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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Análisis de piretroides en suelo y agua de zonas agrícolas y urbanas de los valles del Yaqui y Mayo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Globally, there has been a steep increase in the use of pyrethroid pesticides in the last decade; when they are used blended with organophosphates, pyrethroids become more potent, and their action and permanency in the environment is increased. The objective of the present study was to evalúate the presence of cyhalothrin, cyfluthrin cypermethrin, fenvalerate and deltamethrin in water and soil from Yaqui and Mayo valleys in Sonora, Mexico. For the pyrethroids analysis the method of matrix solid-phase dispersion (MSPD) was used for extraction, and gas chromatography with detecting of capture of electrons for the determination. There were 194 samples (123 of soil and 71 of water), of which 14 positive samples were found (11 of water and 3 of soil). The largest detected concentration was found in soil with 65.6 &#956;g/kg of cyhalothrin, while in water it was of 29.4 &#956;g/L of cypermethrin, both surpassing the limits previously reported by other studies.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>An&aacute;lisis de piretroides en suelo y agua de zonas agr&iacute;colas y urbanas de los valles del Yaqui y Mayo</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Pyrethroid analysis in soil and water of agricultural and urban areas of the valleys of Yaqui and Mayo</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Elsa D. MORENO&#45;VILLA<sup>1</sup>, Mar&iacute;a L. ALDANA&#45;MADRID<sup>1</sup>*, Mar&iacute;a I. SILVEIRA&#45;GRAMONT<sup>1</sup>, Guillermo RODR&Iacute;GUEZ&#45;OLIBARR&Iacute;A<sup>1</sup>, Ana I. VALENZUELA&#45;QUINTANAR<sup>2</sup> y Mercedes MEZA&#45;MONTENEGRO<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup>&nbsp;Departamento de Investigaci&oacute;n y Posgrado en Alimentos, Universidad de Sonora. Rosales y Blvd. Luis Encinas s/n Col. Centro, C.P. 83000. Hermosillo, Sonora, M&eacute;xico.</i> *Autora responsable; <a href="mailto:laldana@guayacan.uson.mx">laldana@guayacan.uson.mx</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>&nbsp;Centro de Investigaci&oacute;n en Alimentaci&oacute;n y Desarrollo A.C., Hermosillo, Sonora, M&eacute;xico</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup>&nbsp;Instituto Tecnol&oacute;gico de Sonora, Ciudad Obreg&oacute;n, Sonora, M&eacute;xico</i>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido noviembre 2010,    <br> 	aceptado junio 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los insecticidas piretroides han incrementado su uso en el &uacute;ltimo decenio a nivel mundial, se utilizan mezclados con insecticidas organofosforados, potenciando su acci&oacute;n y permanencia en el ambiente. El objetivo del presente estudio fue evaluar la presencia de cialotrina, ciflutrina, cipermetrina, fenvalerato y deltametrina en agua y suelo de los valles del Yaqui y Mayo, Sonora. Para el an&aacute;lisis de piretroides se emple&oacute; el m&eacute;todo de dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida (DMFS) y de cromatograf&iacute;a de gases con detector de captura de electrones. Se recolectaron un total de 194 muestras (123 de suelo y 71 de agua). Se obtuvieron 14 muestras con residuos de piretroides (11 de agua y 3 de suelo). La mayor concentraci&oacute;n detectada fue en suelo con 65.6 &#956;g/kg de cialotrina, mientras que en agua fue de 29.4 &#956;g/L de cipermetrina, las cuales sobrepasan los l&iacute;mites reportados previamente por otros estudios.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> plaguicidas, insecticidas, muestras ambientales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Globally, there has been a steep increase in the use of pyrethroid pesticides in the last decade; when they are used blended with organophosphates, pyrethroids become more potent, and their action and permanency in the environment is increased. The objective of the present study was to eval&uacute;ate the presence of cyhalothrin, cyfluthrin cypermethrin, fenvalerate and deltamethrin in water and soil from Yaqui and Mayo valleys in Sonora, Mexico. For the pyrethroids analysis the method of matrix solid&#45;phase dispersion (MSPD) was used for extraction, and gas chromatography with detecting of capture of electrons for the determination. There were 194 samples (123 of soil and 71 of water), of which 14 positive samples were found (11 of water and 3 of soil). The largest detected concentration was found in soil with 65.6 &#956;g/kg of cyhalothrin, while in water it was of 29.4 &#956;g/L of cypermethrin, both surpassing the limits previously reported by other studies.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> pesticides, insecticides, environmental samples.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&eacute;xico cuenta con regiones agr&iacute;colas muy productivas como el estado de Sonora. Al sur de dicho estado se localizan los valles del Yaqui y Mayo, abarcando tres distritos de riego con aproximadamente 380 mil hect&aacute;reas. Las grandes extensiones de tierra y la diversidad de cultivos han hecho necesaria la aplicaci&oacute;n de plaguicidas en cantidades considerables. El uso de dichos compuestos es sistem&aacute;tico a niveles agr&iacute;cola, industrial, dom&eacute;stico, jardiner&iacute;a y veterinario (Kolaczinski y Curtis 2004). Los beneficios obtenidos son sin duda numerosos, pero el empleo de grandes cantidades de estos compuestos en el entorno ha dado origen a problemas que afectan tanto al ambiente, como a la salud p&uacute;blica. Actualmente se utilizan compuestos menos persistentes como los piretroides, pero al ser mezclados con otros compuestos como los organofosforados, se potencia su acci&oacute;n y permanencia en el ambiente (CICOPLAFEST 2004). Estos agroqu&iacute;micos se utilizan en granos almacenados (Aldana <i>et al.</i> 2008a) y en el cultivo de algunas hortalizas (Aldana <i>et al.</i> 2008b).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los plaguicidas suelen encontrarse a niveles traza en muestras tanto biol&oacute;gicas, como ambientales, por lo que se requieren metodolog&iacute;as sensibles y de bajo costo para su an&aacute;lisis. El objetivo en esta investigaci&oacute;n fue determinar la presencia de insecticidas piretroides en muestras de agua y suelo de los valles del Yaqui y Mayo, para conocer el grado de contaminaci&oacute;n en estas zonas donde la actividad agr&iacute;cola es constante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Selecci&oacute;n de los piretroides</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El listado de los principales plaguicidas utilizados en los valles del Yaqui y Mayo (incluyendo gen&eacute;ricos y no gen&eacute;ricos) en los ciclos oto&ntilde;o&#45;invierno 2006 y primavera&#45;verano 2007, se obtuvo a trav&eacute;s de la Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n (SAGARPA) de Ciudad Obreg&oacute;n y de Navojoa, y de encuestas realizadas a los encargados de los principales comercios dedicados a su distribuci&oacute;n en el sur de Sonora. La informaci&oacute;n recabada mostr&oacute; que los piretroides de mayor uso fueron: cialotrina, ciflutrina, cipermetrina, fenvalerato y deltametrina, por lo que se incluyeron para su estudio en la presente investigaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Selecci&oacute;n de las &aacute;reas de estudio</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; con base en una lista de los poblados de los valles del Yaqui y Mayo y con informaci&oacute;n de las cartas topogr&aacute;ficas M&eacute;xico&#45;Norte y el programa del INEGI, Science 2000, ubicando las comunidades urbanas con una poblaci&oacute;n mayor a 2500 habitantes. Se incluyeron en total nueve comunidades urbanas y una rural (menos de 2500 habitantes) del Valle del Yaqui y cinco comunidades urbanas del Valle del Mayo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Selecci&oacute;n y preparaci&oacute;n de las muestras de suelo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada comunidad se ubicaron al azar diez sitios de muestreo apoyados en mapas obtenidos del programa Google Earth 2007. Los sitios se seleccionaron en los mapas y con la ayuda del programa, se obtuvieron las coordenadas geogr&aacute;ficas en latitud norte y longitud oeste.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los lugares de muestreo en los pueblos se ubicaron con la ayuda de un equipo GPS (Global Positioning System). Las muestras de suelo (urbano y agr&iacute;cola) se recolectaron siguiendo la metodolog&iacute;a de la Norma Mexicana NMX&#45;132&#45;SCFI&#45;2006 (SCFI 2006). Esta consiste en dibujar un tri&aacute;ngulo de aproximadamente 15 cent&iacute;metros y colectar la muestra de la capa superficial del suelo (con base en el criterio de que es la parte con la que los ni&ntilde;os tienen contacto directo), apoyados con una pala de jard&iacute;n y palas de pl&aacute;stico para obtener la muestra de aproximadamente 500 gramos. La muestra de suelo se deposit&oacute; en bolsas de papel de 1 kg, con los datos de identificaci&oacute;n correspondientes. Posteriormente se realiz&oacute; el traslado de &eacute;stas a temperatura ambiente, para su almacenamiento en el laboratorio a &#45;20 &deg;C, por un per&iacute;odo no mayor a una semana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Selecci&oacute;n y preparaci&oacute;n de las muestras de agua</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la selecci&oacute;n de las muestras de agua se sigui&oacute; la metodolog&iacute;a de la NMX&#45;AA&#45;051&#45;SCFI&#45;2001 (SCFI 2001), por lo cual primero se localiz&oacute; el hogar m&aacute;s cercano al punto ubicado dentro del mapa y se colectaron las muestras de agua de pozo directamente de la llave del patio en recipientes de pl&aacute;stico, dejando correr previamente el agua por 2 minutos. De la misma forma, se tomaron las muestras de fuentes de agua superficiales (canales de riego de campos agr&iacute;colas). Posteriormente las muestras fueron transportadas en hielo al laboratorio para su almacenamiento a 5 &deg;C, por un per&iacute;odo no mayor a una semana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El muestreo se realiz&oacute; en &eacute;poca de verano, se colectaron 194 muestras, 123 de suelo (22 de uso agr&iacute;cola y 101 urbano) y 71 de agua (21 fueron de empleo agr&iacute;cola y 50 urbano) de un total de 15 poblados de los cuales diez pertenecen al Valle del Yaqui y cinco al Valle del Mayo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de las soluciones est&aacute;ndar</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emplearon est&aacute;ndares marca Sigma Aldrich de alta pureza (96&#45;99 %) para cada insecticida (cialotrina, ciflutrina, cipermetrina, fenvalerato y deltametrina), se prepar&oacute; la soluci&oacute;n madre (1000 &#956;g/mL) en hexano (J.T. Baker, grado plaguicida) y se almacenaron en refrigeraci&oacute;n a 4 &deg;C. Se prepararon soluciones de trabajo de 1, 25, 50, 100 y 200 &#956;g/L para la obtenci&oacute;n de las curvas de calibraci&oacute;n de los piretroides en estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porcentaje de recuperaci&oacute;n</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de recuperaci&oacute;n es la proporci&oacute;n del elemento o compuesto de inter&eacute;s (analito) obtenido de la muestra fortificada (MF), calculado en funci&oacute;n a la cantidad real adicionada (CA) (Calonge <i>et al.</i> 2002). Para obtener el porcentaje de recuperaci&oacute;n (R) se utiliz&oacute; la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">R = MF x 100/CA</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de reactivos Al&uacute;mina</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La preparaci&oacute;n de la al&uacute;mina para la extracci&oacute;n de insecticidas piretroides se realiz&oacute; siguiendo el procedimiento de la Norma Oficial Mexicana NOM&#45;028&#45;ZOO&#45;1995 (SAGARPA 1995). Se pes&oacute; la cantidad necesaria en un crisol y se someti&oacute; a incineraci&oacute;n a 1000 &deg;C en una mufla Vulcan<sup>TM</sup>, modelo M3&#45;550, por un periodo de 17&#45;20 horas, dejando enfriar en un desecador, agregando posteriormente el 9 % de su peso de agua destilada para su inactivaci&oacute;n. La al&uacute;mina se almacen&oacute; en un desecador hasta su utilizaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de insecticidas piretroides en agua</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La metodolog&iacute;a empleada para el proceso de extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n de insecticidas piretroides fue la dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida (DMFS) validada y establecida por Valenzuela <i>et al.</i> (2006), con algunas modificaciones. Se realiz&oacute; empleando la siguiente combinaci&oacute;n de par&aacute;metros: 0.5 mL de agua y 0.5 g s&iacute;lice (60 &Aring;, poro 70&#45;230 EM Science, Gibbstwn, N.J., EUA), en un mortero de 1 onza para llevar a cabo la dispersi&oacute;n durante 5 min, con la finalidad de obtener una mezcla homog&eacute;nea y seca. Una vez homog&eacute;nea la muestra se pas&oacute; a una jeringa previamente empacada con un filtro de fibra de vidrio (Millipore tipo AP con tama&ntilde;o de poro prefiltro) y se eluy&oacute; con 20 mL de diclorometano (J.T. Baker, grado HPLC). El eluato se sec&oacute; con aire en un evaporador N&#45;Evap 112 y una vez evaporadas las muestras hasta sequedad se reconstituyeron con 100 mL de hexano y posteriormente se inyect&oacute; 1 mL en el cromat&oacute;grafo de gases.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de insecticidas piretroides en suelo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para suelo agr&iacute;cola se utiliz&oacute; 0.5 g de muestra y 0.6 g de al&uacute;mina como fase de extracci&oacute;n, se colocaron en un mortero de 1 onza para llevar a cabo la dispersi&oacute;n, durante 3 min, con la finalidad de obtener una mezcla homog&eacute;nea y seca, posteriormente se pas&oacute; a una jeringa previamente empacada con filtro de fibra de vidrio (marca Millipore tipo AP con tama&ntilde;o de poro prefiltro) y 1.6 g de al&uacute;mina para llevar a cabo la purificaci&oacute;n, eluyendo con 40 mL de una mezcla de acetato de etilo:hexano (33 % v/v). Para suelo urbano se modific&oacute; la cantidad de al&uacute;mina utilizada en la extracci&oacute;n (0.6 a 0.5 g), debido a que el contenido de materia org&aacute;nica es menor. Una vez realizada la eluci&oacute;n se llev&oacute; a sequedad en un evaporador N&#45;Evap 112. Posteriormente se reconstituyeron con 100 &#956;L de hexano y se inyect&oacute; 1 &#956;L en el cromat&oacute;grafo de gases.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Condiciones del cromat&oacute;grafo de gases (CG)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un cromat&oacute;grafo de gases marca Varian modelo CP&#45;3800 equipado con un detector de captura de electrones (ECD). Los analitos fueron separados empleando una columna capilar <i>Factor Four</i> Varian de 30 m de longitud, 0.32 mm de di&aacute;metro interno, empacada con 35 % de fenil y 65 % de dimetil siloxano con un grosor de empaque de 0.50 (im. El procesamiento de los datos se realiz&oacute; con el programa Star Chromatography Workstation, versi&oacute;n 5.51.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las condiciones cromatogr&aacute;ficas fueron las siguientes: se utiliz&oacute; nitr&oacute;geno con ultra alta pureza (UAP 99.999 %) como gas acarreador con una velocidad de flujo de 4 mL/min., la temperatura del puerto de inyecci&oacute;n fue de 220 &deg;C y la del detector de 300 &deg;C, el volumen de inyecci&oacute;n de las muestra fue de 1 &#956;L en modo <i>splitless.</i> Las temperaturas del horno fueron programadas de la siguiente manera: una temperatura inicial del horno de 220 &deg;C durante el primer minuto y se elev&oacute; hasta 300 &deg;C a raz&oacute;n de 15 &deg;C/min y que se mantuvo por 5 minutos, para tener un tiempo de corrida de 11.33 minutos. Los l&iacute;mites m&iacute;nimos de detecci&oacute;n se determinaron considerando tres veces la se&ntilde;al de ruido del detector.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n cualitativa y cuantitativa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n cualitativa de los insecticidas piretroides se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de Hammarstrand (1976), que consiste en comparar los tiempos de retenci&oacute;n de los picos en donde se eluye cada uno de los est&aacute;ndares, con los picos que se presentan en las muestras. Para establecer los tiempos de retenci&oacute;n de los insecticidas se llevaron a cabo inyecciones de cada uno de los est&aacute;ndares preparados previamente en soluci&oacute;n con hexano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la cuantificaci&oacute;n en muestras de agua y de suelo se adicionaron 100 &#956;L de la mezcla de est&aacute;ndares a concentraci&oacute;n de 100 &#956;g/L para agua y de 100 &#956;/kg para suelo, para obtener los porcentajes de recuperaci&oacute;n. La determinaci&oacute;n cuantitativa se realiz&oacute; considerando el &aacute;rea bajo la curva de los picos de cada uno de los est&aacute;ndares con los picos de piretroides detectados en las muestras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de materia org&aacute;nica se determin&oacute; de acuerdo con la Norma Oficial Mexicana NOM&#45;021&#45;2000 (SEMARNAT 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aseguramiento de la calidad de los datos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todos los an&aacute;lisis realizados en las muestras de agua y suelo, se incluy&oacute; una muestra blanco o testigo negativo (tejido libre de piretroides), dos muestras adicionadas o testigo positivo (tejido blanco adicionado con la soluci&oacute;n de trabajo), un blanco reactivo y la soluci&oacute;n de trabajo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los residuos de piretroides se analizaron usando estad&iacute;sticas descriptivas (media, desviaci&oacute;n est&aacute;ndar, coeficientes de variaci&oacute;n y porcentajes de muestras positivas).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la optimizaci&oacute;n del m&eacute;todo DMFS, para el an&aacute;lisis de piretroides en las matrices de agua y suelo, se utiliz&oacute; como base el m&eacute;todo empleado por Valenzuela <i>et al.</i> (2006), se establecieron las condiciones de trabajo del cromat&oacute;grafo de gases y del m&eacute;todo de extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n. Se probaron diferentes fases s&oacute;lidas (C<sub>18</sub>, al&uacute;mina y s&iacute;lice), distintos disolventes (hexano y diclorometano) y varios vol&uacute;menes de eluci&oacute;n (20, 30 y 40 mL), como se muestra en los <b><a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c1.jpg" target="_blank">cuadros I</a></b> y <b><a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c2.jpg" target="_blank">II</a>.</b> En donde las recuperaciones mayores se obtuvieron con los siguientes par&aacute;metros: para el caso de la matriz agua se utilizaron 0.5 mL de agua y 0.5 g de s&iacute;lice para la extracci&oacute;n, adicionada con 100 &#956;L de la mezcla preparada con base en los LMP, y se eluyeron con 20 mL de diclorometano. Los porcentajes de recuperaci&oacute;n obtenidos estuvieron en el rango del 83 al 97 % con coeficiente de variaci&oacute;n menor al 11 %, como puede observarse en la <b><a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c1.jpg" target="_blank">cuadro I</a>.</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la matriz suelo en el <b><a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c2.jpg" target="_blank">cuadro II</a>,</b> se muestra que cuando se utiliz&oacute; 0.5 g de suelo y 0.5 g s&iacute;lice para la extracci&oacute;n y 1.8 g de al&uacute;mina para la purificaci&oacute;n, adicionado con 100 &#956;L de la mezcla de piretroides a la concentraci&oacute;n de los LMP y eluidos con 40 mL acetato de etilo:hexano (33 % v/v), esta &uacute;ltima con base en lo propuesto por Esteve (2004). Se obtuvieron porcentajes de recuperaci&oacute;n del 80 al 92 % con coeficientes de variaci&oacute;n menores al 20 %. En ambos casos se cumple con lo establecido por USDA (1991). Adem&aacute;s estas condiciones de trabajo mostraron menor interferencia y color en los extractos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En lo que respecta a la linealidad del sistema cromatogr&aacute;fico, la respuesta del detector fue lineal en el rango de 50, 100 y 200 &#956;g/kg con un coeficiente de determinaci&oacute;n para cialotrina de 0.9740, ciflutrina 0.9970, cipermetrina 0.9458, fenvalerato 0.9506 y deltametrina 0.9579. Estos resultados muestran un comportamiento lineal y son directamente proporcionales a la concentraci&oacute;n del analito como lo describe Jenke (1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez optimizado el m&eacute;todo de extracci&oacute;n y establecidas las condiciones cromatogr&aacute;ficas, se procedi&oacute; al an&aacute;lisis de las muestras. Se analizaron un total de 71 muestras de agua (50 de uso urbano y 21 de uso agr&iacute;cola), de las cuales el 77.5 % (55 de 71) pertenecen al Valle del Yaqui y 22.5 % (16 de 71) al Valle del Mayo. &Uacute;nicamente 11 muestras presentaron residuos de piretroides, donde 18.1 % (10 de 11) corresponden al Valle del Yaqui y 6.25 % (1 de 11) al Valle del Mayo, de las cuales diez fueron de uso urbano y una de empleo agr&iacute;cola. Lo anterior debido a que probablemente se realizaron aplicaciones recientes de estos productos. El l&iacute;mite m&iacute;nimo de extracci&oacute;n en agua para cialotrina fue de 3.0 (g/L para ciflutrina, cipermetrina y deltametrina fue de 6 (g/L, mientras que para fenvalerato de 2 &#956;g/L.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cuanto al suelo fueron analizadas un total de 123 muestras, de las cuales 102 corresponden a suelo urbano y 21 a suelo agr&iacute;cola. El 85 % de las muestras analizadas fueron colectadas en el Valle de Yaqui (104 de 123) y 15 % (19 de 123) en el Valle del Mayo. Los resultados obtenidos de los an&aacute;lisis mostraron que tres muestras presentaron residuos de piretroides. El l&iacute;mite m&iacute;nimo de extracci&oacute;n en suelo para cialotrina y ciflutrina fue de 3 &#956;g/kg y para cipermetrina, fenvalerato y deltametrina de 3 &#956;g/kg.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de insecticidas piretroides en agua por el m&eacute;todo de dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de recuperaci&oacute;n en las muestras de agua se encontraron entre 83 y 97 % con coeficientes de variaci&oacute;n menores al 10 %. Estos resultados son comparables con los reportados por Bogialli y Di Corsia (2007) en piretroides y por Valenzuela <i>et al.</i> (2006) en organofosforados, donde se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de DMFS para la extracci&oacute;n de diversas muestras de alimentos. Sin embargo, en los estudios realizados por Hladick <i>et al.</i> (2008), al utilizar la t&eacute;cnica de extracci&oacute;n en fase s&oacute;lida (EFS) en muestras de agua, obtuvieron un rango m&aacute;s amplio (70 a 107 %) en la recuperaci&oacute;n de piretroides, con una menor precisi&oacute;n del obtenido por este grupo de trabajo. Por lo que se considera al m&eacute;todo de DMFS como reproducible, exacto, econ&oacute;mico y ecol&oacute;gico (por su consumo m&iacute;nimo de disolventes) y puede ser utilizado en an&aacute;lisis rutinario de plaguicidas organofosforados en hortalizas como lo menciona Valenzuela <i>et al.</i> (2006), adem&aacute;s de la posibilidad de emplearse para el an&aacute;lisis de piretroides en muestras ambientales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de insecticidas piretroides en suelo por el m&eacute;todo de dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este m&eacute;todo ha sido utilizado de igual manera en diversas matrices, pero no espec&iacute;ficamente para la identificaci&oacute;n de piretroides en muestras de suelo. Sin embargo, se han utilizado otros m&eacute;todos, como los reportados por Hern&aacute;ndez <i>et al.</i> (2007), quienes emplearon la t&eacute;cnica de superficie de respuesta y el m&eacute;todo de extracci&oacute;n asistida por microondas para la determinaci&oacute;n de dos insecticidas piretroides (deltametrina y cipermetrina) y tres insecticidas organofosforados (dimetoato, diazinon y malati&oacute;n) en suelo de uso agr&iacute;cola, con recuperaciones mayores al 85 % para piretroides. Otro m&eacute;todo aplicado para la determinaci&oacute;n de insecticidas piretroides en suelo es el propuesto por Fern&aacute;ndez <i>et al.</i> (2008), que usaron el m&eacute;todo de microextracci&oacute;n en fase s&oacute;lida obteniendo recuperaciones para cialotrina del 75 %, ciflutrina 97 %, cipermetrina 98 %, fenvalerato 94 % y deltametrina 81 %. Mientras que Rissato <i>et al.</i> (2005), emplearon la extracci&oacute;n por fluidos super&#45;cr&iacute;ticos (EFS) para la determinaci&oacute;n de plaguicidas organoclorados, halogenados, organonitrogenados, organofosforados y piretroides en suelo agr&iacute;cola, cuantificados por cromatograf&iacute;a de gases con detector de captura de electrones y recuperaciones mayores al 80 %. Todos los resultados anteriormente mencionados pueden ser comparables con los obtenidos en este estudio, donde las recuperaciones fueron del 82 al 92 % con coeficientes de variaci&oacute;n menores al 19 % para suelo agr&iacute;cola, mientras que para suelo urbano fueron del 80 al 91 % con coeficientes de variaci&oacute;n menores al 15 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de muestras de agua</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El piretroide que se detect&oacute; en todas las muestras que presentaron residuos fue cipermetrina, la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de 29.4 (g/L y la concentraci&oacute;n m&iacute;nima de 2.8 &#956;g/L, seguido de ciflutrina con una concentraci&oacute;n m&aacute;xima de 24.4 &#956;g/L y m&iacute;nima de 6.2 y (g/L por &uacute;ltimo el fenvalerato donde la concentraci&oacute;n mayor fue de 10.6 &#956;g/L y la menor de 8.7 &#956;g/L <b>(<a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c3.jpg" target="_blank">Cuadro III</a>).</b> Cabe mencionar que la mayor&iacute;a de las muestras fueron de agua de uso urbano y una de empleo agr&iacute;cola, ambas pertenecen al Valle del Yaqui. Lo anterior puede explicarse por la capacidad de descomposici&oacute;n que presentan los insecticidas piretroides en agua. En soluciones acuosas neutras o &aacute;cidas, la ci&#45;permetrina se hidroliza lentamente, mientras que a pH 9 (soluci&oacute;n b&aacute;sica) la hidr&oacute;lisis es m&aacute;s r&aacute;pida (Kamrin 1997). Por lo anterior, se realiz&oacute; la valoraci&oacute;n del pH a las muestras positivas, las que estuvieron en el rango de 8.3 a 9.8, permitiendo explicar la persistencia del analito. Actualmente no se cuenta con estudios previos sobre residuos de piretroides en muestras ambientales en Sonora, excepto los realizados por Burgos <i>et al.</i> (2005) sobre residuos de insecticidas organofosforados en camar&oacute;n cultivado en granjas acu&iacute;colas en Sonora.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En lo que se refiere al Valle del Mayo se analizaron 16 muestras de las cuales 14 fueron de agua de uso urbano y 2 de uso agr&iacute;cola, donde s&oacute;lo una result&oacute; positiva a cipermetrina con una concentraci&oacute;n de 29.4 &#956;g/L y pH de 9.3 <b>(<a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c3.jpg" target="_blank">Cuadro III</a>).</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de muestras de suelo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del an&aacute;lisis de las muestras una result&oacute; con cipermetrina (11.6 (ig/kg) y dos con cialotrina (44.3 y 65.6 (g/kg) <b>(<a href="/img/revistas/rica/v28n4/a6c4.jpg" target="_blank">Cuadro IV</a>),</b> observando que estas concentraciones son superiores a las reportadas por Esteve <i>et al.</i> (2004), quienes encontraron residuos de cipermetrina y deltametrina en suelo que van de 4.8 a 8.9 ng/g y de 29.0 a 52.5 ng/g, respectivamente, aunque es importante mencionar que en su caso ellos utilizaron un m&eacute;todo de extracci&oacute;n diferente. En otro estudio reportado por Fern&aacute;ndez <i>et al.</i> (2008), se determinaron residuos de 36 plaguicidas (incluyendo piretroides) en suelo de jard&iacute;n, suelo agr&iacute;cola y suelo industrial, el m&eacute;todo empleado fue el de microextracci&oacute;n en fase s&oacute;lida y detectaron residuos de piretroides en suelo de origen industrial en concentraciones de 51.6 ng/g para tetrametrina, 12.4 ng/g para ciflutrina y 4.2 ng/g para cifenotrin, mientras que para los otros tipos de suelo no reportaron residuos de piretroides, debido a que las caracter&iacute;sticas del suelo influyen en la eficiencia del m&eacute;todo de extracci&oacute;n, principalmente por el contenido de materia org&aacute;nica (a mayor contenido de materia, mayor absorci&oacute;n de plaguicidas), ya que se considera un factor determinante en la descomposici&oacute;n de los plaguicidas y espec&iacute;ficamente en los piretroides como la cipermetrina que es considerada menos persistente en suelos con bajo material org&aacute;nico (Kamrin 1997, Wadhwa <i>et al.</i> 2010). Por lo anterior se realiz&oacute; una evaluaci&oacute;n de materia org&aacute;nica en las muestras positivas, detect&aacute;ndose concentraciones de 7.7 a 11.1 en suelo de tipo urbano, valores mayores a los indicados en la Norma Oficial Mexicana NOM&#45;021&#45;RECNAT&#45;2000 (SEMARNAT 2000) (mayores a 6.0) son considerados suelos con un alto contenido de materia org&aacute;nica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El m&eacute;todo de dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida empleado en el presente estudio puede compararse con otros m&eacute;todos de extracci&oacute;n ya que por primera vez se reporta para este tipo de matrices (suelo y agua). Considerando que los m&eacute;todos m&aacute;s empleados para extracci&oacute;n de plaguicidas en suelo son el de fase s&oacute;lida, por soxhlet y asistida por microondas para residuos de piretroides. Se demuestra que el m&eacute;todo anal&iacute;tico desarrollado en este estudio es comparable con otros m&eacute;todos en cuanto a su confiabilidad (porcentajes de recuperaci&oacute;n), y adem&aacute;s es de f&aacute;cil manejo con las matrices empleadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El m&eacute;todo de dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida (DMFS) utilizado result&oacute; ser sencillo y r&aacute;pido, ya que se emplean peque&ntilde;as cantidades de muestra y de disolvente. Siendo aplicable a un alto n&uacute;mero de muestras ya que reduce su costo. Del total de muestras que presentaron residuos de piretroides el 93 % correspondieron a muestras de poblados localizados en el Valle del Yaqui.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los residuos de cipermetrina detectados superan la CL<sub>50</sub> (8.2&#45;0.2 &#956;g/L) para peces, invertebrados acu&aacute;ticos y crust&aacute;ceos y pueden ser una fuente de contaminaci&oacute;n de acu&iacute;feros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio fue financiado por Fondos Mixtos CONACyT&#45;Gobierno del Estado de Sonora, proyecto No. SON&#45;2005&#45;C01&#45;22879. Los autores agradecen a la M. C. Patricia Grajeda Cota, por el apoyo t&eacute;cnico en la optimizaci&oacute;n del m&eacute;todo de an&aacute;lisis de residuos de insecticidas piretroides.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aldana&#45;Madrid M.L., Valdez&#45;Hurtado S., Vargas&#45;Valdez N.D., Salazar&#45;Lopez N.J., Silveira M.I., Loarca&#45;Pi&ntilde;a F.G., Rodr&iacute;guez&#45;Olibarria G., Wong&#45;Corral F., Borboa&#45;Flores J. y Burgos&#45;Hern&aacute;ndez A. (2008a). Insecticide residues in stored grains in Sonora, Mexico: Quantification and Toxicity Testing. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 80, 93&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214189&pid=S0188-4999201200040000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aldana&#45;Madrid M.L., Miller&#45;Sears M. y Valenzuela&#45;Quintanar A.I. (2008b). Preliminary research for the establishment of a monitoring program for pesticide residues of Mexico's foods focusing on those with irreversible chronic effects. UC MEXUS&#45;CONACyT. Grant number: CN&#45;07&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214191&pid=S0188-4999201200040000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bogialli S. y Di Corsia A. (2007). Matrix solid&#45;phase dispersion as a valuable tool for extracting contaminants from foodstuffs. J. Biochem. Biophys. Meth. 70, 163&#45;179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214193&pid=S0188-4999201200040000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burgos&#45;Hern&aacute;ndez A., Garc&iacute;a&#45;Sifuentes C.O., Aldana&#45;Madrid M.L. y Meza&#45;Montenegro M.M. (2005). Detection and quantification of insecticides in shrimp grown in a coastal farm in Sonora, Mexico. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 74, 335&#45;341.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214195&pid=S0188-4999201200040000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Calonge M., P&eacute;rez Y., Ord&oacute;&ntilde;ez C., Reguera R., Bala&ntilde;a R. y Ord&oacute;&ntilde;ez D. (2002). Determinaci&oacute;n de residuos de siete insecticidas organofosforados en frutas mediante cromatograf&iacute;a de gases con detector de nitr&oacute;geno&#45;f&oacute;sforo y confirmaci&oacute;n por espectrometr&iacute;a de masas. Rev. Toxicol. 19, 55&#45;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214197&pid=S0188-4999201200040000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CICOPLAFEST (2004). Cat&aacute;logo Oficial de Plaguicidas. Comisi&oacute;n Intersecretarial para el Control del Proceso y Uso de Plaguicidas, Fertilizantes y Sustancias T&oacute;xicas. M&eacute;xico, D.F. I&#45;XI pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214199&pid=S0188-4999201200040000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esteve F., Aman C., Pastor A. y de la Guardia M. (2004). Microwave&#45;assisted extraction of pyrethoids from soil. Anal. Chem. Acta 522, 73&#45;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214201&pid=S0188-4999201200040000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fern&aacute;ndez M., Llompart M., Lamas P., Lores M., Garc&iacute;a C., Cela R. y Dagnac T. (2008). Simultaneous determination of pyrethroids, organochlorines and other main pant protection agents in agricultural soil by headspace solid&#45;phase microextraction&#45;gas chromatography. J. Chrom. 1188, 154&#45;163.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214203&pid=S0188-4999201200040000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hammarstrand K. (1976). <i>Gas Chromatography of Pesticide.</i> Varian. California, 31 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214205&pid=S0188-4999201200040000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez M., Pe&ntilde;a M. y Mingorance D. (2007). Response surfase methology for the microwave&#45;assisted extraction of insecticides from soil samples. Anal. Bioanal. Chem. 389, 619&#45;630.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214207&pid=S0188-4999201200040000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hladick M.L., Smalling K.L. y Kuivila K.M. (2008). A multi&#45;residue method for the analysis of pesticides and pesticide degradates in water using hlb solid&#45;phase extraction and gas chromatography&#45;ion trap mass spectrometry. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 80, 139&#45;144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214209&pid=S0188-4999201200040000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jenke D. R. (1996). Chromatographic method validation a review of current practices and procedures. J. Liq. Chrom. Relat. Tech. 719&#45;736.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214211&pid=S0188-4999201200040000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kamrin M. A. (1997). <i>Pesticides profiles: Toxicity, Environmental impact, and fate. Pyrethroids and other botanicals.</i> CRC Lewis Publishers, New York, 22 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214213&pid=S0188-4999201200040000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kolaczinski J.H. y Curtis C.F. (2004). Chronic illness as a result of low&#45;level exposure to synthetic pyrethroid insecticides: a review of the debate. Food Chem. Toxicol. 42, 697&#45;706.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214215&pid=S0188-4999201200040000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rissato R.S., Galhiane S.M., Apon M.B. y Arruda P.S.M. (2005). Multiresidue analysis of pesticides in soil by supercritical fluid extraction/gas chromatography with electron&#45;capture detection and confirmation by chromatography&#45;mass spectrometry. J. Agr. Food. Chem. 53, 62&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214217&pid=S0188-4999201200040000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAGARPA (1995). Norma Oficial Mexicana NOM&#45;028&#45;ZOO&#45;1995. Determinaci&oacute;n de residuos de plaguicidas organofosforados, en h&iacute;gado y m&uacute;sculo de bovinos, equinos, porcinos, ovinos, caprinos, c&eacute;rvidos y aves, por cromatograf&iacute;a de gases. Secretar&iacute;a de Agricultura Ganader&iacute;a y Desarrollo Rural. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 24 de enero de 1996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214219&pid=S0188-4999201200040000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SCFI (2006). Norma Mexicana NMX&#45;132&#45;SCFI&#45;2006. Muestreo de Suelos para la Identificaci&oacute;n y la Cuantificaci&oacute;n de Metales y Metaloides y Manejo de la Muestra. Secretar&iacute;a de Comercio y Fomento Industrial. Diario oficial de la Federaci&oacute;n. 5 de septiembre de 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214221&pid=S0188-4999201200040000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SCFI (2001). Norma Mexicana NMX&#45;AA&#45;051&#45;SC&#45;FI&#45;2001. An&aacute;lisis de Agua &#45; Determinaci&oacute;n de Metales por Absorci&oacute;n At&oacute;mica en Agua Naturales, Potables, Residuales y Residuales Tratadas M&eacute;todo de Prueba (Cancela a la NMX&#45;AA&#45;051&#45;1981). Secretar&iacute;a de Comercio y Fomento Industrial. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 25 de Marzo de 1980.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214223&pid=S0188-4999201200040000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SEMARNAT (2000). Norma Oficial Mexicana NOM&#45;021&#45;RECNAT&#45;2000. Que establece las especificaciones de fertilidad, salinidad y clasificaci&oacute;n de suelos, estudio, muestreo y an&aacute;lisis. Secretaria de Medio Ambiente y Recursos Naturales. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 31 de Diciembre de 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214225&pid=S0188-4999201200040000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USDA (1991). Pesticide Chemical News Guide. Unites States Department of Agriculture Washington, DC. 45 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214227&pid=S0188-4999201200040000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Valenzuela&#45;Quintanar A.I., Armenta&#45;Corral R., Moreno&#45;Villa E., Guti&eacute;rrez&#45;Coronado L. y Grajeda&#45;Cota P. (2006). Optimizaci&oacute;n y validaci&oacute;n de un m&eacute;todo de dispersi&oacute;n de matriz en fase s&oacute;lida para la extracci&oacute;n de plaguicidas organofosforados en hortalizas. Rev. Fac. Agron. 23, 464&#45;474.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214229&pid=S0188-4999201200040000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wadhwa B.K., Singh P., Arora S. y Sharma V. (2010). Analysis of pesticide residues in soils. En: <i>Handbook of pesticide.</i> (L. M. L. Nollet, H. S. Rathore, Eds.). CRC Press, Boca Raton, Florida, 583 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7214231&pid=S0188-4999201200040000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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