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<journal-title><![CDATA[Revista internacional de contaminación ambiental]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de residuos de imazapir en suelos de Argentina mediante cromatografía líquida de alta resolución y espectrometría de masas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Extraction and quantification of herbicide residues from soil are important to make monitoring studies and to minimize the pollution risk. The objectives of this research were: to evaluate the efficacy of different solvents for the extraction and quantification of imazapyr residues from Argentine soils and to determine the concentration effect and soil properties influences on herbicide recovery. Extraction solutions including 0.1M pH 7 potassium chloride (KCl), 0.5 M sodium hydroxide (NaOH), 0.1M pH 14 potassium chloride (KCl), 0.1 M potassium hydroxide (KOH), methanol/water (CH3OH/H(2)0 80:20), 0.5 M sodium hydroxide/methanol(NaOH/CH3OH 80:20), and 0.5 M sodium hydroxide/acetonitrile (NaOH/CH3CN 80:20) to extract imazapyr from soil were investigated. Percentage recovery with each solution extraction was obtained. Then four argentine soils (Tres Arroyos, Balcarce, Anguil and Cerro Azul) and four imazapyr concentrations (5, 25, 50 and 100 ng/kg) were selected to evaluate the chosen method. Treatments were arranged in a completely randomized factorial design. The herbicide residues were determined and quantified by ultra performance liquid chromatography-mass spectrometry. The recovery obtained showed significant differences between the extraction solutions. The best recovery (95%) was obtained using 0.1 M pH 7 potassium chloride. Interaction effect between soils and concentration was detected. The lowest recovery from soils was found using low imazapyr concentrations. Results have shown that the proposed methodology was suitable to detect and quantify imazapyr residues in different soils and in a wide range of concentrations.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Determinaci&oacute;n de residuos de imazapir en suelos de Argentina mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n y espectrometr&iacute;a de masas</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Determination of imazapir residues of soils from Argentina by means of ultra performance liquid chromatography&#45;mass spectrometry</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Valeria Rosana GIANELLI<sup>1</sup>*, Manuel Jos&eacute; ZELAYA<sup>1</sup>, Francisco BEDMAR<sup>2</sup> y Jos&eacute; Luis COSTA<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>INTA. Estaci&oacute;n Experimental Agropecuaria Balcarce, Ruta 226 km 73.5, Balcarce, Argentina</i> <i>*Autora responsable: <a href="mailto:vgianelli@balcarce.inta.gov.ar" target="_blank">vgianelli@balcarce.inta.gov.ar</a></i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Universidad Nacional de Mar del Plata, Argentina, Ruta 226 km 73.5, Balcarce, Argentina</i></font></p>       <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Recibido mayo 2011,    <br> 	aceptado marzo 2013</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de residuos de herbicidas en el suelo resultan de gran importancia para monitorear su presencia y minimizar el riesgo de contaminaci&oacute;n asociado al uso de los mismos. Los objetivos de este trabajo fueron a) evaluar la eficiencia de distintos extractantes en la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de residuos de imazapir en suelos de Argentina y b) determinar el efecto de la concentraci&oacute;n del herbicida y de las caracter&iacute;sticas edafol&oacute;gicas en el porcentaje de recuperaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a. Para desarrollar el primer objetivo, se seleccionaron siete extractantes (KCl (0.1 M pH 7), NaOH (0.5 M), KCl (0.1 M pH 14), KOH (0.1 M), CH<sub>3</sub>OH/H<sub>2</sub>0 (80:20), NaOH/CH<sub>3</sub>OH (80:20; 0.5 M) e NaOH/CH<sub>3</sub>CN (80:20; 0.5 M)), determin&aacute;ndose el porcentaje de recuperaci&oacute;n con cada uno de ellos. Posteriormente, una vez seleccionado el extractante &oacute;ptimo, para el segundo objetivo, se analizaron cuatro suelos de Argentina (Tres Arroyos, Balcarce, Anguil y Cerro Azul) y cuatro concentraciones de imazapir (5, 25, 50 y 100 ng/kg). El ensayo se estableci&oacute; bajo un dise&ntilde;o completamente aleatorizado en arreglo factorial. Las determinaciones se llevaron a cabo mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n acoplada a espectrometr&iacute;a de masas. Los resultados indicaron que el porcentaje de recuperaci&oacute;n vari&oacute; significativamente en funci&oacute;n de la disoluci&oacute;n empleada para la extracci&oacute;n. La disoluci&oacute;n de cloruro de potasio (0.1 M, pH 7) result&oacute; superior a los dem&aacute;s extractantes, alcanzando una recuperaci&oacute;n de 95 %. Se detect&oacute; efecto de interacci&oacute;n (p &lt; 0.05) entre los suelos y las concentraciones evaluadas. En l&iacute;neas generales, los valores de recuperaci&oacute;n en los suelos estudiados resultaron inferiores cuando se aplicaron bajas concentraciones del herbicida. La metodolog&iacute;a propuesta result&oacute; adecuada para la determinaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de imazapir en distintos suelos y en un amplio rango de concentraciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras claves</b>: imidazolinonas, metodolog&iacute;a de extracci&oacute;n, porcentaje de recuperaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Extraction and quantification of herbicide residues from soil are important to make monitoring studies and to minimize the pollution risk. The objectives of this research were: to evaluate the efficacy of different solvents for the extraction and quantification of imazapyr residues from Argentine soils and to determine the concentration effect and soil properties influences on herbicide recovery. Extraction solutions including 0.1M pH 7 potassium chloride (KCl), 0.5 M sodium hydroxide (NaOH), 0.1M pH 14 potassium chloride (KCl), 0.1 M potassium hydroxide (KOH), methanol/water (CH<sub>3</sub>OH/H<sub>2</sub>0 80:20), 0.5 M sodium hydroxide/methanol(NaOH/CH<sub>3</sub>OH 80:20), and 0.5 M sodium hydroxide/acetonitrile (NaOH/CH<sub>3</sub>CN 80:20) to extract imazapyr from soil were investigated. Percentage recovery with each solution extraction was obtained. Then four argentine soils (Tres Arroyos, Balcarce, Anguil and Cerro Azul) and four imazapyr concentrations (5, 25, 50 and 100 ng/kg) were selected to evaluate the chosen method. Treatments were arranged in a completely randomized factorial design. The herbicide residues were determined and quantified by ultra performance liquid chromatography&#45;mass spectrometry. The recovery obtained showed significant differences between the extraction solutions. The best recovery (95%) was obtained using 0.1 M pH 7 potassium chloride. Interaction effect between soils and concentration was detected. The lowest recovery from soils was found using low imazapyr concentrations. Results have shown that the proposed methodology was suitable to detect and quantify imazapyr residues in different soils and in a wide range of concentrations.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: imidazolinones, extraction method, recovery percentage.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de residuos de herbicidas en el suelo resultan de gran importancia al momento de predecir su destino en el ambiente. La retenci&oacute;n y la degradaci&oacute;n de un herbicida son fen&oacute;menos relacionados que condicionan su potencialidad de contaminaci&oacute;n del agua subterr&aacute;nea (Walker 2003). Aquellos herbicidas que presentan menor retenci&oacute;n a los coloides del suelo por lo general poseen mayor movilidad, lo cual incrementa el riesgo de contaminaci&oacute;n del agua subterr&aacute;nea. De la misma manera, los plaguicidas persistentes, permanecer&aacute;n m&aacute;s tiempo en el suelo y por lo tanto tendr&aacute;n m&aacute;s oportunidad de ser lixiviados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El imazapir es un herbicida perteneciente a la familia qu&iacute;mica de las imidazolinonas. Actualmente, en Argentina este herbicida es utilizado a gran escala para el control de malezas en el cultivo de girasol Clearfield (CL) tolerante a imidazolinonas. Su mecanismo de acci&oacute;n consiste en inhibir la enzima acetolactato sintetasa. Esta enzima cataliza el primer paso en la bios&iacute;ntesis de tres amino&aacute;cidos alif&aacute;ticos esenciales de cadena ramificada: valina, leucina e isoleucina, por lo que si no est&aacute; activa se inhibe la s&iacute;ntesis de amino&aacute;cidos, la s&iacute;ntesis de ADN, la s&iacute;ntesis proteica y el crecimiento de las c&eacute;lulas, por lo tanto las plantas susceptibles detienen su crecimiento y mueren (Senseman 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El imazapir presenta alto riesgo de lixiviaci&oacute;n dada su baja capacidad de adsorci&oacute;n y alta capacidad de desorci&oacute;n. Sumado a ello, entre sus propiedades fisicoqu&iacute;micas se destaca su elevada persistencia en el suelo, lo cual incrementa el riesgo potencial de contaminaci&oacute;n. Los rangos de vida media reportados en el suelo oscilan entre 25 y 142 d&iacute;as (Senseman 2007), siendo m&aacute;s corta en suelos arenosos y con temperaturas elevadas (Ulbrich <i>et al.</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mol&eacute;cula de imazapir presenta naturaleza anfot&eacute;rica (presencia de grupos &aacute;cidos y b&aacute;sicos funcionales). Dicha caracter&iacute;stica permite al herbicida existir en forma ani&oacute;nica, neutra o cati&oacute;nica, dependiendo del pH del ambiente <b>(<a href="#f1">Fig. 1</a>).</b> Posee tres constantes de disociaci&oacute;n (pKa), 1.9, 3.6 y 11.4. Cuando el pH del suelo es mayor que su pKa, el herbicida se encuentra presente en estado ani&oacute;nico (&#45;COO&#45;), lo que causa repulsi&oacute;n por los coloides del suelo, y promueve una d&eacute;bil adsorci&oacute;n. Cuando el pH del suelo es menor al pKa, el herbicida se halla en forma cati&oacute;nica o neutra (&#45;COOH), pudiendo interactuar con las superficies hidrof&oacute;bicas de la materia org&aacute;nica y coloides cargados negativamente (Che <i>et al.</i> 1992).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La degradaci&oacute;n microbiana constituye su principal mecanismo de disipaci&oacute;n. Por tal motivo, la degradaci&oacute;n se acelera bajo condiciones que favorecen la actividad de los microorganismos del suelo, tales como temperaturas elevadas, alto contenido de humedad en el suelo y pH neutro (Wehtje <i>et al.</i> 1987).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En consecuencia, el movimiento y la persistencia del imazapir se encuentran fuertemente influenciados por diversas propiedades del suelo, entre ellas el pH, el contenido de arcilla y el de materia org&aacute;nica (Mangels 1991). La adsorci&oacute;n se incrementa a medida que el pH decrece, y es mayor en suelos con alto contenido de materia org&aacute;nica y de arcilla (Loux <i>et al.</i> 1989).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen diversas metodolog&iacute;as para la determinaci&oacute;n de residuos de imazapir en muestras de suelo, las cuales emplean cromatograf&iacute;a l&iacute;quida o gaseosa con diferentes tipos de detectores (D' Ascenzo <i>et al.</i> 1998, Lagana <i>et al.</i> 2000, Ramezani <i>et al.</i> 2009). No obstante, muchas son laboriosas, presentan baja sensibilidad, reproducibilidad y especificidad, originando falsos positivos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La espectrometr&iacute;a de masas en tandem (EM/EM), constituye actualmente una de las herramientas anal&iacute;ticas m&aacute;s sofisticadas para el an&aacute;lisis de plaguicidas en diferentes tipos de matrices. Debido a que presenta alta sensibilidad y selectividad, es posible cuantificar residuos de plaguicidas en matrices ambientales a niveles traza (Lao y Jay Gan 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diversos estudios han demostrado que la determinaci&oacute;n de residuos de imidazolinonas mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida (CL) acoplada a EM/EM es adecuada ya que dichos compuestos son eficientemente ionizados bajo la forma de electroespray (D'Ascenzo <i>et al.</i> 1998, Koppen y Spliid 1998, Lagana <i>et al.</i> 2000, Ramezani <i>et a</i>l 2009). Sin embargo, resulta necesario optimizar las condiciones del m&eacute;todo, en lo referente a los par&aacute;metros instrumentales y el tratamiento de la muestra, de manera que confirmen en forma inequ&iacute;voca al analito, sean reproducibles, sensibles y selectivos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n del efecto matriz es de gran importancia cuando se desarrolla un m&eacute;todo de cuantifi&#45;caci&oacute;n mediante CL&#45; EM/EM. Los compuestos que coeluyen con el analito pueden afectar la ionizaci&oacute;n, causando incremento o supresi&oacute;n en la se&ntilde;al. De esta manera, el efecto matriz puede afectar la reproducibilidad y precisi&oacute;n del m&eacute;todo (Taylor <i>et al.</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen en la literatura diversos procedimientos empleados para la extracci&oacute;n de imazapir en el suelo, que difieren en la composici&oacute;n de la disoluci&oacute;n utilizada como extractante, en la separaci&oacute;n del extracto y en el tratamiento posterior del herbicida extra&iacute;do. En tal sentido, Liu <i>et al.</i> (1992) utilizaron una disoluci&oacute;n extractante compuesta por metanol y agua. Por su parte, D'Ascenzo <i>et al.</i> (1998), determinaron que el KCl 0.1 M fue m&aacute;s eficiente para la extracci&oacute;n de imazapir sin ning&uacute;n tratamiento posterior. Rame&#45;zani <i>et al.</i> (2009), reportaron mayor recuperaci&oacute;n del herbicida con NaOH 0.5 M, utilizando adem&aacute;s extracci&oacute;n en fase s&oacute;lida. No obstante, Lagana <i>et al.</i> (2000), determinaron mayor recuperaci&oacute;n con la combinaci&oacute;n metanol/carbonato de amonio (0.1 M, 50:50), empleando asimismo cartuchos de extracci&oacute;n para el lavado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Argentina es escasa la informaci&oacute;n relacionada al comportamiento del imazapir en el suelo. Sumado a ello, debido a las caracter&iacute;sticas estructurales de la mol&eacute;cula y a la influencia de las propiedades del suelo en su comportamiento, resulta de gran importancia optimizar la metodolog&iacute;a de extracci&oacute;n en suelos que presentan propiedades diferentes a los empleados en estudios previos. Adem&aacute;s, debido a que la dosis actual de aplicaci&oacute;n es relativamente baja (80 g ingrediente activo ha<sup>&#45;1</sup>), y a su prolongada persistencia en el suelo, la metodolog&iacute;a debe permitir la determinaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de sus residuos a muy bajas concentraciones, a fin de evaluar con precisi&oacute;n su comportamiento ambiental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en lo expuesto y dadas las diferentes metodolog&iacute;as existentes para la determinaci&oacute;n de residuos de imazapir, los objetivos de este trabajo fueron a) evaluar la eficiencia de las distintas disoluciones extractantes y procedimientos para la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de residuos de imazapir en suelos de Argentina; b) determinar el efecto del tipo de suelo y de la concentraci&oacute;n del herbicida sobre la recuperaci&oacute;n de imazapir, con el fin de demostrar la validez del procedimiento de an&aacute;lisis en presencia de cambios en la matriz, respecto de las condiciones originalmente evaluadas en el m&eacute;todo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reactivos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un est&aacute;ndar de imazapir, 2&#45;(4&#45;isopropil&#45;4&#45;methil&#45;5&#45;oxo&#45;2&#45;imidazolin&#45;2&#45;yl)&#45; acido nicot&iacute;nico (Chem service), con 99% de pureza. Todas las disoluciones y la fase m&oacute;vil fueron preparadas con agua ultra pura desionizada (Milli&#45;Q water, Millipore). Los disolventes fueron metanol (J.T Baker), &aacute;cido f&oacute;rmico (Riedel&#45;de Ha&eacute;n) y acetonitrilo (J.T Baker) grado HPLC. Se emple&oacute; una disoluci&oacute;n "stock" de imazapir (1.2 &#956;g/mL) preparada en agua ultra pura desionizada almacenada a 4 &deg;C hasta su uso.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis instrumental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las determinaciones se llevaron a cabo con un cromat&oacute;grafo de l&iacute;quidos de alta resoluci&oacute;n (Acquity UPLC System (Waters &reg;), acoplado a un espectr&oacute;metro de masas Quattro Premier XE. El sistema fue controlado con el <i>software</i> Micromass Masslynx V 4.1., mientras que los datos fueron procesados mediante la opci&oacute;n TagertLynx. Las condiciones cromatogr&aacute;ficas se establecieron con base en la metodolog&iacute;a propuesta por Zelaya <i>et al.</i> (2009). Brevemente, se emple&oacute; una columna Acquity UPLC&reg; BEH C18 1.7 (im 2.1 x 50 mm, la fase m&oacute;vil fue disoluci&oacute;n A: 0.01% de &aacute;cido f&oacute;rmico en agua, disoluci&oacute;n B: metanol, a un flujo de 0.350 mL/min. El <b><a href="#c1">cuadro I</a></b> ilustra el gradiente empleado. La temperatura de la columna fue 40 &deg;C, el volumen de inyecci&oacute;n 10 &#181;L, y el tiempo de an&aacute;lisis 9 min.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4c1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis cuantitativo se llev&oacute; a cabo por est&aacute;ndar externo empleando una curva de calibraci&oacute;n lineal en el intervalo 0.03 &#45; 500 &#956;g/L (R<sup>2</sup> &gt; 0.99).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; un espectr&oacute;metro de masas Quattro Premier XE con electrospray como modo de ionizaci&oacute;n, polaridad positiva, 3.5 KV de voltaje del capilar. La temperatura de la fuente fue 100 &deg;C, la de desolvataci&oacute;n de 350 &deg;C. El flujo de gas del cono 5 L/h y el del gas de desolvataci&oacute;n de 700 L/h. El EM/EM se oper&oacute; en el modo MRM (monitoreo de reacciones m&uacute;ltiples), cuyas transiciones analizadas fueron: 262.10 &gt; 148.90 y 262.10 &gt; 217.00. El tiempo de espera se estableci&oacute; en 0.03 s, con voltaje del cono en 31 V, la energ&iacute;a de colisi&oacute;n en 25 y 20 V para las transiciones 262.10 &gt; 148.90 y 262.10 &gt; 217.00, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1. Selecci&oacute;n de la metodolog&iacute;a</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aspectos investigados incluyeron: selecci&oacute;n de la disoluci&oacute;n y procedimiento de extracci&oacute;n &oacute;ptimos de imazapir en muestras de suelo, determinaci&oacute;n de los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n, efecto matriz y par&aacute;metros asociados al sistema CL&#45; EM/EM.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el estudio se utilizaron muestras de suelo de la localidad de Tres Arroyos, de la provincia de Buenos Aires, Argentina <b>(<a href="/img/revistas/rica/v29n2/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro II</a>).</b> Las muestras se extrajeron a 0&#45;15 cm de profundidad, se secaron a 30 &deg;C, se tamizaron en una malla de 2 mm y se refrigeraron hasta su procesamiento. La concentraci&oacute;n aplicada de imazapir a las muestras de suelo fue 110 (g/kg, equivalente a la dosis de campo recomendada para la zona de estudio (100 g/ha).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con D'Ascenzo <i>et al.</i> (1998), Lagana <i>et al.</i> (2000) y Ramezani <i>et al.</i> (2009), se seleccionaron siete extractantes y se determin&oacute; el porcentaje de recuperaci&oacute;n del herbicida con cada uno de ellos. Las disoluciones evaluadas incluyeron: cloruro de potasio (KCl 0.1M pH 7), hidr&oacute;xido de sodio (NaOH 0.5M), cloruro de potasio (KCl 0.1M pH 14), hidr&oacute;xido de potasio (KOH 0.1M), metanol/agua (CH3OH/H20 80:20), hidr&oacute;xido de sodio/metanol (0.5 M NaOH/ CH<sub>3</sub>OH 80:20) e hidr&oacute;xido de sodio/acetonitrilo (0.5 M NaOH/CH<sub>3</sub>CN 80:20).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fortificaci&oacute;n de las muestras</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cada muestra correspondiente a 5 g de suelo seco se pes&oacute; y se coloc&oacute; en Erlenmeyer de 100 mL. Posteriormente, a partir de la soluci&oacute;n stock se aplic&oacute; el herbicida a fin de obtener a una concentraci&oacute;n de 110 &#181;g/kg en cada una de las muestras. El suelo se homogeneiz&oacute; mediante agitaci&oacute;n en v&oacute;rtex por 30 minutos y se llev&oacute; a estufa (30 &deg;C) durante 2 horas. Posteriormente, las muestras se colocaron en heladera a 4 &deg;C durante 48 horas antes de la extracci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1.1 Procedimiento de extracci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las extracciones se llevaron a cabo en una proporci&oacute;n 1:4 de suelo y disoluci&oacute;n extractante. De esta forma, se extrajeron 5 g de suelo con 20 mL de cada una de las siete disoluciones descritas. Las disoluciones se agitaron en un v&oacute;rtex durante 10 min, se sonicaron por 15 min y se centrifugaron a 2500 rpm por 15 min. Este procedimiento se realiz&oacute; por triplicado. Finalmente se combinaron los extractos correspondientes a cada ciclo de extracci&oacute;n y se homogenizaron mediante agitaci&oacute;n por v&oacute;rtex. De cada extracto final se tom&oacute; una al&iacute;cuota, la cual se filtr&oacute; a trav&eacute;s de filtros jeringa de 0.2 &#956;m y se coloc&oacute; en viales de 1.5 mL para su posterior determinaci&oacute;n por CL&#45; EM/EM.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como tratamiento testigo o blanco se utilizaron muestras de suelo sin contaminar, en las cuales se realiz&oacute; el procedimiento de extracci&oacute;n descrito.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El procedimiento de validaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a se realiz&oacute; seg&uacute;n las indicaciones presentadas en el documento SANCO (2009). El mismo comprendi&oacute;: adem&aacute;s de los estudios de recuperaci&oacute;n, determinaci&oacute;n de los l&iacute;mites de detecci&oacute;n (LD) y de cuantificaci&oacute;n (LC), evaluaci&oacute;n del efecto matriz, precisi&oacute;n, linealidad y robustez del m&eacute;todo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n se establecieron mediante el an&aacute;lisis de patrones de imazapir en la matriz del suelo, en un rango de concentraciones decrecientes (120, 60, 12, 4, 1.2 &#181;g/kg). Ambos se calcularon como la concentraci&oacute;n en la cual la relaci&oacute;n se&ntilde;al/ruido es mayor a 3 y 10 respectivamente y mediante el coeficiente de variaci&oacute;n correspondiente a 10 inyecciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar el efecto matriz se prepararon curvas de calibraci&oacute;n por triplicado, en agua ultra pura, en la disoluci&oacute;n extractante de KCl 0.1M pH 7 y en el extracto del suelo obtenido de la muestra testigo. Para la preparaci&oacute;n de las curvas se tomaron 5, 10, 50, 100, 250, 500 y 1000 de una disoluci&oacute;n est&aacute;ndar de imazapir (0.01 &#956;g/mL) y se disolvieron en 995, 990, 950, 900, 750, 500 y 0 (L de las disoluciones diluyentes (agua ultra pura, KCl 0.1M pH 7 y el extracto del suelo) resultando en concentraciones de 0.05, 0.1, 0.5, 1, 2.5, 5 y 10 &#181;g/L.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Posteriormente se compararon las &aacute;reas obtenidas de la curva preparada en agua ultra pura desionizada (A), con aquellas medidas con la disoluci&oacute;n de KCl (B) y las del extracto de suelo posterior a la extracci&oacute;n (C). En tal sentido, la relaci&oacute;n (B/Ax100) y (C/Ax100) es definida como el efecto matriz absoluto (EM %). Un valor de 100 % indica que no existe efecto matriz absoluto. Si el valor es mayor a 100 % se presenta incremento en la se&ntilde;al, mientras que valores menores a 100 % indican supresi&oacute;n de la se&ntilde;al (Matuszewski <i>et al.</i> 2003).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La precisi&oacute;n del m&eacute;todo se evalu&oacute; en muestras de suelo fortificadas, por quintuplicado, con cuatro niveles de concentraci&oacute;n (5, 25, 50 y 100 &#181;g/kg) realiz&aacute;ndo posteriormente el procedimiento de extracci&oacute;n. La precisi&oacute;n se estim&oacute; mediante el CV (%) de las repeticiones. Por su parte, la linealidad se determin&oacute; mediante la elaboraci&oacute;n de curvas de calibraci&oacute;n de cantidad recuperada de imazapir en funci&oacute;n de la cantidad aplicada en el suelo, emple&aacute;ndose tres repeticiones por cada nivel. La linealidad de la curva de evalu&oacute; mediante el coeficiente de correlaci&oacute;n de Pearson.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, con el fin de evaluar la robustez del m&eacute;todo se estudi&oacute; la recuperaci&oacute;n en cuatro suelos con propiedades contrastantes y con cuatro concentraciones del herbicida.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>2. Efecto del tipo de suelo y de la concentraci&oacute;n del herbicida sobre la recuperaci&oacute;n de imazapir</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de evaluar la robustez del m&eacute;todo se realizaron an&aacute;lisis para conocer si el tipo de suelo y la concentraci&oacute;n del herbicida afecta la del m&eacute;todo. Para ello se usaron cuatro suelos con propiedades contrastantes <b>(<a href="/img/revistas/rica/v29n2/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro II</a>),</b> de las localidades de Tres Arroyos, Balcarce (provincia de Buenos Aires), An&#45;guil (provincia de La Pampa) y Cerro Azul (provincia de Misiones).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras de suelo se recolectaron y acondicionaron como se indic&oacute; previamente en la selecci&oacute;n de la metodolog&iacute;a. Las concentraciones de imazapir evaluadas fueron: 5, 25, 50 y 100 &#181;g/kg.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La metodolog&iacute;a consisti&oacute; en tres extracciones consecutivas para cada suelo con una disoluci&oacute;n de KCl 0.1 M pH 7, basada en los mecanismos de agitaci&oacute;n, sonicaci&oacute;n y centrifugaci&oacute;n anteriormente descritos. El ensayo se estableci&oacute; bajo un dise&ntilde;o completamente aleatorizado en arreglo factorial. Los factores considerados correspondieron al tipo de suelo (4) y a las concentraciones del herbicida (4), realiz&aacute;ndose 3 repeticiones para cada combinaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>3. An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La informaci&oacute;n obtenida de los experimentos se analiz&oacute; mediante el programa SAS (The SAS System versi&oacute;n 9.0, 2002). A tal fin, se realizaron an&aacute;lisis de la varianza (ANOVA), y comparaciones de promedios mediante la prueba de diferencias m&iacute;nimas significativas (LSD) con un nivel de significaci&oacute;n del 5%.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1. Selecci&oacute;n de la metodolog&iacute;a</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de recuperaci&oacute;n vari&oacute; significativamente (p &lt; 0.05) seg&uacute;n el extractante empleado <b>(<a href="#c3">Cuadro III</a>),</b> determin&aacute;ndose que la disoluci&oacute;n de KCl (0.1M pH 7) fue la que permiti&oacute; el mayor porcentaje de recuperaci&oacute;n. Se obtuvieron diferencias significativas entre todas las disoluciones, excepto para las disoluciones de NaOH/CH3OH (80:20) y NaOH/CH<sub>3</sub>CN (80:20) las cuales resultaron adem&aacute;s menos eficientes para recuperar el herbicida.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4c3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las <b><a href="#f2">figuras 2</a></b> y <b><a href="#f3">3</a></b> <a href="#f3">(a y b</a>) se presentan a modo de ejemplo los cromatogramas correspondientes a la extracci&oacute;n de imazapir con la disoluci&oacute;n de KCl (0.1M pH 7) y CH3OH/H20 (80:20) y sus respectivos est&aacute;ndares. Los n&uacute;meros adyacentes a los cromatogramas indican el tiempo de retenci&oacute;n y las &aacute;reas de las transiciones analizadas.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4f2.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4f3.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo tanto, las condiciones seleccionadas para validar el m&eacute;todo fueron tres ciclos de extracci&oacute;n consecutivos con la disoluci&oacute;n de KCl 0.1M pH 7, mediante los mecanismos de agitaci&oacute;n, sonicaci&oacute;n y centrifugaci&oacute;n descritos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n fueron de 1.2 y 4 &#181;/kg respectivamente, con buena repetibilidad (CV &lt; 6%). Estos valores resultaron inferiores a los l&iacute;mites de detecci&oacute;n establecidos por D'Ascenzo <i>et al.</i> (1998) quienes reportaron valores entre 9 y 14 &#181;g/kg.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por su parte, no se observ&oacute; efecto matriz, dado que las concentraciones de imazapir fueron equivalentes en cada una de las curvas preparadas con las distintas disoluciones <b>(<a href="#f4">Fig. 4</a>).</b> Las ecuaciones correspondientes a las curvas de calibraci&oacute;n fueron las siguientes: Agua ultra pura y= 884.19x &#45; 15.916 R<sup>2</sup>= 0.9999; Extracto de suelo y= 831.75x &#45; 61.079 R<sup>2</sup>= 0.9989; KCl y= 853.9x &#45; 50.756 R<sup>2</sup>= 0.9986.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4f4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Asimismo, en el <b><a href="#c4">Cuadro IV</a></b> se presentan las relaciones entre las &aacute;reas de las curvas de calibraci&oacute;n en las diferentes matrices. Se puede observar la ausencia de efecto matriz dado que los valores promedio de las relaciones oscilaron entre 81 y 114 %, valores muy pr&oacute;ximos al 100 % el cual representa la inexistencia de efecto matriz absoluto.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4c4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Respecto a la linealidad del m&eacute;todo anal&iacute;tico <b>(<a href="#f5">Fig. 5</a>),</b> el ajuste de los datos indic&oacute; que la recuperaci&oacute;n del herbicida fue satisfactoriamente descrita por el modelo lineal (y=0.8877x + 1.3748; r=0.99; p&lt;0.001), para el rango de concentraciones evaluadas (5&#45;100 &#181;g/kg)</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4f5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n con los restantes par&aacute;metros de validaci&oacute;n estudiados, la precisi&oacute;n, estimada mediante el coeficiente de variaci&oacute;n, estuvo comprendida en el intervalo entre 1.2 y 3 % para el rango de concentraciones evaluadas. Asimismo, se determin&oacute; que el porcentaje de recuperaci&oacute;n absoluto global del m&eacute;todo anal&iacute;tico fue 93.2 &plusmn; 5 % <b>(<a href="/img/revistas/rica/v29n2/a4c5.jpg" target="_blank">Cuadro V</a>).</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en los resultados se puede establecer que las condiciones &oacute;ptimas para obtener la m&aacute;xima recuperaci&oacute;n, identificaci&oacute;n y confirmaci&oacute;n del herbicida fueron: tres ciclos de extracci&oacute;n consecutivos con el extractante KCl (0.1M pH 7). Asimismo, el empleo de KCl (0.1M pH 7) como disoluci&oacute;n extractante, de acuerdo con el procedimiento evaluado, permiti&oacute; obtener un extracto final claro, sin necesidad de realizar procesos de limpieza, lo cual facilit&oacute; su inyecci&oacute;n directa en el sistema cromatogr&aacute;fico, reduciendo significativamente el tiempo de procesado y an&aacute;lisis de las muestras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en el presente estudio coinciden con los reportados por D'Ascenzo <i>et al.</i> (1998). No obstante, el procedimiento llevado a cabo por Ramezani <i>et al.</i> (2009) en donde evaluaron diferentes extractantes, establecieron al NaOH 0.5M como el m&aacute;s eficiente, con recuperaciones entre 93.4 y 96.8%. Sin embargo, en nuestro estudio los porcentajes de recuperaci&oacute;n con NaOH 0.5M no pudieron ser reproducidos, obteni&eacute;ndose en este caso s&oacute;lo 50 % de recuperaci&oacute;n del herbicida. Tales diferencias podr&iacute;an haber sido producto de los diversos procedimientos de extracci&oacute;n utilizados en ambas metodolog&iacute;as. Adem&aacute;s, si bien dichos autores en su estudio emplearon un suelo con propiedades similares al presente trabajo, el mismo presentaba mayor contenido de arena, lo cual no produce interacciones significativas con la mol&eacute;cula de imazapir, disminuyendo la retenci&oacute;n del compuesto y aumentando en consecuencia el porcentaje de extracci&oacute;n en ese tipo de suelo. Por otra parte, los mencionados autores determinaron que la extracci&oacute;n de imazapir con KCl a pH 5.9 produjo menor recuperaci&oacute;n que las restantes disoluciones, como consecuencia del bajo pH de la disoluci&oacute;n de extracci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El imazapir presenta las siguientes propiedades fisicoqu&iacute;micas, peso molecular: 261.3, solubilidad en agua (mg/L) a 25 &deg;C: 11 270, presi&oacute;n de vapor (Pa) a 60 &deg;C: &lt;1.33x10<sup>&#45;5</sup>, pKa: 1.9, 3.6 y 11.4, coeficiente de partici&oacute;n en octanol &#45; agua a 22 &deg;C (Log Kow): 1.3. Por tal motivo, en nuestro estudio las mejores recuperaciones fueron obtenidas con KCl a pH neutro y alcalino debido a que en este rango de pH (superior al pKa de la mol&eacute;cula) el herbicida se encuentra en forma ani&oacute;nica siendo repelido por los coloides del suelo y aumentando su solubilidad a causa de la desprotonaci&oacute;n del compuesto (Mangels 1991, Lagana <i>et al.</i> 2000). No obstante, en condiciones alcalinas podr&iacute;a haber disminuido la estabilidad del compuesto provocando la hidr&oacute;lisis del mismo, por lo cual el porcentaje de recuperaci&oacute;n obtenido con KCl a pH 14 fue inferior al determinado con el mismo extractante pero en medio neutro, en el cual se espera la mayor estabilidad del herbicida (D'Ascenzo <i>et al.</i> 1998, Marchese <i>et al.</i> 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los restantes extractantes evaluados presentaron baja eficiencia de recuperaci&oacute;n de imazapir en el suelo, probablemente como consecuencia de la menor solubilidad del compuesto en soluciones acuosas y en disolventes org&aacute;nicos. Asimismo, las combinaciones de NaOH/C&#094;OH (80:20) y NaOH/ CH<sub>3</sub>CN (80:20) no fueron efectivas para lograr una correcta separaci&oacute;n del sobrenadante, debido a la obtenci&oacute;n de un extracto pigmentado, lo cual evidencia la presencia de compuestos h&uacute;micos y part&iacute;culas en suspensi&oacute;n, que provocaban interferencias en la determinaciones cromatogr&aacute;ficas de la mol&eacute;cula. En tal sentido, para el caso de los herbicidas i&oacute;nicos, los electrolitos, tales como el KCl podr&iacute;an minimizar las interacciones Van der Waals entre dichos compuestos y las arcillas o los &aacute;cidos h&uacute;micos. En consecuencia, este extractante aportar&iacute;a la suficiente fuerza i&oacute;nica a la disoluci&oacute;n para desplazar al herbicida de la matriz del suelo sin interferencias. Asimismo, establecer&iacute;a un adecuado pH para generar la forma m&aacute;s soluble del herbicida y romper la interacci&oacute;n con las part&iacute;culas cargadas del suelo (Cesio <i>et al.</i> 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>2. Efecto del tipo de suelo y de la concentraci&oacute;n del herbicida sobre la recuperaci&oacute;n de imazapir</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se detect&oacute; efecto de interacci&oacute;n (p &lt; 0.05) para el porcentaje de recuperaci&oacute;n, entre los suelos y las concentraciones evaluadas <b>(<a href="#c6">Cuadro VI</a>).</b> En general, los porcentajes de recuperaci&oacute;n determinados por el m&eacute;todo de extracci&oacute;n seleccionado en este estudio, se encuentran dentro del rango aceptado internacionalmente para la extracci&oacute;n y detecci&oacute;n de plaguicidas (SANCO 2009), dado que se indican como aceptables, valores de recuperaci&oacute;n entre 70 y 120 % del plaguicida aplicado. De acuerdo con los resultados, solamente se obtuvieron valores de recuperaci&oacute;n significativamente inferiores en los suelos de Balcarce, Anguil y Cerro Azul cuando se aplicaron concentraciones muy bajas (5 &#181;g/kg), probablemente como consecuencia de la mayor cantidad de sitios disponibles para la adsorci&oacute;n del herbicida en el suelo, o posiblemente debido a las p&eacute;rdidas en extracci&oacute;n en estos niveles de concentraci&oacute;n <b>(<a href="#c7">Cuadro VII</a>).</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c6"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4c6.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c7"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4c7.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados concuerdan con los reportados por D'Ascenzo <i>et al.</i> (1998), quienes empleando una metodolog&iacute;a de extracci&oacute;n equivalente, no encontraron variaciones en la recuperaci&oacute;n de imazapir en el rango de concentraciones evaluadas (50&#45;200 (g/kg) para distintos suelos. Del mismo modo, Ramezani <i>et al.</i> (2009), no detectaron diferencias significativas entre los suelos analizados, con recuperaciones del herbicida mayores al 70% en todos los casos estudiados. Esta tendencia podr&iacute;a atribuirse a que tanto los suelos evaluados por D'Ascenzo <i>et al.</i> (1998) y Ramezani <i>et al.</i> (2009), como los del presente estudio presentaban valores de pH entre 5 y 7.6. En este rango la mol&eacute;cula de imazapir se encuentra en estado ani&oacute;nico, provocando la repulsi&oacute;n por los coloides del suelo, originando en consecuencia elevada recuperaci&oacute;n del herbicida.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <b><a href="#f6">figura 6</a></b> se presentan las concentraciones recuperadas del herbicida en cada suelo en funci&oacute;n de las concentraciones aplicadas en el experimento, observ&aacute;ndose que la recuperaci&oacute;n para todos los suelos fue lineal en el rango de concentraciones evaluado. Las ecuaciones de regresi&oacute;n lineales obtenidas para cada suelo fueron: Balcarce y= 0.8902x +2.4355 R<sup>2</sup>: 0.9862; Anguil y= 1.1851x &#45;6.8552 R<sup>2</sup>: 0.9804; Tres Arroyos y= 08877x +1.3748 R<sup>2</sup>: 0.9985; Cerro Azul y= 0.9241x &#45;0.7327 R<sup>2</sup>: 0.94.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v29n2/a4f6.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados sugieren que a pesar de la influencia comprobada de las propiedades del suelo (pH, contenido de arcilla y de materia org&aacute;nica) en la movilidad y la adsorci&oacute;n del herbicida (Pusino <i>et al.</i> 1997, Firmino <i>et al.</i> 2008), el KCl ser&iacute;a efectivo para provocar la ionizaci&oacute;n de la mol&eacute;cula, originando repulsi&oacute;n de la misma de los coloides del suelo. Asociado a este proceso, se obtendr&iacute;a un elevado % de recuperaci&oacute;n del herbicida independientemente de las propiedades de los suelos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de recuperaci&oacute;n obtenido con la metodolog&iacute;a evaluada vari&oacute; en funci&oacute;n de la disoluci&oacute;n empleada para la extracci&oacute;n del herbicida. Los resultados indicaron que el porcentaje de recuperaci&oacute;n del herbicida sigui&oacute; el orden: KCl (0.1M pH 7)&gt;KCl (0.1M pH 14)&gt;KOH&gt;NaOH&gt;CH<sub>3</sub>OH/H<sub>2</sub>0&gt;NaOH/ CH<sub>3</sub>OH (80:20)=NaOH/CH<sub>3</sub>CN (80:20), obteni&eacute;ndose valores promedio de 95 (&plusmn;2.5), 80 (&plusmn;1.5), 65 (&plusmn;1.5), 50 (&plusmn;2.1), 30 (&plusmn;1.1) y 0 %. El m&eacute;todo seleccionado result&oacute; simple, r&aacute;pido, sensible, preciso, con buen ajuste lineal y con l&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n adecuados para el an&aacute;lisis de residuos de imazapir en muestras de suelo. Por su parte, la metodolog&iacute;a evaluada en suelos heterog&eacute;neos (franco, franco arcillo arenoso y arcilloso), los cuales representan diferentes condiciones para el comportamiento de imazapir, demostr&oacute; que resultar&iacute;a factible para la detecci&oacute;n de imazapir en suelos de Argentina con caracter&iacute;sticas edafol&oacute;gicas contrastantes y para un amplio rango de concentraciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estudios se realizaron en el marco de los proyectos: "Estudio de la din&aacute;mica de los herbicidas glifosato e imazapir en distintos suelos de Argentina. Monitoreo de herbicidas en aguas subterr&aacute;neas y superficiales". AEGA&#45;221641. INTA y "Estudio de los procesos de transporte de glifosato e imazapir en tres suelos de la Rep&uacute;blica Argentina". PICT 2007&#45;N&deg; 448. FONCYT.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cesio V., Niell S., Pareja L., Fernandez G., Asteggi&#45;ante L., Bocking B., Garc&iacute;a C., Fernandez&#45;alba A., Heinzen H. (2011). Critical revision and development perspectives of herbicide residues analysis in agro ecosystems, En: <i>Herbicides and Environment</i> (Andreas Kortekamp, Ed.), pp.126&#45;157. InTech. &#91;en l&iacute;nea&#93; <a href="http://www.intechopen.com/books/herbicides&#45;and&#45;environment/critical&#45;revision&#45;and&#45;development&#45;perspectives&#45;of&#45;herbicide&#45;residues&#45;analysis&#45;in&#45;agro&#45;ecosystems" target="_blank">http://www.intechopen.com/books/herbicides&#45;and&#45;environment/critical&#45;revision&#45;and&#45;development&#45;perspectives&#45;of&#45;herbicide&#45;residues&#45;analysis&#45;in&#45;agro&#45;ecosystems</a>. (consulta: 27/08/2012).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221157&pid=S0188-4999201300020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Che M., Loux M.M, Traina S.J., Logan T.J. (1992). Effect of pH on sorption and desorption of imazaquin and imazethapyr on clays and humic acids. J. Environ. Qual. 21, 698&#45;703.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221159&pid=S0188-4999201300020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D'Ascenzo G., Gentili A., Marchese S., Marino A., y Perret D. (1998). Rapid and simple method for extraction and determination of imidazolinone herbicide in soil. Analusis 26, 251&#45;255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221161&pid=S0188-4999201300020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Firmino L.E., Tuffi Santos L.D., Ferreira F.A., Ferreira L.R., y Tiburcio R.A.S. (2008). Sorcao do imazapyr em solos com diferentes texturas. Planta Daninha, Vicosa&#45;MG. 26, 395&#45;402.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221163&pid=S0188-4999201300020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koppen B. y Spliid N.H. (1998). Determination of acidic herbicides using liquid chromatography with pneumatically assisted electrospray ionization, mass spec&#45;trometric and tandem mass spectrometric detection. J. Chromatogr. A. 803, 157&#45;168.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221165&pid=S0188-4999201300020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lagana A., Fago G., Marino A., Penazzi V.M. (2000). Liquid chromatography mass spectrometry tandem for multiresidue determination of selected post&#45;emergence herbicides after soil column extraction. Anal. Chem. 415, 41&#45;56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221167&pid=S0188-4999201300020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lao W. y Jay Gan J. (2006). High&#45;performance liquid chromatographic separation of imidazolinone herbicide enantiomers and their methyl derivatives on polysaccharide&#45;coated chiral stationary phases. J. Chromatogr. A. 1117, 184&#45;193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221169&pid=S0188-4999201300020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu W., Pusino A. y Gessa C. (1992). High&#45;performance liquid chromatographic determination of the herbicide imazapyr residues in water and soil. Sci. Total Environ. 123/124, 39&#45;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221171&pid=S0188-4999201300020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Loux M.M., Liebl R.A. y Slide F.W. (1989). Adsorption of imazapyr and imazethapyr on soils, sediments, and selected adsorbents. Weed Sci. 37, 712&#45;718.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221173&pid=S0188-4999201300020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mangels G. (1991). Behavior of the imidazolinone herbicides in soil: A review of the literature. En: <i>The imidazolinone herbicides.</i> (D.L. Shaner y S.L. O'Connor, Eds.). CRC Press, Boca Raton, pp. 191&#45;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221175&pid=S0188-4999201300020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marchese S., Gentili A., Perret D. y Faberi A. (2001). Pres&#45;surized&#45;liquid extraction for determination of imidazolinone herbicides in soil. Chromatographia 54, 531&#45;535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221177&pid=S0188-4999201300020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matuszewski B. K., Constanzer M. L., Chavez&#45;Eng C. M. (2003). Strategies for the assessment of matrix effect in quantitative bioanalytical methods based on HPLC&#45;MS/MS. Anal. Chem. 75, 3019&#45;3030.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221179&pid=S0188-4999201300020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Micromass Masslynx v 4.1. software .Waters Corporation., Manchester, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221181&pid=S0188-4999201300020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pusino A., Petretto S. y Gessa C. (1997). Adsorption and desorption of Imazapyr by Soil. J. Agric. Food Chem. 45, 1012&#45;1016.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221183&pid=S0188-4999201300020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ramezani M., Simpson N., Oliver D., Kookana R., Gill G., Prestona C. (2009). Improved extraction and clean&#45;up of imidazolinone herbicides from soil solutions using different solid&#45;phase sorbents. J. Chromatogr. A. 1216, 5092&#45;5100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221185&pid=S0188-4999201300020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SANCO (2009) Method validation and quality control procedures for pesticide residues analysis in food and feed. Direcci&oacute;n General de Salud P&uacute;blica y Protecci&oacute;n al Consumidor, Comisi&oacute;n Europea. &#91;en l&iacute;nea&#93;. <a href="http://ec.europa.eu/food/plant/protection/resources/qualcon&#45;trol_en.pdf" target="_blank">http://ec.europa.eu/food/plant/protection/resources/qualcon&#45;trol_en.pdf</a>. (consulta 23/08/2011).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221187&pid=S0188-4999201300020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute Inc., (2002). SAS User's Guide Statistic. Version 8. SAS Institute Inc., Cary, NC.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221189&pid=S0188-4999201300020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Senseman S.A. (2007). <i>Herbicide handbook.</i> 9a ed. Weed Sci. Soc. of Am., Lawrence, KS, EUA. 458p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221191&pid=S0188-4999201300020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taylor P. J. (2005) Matrix effects: The Achilles heel of quantitative highperformance liquid chromatography&#45;electrospray&#45;tandem mass spectrometry. Clin. Bio&#45;chem. 38, 328&#45;334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221193&pid=S0188-4999201300020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ulbrich A.V., Souza J.R.P. y Shaner D. (2005). Persistence and carryover effect of imazapic and imazapyr in Brazilian cropping systems. Weed Technol. 19, 986&#45;991.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221195&pid=S0188-4999201300020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Walker A. (2003). Adsorption and degradation: from the laboratory to the real world. Pesticide in air, soil &amp; water system. Memorias. XII Symposium Pesticide Chemistry, Piacenza, Italy. 4&#45;6 de junio de 2003. pp.1&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221197&pid=S0188-4999201300020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wehtje G., Dickens R., Wilcut J.W. y Hajek B.F. (1987). Sorption and mobility of sulfometuron and imazapir in five Alabama soils. Weed Sci. 35, 858&#45;864.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221199&pid=S0188-4999201300020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zelaya M., Kloster N. y Gianelli V. (2009). Direct injection for the analysis of atrazine and imazapyr using ultra performance liquid chromatography &#45; mass spectrom&#45;etry. 2&deg; Workshop Latinoamericano de Residuos de Plaguicidas &#45; LAPRW 2009. Santa Fe, Argentina. 8 al 11 de Junio de 2009. Libro de Res&uacute;menes. pp. 119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7221201&pid=S0188-4999201300020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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