmos circadianos que junto al sistema de control de temperatura y de control electr&oacute;nico del degasificador fueron desarrollados y construidos en la Instituci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Sistema, temperatura, ox&iacute;geno, salinidad, ecofisiolog&iacute;a.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of this work was to build an infrastructure in which one could generate a gradient of temperature, salinity and dissolved oxygen in the water. With the control of these parameters and the combination of them is possible to carried out many experiments in the field of the ecophysiology. The tank was constructed with sheets of clear acrylic with walls 1.1 cm thick, 365 cm length, 31 cm wide, 26 cm high that harbors a volume of 220 L of water. With other systems added to the tank, the dissolved gases in the water can be extracted by mean of degasification or displace with nitrogen. With an electronic control, the temperature can be constant in &plusmn; 0.1 &ordm;C or generate a temperature gradient adding chiller to the system. Salinity and dissolved oxygen can be maintained constant or generate a gradient. Another additional electronic control unit allows simulating different daily cycles of light/darkness to imitate circadian rhythms. This light/darkness system and those to control the temperature and the degasification unit were developed and build in the Institution.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> System, temperature, oxygen, salinity, ecophysiology.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los sistemas donde se pueden generar gradientes t&eacute;rmicos se han utilizado en diversas investigaciones para trabajar con organismos marinos y dulceacu&iacute;colas con el fin de conocer la temperatura preferida y las que evitan activamente (Reynolds, 1997). Muchos animales han sido expuestos a intervalos de temperatura utilizando un estanque o acuario que en un extremo se calienta y en el otro se enfr&iacute;a. Los primeros experimentos de este tipo que se hicieron en M&eacute;xico se realizaron en el Laboratorio de Ecofisiolog&iacute;a del Departamento de Biolog&iacute;a de la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico (U.N.A.M.) (Rosas <i>et al</i>., 1986) con el ciclido <i>Sarotherodon mossambicus</i> en un tubo de asbesto de 3.7 m de largo y 0.3 m de di&aacute;metro. Thomas <i>et al</i>. (1963) utilizaron una lamina de aluminio cubierta con agar en la superficie para conocer el crecimiento de las algas. En este tipo de laminas tambi&eacute;n se caracteriz&oacute; el crecimiento y el contenido de l&iacute;pidos de la diatomea <i>Chaetoceros muelleri</i> (McGinnis <i>et al</i>., 1997). Reynolds (1977) hace una exhaustiva retrospecci&oacute;n del tema y presenta un "shuttlebox" para estudiar las respuestas de los organismos con un diagrama del "ictiotron" para estudiar simult&aacute;neamente aspectos de termorregulaci&oacute;n, preferencia por la intensidad de luz y ritmos de actividad locomotora del huro <i>Micropterus salmoides</i> (Lacep&egrave;de, 1802) y la trucha caf&eacute; <i>M. dolomieui</i> Lacep&egrave;de, 1802. Rocha y Branco (1998) equiparon a <i>Rana catesbiana</i> con sondas de temperatura y las estudiaron en un intervalo t&eacute;rmico de 10&#45;40 &ordm;C. Tambi&eacute;n, se han generado intervalos t&eacute;rmicos verticales para conocer las respuestas al ambiente en juveniles del salm&oacute;n <i>Oncorhynchus keta</i>. Los sistemas donde se generan cambios t&eacute;rmicos tambi&eacute;n se pueden utilizar como incubadores para estudiar el efecto de la temperatura en el desarrollo embriol&oacute;gico y eclosi&oacute;n como se hizo con el jurel <i>Trachurus trachurus</i> (Linnaeus, 1758) (Pipe &amp; Walker, 1987). Chen y Chen (1991) estudiaron la selecci&oacute;n de temperatura de la anguila <i>Anguilla japonica</i> en un gradiente que tenia un intervalo de 11 a 31 &deg;C. Espina <i>et al</i>. (1993) estudiaron la temperatura preferida y las evitadas del acocil <i>Procambarus clarkii</i>, as&iacute; mismo B&uuml;ckle <i>et al</i>. (1994,1996) investigaron la relaci&oacute;n de la termorregulaci&oacute;n y los ritmos circadianos de este crust&aacute;ceo y con base en el comportamiento termorregulador los autores enfocaron sus resultados aplic&aacute;ndolos al cultivo de la especie. Hecht (1994) estudi&oacute; el comportamiento termorregulador del abul&oacute;n <i>Haliotis midae</i> y su aplicaci&oacute;n en el cultivo intensivo. El comportamiento termorregulador y el desove de moluscos como el caracol marino <i>Bulla gouldiana</i> fue estudiado por D&iacute;az <i>et al</i>., (1996). Hern&aacute;ndez <i>et al</i>. (1995) describen el comportamiento del langostino <i>Macrobrachium tenellum</i> expuesto a un gradiente t&eacute;rmico y los resultados del &aacute;rea de preferencia t&eacute;rmica fueron incorporados en el contexto del cambio clim&aacute;tico global (Hern&aacute;ndez &amp; B&uuml;ckle, 1997). En un estanque con un gradiente de temperatura establecido se estudi&oacute; la tolerancia t&eacute;rmica del pec&iacute;lido <i>Poecilia sphenops</i> (Hern&aacute;ndez &amp; B&uuml;ckle, 2002a) y tambi&eacute;n el efecto de la temperatura de aclimataci&oacute;n en la temperatura preferida (Hern&aacute;ndez <i>et al</i>., 2002b).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Keiser y Aldrich en 1973 hacen un extenso an&aacute;lisis de los sistemas que se utilizan para generar los gradientes salinos los cuales se utilizaron para conocer la preferencia salina de los oligoquetos (Jansson, 1962) en c&aacute;maras con diferencias abruptas de salinidad. Hodgson (1951) y Jones (1947) emplearon un gradiente horizontal de salinidad donde introdujeron agua con diferentes salinidades en cada extremo del estanque. Este arreglo fue modificado introduciendo agua con diferentes soluciones salinas para que los organismos nadaran en busca de la fuente de su preferencia. Tambi&eacute;n, se han ensayado gradientes salinos verticales organizados con diferentes capas de agua con soluciones salinas discontinuas. Doudoroff (1938) introdujo agua con diferentes salinidades en catorce &aacute;reas o puntos de un estanque horizontal y Hansen (1972) mezcl&oacute; agua de mar con agua dulce para producir un gradiente horizontal. En general los gradientes salinos han sido adaptados a las exigencias del estadio de desarrollo, tama&ntilde;o y comportamiento de los organismos (Keiser &amp; Aldrich, 1973). El gradiente horizontal sin barreras salinas que se describe en este trabajo tiene el principio de inyectar continuamente agua dulce y de mar en los extremos del estanque.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo se remonta a varios a&ntilde;os de experimentaci&oacute;n, perfeccionamiento e integraci&oacute;n de un sistema para la investigaci&oacute;n ecofisiol&oacute;gica en organismos marinos y dulceacu&iacute;colas. Con los resultados de numerosas experiencias se concluye con un sistema flexible en el que se pueden hacer diversos experimentos para conocer la termo y halotolerancia en diferentes etapas de la vida temprana de los animales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Diagrama del sistema</b>. La <a href="#f1">figura 1</a> muestra la disposici&oacute;n general del sistema. Todas las partes que constituyen el sistema no funcionan simult&aacute;neamente y depende del objetivo que tenga el experimentador.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>El estanque experimental</b>. El estanque fue construido con l&aacute;minas de acr&iacute;lico transparente de 1.1 cm de grosor, 365 cm de longitud, 31 cm ancho y 26 cm de alto (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 a</a>) y tiene un volumen total de 220 L. El estanque esta sobre una base met&aacute;lica de aluminio de 90 cm de alto y 39.5 cm de ancho montada sobre ruedas y con tornillos que permiten equilibrarla y mantenerla horizontal (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 b</a>). En el interior y a lo largo del estanque sujeto a una tuber&iacute;a de PVC de 2.5 cm de di&aacute;metro rellena con arena y sellada en sus extremos con tapones de PVC, se instal&oacute; una manguera de irrigaci&oacute;n con poros peque&ntilde;os que permite difundir el aire uniformemente (difusor central <a href="#f3">Fig. 3 j</a>) en toda la columna de agua. En cada extremo del estanque se incluy&oacute; una c&aacute;mara construida de tubo PVC de 20.3 cm de di&aacute;metro y 29 cm de largo (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 d</a> y <a href="#f3">Fig. 3 b</a>) en cuya base se instalaron tres llaves de paso de 1/2 pulgada (<a href="#f3">Fig. 3 c</a>). En un extremo del estanque se sumergieron dos calentadores de titanio de 1,000 W cada uno (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Figs. 2</a> d y <a href="#f3">3 g</a>) y dos termistores (YSI 44106) conectados a un controlador electr&oacute;nico (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Figs. 2 e</a> y <a href="#f3">3 h</a>) que mantienen la temperatura en &plusmn;1 &ordm;C. El agua se enfr&iacute;a en el otro extremo del estanque por medio de un intercambiador de calor (HX &#45;100, Neslab, <a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 f</a>). La pared del estanque fue marcada para dividirlo en 15 c&aacute;maras virtuales. La temperatura en cada c&aacute;mara se midi&oacute; con un term&oacute;grafo (SR 630 Stanford Research System) con15 termistores (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 g</a>) que transmiten la informaci&oacute;n recabada, en un intervalo de tiempo prefijado por el operador, a una impresora o a una computadora. Una motobomba de 1/20 HP puede recircular el agua del estanque (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 h</a>) y otra de mayor capacidad puede impulsar el agua a un degasificador (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Figs. 2 i</a> y <a href="#f3">3 k</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Unidad electr&oacute;nica de control de temperatura</b>. El circuito de esta unidad est&aacute; basado en un microcontrolador inteligente, programado para ejecutar las funciones de medici&oacute;n, despliegue y control de la temperatura del agua (<a href="#f4">Fig. 4</a>). El sensor utilizado en el circuito es un termistor de alta precisi&oacute;n que var&iacute;a su resistencia el&eacute;ctrica en funci&oacute;n de la temperatura del agua. El microcontrolador mide el valor de resistencia del termistor, lo convierte a temperatura y env&iacute;a la informaci&oacute;n a una pantalla de tres d&iacute;gitos que la despliega con una resoluci&oacute;n de 0.2 &ordm;C. Para controlar la temperatura del agua se selecciona un punto de ajuste entre 0 y 65 &ordm;C. Si la temperatura es menor que el punto de ajuste, el microcontrolador enciende un relevador electr&oacute;nico de potencia que alimenta con voltaje a una resistencia el&eacute;ctrica de hasta 4,000 vatios para que caliente el agua. Cuando la temperatura del agua es igual o mayor que el punto de ajuste, el relevador se desactiva. Para aumentar la precisi&oacute;n del circuito el microcontrolador ejecuta un ciclo de calibraci&oacute;n previo a cada ciclo de medici&oacute;n leyendo una resistencia de precisi&oacute;n cuyo valor est&aacute; almacenado en el programa. La diferencia entre la lectura real y el valor programado, corresponde a los errores de primer orden provocados por los cambios en la temperatura ambiental, tolerancia de los componentes y variaciones del voltaje de alimentaci&oacute;n que son eliminados. El micro&#45;controlador trabaja a cuatro Megahertz de velocidad, lo que permite realizar aproximadamente en un tercio de segundo un periodo completo de medici&oacute;n, despliegue y control de la temperatura. Una botonera permite al usuario programar y ver en la pantalla el punto de ajuste de la temperatura y tres l&aacute;mparas indicadoras se&ntilde;alan el estado de operaci&oacute;n del controlador (<a href="#f4">Fig. 4</a>), la presencia de voltaje, la activaci&oacute;n del relevador y la selecci&oacute;n del punto de ajuste.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Temperatura constante</b>. Para obtener una temperatura constante en todo el estanque, se fija la temperatura del agua en la caja de control de los calentadores (<a href="#f4">Fig. 4</a> ). Para que la energ&iacute;a transferida por los calentadores (constituidos por dos resistencias de 1,000 vatios cada uno) se reparta uniformemente se incluye la motobomba de 1/20 HP que recircula el agua entre los extremos del estanque (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 h</a>). El agua del estanque tambi&eacute;n se puede enfriar con el enfriador o intercambiador de calor y la motobomba de 1/20 HP activada (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2</a>). El difusor central de aire ubicado dentro del estanque evita que el agua de diferente temperatura se estratifique (<a href="#f3">Fig. 3 j</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de temperatura</b>. Para generar un gradiente t&eacute;rmico en el estanque se procede a calentar el agua como en el caso de la temperatura constante pero se excluye la motobomba de recirculaci&oacute;n de 1/20 HP (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 h</a>). Con los aparatos de enfriamiento y calentamiento de agua ubicados en cada extremo del estanque se fija el intervalo de temperatura deseado. Para obtener una buena mezcla del calor y del fr&iacute;o en cada extremo del estanque se incluye una piedra de aireaci&oacute;n (<a href="#f3">Fig. 3 m</a>). El difusor de aire ubicado dentro del estanque (<a href="#f3">Fig. 3 j</a>) permite mantener los niveles adecuados de ox&iacute;geno disuelto y evita la estratificaci&oacute;n de la columna de agua.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sistema para establecer diferentes niveles de ox&iacute;geno (degasificador)</b>. El sistema degasificador fue construido con el principio de generar en el interior de un cilindro vertical de PVC el vac&iacute;o necesario para extraer los gases disueltos del agua (<a href="#f5">Fig. 5</a>). El funcionamiento de los degasificadores han sido descrito por Dawson y Marking (1986), Fuss (1986) y Herman (1995). El que se construy&oacute; para este sistema consiste en un cilindro de PVC c&eacute;lula 40 que tiene 230 cm de altura y 10.1 cm de di&aacute;metro (<a href="#f5">Fig. 5 a</a>). El extremo superior del cilindro tiene una v&aacute;lvula solenoide (<a href="#f5">Fig. 5 b</a>) activada por el sistema electr&oacute;nico (<a href="#f6">Fig. 6</a>) que permite la entrada de agua previamente filtrada que se va a degasificar. En el interior del cilindro hay tres sensores de control de nivel de agua (Flowline, LV10&#45;1301), dos que detectan el nivel superior e inferior del agua (<a href="#f5">Fig. 5 d</a>, <a href="#f5">e</a>) y otro que se&ntilde;ala el nivel cr&iacute;tico de agua del sistema (<a href="#f5">Fig. 5 f</a>) y activa una alarma sonora. La bomba de vac&iacute;o (<a href="#f5">Fig. 5 g</a>g) extrae el aire disuelto en el agua desde la parte superior del cilindro de PVC a trav&eacute;s de un matraz de kitasato de paredes gruesas (<a href="#f5">Fig. 5 h</a>) conectado a un man&oacute;metro que indica la presi&oacute;n negativa dentro del cilindro (<a href="#f5">Fig. 5 i</a>) y una v&aacute;lvula de paso (<a href="#f5">Fig. 5 j</a>) que regula el vac&iacute;o. En la medida que se abre la v&aacute;lvula de paso, esta permite una mayor entrada de aire y en consecuencia disminuye el vac&iacute;o que se ejerce sobre la columna de agua en el interior del cilindro y aumenta la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno. Una motobomba de 1 HP con una turbina magn&eacute;tica (<a href="#f5">Fig. 5 k</a>) conectada a la base del cilindro extrae el agua desgasificada y la impulsa al estanque (<a href="#f5">Fig. 5 l</a>) ya sea en la c&aacute;mara donde se encuentran los calentadores de titanio o en la c&aacute;mara donde se enfr&iacute;a el agua. La <a href="#f6">figura 6</a> muestra la estructura electr&oacute;nica que controla al degasificador.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f5.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para desplazar el ox&iacute;geno disuelto en el agua tambi&eacute;n se puede utilizar un generador de nitr&oacute;geno (Balstron Modelo 75&#45;790) en l&iacute;nea con un compresor de aire de 100 libras de presi&oacute;n que funciona sin aceite (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2</a>). El nitr&oacute;geno se puede inyectar en el difusor central de aireaci&oacute;n ubicado dentro del estanque (<a href="#f3">Fig. 3 i</a>, <a href="#f3">j</a>) o en las c&aacute;maras fr&iacute;a o caliente del sistema.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno constante</b>. Para obtener una concentraci&oacute;n uniforme de ox&iacute;geno disuelto es necesario recircular el agua entre los extremos del estanque con la motobomba de 1/20 HP. La extracci&oacute;n de los gases disueltos se realiza impulsando el agua desde el estanque experimental al degasificador con la motobomba (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 i</a>) y la devuelve al lugar de origen. El nivel de ox&iacute;geno que se desea establecer en el estanque se fija en la v&aacute;lvula de paso que se encuentra en el kitasato (<a href="#f5">Fig. 5 j</a>) inmediatamente despu&eacute;s de la bomba de vac&iacute;o (<a href="#f5">Fig. 5 g</a>). En la medida que esta v&aacute;lvula se abre o se cierra regula el vac&iacute;o en el matraz de kitasato. El ox&iacute;geno disuelto se midi&oacute; con un oxigen&oacute;metro marca YSI Modelo 57 con compensador de salinidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de ox&iacute;geno disuelto</b>. Para generar un gradiente de concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto en el agua de mar o dulce, en el estanque de experimentaci&oacute;n no se utiliza la motobomba de recirculaci&oacute;n de 1/20 HP. Al difusor central de aire que se encuentra en el interior del estanque (<a href="#f3">Fig. 3 j</a>) se agrega una peque&ntilde;a cantidad de aire para mantener el agua del estanque en movimiento. Para extraer los gases disueltos en el agua se procede a trabajar con el degasificador en la misma forma descrita para la concentraci&oacute;n constante de ox&iacute;geno. En la c&aacute;mara distal opuesta a la motobomba (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 i</a>) que extrae el agua del estanque y la impulsa al degasificador, se inyecta aire profusamente a trav&eacute;s de una piedra de aireaci&oacute;n rectangular de 15 x 3.5 cm para mantener la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto al m&aacute;s alto nivel posible.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Si se desea disminuir el ox&iacute;geno disuelto en el agua del estanque m&aacute;s all&aacute; de la capacidad del degasificador, se procede para que la mitad del difusor central reciba aire (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 c</a>) y la otra mitad, nitr&oacute;geno con un 95 % de pureza (0.6 &#45; 0.7 % de O<sub>2</sub>) para disminuir la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno de 2.2 a 0.97 mg/L en 1.5 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Salinidad constante</b>. Para establecer una salinidad lineal en el estanque experimental, los vol&uacute;menes de agua dulce o de agua de mar que se adicionan pueden ser variables, para evitar un gasto excesivo de agua, es recomendable limitarlo, de manera tal que la suma de los fluidos sea de un m&aacute;ximo de 1 L/min. Para producir una mezcla adecuada en todo el estanque se activa la motobomba de recirculaci&oacute;n de 1/20 HP que une las c&aacute;maras de los extremos del estanque (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 h</a>). El estanque inicialmente vac&iacute;o, se llena con agua hasta que se complete el volumen total de 220 L y el remanente de agua dulce o de mar escurre por los tubos de desag&uuml;e instalados en cada uno de los extremos del estanque (<a href="#f3">Fig. 3 d</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para obtener una salinidad lineal se puede utilizar la siguiente ecuaci&oacute;n:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">a &bull; X = b &bull; (x + y) donde a = salinidad (ups) del agua de mar; x = volumen de agua de mar; y = volumen de agua dulce; b = salinidad (ups) deseada por mezcla.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La salinidad se midi&oacute; con un refract&oacute;metro (&plusmn; 1 %thou) marca Vista con compensaci&oacute;n autom&aacute;tica de temperatura (0 &#45;10%) y tambi&eacute;n con un salin&oacute;metro marca LabComp SCT (&plusmn; 0.1 %thou).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de salinidad</b>. Para formar un gradiente salino es necesario tener en cuenta las siguientes condiciones iniciales: el estanque experimental hay que mantenerlo perfectamente horizontal; los desag&uuml;es ubicados en los extremos del estanque (<a href="#f3">Fig. 3 d</a>) deben tener la misma altura para que el agua se descargue por igual en cada uno de los extremos (<a href="#f1">Fig. 1</a>; 12). Los desag&uuml;es est&aacute;n conectados a una de las llaves de paso de 1.3 mm ubicada en la c&aacute;mara fr&iacute;a y caliente (<a href="#f3">Fig. 3</a>). Para iniciar el gradiente salino, el estanque debe estar vac&iacute;o. El volumen de las entradas de agua de mar y dulce se regula con base a la diferencia de unidades de salinidad que se desea establecer entre los extremos del estanque. Las piedras de aireaci&oacute;n que se encuentran ubicadas en las c&aacute;maras de los extremos del estanque se cancelan y el difusor central de aire que se encuentra en el interior del estanque, mantiene el agua aireada y no causa una variaci&oacute;n en la distribuci&oacute;n del gradiente salino.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Substituci&oacute;n continua de agua</b>. Para evitar la acumulaci&oacute;n de productos derivados del metabolismo de los animales en la c&aacute;mara fr&iacute;a o caliente del estanque se agrega un flujo continuo de 80 ml/min de agua dulce o agua de mar para remplazar al menos el 50% del volumen del estanque en 24 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Simulador electr&oacute;nico para establecer la longitud del d&iacute;a y de la noche</b>. El laboratorio tiene un sistema para simular la longitud del d&iacute;a y la noche. Este sistema se utiliza para estudiar el ritmo circadiano de los organismos y est&aacute; constituido por una unidad electr&oacute;nica (<a href="#f7">Fig. 7</a>) que tiene la caracter&iacute;stica de fijar el momento de la iniciaci&oacute;n o t&eacute;rmino del d&iacute;a o la noche, encender o apagar paulatinamente la luz, y extender o acortar la duraci&oacute;n entre ambas situaciones con base en los objetivos de los experimentos.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f7"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f7.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Primero el aparato genera una frecuencia fija como referencia (base de tiempo). Despu&eacute;s se selecciona el tiempo de amanecer/atardecer en dos interruptores rotatorios, uno para las horas (con 10 posiciones numerados del cero al nueve donde "1" corresponder&aacute; a una hora y as&iacute; sucesivamente) y el otro para los minutos (con 7 posiciones numeradas del 0 al 60 en pasos diez en diez). Las salidas de los selectores se conectan con dos codificadores que convierten los n&uacute;meros seleccionados a binario y pasan a un bloque sumador para obtener las horas y los minutos expresados en una sola cantidad. La frecuencia de base de tiempo se divide entre este n&uacute;mero en un bloque divisor de frecuencia programable. El contador U/D (<a href="#f7">Fig. 7</a>) toma la salida del divisor como entrada de reloj, por consiguiente su velocidad de recuento queda en funci&oacute;n del tiempo seleccionado. El convertidor digital/anal&oacute;gico (D/A) (<a href="#f7">Fig. 7</a>) recibe el recuento, genera una rampa de voltaje con una velocidad proporcional a la del recuento. La rampa de voltaje contin&uacute;a por un circuito de disparo que controla el &aacute;ngulo de conducci&oacute;n de un Triac conectado a las l&aacute;mparas, entonces mientras el nivel de la rampa aumenta, el brillo de las l&aacute;mparas tambi&eacute;n y viceversa. Con el ajuste de los limites m&iacute;nimo y m&aacute;ximo de la rampa generada por el convertidor D/A se obtiene el ajuste de la intensidad m&iacute;nima y m&aacute;xima en las l&aacute;mparas. Para que el ciclo sea completamente autom&aacute;tico el bloque de control recibe las alarmas de dos relojes, uno para la hora de amanecer y otra para el atardecer. Cuando una de las alarmas se activa el control habilita la base tiempo para que se inicie el sistema, as&iacute; mismo impone al contador aumentar o disminuir, dependiendo de la alarma que haya recibido y detiene el sistema cuando termina de ejecutar el ciclo y lo mantiene esperando para ejecutar el siguiente periodo (<a href="#f7">Fig. 7</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fuente de luz artificial</b>. Frente al estanque se instal&oacute; un banco luz blanca constituida por siete focos de 75 vatios conectados a una resistencia variable (<a href="#f8">Fig. 8, A B a</a>) y dos focos ne&oacute;n rojos de 75 vatios, 244 cm de largo cada uno para trabajar durante la noche (<a href="#f8">Fig. 8, A B b</a>). Waterman (1961) propuso que para observar el comportamiento de algunos crust&aacute;ceos sensibles a la luz, podr&iacute;a minimizarse cualquier perturbaci&oacute;n utilizando luz roja. La estructura tiene ruedas para moverla y sostiene una cortina de color azul oscuro en cuya parte superior se hicieron peque&ntilde;as ventanas para observar el comportamiento de los organismos en el estanque experimental (<a href="#f8">Fig. 8 B, c</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f8"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f8.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusion</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>El sistema</b>. Este trabajo es el resultado de a&ntilde;os de &eacute;xitos y fracasos que sirvieron para establecer un sistema que consideramos de gran utilidad para la experimentaci&oacute;n en algunos aspectos del campo de la ecofisiolog&iacute;a. El sistema descrito ha resultado altamente eficaz y flexible para los objetivos de la investigaci&oacute;n experimental.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La temperatura, el ox&iacute;geno y la salinidad se pueden modular en forma uniforme o gradual pero tambi&eacute;n es posible formar gradientes con pares de variables y adem&aacute;s con el conjunto de las tres. Los experimentos se repitieron varias veces para comprobar que las variables se manten&iacute;an en los niveles proyectados. Con toda la infraestructura descrita se han hecho experimentos con moluscos <i>(Bulla gouldiana)</i>, crust&aacute;ceos <i>(Litopenaeus vannamei)</i>, peces <i>(Poecilia sphenops, Totoaba macdonaldi, Hypsypops rubicundus, Atractoscion nobilis)</i> en experimentos agudos (1 h ) o cr&oacute;nicos (24 h o m&aacute;s) y tambi&eacute;n con las microalgas <i>Rhodomonas</i> sp y <i>Chaetoceros</i> sp. Al comparar con otros sistemas descritos, este tiene la posibilidad de trabajar con las variables temperatura, salinidad y ox&iacute;geno que afectan la fisiolog&iacute;a de los organismos marinos o dulceacu&iacute;colas. Con un reloj electr&oacute;nico tambi&eacute;n se puede modular la longitud del d&iacute;a y de la noche y si es necesario trabajar de noche en experimentos cr&oacute;nicos la fuente de luz artificial proporciona la luz roja.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Temperatura constante</b>. Todo el estanque puede uniformarse a una temperatura constante para lo cual es necesario activar una motobomba de 1/20 HP para recircular el agua dulce o de mar entre las c&aacute;maras (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Figs. 2 d</a> y <a href="#f3">3 b</a>) ubicadas en los extremos del estanque. Para que el agua fluya entre las c&aacute;maras se utilizan las llaves de paso de 1/2 pulgada ubicadas en la base de las c&aacute;maras fr&iacute;a y caliente (<a href="#f3">Fig. 3c</a>). Despu&eacute;s se determina la temperatura deseada con la unidad de control electr&oacute;nica (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Figs. 2e</a> y <a href="#f4">4</a> ). Cuando se utilizan calentadores de titanio, la energ&iacute;a transferida al agua se puede regular a partir de la temperatura ambiental hasta 40 &ordm;C y puede aumentarse con otros calentadores de titanio si las condiciones de los experimentos lo requieren. Para mantener la temperatura del agua sin variaciones verticales, es necesario inyectar aire en el difusor central (<a href="#f3">Fig. 3 i</a>, <a href="#f3">j</a>) ubicado en el interior del estanque experimental que produce un movimiento circular del agua.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tambi&eacute;n es posible experimentar con temperaturas constantes bajas utilizando un enfriador de agua (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 f</a>), que disminuye la temperatura con base en la capacidad de extracci&oacute;n de calor que tenga. La unidad de enfriamiento tiene una motobomba que extrae el agua, la enfr&iacute;a y la impulsa nuevamente al estanque. La temperatura baja tambi&eacute;n se mantiene invariable en la vertical si al conjunto se incluye la motobomba de recirculaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 h</a>). Por ejemplo, el enfriador puede estabilizar la temperatura inicial de 23 &ordm;C de los 220 L del estanque, a 11.4 &ordm;C despu&eacute;s de 4 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de temperatura</b>. Para formar un gradiente t&eacute;rmico se prescinde de la motobomba de recirculaci&oacute;n de 1/20 HP que se utiliza para mantener la temperatura constante en el estanque. Con el control electr&oacute;nico (<a href="#f4">Fig. 4</a>) se precisa la temperatura experimental deseada en la c&aacute;mara caliente del estanque que apaga y enciende autom&aacute;ticamente a dos calentadores de titanio de 1,000 vatios cada uno. Con el enfriador se fija la temperatura del agua en el extremo opuesto del estanque. El investigador puede establecer la diferencia de temperatura que desea entre los extremos del estanque y esto depende de las capacidades de los aparatos que utiliza para enfriar o calentar el agua. Se han experimentado gradientes de temperatura con una diferencia m&aacute;xima de 30 &ordm;C entre los c&aacute;maras d&iacute;stales del estanque de 3.65 m. Durante el proceso de la formaci&oacute;n del gradiente de temperatura, los termistores transmiten una se&ntilde;al con la temperatura local de cada c&aacute;mara virtual al term&oacute;grafo SR 630 (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 g</a>) que las inscribe en una impresora o directamente a una computadora.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno constante</b>. El degasificador (<a href="#f5">Fig. 5</a>) puede extraer el ox&iacute;geno disuelto del agua de mar del estanque con 20.8 &ordm;C, 37 uds y con una concentraci&oacute;n inicial promedio de 7.11 mg/L a una concentraci&oacute;n final promedio de 2.2 mg/L en 1h (<a href="#f9">Fig. 9</a>). La extracci&oacute;n de los gases efectuada en el degasificador se hizo con un vac&iacute;o de &#45; 35 psi. La concentraci&oacute;n del ox&iacute;geno extra&iacute;da por el degasificador se puede regular en la v&aacute;lvula de paso ubicada en el kitasato (<a href="#f5">Fig. 5 j</a>) al nivel que estime el investigador.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f9"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f9.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el estanque lleno de agua dulce (1 uds) se procede en forma similar. El estanque con un promedio inicial de 9.25 mg/L de ox&iacute;geno disuelto (<a href="#f9">Fig. 9</a>) puede disminuir con el degasificador a 2.53 mg/L en 1.5 h y puede continuar disminuyendo a 1.69 mg/L si el agua se expone 1 h m&aacute;s a la inyecci&oacute;n del nitr&oacute;geno. La motobomba de recirculaci&oacute;n de 1/20 HP mantiene la condici&oacute;n experimental establecida.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de ox&iacute;geno disuelto</b>. En el estanque lleno de agua dulce o agua de mar se puede generar un gradiente de ox&iacute;geno. El agua del estanque se transfiere por medio de la motobomba (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 i</a>) al degasificador que despu&eacute;s de ser procesada se re&#45;inyecta en la misma c&aacute;mara donde adem&aacute;s, si es necesario disminuir la concentraci&oacute;n de los gases se puede adicionar nitr&oacute;geno a trav&eacute;s de una piedra de aireaci&oacute;n rectangular de 15 x 3.5 cm (<a href="#f3">Fig. 3 m</a>). La experiencia de trabajo experimental se&ntilde;ala que es importante inyectar nitr&oacute;geno en el difusor central para obtener el gradiente de ox&iacute;geno. Con otra piedra de aireaci&oacute;n, en la c&aacute;mara opuesta, se inyecta el aire profusamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#f10">figura 10</a> muestra el proceso de la extracci&oacute;n de ox&iacute;geno del estanque lleno con agua dulce o agua de mar. En ambos el procedimientos se inici&oacute; primero con el degasificador que re&#45;circulaba el agua en un extremo del estanque. Cuando el ox&iacute;geno disuelto del agua comenz&oacute; a estabilizarse se inici&oacute; la inyecci&oacute;n de nitr&oacute;geno con un 95% de pureza (0.6 &#45; 0.7 % O<sub>2</sub>). Este proceso es m&aacute;s lento en el agua dulce, que requiere cerca de 300 min y el agua de mar 150 min. Una vez que el gradiente de ox&iacute;geno se estabiliza se mantiene sin variar. Si el operador solo dispone de nitr&oacute;geno, este se inyecta en la piedra de aireaci&oacute;n y en la v&aacute;lvula de paso del aire (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2</a>) del mismo lado del estanque y en el extremo opuesto se insufla el aire en la piedra de aireaci&oacute;n y en la v&aacute;lvula de paso del difusor central. En esta forma la mitad del difusor central (<a href="#f3">Fig. 3 j</a>) recibe nitr&oacute;geno y la otra aire. La <a href="#f10">figura 10</a> es el resultado de la distribuci&oacute;n del ox&iacute;geno disuelto en todas las c&aacute;maras del estanque. El proceso se inicia en el estanque con una concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno de 8.0 mg/L y se estabiliza en la c&aacute;mara 1 con 7.2 y la c&aacute;mara 15 con 2.3 mg/L. Este proceso tiene peque&ntilde;as diferencias con respecto al modelo constante pero que en t&eacute;rminos generales configura diferencias significativas (p&lt;0.05) entre los extremos y el centro del estanque.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f10"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f10.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es importante mencionar que la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno en el agua se considera un factor limitante que puede restringir la cantidad de ox&iacute;geno necesario para los procesos metabolitos de los organismos. Con este dispositivo se pueden establecer los l&iacute;mites &oacute;ptimos de ox&iacute;geno que requieren las especies y es un campo de estudio donde se carece de informaci&oacute;n cient&iacute;fica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Salinidad constante</b>. Se aplic&oacute; la ecuaci&oacute;n y se hicieron ensayos de salinidad lineal para 10, 15, 20 y 25 ups. La salinidad inicial del agua de mar fue 35 ups y el agua dulce 1 uds. En los experimentos la salinidad se mantuvo constante en todo el estanque por que la motobomba de 1/20 HP mantiene una excelente recirculaci&oacute;n en el sistema. Adem&aacute;s, no existe una diferencia significativa en la distribuci&oacute;n vertical de la salinidad en todas las c&aacute;maras virtuales del estanque por que el difusor central de aire (<a href="#f3">Fig. 3 j</a>) y la motobomba de recirculaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f2.jpg" target="_blank">Fig. 2 h</a>) la distribuyen uniformemente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de salinidad</b>. Se hicieron experimentos con diferentes vol&uacute;menes de agua de mar y de agua dulce para generar intervalos salinos de 3 a 22 unidades de diferencia entre los extremos del estanque. El agua se dosifica a las c&aacute;maras d&iacute;stales del estanque que se llenan lentamente hasta que se establece el gradiente salino y no tiene variaciones si el volumen de agua que se a&ntilde;ade es constante. El agua que se inyecta en las c&aacute;maras d&iacute;stales del estanque ejercen presi&oacute;n sobre todo el volumen del agua del estanque, por tanto, para que un fluido no predomine sobre el otro, es fundamental que por los desag&uuml;es escurra el volumen correspondiente. Sin embargo, en la medida que la experimentaci&oacute;n requiere que el intervalo de salinidad en el estanque sea mayor, la pr&aacute;ctica se&ntilde;ala que es necesario obligar al volumen del estanque que fluya en una direcci&oacute;n determinada. Por ejemplo, para tener en el estanque un gradiente de 35 ups a 7 ups el fluido debe desaguar en la c&aacute;mara donde se inyecta el agua de mar, de esta manera el agua dulce presiona el fluido, generando el gradiente programado. Con la pr&aacute;ctica experimental se puede formar un gradiente de salinidad. El difusor central de aire se mantiene activo para conservar la mezcla de las aguas y evitar la estratificaci&oacute;n. La salinidad en cada una de las c&aacute;maras virtuales a lo largo del estanque corresponde al gradiente establecido y no se produce una diferencia de la salinidad entre el fondo, el medio y la superficie del agua. El gradiente de salinidad se puede producir en dos horas aproximadamente. La <a href="#c1">Tabla 1</a> resume una selecci&oacute;n de experimentos que se han hecho con diferentes vol&uacute;menes de agua de mar y agua dulce donde el intervalo de salinidad entre las c&aacute;maras 1 al 15 fue ordenado en forma creciente.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="c1"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5c1.jpg"></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gradiente de temperatura, ox&iacute;geno y salinidad combinados</b>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de los l&iacute;mites de los aparatos que se dispongan es posible generar gradientes de temperatura, salinidad y ox&iacute;geno combinados. De hecho, al calentar el extremo del estanque experimental lleno con agua y enfriar el otro, se forma un gradiente de ox&iacute;geno con la combinaci&oacute;n del aire insuflado y la temperatura de cada una de las c&aacute;maras virtuales. En secuencia de trabajo se ha procedido a formar primero el gradiente de salinidad, seguido del gradiente de temperatura sin utilizar el degasificador. El tiempo para la formaci&oacute;n de los gradientes depende de la capacidad de los aparatos y del volumen del estanque. Por ejemplo, si el estanque experimental de 220 L tiene inicialmente 8 mg/L de ox&iacute;geno y 18&ordm;C donde el flujo de agua de mar se fija 1140 ml/min; el flujo de agua dulce a 500 ml/min y el enfriador recircula el agua de la c&aacute;mara correspondiente a 6 L/min, se obtiene la <a href="#f11">figura 11</a> donde un organismo puede ubicarse en una c&aacute;mara que sea su selecci&oacute;n preferencial. En este ejemplo las variables se estabilizaron en tres horas.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f11"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/hbio/v13n4/a5f11.jpg" alt=""></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La experimentaci&oacute;n en el sistema construido y perfeccionado durante varios a&ntilde;os ha garantizado la eficiencia en tiempo al poder trabajar con tres variables, adem&aacute;s ha permitido conocer la respuesta de los organismos al preferir o seleccionar un intervalo de condiciones ambientales espec&iacute;ficas tal como se observ&oacute; en el camar&oacute;n <i>Litopenaeus vannamei</i> al exponerlo a un gradiente de temperatura y salinidad (Hern&aacute;ndez <i>et al</i>., Centro de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y Educaci&oacute;n Superior de Ensenada, datos sin publicar).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo fue financiado por el Gobierno Federal de M&eacute;xico con los fondos regulares del Centro de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y Educaci&oacute;n Superior de Ensenada (C.I.C.E.S.E.) y del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT) a trav&eacute;s del proyecto 4050&#45;PB. Tambi&eacute;n extendemos nuestro reconocimiento a Francisco Valenzuela Buriel por los dibujos de los sistemas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">B&Uuml;CKLE, R. L., F. H. D&Iacute;AZ, F. S. CORREA, B. S. BAR&Oacute;N &amp; M. R. HERN&Aacute;NDEZ. 1994. Diel thermoregulation of the crawfish <i>Procambarus clarkii</i> (Crustacea, Cambaridae). <i>Journal of Thermal Biology</i> 19 (6): 419&#45;422.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044630&pid=S0188-8897200300040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">B&Uuml;CKLE, R. L. F., F. H. D&Iacute;AZ &amp; S. ESPINA. 1996. Thermoregulatory behavior applied to the culture of <i>Procambarus clarkii</i> (Decapoda, Cambaridae). <i>Revista de Biolog&iacute;a Tropical</i> 44: 123&#45;126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044632&pid=S0188-8897200300040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHEN, Y. L. L. &amp; Y. H. CHEN. 1991. Temperature selections of <i>Anguilla japonica</i> (L.) elvers, and their implications for migration. <i>Australian Journal of Marine and Freshwater Research</i> 42: 743&#45;750.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044634&pid=S0188-8897200300040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DAWSON, V. K. &amp; L. MARKING. 1986. An integrated system for treating nitrogen supersaturated water. <i>The Progressive Fish&#45;Culturist</i> 48: 281&#45;284.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044636&pid=S0188-8897200300040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DIAZ, H. F., R. L. F. B&Uuml;CKLE , B. BAR&Oacute;N S. &amp; C. FARFAN. 1996. Behavioral thermoregulation of <i>Bulla gouldiana</i> (Gastropoda: Opisthobranchia: Cephalaspidea). <i>Journal of Thermal Biology</i> 21: 319&#45;322.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044638&pid=S0188-8897200300040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DOUDOROFF, P. 1938. Reactions of marine fishes to temperature gradients. <i>Biological Bulletin</i> 75: 494&#45;509.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044640&pid=S0188-8897200300040000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ESPINA S., F. H. D&Iacute;AZ &amp; L. F. R. B&Uuml;CKLE. 1993. Preferred and avoided temperatures in the crawfish <i>Procambarus clarkii</i> (Decapoda, Cambaridae). <i>Journal of Thermal Biology</i> 18: 39&#45;39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044642&pid=S0188-8897200300040000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FUSS, J. T. 1986. Design and application of vacuum degassers. <i>The Progressive Fish&#45;Culturist</i> 48: 215 &#45; 221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044644&pid=S0188-8897200300040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HANSEN, D. J. 1972. DDT and malathion: effects on salinity selection by mosquitofish. <i>Transaction of the American Fisheries Society</i> 101: 346&#45;350.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044646&pid=S0188-8897200300040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HECHT, T. 1994. Behavioral thermoregulation of the abalone <i>Haliotis midae</i>, and the implications for intensive culture. <i>Aquaculture</i> 126: 171&#45;181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044648&pid=S0188-8897200300040000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERN&Aacute;NDEZ, R. M., R. L. F. B&Uuml;CKLE &amp; F. D&Iacute;AZ. 1995. Preferred temperature of <i>Macrobrachium tenellum</i> (Crustacea, Palaemonidae). <i>Rivista Italiana di Acquacoltura</i> 30: 93&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044650&pid=S0188-8897200300040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERN&Aacute;NDEZ RODR&Iacute;GUEZ, M. &amp; L. F. B&Uuml;CKLE RAMIREZ. 1997. Thermal preference area for <i>Macrobrachium tenellum</i> in the context of global climatic change. <i>Journal of Thermal Biology</i> 22, No. 4&#45;5: 309&#45;313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044652&pid=S0188-8897200300040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERN&Aacute;NDEZ, R. M. &amp; R. L. F. B&Uuml;CKLE. 2002a. Temperature tolerance polygon of <i>Poecilia sphenops. Journal of Thermal Biology</i> 27: 1&#45;5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044654&pid=S0188-8897200300040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERN&Aacute;NDEZ RODR&Iacute;GUEZ M., L. F. B&Uuml;CKLE RAMIREZ &amp; S. ESPINA AGUILERA. 2002b. Temperature preference and acclimation in <i>Poecilia sphenops</i> (Pisces, (Poeciliidae). <i>Aquaculture Research</i> 27 (1): 1&#45;5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044656&pid=S0188-8897200300040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HERMAN, L. J. 1995. Water conditioning tank to control supersaturation and temperature. <i>The Progressive Fish&#45;Culturist</i> 57: 164&#45;165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044658&pid=S0188-8897200300040000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HODGSON, E. S.1951. Reaction thresholds of an aquatic beetle, <i>Laccophilus maculosus</i> Germ., to salts and alcohols. <i>Physiological Zoology</i> 24: 131&#45;140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044660&pid=S0188-8897200300040000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">JANSSON, B. O. 1962. Salinity resistance and salinity preference of two aligochaetes <i>Aktedrilus monospermatecus</i> Knoller and <i>Marionina preclitellochaeta</i> n.sp. from the interstitial fauna of marine sandy beaches. <i>Oikos</i> 13: 294&#45;305.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JONES, J. R. E. 1947. The reaction of <i>Pygosteus pungitius</i> L. to toxic solutions. <i>Journal Experimental Biology</i> 24: 110&#45;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044663&pid=S0188-8897200300040000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KEISER, R.K. JR. &amp; V. D. ALDRICH. 1973. A gradient apparatus for the study of salinity preference of small benthic and free swimming organisms. <i>Marine Science</i> 17: 153&#45;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044665&pid=S0188-8897200300040000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MCGINNIS, K. M., T. A. DEMPSTER &amp; M. R. SOMMERFELD. 1997. Characterization of the growth and lipid content of the diatom <i>Chaetoceros muelleri. Journal of Applied Phycology</i> 9: 19&#45;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044667&pid=S0188-8897200300040000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PIPE, R. K. &amp; P. WALKER. 1987. The effect of temperature on development and hatching of scad, <i>Trachurus trachurus</i> L., eggs. <i>Journal Fish Biology</i> 31: 675&#45;682.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044669&pid=S0188-8897200300040000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">REYNOLDS, W. W. 1977. Fish orientation behavior: an electronic device for studying simultaneous responses to two variables. <i>Journal Fisheries Research Board Canada</i> 34: 300&#45;304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044671&pid=S0188-8897200300040000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ROCHA, P. L. &amp; L. G. S. BRANCO. 1998. Physiological significance of behavioral hypothermia in hypoglycemic grogs <i>(Rana catesbeiana). Comparative Biochemistry and Physiology</i> 119A: 957&#45;961.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044673&pid=S0188-8897200300040000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ROSAS, C, J. LATOURNERIE, A. S&Aacute;NCHEZ &amp; S. ESPINA. 1986. Respuestas metab&oacute;licas de <i>Sarotheron mossambicus</i> medidas experimentalmente en un gradiente t&eacute;rmico (Pisces : Cichlidae). <i>Anales del Instituto de Ciencias del Mar y Limnolog&iacute;a de la Universidad Aut&oacute;nonoma de M&eacute;xico</i> 13: 243&#45;250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044675&pid=S0188-8897200300040000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">THOMAS, W. H., H. L. SCOTTEN &amp; J. S. BRADSHOW. 1963. Thermal gradient incubators for small aquatic organisms. <i>Limnology and Oceanography</i> 8: 357&#45;359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044677&pid=S0188-8897200300040000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WATERMAN, T. H. 1961. Light sensitivity and vision. <i>In:</i> T. H. Waterman (ed.). <i>The Physiology of Crustacea</i>, Vol. II. Sense Organs, Integration, and Behavior. Academic Press, N. Y.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4044679&pid=S0188-8897200300040000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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