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<journal-title><![CDATA[Revista internacional de contaminación ambiental]]></journal-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Among toxins produced by cyanobacteria, the microcystins are the most common livertoxins. High levels of microcystins can persist in the environment for several days, which represents a hazard to human health, and a challenge for drinking water management. In this study, the effect of the interaction of microcystin-LR from a cyanobacterial bloom and sediment was evaluated. A decrease in the concentration of microcystin-LR was detected from the third day, and a decrease to below the detection limit was observed. Water samples without sediment concentration of MC-LR were held constant (5.0 ± 0.1 &#956;g/mL) throughout the test. These results were attributable to a possible adsorption on solid materials or a probable degradation of MC-LR by chemical or biological action. In addition, the data indicate that sediments play an important role in the degradation of microcystins in freshwater systems, providing relevant information that could be applied to management strategies for improving water quality in lakes, reservoirs and other water bodies.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Evaluaci&oacute;n preliminar de la reducci&oacute;n de microcistina&#45;LR en muestras de florecimiento a trav&eacute;s de sistemas sedimentarios</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Preliminary assessment of the reduction of microcystin&#45;LR in bloom samples through sedimentary systems</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Natalia Andrea Herrera<sup>1</sup>*, Mar&iacute;a Teresa Fl&oacute;rez<sup>2</sup> y Luis Fernando Echeverri<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Grupo de Qu&iacute;mica Org&aacute;nica de Productos Naturales, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia, Carrera 53 No. 52 &#45; 59, Medell&iacute;n, Colombia</i> *Autor para correspondencia: <a href="mailto:nahelo241980@gmail.com" target="_blank">nahelo241980@gmail.com</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>&nbsp;Grupo de Investigaci&oacute;n en Gesti&oacute;n y Modelaci&oacute;n Ambiental (GAIA), Universidad de Antioquia, Carrera 53 No. 52 &#45; 59, Medell&iacute;n, Colombia</i></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Recibido septiembre 2014;    <br>     aceptado febrero 2015</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cianotoxinas son producidas por cianobacterias e incluyen las microcistinas, consideradas como las toxinas cianobacteriales (hepatotoxinas) m&aacute;s comunes. Niveles elevados de microcistinas pueden persistir en el ambiente durante varios d&iacute;as, lo que significa un riesgo para la salud y un reto para la gesti&oacute;n del servicio p&uacute;blico. En este estudio se evalu&oacute; el efecto de la interacci&oacute;n entre la microcistina&#45;LR (MC&#45;LR) procedente de un florecimiento cianobacterial y el sedimento obtenido del embalse Riogrande II (Antioquia). Se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de microcistina&#45;LR hasta niveles inferiores al l&iacute;mite de detecci&oacute;n en presencia del sedimento. En muestras de agua sin sedimento la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR se mantuvo constante (5.0 &plusmn; 0.1 &#956;g/mL). Estos resultados se atribuyen a una posible adsorci&oacute;n por materiales s&oacute;lidos o a la degradaci&oacute;n de la MC&#45;LR por acci&oacute;n biol&oacute;gica o qu&iacute;mica. Adem&aacute;s, los datos indican que los sedimentos juegan un rol en la degradaci&oacute;n de microcistinas en sistemas de agua dulce, proporcionando informaci&oacute;n importante que puede ser aplicada en estrategias de gesti&oacute;n para el mejoramiento de la calidad del agua.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: cianotoxinas, sedimentos, agua dulce, cianobacterias.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Among toxins produced by cyanobacteria, the microcystins are the most common livertoxins. High levels of microcystins can persist in the environment for several days, which represents a hazard to human health, and a challenge for drinking water management. In this study, the effect of the interaction of microcystin&#45;LR from a cyanobacterial bloom and sediment was evaluated. A decrease in the concentration of microcystin&#45;LR was detected from the third day, and a decrease to below the detection limit was observed. Water samples without sediment concentration of MC&#45;LR were held constant (5.0 &plusmn; 0.1 &#956;g/mL) throughout the test. These results were attributable to a possible adsorption on solid materials or a probable degradation of MC&#45;LR by chemical or biological action. In addition, the data indicate that sediments play an important role in the degradation of microcystins in freshwater systems, providing relevant information that could be applied to management strategies for improving water quality in lakes, reservoirs and other water bodies.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: cyanotoxines, sediments, freshwater, cyanobacteria.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A trav&eacute;s de su evoluci&oacute;n las cianobacterias se han adaptado a casi todos los h&aacute;bitats disponibles en la tierra, especialmente a los marinos y de agua dulce. Adem&aacute;s, tienen la capacidad de crecer en fuentes de agua afectadas por actividades antr&oacute;picas y por el cambio clim&aacute;tico (Paerl <i>et al.</i> 2011). Uno de los principales factores responsables de la proliferaci&oacute;n de cianobacterias en el agua es el aporte de nutrientes derivados de las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas modernas y de la descarga de aguas residuales. A nivel mundial se ha incrementado la temperatura, los flujos de los r&iacute;os var&iacute;an ampliamente como resultado de la reducci&oacute;n de la capacidad regulatoria de los suelos y la calidad del agua se ha deteriorado (Paerl y Huisman 2009). Adem&aacute;s, se ha favorecido la proliferaci&oacute;n de cianobacterias en los sistemas de almacenamiento de agua para la potabilizaci&oacute;n en todo el mundo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cianotoxinas, entre ellas las microcistinas (MCs), se encuentran frecuentemente en cuerpos de aguas y son altamente t&oacute;xicas (Zurawell <i>et al.</i> 2005) lo que puede afectar gravemente la salud humana (Bartram <i>et al.</i> 1999). Otros metabolitos producidos por las cianobacterias como el 2&#45;metilisoborneol (MlB) y la geosmina le confieren sabores y olores desagradables al agua, adicionalmente estas sustancias se consideran perjudiciales en ambientes acu&aacute;ticos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las microcistinas son heptap&eacute;ptidos producidos por algunas cepas de cianobacterias como <i>Microcystis, Anabaena, Planktothrix</i> y <i>Nostoc.</i> Su estructura c&iacute;clica y estable presenta muchos desaf&iacute;os a las plantas de tratamiento de agua que tienen una capacidad limitada para su eliminaci&oacute;n (Himberg <i>et al.</i> 1989) y pueden provocar un aumento en el costo de tratamiento del agua. Aunque las microcistinas pueden ser removidas por adsorci&oacute;n con los sedimentos y degradadas f&iacute;sica o biol&oacute;gicamente, su naturaleza c&iacute;clica las hace altamente estables y potencialmente recalcitrantes. Esta situaci&oacute;n implica un peligro para los ambientes acu&aacute;ticos y para los usuarios del recurso h&iacute;drico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las microcistinas son compuestos estables, resistentes a la oxidaci&oacute;n, a la hidr&oacute;lisis qu&iacute;mica, a las altas temperaturas y a los pH bajos (Harada <i>et al.</i> 1996, Metcalf <i>et al.</i> 2000). Las concentraciones de estas toxinas en la columna de agua de varios lagos eutr&oacute;ficos normalmente son mucho menores a los niveles estimados producidos por cianobacterias (Tsuji <i>et al.</i> 1996). La baja correlaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de MCs en la columna de agua y la densidad celular ha inducido un gran inter&eacute;s (Sivonen y Jones 1999). Se han propuesto cinco v&iacute;as para explicar las reducciones naturales en los niveles de microcistinas: la diluci&oacute;n, la adsorci&oacute;n por sedimentos, la descomposici&oacute;n t&eacute;rmica ayudada por el pH, la fot&oacute;lisis y la degradaci&oacute;n biol&oacute;gica (Tsuji <i>et al.</i> 2001). Entre estos cinco factores, se ha enfatizado la investigaci&oacute;n sobre la diluci&oacute;n, la fot&oacute;lisis y la degradaci&oacute;n biol&oacute;gica como procesos de mejoramiento, pero no sobre los procesos de adsorci&oacute;n por los sedimentos o por descomposici&oacute;n t&eacute;rmica (Jones y Orr 1994, Welker y Steinberg 2000, Tsuji <i>et al.</i> 2001, Harada <i>et al.</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de los estudios de degradaci&oacute;n de cianotoxinas se han orientado principalmente a las microcistinas (Ho <i>et al.</i> 2012) en fuentes de agua potable (Jones y Orr 1994, Rapala <i>et al.</i> 1994, Christoffersen <i>et al.</i> 2002, Holst <i>et al.</i> 2003) y m&aacute;s recientemente en aguas residuales, lagunas y estanques de estabilizaci&oacute;n (Ho <i>et al.</i> 2010). Por otra parte, las microcistinas se biodegradan en suelos y sedimentos (Grutzmacher <i>et al.</i> 2009, Chen <i>et al.</i> 2010) donde la temperatura del agua puede ser un factor cr&iacute;tico en la biodegradaci&oacute;n. Sin embargo, la tasa de degradaci&oacute;n es afectada por varios factores ambientales, entre ellos la temperatura, los nutrientes (Surono <i>et al.</i> 2008) y la preexposici&oacute;n a microcistinas (Rapala <i>et al.</i> 1994, Ho <i>et al.</i> 2007). La vida media de las microcistinas por lo general oscila entre unas pocas horas a tres semanas en un ambiente natural (Holst <i>et al.</i> 2003, Ho <i>et al.</i> 2007). Otros metabolitos asociados a las cianobacterias como la geosmina y el MIB presentan un rango de temperatura entre 11 y 30 &deg;C para su efectiva biodegradaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Muchos de los metabolitos, entre ellos las microcistinas, no pueden ser eliminados a trav&eacute;s de las pr&aacute;cticas convencionales de tratamiento de agua y requieren de t&eacute;cnicas costosas como el empleo de carb&oacute;n activado o procesos de oxidaci&oacute;n avanzada, que a su vez pueden presentar limitaciones. Varias gu&iacute;as de manejo de aguas establecen que es importante utilizar tratamientos multibarrera como una opci&oacute;n para asegurar que estos contaminantes no lleguen al producto final. Sin embargo, los suelos con un alto contenido de materia org&aacute;nica y de arcilla son m&aacute;s eficientes en la eliminaci&oacute;n de microcistinas, probablemente debido a su alta capacidad de uni&oacute;n con sustancias org&aacute;nicas (Wu <i>et al.</i> 2011). Adem&aacute;s, se conoce que las microcistinas son adsorbidas por superficies como la arcilla y el carb&oacute;n activado. Esta capacidad de adsorci&oacute;n se ha aprovechado en la eliminaci&oacute;n de microcistinas en aguas superficiales utilizadas para agua potable (Holst <i>et al.</i> 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante los &uacute;ltimos 25 a&ntilde;os los lodos han sido investigados en muchos pa&iacute;ses como un medio de remoci&oacute;n de florecimientos algales a trav&eacute;s de la columna de agua (Chen <i>et al.</i> 2008). Una amplia variedad de estudios de laboratorio en sistemas est&aacute;ticos han confirmado que los sedimentos pueden remover efectivamente c&eacute;lulas algales potencialmente productoras de microcistinas desde la columna de agua. Algunos estudios de laboratorio con especies de algas nocivas mostraron que minerales de arcilla son eficaces en la eliminaci&oacute;n de las c&eacute;lulas de dicha columna (Sengco <i>et al.</i> 2001). El objetivo de este estudio trabajo fue evaluar, a trav&eacute;s de sistemas est&aacute;ticos y con agitaci&oacute;n, la reducci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de microcistina&#45;LR (leucina&#45;arginina) por sedimentos nativos de la zona de estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sitios de muestreo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El florecimiento que conten&iacute;a la toxina microcistina&#45;LR (MC&#45;LR) fue colectado en el embalse Porce II, en julio de 2011 cerca de la presa (6&deg;48'18.88" N y 75&deg;8'49.93" W) en la estaci&oacute;n 12 donde se presentan florecimientos durante todo el a&ntilde;o (Herrera <i>et al.</i> 2015). Dicho embalse se localiza en jurisdicci&oacute;n de los municipios de G&oacute;mez Plata, Yolomb&oacute; y Amalfi, entre las coordenadas 75&deg;09'14" &#45; 75&deg;04' 59" W y 6&deg;44'57" &#45; 6&deg;48'45" N. El embalse est&aacute; formado por dos ramales principales alargados (R&iacute;o Porce y quebrada Guaduas), que se unen en un tercero limitado por la presa (quebrada La Cancana). Su prop&oacute;sito es generar energ&iacute;a el&eacute;ctrica con una capacidad instalada de 392 mW.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sedimento se sustrajo del brazo del R&iacute;o Chico (6&deg;30'34.128" N y 75&deg;30'23.648" W) en el embalse Riogrande II, en julio de 2013. Este embalse tiene como principal funci&oacute;n la potabilizaci&oacute;n y se ubica al noroccidente de Medell&iacute;n, en jurisdicci&oacute;n de los municipios de Don Mat&iacute;as, San Pedro, Belmira, Santa Rosa de Osos y Entremos, entre 75&deg;32'30'<sup>:</sup> W &#45; 75&deg;26'10'' W y 6&deg;33'50'' N &#45; 6&deg;28'07'' N. El embalse entr&oacute; en operaci&oacute;n en 1991, tiene un volumen total hasta la cota de vertedero (2270 msnm) de 240 millones de m<sup>3</sup> y cubre un &aacute;rea media de 1214 ha, recibe las aguas de los r&iacute;os Riogrande y Chico y de la quebrada Las &Aacute;nimas, entre otras. La profundidad m&aacute;xima del embalse es 47.2 m en condiciones de operaci&oacute;n normal.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Recolecci&oacute;n de la muestra de florecimiento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La muestra del florecimiento fue recolectada haciendo un arrastre durante cinco min en el punto de muestreo, usando una red de nylon de 20 &#956;m de malla. La muestra se almacen&oacute; en frascos de pl&aacute;stico de 5 L, refrigerada y protegida de la luz y se transport&oacute; al laboratorio para su procesamiento. Esta muestra fue liofilizada y 1 g del material liofilizado fue diluido en 50 mL de agua y sometido a sonicaci&oacute;n durante 15 min en un equipo Maxiclean 1600 Unique, posteriormente se centrifug&oacute; por 15 min a 4000 rpm (Centribio 80&#45;2B). El sobrenadante fue empleado para la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta eficiencia con detector de arreglo de diodos (HPLC&#45;DAD, por sus siglas en ingl&eacute;s) acoplada a espectrometr&iacute;a de masas en modo t&aacute;ndem (HPLC&#45;MS/MS, por sus siglas en ingl&eacute;s)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n del fitoplancton</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de cianobacterias se tomaron seis litros de agua con una botella tipo Van Dorn y una submuestra de 250 mL en recipientes pl&aacute;sticos &aacute;mbar que se fijaron con 1 mL de soluci&oacute;n de lugol al 1 %. Las muestras se agitaron 30 veces y se sedimentaron, siguiendo el m&eacute;todo de Uterm&oacute;hl. Un mL del precipitado se dispuso en una c&aacute;mara de conteo de Sedgwick&#45;Rafter y las observaciones al microscopio se realizaron seg&uacute;n Ros (1979) por medio de un conteo de campos aleatorios con una magnificaci&oacute;n total de 400X hasta completar 100 individuos del morfotipo m&aacute;s abundante o el conteo de 60 campos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Muestra de sedimento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se tom&oacute; un kg de sedimentos por medio de una draga Eckman. El material se almacen&oacute; en bolsas con sello previamente rotuladas y luego se refriger&oacute; hasta su tratamiento en el laboratorio. A estos sedimentos se les realiz&oacute; una descripci&oacute;n litol&oacute;gica (textura, color, olor y apariencia), an&aacute;lisis mineral&oacute;gico (org&aacute;nicos, inorg&aacute;nicos, silicof&oacute;siles y mixtos), granulometr&iacute;a, humedad, materia org&aacute;nica, carbono org&aacute;nico, carbono inorg&aacute;nico, f&oacute;sforo total, nitr&oacute;geno total kjeldahl (NTK), Fe, Mn, Ca, Na, K, Mg y Cr.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la obtenci&oacute;n de los n&uacute;cleos de sedimento se utiliz&oacute; un nucleador de gravedad tipo UWITEC, el cual no causa distorsiones ni p&eacute;rdidas del material colectado (Parra 2005). Con el fin de evitar deformaciones y da&ntilde;os del material durante el transporte, los n&uacute;cleos de sedimento fueron sellados y almacenados en una cava a 4 &deg;C para su preservaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Uno de los n&uacute;cleos tomados en el embalse fue abierto y cortado longitudinalmente con ayuda de una guillotina marca Dremel. Se fotografiaron y se describieron las caracter&iacute;sticas estratigr&aacute;ficas del n&uacute;cleo, as&iacute; como los rasgos dominantes como color, textura, presencia de materia org&aacute;nica, macrominerales, olor y apariencia. Una de las mitades de cada n&uacute;cleo se guard&#243; como testigo a 4 &deg;C, el segundo n&uacute;cleo se utiliz&oacute; para el ensayo de reducci&oacute;n de la microcistina&#45;LR.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ensayos de laboratorio</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el laboratorio se realizaron dos ensayos diferentes para la evaluaci&oacute;n de la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR. Inicialmente, se mont&oacute; una columna cilindrica de policloruro de vinilo (PVC) con un di&aacute;metro de 5.08 cm y una altura de 50 cm que contenia sedimento del embalse Riogrande II, la tercera parte de esta columna se llen&oacute; con 600g de sedimento. A trav&eacute;s de este sistema se hizo pasar una soluci&oacute;n de microcistina&#45;LR por gravedad que previamente fue cuantificada con el HPLC&#45;DAD (6.07 &plusmn; 0.03 &#956;g/mL). Durante siete dias consecutivos se tomaron muestras cada 24 h, con el fin de observar la permanencia de la toxina en el sistema a trav&eacute;s del tiempo. La cuantificaci&oacute;n de microcistina&#45;LR en las muestras recolectadas se realiz&oacute; por medio de HPLC&#45;DAD. Para corroborar los resultados del primer experimento se hizo una segunda prueba bajo las siguientes condiciones:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull;&nbsp;Agua del embalse Riogrande II (10 mL) y MC&#45;LR (5 &plusmn; 0.2 &#956;g/mL)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull;&nbsp;Agua del embalse Riogrande II (10 mL), sedimento del embalse Riogrande II (35 g) y MC&#45;LR (5 &plusmn; 0.2 &#956;g/mL)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull;&nbsp;Agua destilada (10 mL), sedimento del embalse Riogrande II (35 g) y MC&#45;LR (5 &plusmn; 0.2 &#956;g/mL)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cada ensayo se realiz&oacute; por triplicado y todos los sistemas se mantuvieron en agitaci&oacute;n constante y en condiciones de oscuridad (<b><a href="#f1">Fig. 1</a></b>). Se tomaron muestras cada 24 h durante cinco d&#237;as para determinar, con HPLC&#45;DAD, la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR a trav&eacute;s del tiempo.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f1"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rica/v31n4/a8f1.jpg"></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de MC&#45;LR por HPLC&#45;DAD y su cuantificaci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La MC&#45;LR fue detectada usando un cromat&oacute;grafo liquido de alta resoluci&oacute;n (HPLC Gilson 305 &amp; 306) con detector de arreglo de diodos (DAD). Se utiliz&oacute; una columna Luna C&#45;18 (4.6 x 150 mm, 5 &#956;m, Phenomenex) con una fase m&oacute;vil que contenia agua acidificada (0.05 % de &aacute;cido trifluroac&eacute;tico (TFA)) en la bomba A y acetonitrilo acidificado en la bomba B, con un gradiente de incrementos desde 10 % hasta 60 % de B por 25 min, seguido por 10 minutos al 100 % de B. Finalmente se volvi&oacute; a las condiciones iniciales (10 % de B) (Aguete <i>et al.</i> 2003). Se us&oacute; un flujo de 1 min y cada corrida tuvo una duraci&oacute;n de 40 min. La absorbancia fue monitoreada a 238 nm y los vol&uacute;menes de inyecci&oacute;n fueron de 20 &#956;L. Para la cuantificaci&oacute;n se prepararon cinco concentraciones del est&aacute;ndar de MC&#45;LR. Las diluciones se realizaron con metanol acuoso y las concentraciones fueron (50, 25, 2.5, 1.25 y 0.25 &#956;g/mL). Cada concentraci&oacute;n fue inyectada por triplicado en tres eventos diferentes. Tomando en cuenta los tiempos de retenci&oacute;n y el &aacute;rea bajo la curva, se realiz&oacute; una gr&aacute;fica y se obtuvo la ecuaci&oacute;n de la curva para determinar la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR con el programa Gilson.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de microcistina&#45;LR por HPLC&#45;MS/MS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La confirmaci&oacute;n de la microcistina&#45;LR se realiz&oacute; por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta eficiencia (HPLC) acoplada a espectrometr&iacute;a de masas en modo t&aacute;ndem (HPLC&#45;MS/MS), con un HPLC Agilent modelo 1200 y un espectr&oacute;metro de masas de marca Apllied Biosystem modelo 3200 Q&#45;trap, bajo las siguientes condiciones:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull;&nbsp;Columna Kinetex 2.6 U C18 100<sup>a</sup>, 50 x 2.1 mm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull;&nbsp;Fase m&oacute;vil A: 5 mM de acetato de amonio en agua + 0.1 % de &aacute;cido f&oacute;rmico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull;&nbsp;Fase m&oacute;vil B: 5 mM de acetato de amonio en acetonitrilo + 0.1 % de &aacute;cido f&oacute;rmico, flujo de 450 &#956;L/min, con un volumen de inyecci&oacute;n de 10 &#956;L y un gradiente que comenz&oacute; desde 85 % de A y 15 % de B, a los 6 minutos 65 % A y a los 10 min 10 % de A hasta retornar a las condiciones iniciales de 85 % A.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para los ensayos de masas se utiliz&oacute; una fuente de electroatomizaci&oacute;n, con ionizaci&oacute;n en modo positivo. El ion precursor analizado fue de 995 m/z y los fragmentos 135 m/z y 103 m/z, donde el fragmento 135 fue utilizado para cuantificaci&oacute;n y el 103 para la confirmaci&oacute;n de la presencia del metabolito (Prakash <i>et al.</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para confirmar diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre los resultados de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR en diferentes sistemas, se llev&oacute; a cabo un an&aacute;lisis no param&eacute;trico de Kruskal&#45;Wallis con un nivel de significancia de 0.05. En los casos en los que se encontraron diferencias estad&iacute;sticas, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de comparaciones m&uacute;ltiples.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El g&eacute;nero <i>Microcystis</i> se encontr&oacute; en todas las muestras y durante todo el tiempo de muestreo en los dos embalses (Herrera <i>et al.</i> 2014). Los resultados de los an&aacute;lisis por HPLC&#45;MS/MS evidenciaron la presencia de MC&#45;LR a una concentraci&oacute;n de 434 &#956;g/g de material liofilizado (<b><a href="/img/revistas/rica/v31n4/a8f2.jpg" target="_blank">Fig. 2</a></b>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis del sedimento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el an&aacute;lisis del sedimento recuperados con draga Eckman (primeros 20 cm del dep&oacute;sito sedimentario), que constituye la capa bioactiva o interfase agua&#45;sedimento, se puede observar una estratigraf&iacute;a en la cual los primeros 5 cm est&aacute;n constituidos por una capa de sedimentos finos limosos, floculosos y poco consolidados. Dicha estratigraf&iacute;a est&aacute; subyacida por otras dos capas de sedimento que var&iacute;an en espesor (entre 8 y 7 cm respectivamente), pero que est&aacute;n m&aacute;s consolidados y cuyas texturas se encuentran entre limo arenosas y arenosas finas. Los datos promedio de los microcomponentes (<b><a href="#c1">Cuadro I</a></b>), indican el predominio de inorg&aacute;nicos (41.63 %) y de silicof&oacute;siles (26.65 %). En contraste, los org&aacute;nicos representaron s&oacute;lo el 11.15 % y los organominerales el 20.6 %. Estas proporciones, permiten clasificar a los sedimentos predominantemente inorg&aacute;nicos. Las texturas de los sedimentos en estos primeros 20 cm pueden variar en el tiempo debido a los aportes directos de las propias cuencas. En este caso el r&iacute;o Chico hace que se produzcan cambios en las texturas que pueden variar entre arenosas (A), areno arcillo limosas (AArL) o a areno limo arcillosas (ALAr). Las proporciones entre limos y arcillas son muy cercanas, lo que permite definir las texturas de los sedimentos m&aacute;s consolidados como francoarenosas (FA) o arenosas (A), mientras que para los primeros 5 cm del dep&oacute;sito en todos los casos las texturas son limosas.</font></p> 	    <p align="center"><a name="c1"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rica/v31n4/a8c1.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n</b> <b>de MC&#45;LR</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Respecto a los an&aacute;lisis de laboratorio, en el primer ensayo donde se analiz&oacute; la disminuci&oacute;n de MC&#45;LR en una columna en presencia de sedimento, se observ&oacute; un notable decrecimiento en su concentraci&oacute;n (<b><a href="#f3">Fig. 3</a></b>). Durante los primeros tres d&iacute;as de an&aacute;lisis se observ&oacute; una reducci&oacute;n de 73.1 % de MC&#45;LR. El cuarto y quinto d&iacute;a la reducci&oacute;n fue de 91.7 % y a partir del sexto d&iacute;a no se detect&oacute; MC&#45;LR en el sistema evaluado.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f3"></a></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rica/v31n4/a8f3.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el segundo ensayo se evidenci&oacute; una disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR en los sistemas donde se emple&oacute; el sedimento. El primer d&iacute;a la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR se redujo un 63.4 %, el segundo d&iacute;a un 80.7 % y a partir del tercer d&iacute;a la reducci&oacute;n fue de un 100 %. Aunque los dos sistemas empleados para el an&aacute;lisis de la reducci&oacute;n de MC&#45;LR fueron diferentes, los porcentajes de reducci&oacute;n fueron similares. Se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre los tratamientos con sedimento y los que no conten&iacute;an sedimento <i>(P</i> = 0&#45;01). Seg&uacute;n la prueba de comparaciones m&uacute;ltiples, los dos tratamientos con sedimentos son grupos homog&eacute;neos, aunque el tratamiento con agua del embalse fue m&aacute;s efectivo que el tratamiento con agua destilada. Mientras que en los dos sistemas con sedimentos la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR se dio a partir del segundo d&iacute;a. En el sistema sin sedimento la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR se mantuvo muy similar durante los cinco d&iacute;as del an&aacute;lisis (4.9 &plusmn; 0.1 &#956;g/mL; <b><a href="#f4">Fig. 4</a></b>).</font></p> 	    <p align="center"><a name="f4"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rica/v31n4/a8f4.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los an&aacute;lisis por HPLC/DAD de la muestra sin sedimento evidenciaron la persistencia de la microcistina&#45;LR durante cinco d&iacute;as. En los ensayos con sedimentos (<b><a href="#f1">Fig. 1</a></b>), s&oacute;lo fue posible detectar MC&#45;LR durante los dos primeros d&iacute;as. En la <b><a href="#f5">figura 5</a></b> se observan los dos picos del cromatograma HPLC/DAD, correspondientes al an&aacute;lisis de los dos primeros d&iacute;as.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f5"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rica/v31n4/a8f5.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue determinar la contribuci&oacute;n del sedimento en la reducci&oacute;n de MC&#45;LR presentes en muestras de florecimientos naturales. Aunque los sedimentos juegan un papel importante en el proceso de degradaci&oacute;n y adsorci&oacute;n de sustancias en diferentes ambientes acu&aacute;ticos (Holst 2003), hasta el momento existen pocos reportes acerca de la influencia de &eacute;stos en el destino de las cianotoxinas (Tsuji <i>et al.</i> 2001, Chen <i>et al.</i> 2006, Song <i>et al.</i> 2014).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de este estudio confirman la reducci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR en sistemas controlados con sedimentos, similar a lo observado por Song <i>et al.</i> (2014) quienes observaron que las concentraciones de MC&#45;LR decrecen exponencialmente en presencia de sedimento. Sin embargo, los procesos responsables de la disminuci&oacute;n a&uacute;n no son claros, se pudiera deducir que tanto el sedimento investigado por Song <i>et al.</i> (2014) como el analizado en este trabajo tienen caracter&iacute;sticas y propiedades muy diferentes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del an&aacute;lisis de la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR en los cuales se usaron solamente muestras de agua del embalse sin sedimentos no vari&oacute; en el tiempo, lo que evidencia la estabilidad de estos compuestos. Algunos autores han reportado que las cianotoxinas son caracterizadas, en general, por ser extremadamente estables y persisten en ambientes acu&aacute;ticos a&uacute;n semanas despu&eacute;s de ser liberadas de las c&eacute;lulas cianobacteriales (Chen <i>et al.</i> 2008, Edwards <i>et al.</i> 2008)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En algunos estudios se reporta que las MCs en grandes lagos poco profundos se pueden biodegradar en la columna de agua, siendo entonces los sedimentos la v&iacute;a principal para la eliminaci&oacute;n de toxinas en el ambiente natural. Por tal motivo, es importante conocer el proceso mediante el cual las cianotoxinas llegan al sedimento, proceso que fue previamente reportado por W&oacute;rmer <i>et al.</i> (2011) en el embalse Valmayor (Espa&ntilde;a). En dicho estudio se encontr&oacute; que inicial&#45;mente y mientras se llevaba a cabo el florecimiento de cianobacterias, la toxina se hallaba principalmente en muestras subsuperficiales, una semana m&aacute;s tarde, cuando la sedimentaci&oacute;n comenz&oacute;, se observ&oacute; un aumento en las MCs sest&oacute;nicas y una importante sedimentaci&oacute;n epilimn&eacute;tica en el agua circundante, lo que indica que la sedimentaci&oacute;n hipolimn&eacute;tica de la MC segu&iacute;a siendo poca. Otra semana m&aacute;s tarde la sedimentaci&oacute;n epilimn&eacute;tica se mantuvo en curso y comenz&oacute; a llegar al hipolimnio. Esto indicar&iacute;a un tiempo aproximado de 2 o 3 semanas entre el asentamiento inicial de MCs y su llegada a la superficie del sedimento. Sin embargo, el viaje a lo largo de la columna de agua para colonias de <i>Microcystis</i> es posiblemente m&aacute;s r&aacute;pido y las colonias pueden sobrevivir dentro o sobre el sedimento por largos periodos de tiempo, donde pueden estar expuestas a procesos de herbivor&iacute;a (Bostr&oacute;m <i>et al.</i> 1989). Visser <i>et al.</i> (1995) observaron que los patrones de sedimentaci&oacute;n son notables, lo que se&ntilde;ala que las part&iacute;culas de MCs se est&aacute;n asentando conjuntamente durante el periodo de floraci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adicionalmente, un papel complementario a la adsorci&oacute;n&#45;degradaci&oacute;n qu&iacute;mica de los sedimentos es su alto contenido bacteriano, que influye en la degradaci&oacute;n de cianotoxinas en la columna de agua (Chen 2008). En el lago Taihu (China), Chen (2008) demostr&oacute; la presencia de toxinas en sedimentos e indic&oacute; que probablemente los s&oacute;lidos en suspensi&oacute;n contribuyen a la eliminaci&oacute;n de toxinas de la columna de agua, en la que las bacterias asociadas a los s&oacute;lidos en suspensi&oacute;n y a los sedimentos desempe&ntilde;an un papel importante en la biodegradaci&oacute;n de MCs. Sin embargo, Song <i>et al.</i> (2014) evaluaron la incidencia del sedimento en la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MCs y encontraron que la biodegradaci&oacute;n de MC&#45;LR es m&aacute;s r&aacute;pida y eficiente en presencia de sedimentos que la biodegradaci&oacute;n por la actividad bacteriana en presencia &uacute;nicamente de agua y en ausencia de sedimentos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, los procesos de aireaci&oacute;n tambi&eacute;n cumplen un rol importante, ya que de acuerdo con los resultados de Song <i>et al.</i> (2014) se logr&oacute; evidenciar que dichos procesos tuvieron un efecto significativo en la reducci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de Mcs. El estudio de estos autores concuerda con lo observado en la presente investigaci&oacute;n, en la que se aplic&oacute; agitaci&oacute;n para reproducir el proceso natural del movimiento de las aguas. Esa aireaci&oacute;n, as&iacute; como el recambio de sedimentos, constituyen un proceso din&aacute;mico que probablemente permite una mayor remoci&oacute;n de toxinas en el seno de los reservorios de agua.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de este trabajo indican que la sedimentaci&oacute;n puede contribuir a la remoci&oacute;n de MC&#45;LR del agua de una manera r&aacute;pida y efectiva en los embalses. A pesar de que se trata de un estudio preliminar, los resultados puede servir como base para futuros proyectos de implementaci&oacute;n de m&eacute;todos de remoci&oacute;n de MCs con materiales nativos, disponibles en grandes cantidades en los propios embalses.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio analizamos el potencial del sedimento en la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR. Observamos que esta toxina puede ser r&aacute;pidamente reducida a trav&eacute;s de sistemas controlados con sedimentos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras con MC&#45;LR en presencia de sedimentos presentaron una mayor disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n con porcentajes de reducci&oacute;n desde 73.1 % y 63.4 % el primer d&iacute;a hasta 91.7 y 100 % a partir del tercer d&iacute;a. Esto contrasta con las muestras que s&oacute;lo conten&iacute;an agua y MC&#45;LR, que exhibieron un porcentaje de reducci&oacute;n del 5.8 % hasta el quinto d&iacute;a del estudio.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de MC&#45;LR con muestras de agua del embalse sin sedimentos no vari&oacute; en el tiempo, lo que indica la estabilidad de estos compuestos y la contribuci&oacute;n de los sedimentos para eliminar la MC&#45;LR del medio acu&aacute;tico. Los datos generados en este estudio sugieren que la reducci&oacute;n significativa de las concentraciones t&oacute;xicas puede ser alcanzada a trav&eacute;s de procesos naturales y mejorados por medios artificiales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores de esta investigaci&oacute;n agradecen a Empresas P&uacute;blicas de Medell&iacute;n por la financiaci&oacute;n #29990832845.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aguete E., Gago&#45;Mart&iacute;nez A., Leao J., Rodr&iacute;guez&#45;V&aacute;zquez J., Menard C. y Lawrence J. (2003). HPLC and HPCE analysis of microcystins RR, LR and YR present in cyanobacteria and water by using immunoaffinity extraction. Talanta 59, 697&#45;705.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240161&pid=S0188-4999201500040000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bostr&ouml;m B., Pettersson A.K. y Ahlgren I. (1989). Seasonal dynamics of a cyanobacteria&#45;dominated microbial community in surface sediments of a shallow, eutrophic lake. Aquat. Sci. 51, 153&#45;178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240163&pid=S0188-4999201500040000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen J., Hu L.B., Zhou W., Yan S.H., Yang J.D., Xue Y.F. y Shi Z.Q. (2010). Degradation of microcystin&#45;LR and RR by a <i>Stenotrophomonas</i> sp. strain EMS isolated from Lake Taihu, China. Int. J. Mol. Sci. 11, 896&#45;911.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240165&pid=S0188-4999201500040000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen J., Xie P., Zhang D., Ke Z. y Yang H. (2006). <i>In situ</i> studies on the bioaccumulation of microcystins in the phytoplanktivorous silver carp <i>(Hypophthalmichthys molitrix)</i> stocked in Lake Taihu with dense toxic <i>Microcystis</i> blooms. Aquaculture 261, 1026&#45;1038.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240167&pid=S0188-4999201500040000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen W., Song L., Peng L., Wan N., Zhang X. y Gan N. (2008). Reduction in microcystin concentrations in large and shallow lakes: water and sediment&#45;interface contributions. Water Res. 42, 763&#45;773</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240169&pid=S0188-4999201500040000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bartram J., Carmichael W.W., Chorus I., Jones G. y Skulberg O.M. (1999). Introduction. En: (J. Bartram, I. Chorus, Eds.). Toxic cyanobacteria in water. A guide to their public health consequences, monitoring and management. E &amp; FN Spon, Londres, Inglaterra, pp. 1&#45;14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240170&pid=S0188-4999201500040000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Christoffersen K., Lyck S. y Winding A. (2002). Microbial activity and bacterial community structure during degradation of microcystins. Aquat. Microb. Ecol. 27, 125&#45;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240172&pid=S0188-4999201500040000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Edwards C., Graham D., Fowler N. y Lawton L.A. (2008). Biodegradation of microcystins and nodularin in fresh&#45;waters. Chemosphere 73, 1315&#45;1321.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240174&pid=S0188-4999201500040000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Elhadi S.L., Huck P.M. y Slawson R.M. (2006). Factors affecting the removal of geosmin and MIB in drinking water biofilters. J. Am. Water Works Ass. 98, 108&#45;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240176&pid=S0188-4999201500040000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gr&uuml;tzmacher G., Wessel G., Klitzke S. y Chorus I. 2009. Microcystin elimination during sediment contact. Environ. Sci. Technol. 44, 657&#45;662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240178&pid=S0188-4999201500040000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Harada K&#45;I., Imanishi S., Kato H., Mizuno M., Ito E. y Tsuji K. (2004). Isolation of Adda from microcystin&#45;LR by microbial degradation. Toxicon 44, 107&#45;109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240180&pid=S0188-4999201500040000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Harada K.I., Oshikata M., Uchida H., Suzuki M., Kondo F., Sato K., Ueno Y., Yu S.Z., Chen G. y Chen, G.C. (1996). Detection and identification of microcystins in the drinking water of Haimen City, China. Nat. Toxins 4, 277&#45;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240182&pid=S0188-4999201500040000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera N., Echeverri F. y Ferr&auml;o&#45;Filho A. (2015). Effects of phytoplankton extracts containing the toxin microcystin&#45;LR on the survival and reproduction of cladocerans. Toxicon 95, 38&#45;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240184&pid=S0188-4999201500040000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera N., Palacio J., Echeverri F. y Ferr&auml;o&#45;Filho A. (2014) Effects of a cyanobacterial bloom sample containingmicrocystin&#45;LR on the ecophysiology of <i>Daphnia similis.</i> Toxicology Reports 1, 909&#45;914.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240186&pid=S0188-4999201500040000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Himberg K., Keijola A.M., Hiisvirta L., Pyysalo H. y Sivonen K. (1989). The effect of water treatment processes on the removal of hepatotoxins from <i>Microcystis</i> and <i>Oscillatoria</i> cyanobacteria: A laboratory study. Water Res. 23, 979&#45;984.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240188&pid=S0188-4999201500040000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ho L., Sawade E. y Newcombe G. (2012). Biological treatment options for cyanobacteria metabolite removal&#45;A review. Water Res. 46, 1536&#45;1548.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240190&pid=S0188-4999201500040000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ho L., Hoefel D., Palazot S., Sawade E., Newcombe G., Saint C.P. y Brookes J.D. (2010). Investigations into the biodegradation of microcystin&#45;LR in wastewaters. J. Hazard. Mater. 180, 628&#45;633.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240192&pid=S0188-4999201500040000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ho L., Hoefel D., Bock F., Saint C.P. y Newcombe G. (2007). Biodegradation rates of 2&#45;methylisoborneol (MIB) and geosmin through sand filters and in bioreactors. Chemosphere 66, 2210&#45;2218.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240194&pid=S0188-4999201500040000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hoefel D., Ho L., Monis P.T., Newcombe G. y Saint C.P. (2009). Biodegradation of geosmin by a novel Gram&#45;negative bacterium; isolation, phylogenetic characterisation and degradation rate determination. Water Res. 43, 2927&#45;2935.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240196&pid=S0188-4999201500040000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Holst T., Jorgensen N.O., Jorgensen C. y Johansen A. (2003). Degradation of microcystin in sediments at oxic and anoxic, denitrifying conditions. Water Res. 37, 4748&#45;4760.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240198&pid=S0188-4999201500040000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jones G.J. y Orr P.T. (1994). Release and degradation of microcystin following algicide treatment of a <i>Microcystis aeruginosa</i> bloom in a recreational lake, as determined by HPLC and protein phosphatase inhibition assay. Water Res. 28, 871&#45;876.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240200&pid=S0188-4999201500040000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Metcalf J., Bell S. y Codd G. (2000). Production of novel polyclonal antibodies against the cyanobacterial toxin microcystin&#45;LR and their application for the detection and quantification of microcystins and nodularin. Water Res. 34, 2761&#45;2769.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240202&pid=S0188-4999201500040000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Paerl H.W., Hall N.S. y Calandrino E.S. (2011). Controlling harmful cyanobacterial blooms in a world experiencing anthropogenic and climatic&#45;induced change. Sci. Total Environ. 409, 1739&#45;1745.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240204&pid=S0188-4999201500040000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Paerl H.W. y Huisman J. (2009). Climate change: a catalyst for global expansion of harmful cyanobacterial blooms. Env. Microbiol Rep. 1, 27&#45;37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240206&pid=S0188-4999201500040000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parra&#45;S&aacute;nchez L.N. (2005). An&aacute;lisis facial de alta resoluci&oacute;n de sedimentos del Holoceno tard&iacute;o en el P&aacute;ramo de Frontino, Antioquia. Tesis Doctoral, Instituto de Ciencias Naturales Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;, Colombia, 215 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240208&pid=S0188-4999201500040000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prakash S., Lawton L.A. y Edwards C. 2009. Stability of toxigenic Microcystis blooms. Harmful Algae 8, 377&#45;384.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240210&pid=S0188-4999201500040000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rapala J., Lahti K., Sivonen K. y Niemel&auml; S. (1994). Biodegradability and adsorption on lake sediments of cyanobacterial hepatotoxins and anatoxin&#45;a. Lett. Appl. Microbiol. 19, 423&#45;428.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240212&pid=S0188-4999201500040000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ros J. (1979). Pr&aacute;cticas de Ecolog&iacute;a. Ediciones Omega, S.A., Barcelona, Espa&ntilde;a, 181 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240214&pid=S0188-4999201500040000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sengco M.R., Li A., Tugend K., Kulis D. y Anderson D.M. (2001). Removal of red&#45;and brown&#45;tide cells using clay flocculation. I. Laboratory culture experiments with <i>Gymnodinium breve</i> and<i> Aureococcus anophagefferens.</i> Mar. Ecol&#45;Prog. Ser. 210, 41&#45;53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240216&pid=S0188-4999201500040000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sivonen K. y Jones G. (1999). Cyanobacterial toxins. En: (J. Bartram, I. Chorus, Eds.). Toxic cyanobacteria in water. A guide to their public health consequences, monitoring and management. E &amp; FN Spon, Londres, Inglaterra, pp. 41&#45;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240218&pid=S0188-4999201500040000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Song H., Reichwaldt E.S. y Anas Ghadouani. (2014). Contribution of sediments in the removal of microcystin&#45;LR from water. Toxicon 83, 84&#45;90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240220&pid=S0188-4999201500040000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Surono I., Collado M., Salminen S. y Meriluoto J. (2008). Effect of glucose and incubation temperature on metabolically active <i>Lactobacillus plantarum</i> from dadih in removing microcystin&#45;LR. Food Chem. Toxicol. 46, 502&#45;507.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240222&pid=S0188-4999201500040000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tsuji K., Masui H., Uemura H., Mori Y. y Harada K&#45;I. (2001). Analysis of microcystins in sediments using MMPB method. Toxicon 39, 687&#45;692.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240224&pid=S0188-4999201500040000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tsuji K., Setsuda S., Watanuki T., Kondo F., Nakazawa H., Suzuki M. y Harada K.I. (1996). Microcystin levels during 1992&#45;95 for lakes sagami and tsukui&#45;japan. Nat. Toxins 4, 189&#45;194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240226&pid=S0188-4999201500040000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Visser P.M., Ibelings B.W. y Mur L.R. (1995). Autunmal sedimentation of <i>Microcystis</i> spp. as result of an increase in carbohydrate ballast at reduced temperature. J. Plankton Res. 17, 919&#45;933.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240228&pid=S0188-4999201500040000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Welker M. y Steinberg C. (2000). Rates of humic substance photosensitized degradation of microcystin&#45;LR in natural waters. Environ. Sci. Technol. 34, 3415&#45;3419.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240230&pid=S0188-4999201500040000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">W&ouml;rmer L., Cir&eacute;s S. y Quesada A. (2011). Importance of natural sedimentation in the fate of microcystins. Chemosphere 82, 1141&#45;1146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240232&pid=S0188-4999201500040000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wu X., Xiao B., Li R., Wang C., Huang J. y Wang Z. (2011). Mechanisms and Factors Affecting Sorption of Microcystins onto Natural Sediments. Environ. Sci. Technol. 45, 2641&#45;2647.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240234&pid=S0188-4999201500040000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zurawell R.W., Chen H., Burke J.M. y Prepas E.E. 2005. Hepatotoxic cyanobacteria: a review of the biological importance of microcystins in freshwater environments. J. Toxicol. Env. Heal. B 8, 1&#45;37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7240236&pid=S0188-4999201500040000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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