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<journal-title><![CDATA[Revista internacional de contaminación ambiental]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Metabolismo del azufre de aislados bacterianos provenientes de un humedal artificial empleado para el tratamiento de efluentes de la industria curtidora]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Politécnico Nacional Centro de Investigación y Estudios Avanzados Departamento de Biotecnología y Bioquímica]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Constructed wetlands are an alternative for the treatment of effluents where biological oxidation processes caused by the rhizosphere of plants and microorganisms present in situ, contribute to the removal of contaminants. In the present work, we characterized the sulfur (S) metabolism of ten bacteria belonging to the genera Acinetobacter,Alcaligenes, Ochrobactrum and Pseudomonas, which were isolated from a wetland constructed for the treatment of effluents with high organic matter content (biochemical oxygen demand: BOD5 1320 mg/L) and sulfides (54 mg/L) from the leather tanning industry. Biochemical assays indicate that all the isolates can use some sulfur species such as elemental sulfur (S0), thiosulfate (S2O6(2-)) or sulfide (S2-) as the sole source of S. We also found that strains of Pseudomonas genus were the most versatile base on the fact that they oxidize S2- (2 mM) and S2O6(2-) (4 mM) transforming them to S0 and tetrathionate (S4O6(2-)), respectively, whereas Acinetobacter strains only oxidize S0 to S2O6(2-). We also found that the strains of the genera Alcaligenes and Ochrobactrum oxidize S2O6(2-) (4 mM) to S4O6(2-). The activity of these microorganisms through the treatment system and the integration of their metabolism might actively participate in the removal of sulfur compounds.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Metabolismo del azufre de aislados bacterianos provenientes de un humedal artificial empleado para el tratamiento de efluentes de la industria curtidora</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Sulfur metabolism in bacterial isolates from a constructed wetland used for treating tannery industrial wastewater</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Juan Ramiro PACHECO AGUILAR<sup>1*</sup>, Mar&iacute;a MALDONADO VEGA<sup>2</sup> y Juan Jos&eacute; PE&Ntilde;A CABRIALES<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Ambiental. Departamento de Biotecnolog&iacute;a y Bioqu&iacute;mica. Centro de Investigaci&oacute;n y Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional (CINVESTAV&#45;IPN). Km. 9.6. Libramiento Norte, carretera Irapuato&#45;Le&oacute;n. Apdo. Postal 629, C.P. 36500. Irapuato, Gto. M&eacute;xico *Autor responsable;</i> <a href="mailto:juanramiro29@yahoo.com.mx">juanramiro29@yahoo.com.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Laboratorio de Investigaci&oacute;n Ambiental. Centro de Innovaci&oacute;n en Tecnolog&iacute;as Competitivas, CIATEC A.C. Omega 201, Fracc. Industrial Delta. C.P. 37545, Le&oacute;n Gto. M&eacute;xico</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido marzo 2011,    <br> 	aceptado abril 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los humedales artificiales constituyen una alternativa para el tratamiento de efluentes, donde los procesos biol&oacute;gicos de oxidaci&oacute;n originados por la riz&oacute;sfera de las plantas y los microorganismos presentes <i>in situ,</i> contribuyen para la remoci&oacute;n de contaminantes. En el presente trabajo se caracteriz&oacute; el metabolismo del azufre (S) de diez bacterias pertenecientes a los g&eacute;neros <i>Acinetobacter, Alcaligenes, Ochrobactrum</i> y <i>Pseudomonas,</i> las cuales fueron aisladas de un humedal construido para el tratamiento de efluentes con alto contenido de materia org&aacute;nica (demanda bioqu&iacute;mica de ox&iacute;geno: DBO<sub>5</sub> 1320 mg/L) y sulfuros (54 mg/L) provenientes de la industria del curtido de piel. Los ensayos bioqu&iacute;micos indican que todos los aislados pueden emplear alguna especie de S como azufre elemental (S<sup>0</sup>), tiosulfato (S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>) o sulfuro (S<sup>2&#45;</sup>) como &uacute;nica fuente de S. Tambi&eacute;n se encontr&oacute; que las cepas del g&eacute;nero <i>Pseudomonas</i> fueron las m&aacute;s vers&aacute;tiles, ya que oxidan el S<sup>2&#45;</sup> (2 mM) y S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> (4 mM) transform&aacute;ndolos a S<sup>0</sup> y tetrationato (S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>), respectivamente, mientras que las cepas de <i>Acinetobacter</i> s&oacute;lo oxidan el S<sup>0</sup> a S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>. Tambi&eacute;n se observ&oacute; que las cepas de los g&eacute;neros <i>Alcaligenes</i> y <i>Ochrobactrum</i> oxidan el S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> (4 mM) a S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>. La actividad de estos microorganismos a trav&eacute;s del sistema de tratamiento y la integraci&oacute;n de sus metabolismos podr&iacute;an participar activamente en la remoci&oacute;n de sulfuros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> oxidaci&oacute;n, sulfuro (S<sup>2&#45;</sup>), azufre elemental (S<sup>0</sup>), tiosulfato (S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2</sup>), tetrationato (S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>), <i>Acinetobacter, Alcaligenes, Ochrobactrum, Pseudomonas</i></font>.</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Constructed wetlands are an alternative for the treatment of effluents where biological oxidation processes caused by the rhizosphere of plants and microorganisms present <i>in situ,</i> contribute to the removal of contaminants. In the present work, we characterized the sulfur (S) metabolism of ten bacteria belonging to the genera <i>Acinetobacter,Alcaligenes, Ochrobactrum</i> and <i>Pseudomonas,</i> which were isolated from a wetland constructed for the treatment of effluents with high organic matter content (biochemical oxygen demand: BOD<sub>5</sub> 1320 mg/L) and sulfides (54 mg/L) from the leather tanning industry. Biochemical assays indicate that all the isolates can use some sulfur species such as elemental sulfur (S<sup>0</sup>), thiosulfate (S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>) or sulfide (S<sup>2&#45;</sup>) as the sole source of S. We also found that strains of <i>Pseudomonas</i> genus were the most versatile base on the fact that they oxidize S<sup>2&#45;</sup> (2 mM) and S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> (4 mM) transforming them to S<sup>0</sup> and tetrathionate (S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>), respectively, whereas <i>Acinetobacter</i> strains only oxidize S<sup>0</sup> to S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>. We also found that the strains of the genera <i>Alcaligenes</i> and <i>Ochrobactrum</i> oxidize S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> (4 mM) to S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>. The activity of these microorganisms through the treatment system and the integration of their metabolism might actively participate in the removal of sulfur compounds.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Oxidation, sulfide (S<sup>2&#45;</sup>), elemental sulfur (S<sup>0</sup>), thiosulfate (S<sub>2</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>), tetrathionate (S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>), <i>Acinetobacter, Alcaligenes, Ochrobactrum, Pseudomonas</i></font>.</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los humedales artificiales son sistemas construidos con base en el principio de los humedales naturales, donde el agua y el suelo proveen las caracter&iacute;sticas principales para el desarrollo de las plantas y microorganismos, actuando como biofiltros, removiendo sedimentos y contaminantes de los efluentes a trav&eacute;s de esta tecnolog&iacute;a (Stottmeister <i>et al.</i> 2003). Estos sistemas biol&oacute;gicos son considerados vers&aacute;tiles debido a su alta eficiencia para tratar efluentes de la industria el&eacute;ctrica y minera contaminados con metales como el selenio (Se), ars&eacute;nico (As), boro (B), zinc (Zn), plomo (Pb) y fierro (Fe) (O'sullivan <i>et al.</i> 1999, Ye <i>et al.</i> 2003). Tambi&eacute;n se ha reportado su empleo para la degradaci&oacute;n de contaminantes org&aacute;nicos provenientes de efluentes dom&eacute;sticos, de la industria qu&iacute;mica y de los alimentos (Rivera <i>et al.</i> 1997, Philippi <i>et al.</i> 1999, Da Motta <i>et al.</i> 2001, Kao <i>et al.</i> 2001, Larsen <i>et al.</i> 2001, Haberl <i>et al.</i> 2003). Pacheco <i>et al.</i> (2008) reportan la construcci&oacute;n de un sistema de humedales para tratar los efluentes generados por la industria del curtido, observando que la demanda qu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DQO: 17 520 mg/L), demanda bioqu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DBO<sub>5</sub>: 1320 mg/L), cromo total (Cr: 31 mg/L), nitr&oacute;geno total (NTK: 267 mg/L), sulfatos (SO4<sup>2&#45;</sup>: 2518 mg/L) y sulfuros (HS<sup>&#45;</sup>: 54 mg/L), fueron reducidos en un 98, 95, 99, 94, 92 y 99 %, respectivamente, en el efluente final.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de las poblaciones microbianas es determinante durante el tratamiento por humedales. Algunos procesos microbianos que han sido identificados incluyen la desnitrificaci&oacute;n, sulfato&#45;reducci&oacute;n, sulfoxidaci&oacute;n y la oxido&#45;reducci&oacute;n de metales (Da Motta <i>et al.</i> 2001, Stottmeister <i>et al.</i> 2003, Lloyd <i>et al.</i> 2004, Whitmire y Hamilton 2005). Particularmente la degradaci&oacute;n anaerobia de la materia org&aacute;nica y la sulfato&#45;reducci&oacute;n aunado a los sulfuros provenientes del proceso del curtido, generan efluentes con alto contenido de sulfuros de hasta 54 mg/L, los cuales resultan t&oacute;xicos para la vida acu&aacute;tica (Bagarinao y Vetter 1989). Sin embargo, dentro de la ecolog&iacute;a microbiana tambi&eacute;n han sido identificadas poblaciones bacterianas sulfoxidantes (BSO), las cuales reoxidan el sulfuro formado. Algunas reacciones de oxidaci&oacute;n del S identificadas en microorganismos, indican la transici&oacute;n de las siguientes especies qu&iacute;micas: S<sup>2&#45;</sup>(sulfuro) &#8594; S<sup>0</sup> (S elemental) &#8594; SO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> (sulfito) &#8594; SO<sub>4</sub><sup>2&#45;</sup> (sulfato), aunque los intermediarios pueden interaccionar qu&iacute;micamente, haciendo la ruta m&aacute;s compleja, tal es el caso de la formaci&oacute;n del tiosulfato (S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>), el cual se forma por la combinaci&oacute;n qu&iacute;mica del S<sup>0</sup> y el SO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, este compuesto tambi&eacute;n puede ser oxidado por microorganismos a tetrationato (S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>) a trav&eacute;s de la siguiente reacci&oacute;n general: S<sup>0</sup> &#43; SO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>&#8594; S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> &#8594; S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> (Suzuki 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los g&eacute;neros microbianos sulfoxidantes m&aacute;s estudiados incluyen especies de los g&eacute;neros de <i>Thio&#45;bacillus, Thiomicrospira, Thermothrix, Thiothrix</i> y <i>Beggiatoa</i> (Greene <i>et al.</i> 2003, Beller <i>et al.</i> 2006, Syed <i>et al.</i> 2006). En el humedal construido para el tratamiento de efluentes provenientes de la industria del curtido, fueron obtenidos diez aislados bacterianos creciendo en el medio de cultivo <i>Thiobacillus</i> B para microorganismos sulfoxidantes, los cuales fueron identificados por an&aacute;lisis del gen 16S ribosomal, pertenecientes a los g&eacute;neros <i>Acinetobacter, Alcaligenes, Ochrobactrum</i> y <i>Pseudomonas.</i> El objetivo del presente estudio fue determinar las capacidades de estos aislados bacterianos para metabolizar especies reducidas del S.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislados bacterianos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislados de estudio (depositados en el cepario del Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Ambiental en el Departamento de Bioqu&iacute;mica y Biotecnolog&iacute;a del CINVESTAV campus Guanajuato) fueron obtenidos del humedal construido en la tener&iacute;a "La Europea" en Le&oacute;n, Gto., e identificados por el an&aacute;lisis del gen ribosomal 16S. Cuatro aislados pertenecen al g&eacute;nero <i>Pseudomonas</i> (A11, A12, A14 y B12), tres aislados al g&eacute;nero <i>Alcaligenes</i> (C11, C14 y C15), dos al g&eacute;nero <i>Acinetobacter</i> (E1 y E2) y uno al g&eacute;nero <i>Ochrobactrum</i> (D11) (Pacheco <i>et al.</i> 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Oxidaci&oacute;n de compuestos reducidos de S</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica de oxidaci&oacute;n de fuentes reducidas de S, se emple&oacute; el medio l&iacute;quido de cultivo modificado <i>Thiobacillus</i> B reportado por Leduc (1999), el cual contiene (g/L): 2.9 citrato de sodio, 3.0 KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>, 2.0 KNO<sub>3</sub>, 0.1 NH<sub>4</sub>Cl, 0.1 MgCl<sub>2</sub>, 0.1 CaCl<sub>2</sub>, 0.2 Fe(NH<sub>4</sub>)(SO<sub>4</sub>)<sub>2</sub>.6H<sub>2</sub>0 y 0.05 MgSO<sub>4</sub>.7H<sub>2</sub>O, ajustado a pH 7.0. Como fuente reducida de S se utiliz&oacute; tiosulfato de sodio 20 mM, S elemental 1 % o sulfuro de sodio 2 mM. Todos los ensayos fueron inoculados a una densidad de 1 x 10<sup>6</sup> c&eacute;lulas/mL (densidad &oacute;ptica 0.01) e incubados en agitaci&oacute;n a 150 rpm por 72 h, a 28 &deg;C. Al t&eacute;rmino de la incubaci&oacute;n, la densidad &oacute;ptica fue medida y el S<sup>0</sup>, SO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> y S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> fueron analizados. El ensayo de oxidaci&oacute;n de S<sup>2&#45;</sup> fue llevado a cabo bajo condiciones anaerobias, cuantificando en el medio, la disminuci&oacute;n del S<sup>2&#45;</sup> y la reducci&oacute;n de nitratos (NO<sub>3</sub>&#150;) a nitritos (NO<sub>2</sub>&#150;).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fuentes reducidas de S</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la capacidad de los aislados para utilizar S<sup>0</sup> o S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> como &uacute;nica fuente de S, se emple&oacute; el medio modificado <i>Thiobacillus</i> B, sustituyendo el MgSO<sub>4</sub> por MgCl<sub>2</sub>, y utilizando S elemental (1 %) o tiosulfato de sodio (20 mM) (Rosseti <i>et al.</i> 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>T&Eacute;CNICAS DE AN&Aacute;LISIS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sulfuros</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cuantificaci&oacute;n de S<sup>2&#45;</sup> se llev&oacute; a cabo mediante la formaci&oacute;n del complejo de azul de metileno con sulfato de N', N dimetil &#45;p&#45;fenilendiamina, en presencia de FeCl<sub>3</sub>, el cual fue medido a 665 nm (Rodier 1981).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tiosulfato y tetrationato</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> y S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> fueron cuantificados como tiocianato (SCN<sup>&#45;</sup>) por medio de la reacci&oacute;n de cia&#45;n&oacute;lisis con KCN en presencia de CuCl<sub>2</sub>, el producto formado fue medido a 460 nm. Para discriminar el SCN<sup>&#45;</sup> formado a partir del S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>, la muestra fue incubada por 30 minutos con KCN y NH<sub>4</sub>OH previo a la adici&oacute;n de CuCl<sub>2</sub> (Masau 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Azufre elemental</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El S<sup>0</sup> fue extra&iacute;do del medio de cultivo con &eacute;ter de petr&oacute;leo y posteriormente llevado a cian&oacute;lisis con NaCN en acetona, el producto final fue medido a 460 nm (Masau 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sulfito</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este m&eacute;todo est&aacute; basado en la formaci&oacute;n de un complejo colorido generado por la p&#45;rosanilina y el formaldeh&iacute;do, en presencia de tetracloromercurato (II), el producto fue medido a 554 nm (Masau 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de los ensayos de oxidaci&oacute;n se presentan en el <b><a href="/img/revistas/rica/v28n3/a2c1.jpg" target="_blank">cuadro I</a>.</b> La mayor&iacute;a de los aislados mostraron crecimiento en el medio <i>Thiobacillus</i> B con S<sup>0</sup>. S&oacute;lo en el medio donde crecieron los aislados pertenecientes al g&eacute;nero de <i>Acinetobacter</i> (E11 y E12) se encontr&oacute; S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> como especie oxidada. La formaci&oacute;n de SO3<sup>2&#45;</sup> y la combinaci&oacute;n con S<sup>0</sup> probablemente formaron S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, el cual no fue oxidado, acumul&aacute;ndose en el medio de cultivo como ha sido reportado por Suzuki (1999). De la misma manera, todos los aislados crecieron en medio <i>Thiobacillus</i> B con tiosulfato de sodio (20 mM), detect&aacute;ndose en los medios de cultivo S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> como producto de oxidaci&oacute;n, con excepci&oacute;n donde crecieron los aislados del g&eacute;nero <i>Acinetobacter.</i> En ninguno de los ensayos de oxidaci&oacute;n de especies reducidas de S se encontr&oacute; SO<sub>4</sub><sup>2&#45;</sup>, ni hubo acidificaci&oacute;n del medio. El pH final fluctu&oacute; entre 7.2 &#45; 8.8, siempre m&aacute;s alcalino que el pH inicial, debido probablemente a la formaci&oacute;n de hidr&oacute;xido (OH<sup>&#45;</sup>) durante las reacciones de oxidaci&oacute;n del tiosulfato: 4Na<sub>2</sub>S<sub>2</sub>O<sub>3</sub> &#43; 2H<sub>2</sub>O &#43; O<sub>2</sub> &#8594; 2Na<sub>2</sub>S<sub>4</sub>O<sub>6</sub> &#43; 4NaOH (Mason y Kelly 1988, Suzuki 1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n a la oxidaci&oacute;n de S<sup>2&#45;</sup>, s&oacute;lo fue detectada la disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n en el medio de cultivo donde se inocularon los aislados A11, A12, A14 y B12 pertenecientes al g&eacute;nero <i>Pseudomonas</i> (<b><a href="#c2" target="_blank">Cuadro II</a>).</b> No se detect&oacute; alguna especie oxidada del S, por lo que pudieron haber utilizado el S<sup>2&#45;</sup> como fuente de S (Okada <i>et al.</i> 1982) o haberlo oxidado a S<sup>0</sup> intracelular (Chung <i>et al.</i> 1997). Este ensayo fue llevado en condiciones anaerobias por lo que se emple&oacute; NO<sub>3</sub><sup>&#45;</sup> como aceptor alterno de electrones durante el consumo de S<sup>2&#45;</sup>. La cin&eacute;tica de la disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de S<sup>2&#45;</sup> y NO<sub>3</sub><sup>&#45;</sup>, as&iacute; como la producci&oacute;n de NO<sub>2</sub><sup>&#45;</sup> se muestra en la <b><a href="#f1">figura 1</a></b>. Los resultados muestran que alrededor de las 70 h el sulfuro hab&iacute;a sido completamente metabolizado por los aislados A11, A12 y A14.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a2c2.jpg">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1" id="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a2f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El S<sup>0</sup> y S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> fueron metabolizados como &uacute;nica fuente de S por todos los aislados, en t&eacute;rminos de crecimiento bacteriano determinado por un aumento en la densidad &oacute;ptica. Sin embargo, este aumento no estuvo correlacionado con el consumo de S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, tambi&eacute;n pudo detectarse la acumulaci&oacute;n de S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>como especie oxidada del S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> (<a href="/img/revistas/rica/v28n3/a2c3.jpg" target="_blank"><b>Cuadro III</b></a>). La diferencia en la producci&oacute;n de S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> entre los aislados pudo deberse a la presencia de SO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, producto de la acci&oacute;n enzim&aacute;tica de la rodanasa sobre el S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, el SO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> act&uacute;a como inhibidor del sistema enzim&aacute;tico (S&#45;oxidante dependiente del citocromo <i>c</i>) que lleva a cabo la oxidaci&oacute;n de S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> a S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> (Suzuki 1999, Sekowska <i>et al.</i> 2000). En los ensayos realizados con <i>Acinetobacter</i> (E11 y E12) creciendo en tiosulfato de sodio, no se detect&oacute; S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>, el crecimiento m&iacute;nimo observado en el aislado E12 probablemente se debi&oacute; por el consumo de S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> en cantidades no detectables por el m&eacute;todo anal&iacute;tico.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de plantas en humedales construidos promueve procesos qu&iacute;micos y biol&oacute;gicos en la zona de la riz&oacute;sfera que participan en la mejora de la calidad de los efluentes, mediante la oxidaci&oacute;n de compuestos org&aacute;nicos e inorg&aacute;nicos (Stubner <i>et al.</i> 1998, Baptista <i>et al.</i> 2003). La actividad microbiana aerobia sulfoxidante es dependiente de la riz&oacute;sfera o de aceptores alternos de electrones como NO<sub>3</sub><sup>&#45;</sup>, Fe<sup>3</sup>&#43; o Mn<sup>4+</sup> cuando ocurre en sedimentos bajo condiciones anaerobias (Stubner <i>et al.</i> 1998, Eckord <i>etal.</i> 2002, Leduc 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La participaci&oacute;n de los g&eacute;neros bacterianos de los aislados de estudio en el ciclo del S ha sido previamente reportada, tal es el caso de <i>Pseudomonas,</i> g&eacute;nero cosmopolita, el cual ha sido aislado de suelos, de reactores empleados en tratamiento de efluentes y hasta de respiraderos marinos. Su metabolismo incluye la oxidaci&oacute;n de S<sup>2&#45;</sup> a S<sup>0</sup> y de S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> a S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>, adem&aacute;s del uso de dimetil sulfuro (DMS) como fuente de S al igual que <i>Acinetobacter</i> (Ruby <i>et al.</i> 1981, Chung <i>et al.</i> 1996, Fuse <i>et al.</i> 2000, Okabe <i>et al.</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La degradaci&oacute;n de compuestos organosulfurados como los bencensulfonatos, ha sido ampliamente estudiada en bacterias del g&eacute;nero <i>Alcaligenes,</i> debido a que pueden emplearlos como fuente de C y S (Cook <i>et al.</i> 1999). <i>Ochrobactrum</i> es un g&eacute;nero que se ha encontrado presente en la ecolog&iacute;a microbiana de lodos activados de reactores anaerobios sulfoxidantes, con capacidades de oxidaci&oacute;n de S<sup>2&#45;</sup> a S<sup>0</sup> o a SO4<sup>2&#45;</sup> (Mahmood <i>et al.</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los aislados de este estudio pueden utilizar S<sup>2&#45;</sup>, S<sup>0</sup> o S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> como fuente de S y como producto de la oxidaci&oacute;n de S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, acumulan S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> sin la producci&oacute;n de SO<sub>4</sub><sup>2&#45;</sup>. Las poblaciones sulfoxidantes formadoras de S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> est&aacute;n presentes en diversos ambientes como suelos, lagos s&oacute;dicos, biorreactores y sedimentos marinos (Podgorsek e Imhoff 1999, Sorokin 2003).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El papel del S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> dentro del ciclo del S ha sido descrito por Sorokin <i>et al.</i> (1996) en la cepa <i>Catenococcus thiocyclus</i> LMD 92.12. Ensayos en medios de cultivo muestran que el S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup> producido por la oxidaci&oacute;n biol&oacute;gica del S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup>, promueve la oxidaci&oacute;n qu&iacute;mica de S<sup>2&#45;</sup> hacia S<sup>0</sup> cuando se adiciona S<sup>2&#45;</sup> al medio. La cepa reoxida el S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2</sup> a S<sub>4</sub>O<sub>6</sub><sup>2&#45;</sup>, y de esta manera se oxida m&aacute;s S<sup>2&#45;</sup>. Este mecanismo acopla reacciones qu&iacute;micas y biol&oacute;gicas que pudieran ocurrir tambi&eacute;n en el humedal en estudio. De esta manera, los g&eacute;neros de <i>Pseudomonas, Alcaligenes</i> y <i>Ochrobactrum</i> pudieran estar llevando a cabo la oxidaci&oacute;n indirecta de S<sup>2&#45;</sup> de la misma manera que <i>Catenococcus thiocyclus,</i> mientras que el S<sup>0</sup> producido pudiera ser oxidado a S<sub>2</sub>O<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> por <i>Acinetobacter</i> (Podgorsek <i>et al.</i> 2004). La <b><a href="#f2">figura 2</a></b> muestra el ciclo del S propuesto por Sorokin <i>et al.</i> (1996) adaptado con los aislados microbianos del presente estudio.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a2f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados en el presente trabajo indican que las poblaciones microbianas sulfoxidantes presentes en el humedal poseen capacidades diversas para metabolizar compuestos reducidos de azufre por asimilaci&oacute;n y oxidaci&oacute;n pudiendo participar en la mejora de la calidad de los efluentes. El conocimiento y mantenimiento de estas poblaciones es necesario para el adecuado funcionamiento del humedal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bagarinao T. y Vetter R.D. (1989). Sulfide tolerance and detoxification in shallow&#45;water marine fishes. Mar. Biol. 103, 291&#45;302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263453&pid=S0188-4999201200030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baptista J. D.C., Donnelly T., Rayne D. y Davenport R.J. (2003). Microbial mechanisms of carbon removal in subsurface flow wetlands. Wat. Sci. Tech. 48, 127&#45;134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263455&pid=S0188-4999201200030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Beller H.R., Letain T.E., Chakicherla A., Kane S. R., Legler T. C. y Coleman M. A. (2006). Whole&#45;genome transcriptional analysis of chemolithoautotrophic thio&#45;sulfate oxidation by <i>Thiobacillus denitrificans</i> under aerobic versus denitrifying conditions. J. Bacteriol. 188, 7005&#45;7015.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263457&pid=S0188-4999201200030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chung Y.C., Huang C. y Tseng C.P. (1996). Biodegradation of hydrogen sulfide by a laboratory&#45;scale immobilized <i>Pseudomonas putida</i> CH11 biofilter. Biotechnol. Prog.12, 773&#45;778.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263459&pid=S0188-4999201200030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chung Y.C., Huang C. y Tseng C.P. (1997). Removal of hydrogen sulphide by immobilized <i>Thiobacillus</i> sp. strain CH11 in a biofilter. J. Chem. Tech. Biotechnol. 69, 58&#45;62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263461&pid=S0188-4999201200030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cook A. M., Laue H. y Junker F. (1999). Microbial desul&#45;fonation. FEMS Microbiol. Rev. 22, 399&#45;419.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263463&pid=S0188-4999201200030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Da Motta M.D.M.L., Leite G.R. y Giovannini S. G.T. (2001). Performance of two macrophyte especies in experimental wetlands receiving variable loads of anaerobically treated municipal wastewater. Wat. Sci. Tech. 44, 311&#45;316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263465&pid=S0188-4999201200030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eckford R.E. y Fedorak P.M. (2002). Planktonic nitrate&#45;reducing bacteria and sulfate&#45;reducing bacteria in some western Canadian oil field waters. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 29, 83&#45;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263467&pid=S0188-4999201200030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fuse H., Takimura O., Murakami K., Yamaoka Y. y Omori T. (2000). Utilization of dimethyl sulfide as a sulfur source with the aid of light by <i>Marinobacterium</i> sp. strain DMS&#45;S1. Appl. Environ. Microbiol. 66, 5527&#45;5532.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263469&pid=S0188-4999201200030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Greene E.A., Hubert C., Nemati M., Jenneman G.E. y Voordouw G. (2003). Nitrite reductase activity of sulphate&#45;reducing bacteria prevents their inhibition by nitrate&#45;reducing, sulphide&#45;oxidizing bacteria. Environ. Microbiol. 5, 607&#45;617.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263471&pid=S0188-4999201200030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Habelr R., Grego S., Langergraber G., Kadlec R.H., Cicalini A. R., Dias S. M., Novais J. M., Aubert S., Gerth A., Hartmurt T. y Hebner A. (2003). Constructed wetlands for the treatment of organic pollutants. J. Soils Sed. 3, 109&#45;124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263473&pid=S0188-4999201200030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kao C.M., Wang J.Y. y Wu M.J. (2001). Evaluation of atrazine removal processes in a wetland. Wat. Sci. Tech. 44, 539&#45;544.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263475&pid=S0188-4999201200030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Larsen L., Jergensen C. y Aamand J. (2001). Potential mineralization of four herbicides in a ground water&#45;fed wetland area. J. Environ. Qual. 30, 24&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263477&pid=S0188-4999201200030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leduc D. (1999). Quantification of bacterial populations indigenous to acidic drainage streams. Master of Science Thesis. School of Graduate Studies. Laurentian University of Sudbury. Ontario, Canad&aacute;, pp126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263479&pid=S0188-4999201200030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lloyd J.R., Klessa D.A., Parry D.L., Buck P. y Brown N.L. (2004). Stimulation of microbial sulphate reduction in a constructed wetland: microbiological and geochemical analysis. Wat. Res. 38, 1822&#45;1830.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263481&pid=S0188-4999201200030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mahmood Q., Hu B., Cai J., Zheng P., Azim M.R., Jilani G. e Islam E. (2009). Isolation of <i>Ochrobactrum</i> sp. QZ2 form sulfide and nitrite treatment system. J. Hazard. Mater. 165, 558&#45;565.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263483&pid=S0188-4999201200030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Masau R.J.Y. (1999). The mechanism of thiosulfate oxidation by <i>Thiobacillus thiooxidans</i> 8085. Master of Science Thesis. Department of Microbiology. University of Manitoba. Winnipeg, Canad&aacute;. 158 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263485&pid=S0188-4999201200030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mason J. y Kelly D.P. (1988). Thiosulfate oxidation by obligately heterotrophic bacteria. Microb. Ecol. 15, 123&#45;134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263487&pid=S0188-4999201200030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Okabe S., Ito T., Sugita K. y Satoh H. (2005). Succession of internal sulfur cycles and sulfur&#45;oxidizing bacterial communities in microaerophilic wastewater biofilms. Appl. Environ. Microbiol. 71, 2520&#45;2529.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263489&pid=S0188-4999201200030000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Okada J., Murata K. y Kimura A. (1982). Assimilation of elemental sulfur by a mutant of <i>Escherichia coli</i> B. Agr. Biol. Chem. 46, 1915&#45;1916.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263491&pid=S0188-4999201200030000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">O'sullivan A.D., McCabe O.M., Murray D.A. y Otte M.L. (1999). Wetlands for rehabilitation of metal mine wastes. Biol. Environ. 99B, 11&#45;17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263493&pid=S0188-4999201200030000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pacheco A.J. R., Pe&ntilde;a C.J.J. y Madonado V.M. (2008). Identification and characterization of sulfur&#45;oxidizing bacteria in an artificial wetland that treats wastewater from a tannery. Int. J. Phytoremed. 10, 359&#45;370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263495&pid=S0188-4999201200030000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Philippi L.S., Da Costa R.H.R. y Sezerino P.H. (1999). Domestic effluent treatment through integrated system of septic tank and root zone. Wat. Sci. Tech. 40, 125&#45;131.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263497&pid=S0188-4999201200030000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Podgorsek L. e Imhoff J.F. (1999). Tetrathionate production by sulfur oxidizing bacteria and the role of the tetrathionate in the sulfur cycle of Baltic Sea sediments. Aquat. Microb. Ecol. 17, 255&#45;265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263499&pid=S0188-4999201200030000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Podgorsek L., Petri R. e Imhoff J.F. (2004). Cultured and genetic diversity, and activities of sulfur&#45;oxidizing bacteria in low&#45;temperature hydrothermal fluids of the North Fiji Basin. Mar. Ecol. Prog. Ser. 266, 65&#45;76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263501&pid=S0188-4999201200030000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rivera F., Warren A., Curds C.R., Robles E., Guti&eacute;rrez A., Gallegos E. y Calder&oacute;n A. (1997). The application of the root zone method for the treatment and reuse of high&#45;strength abattoir waste in M&eacute;xico. Wat. Sci. Tech. 35, 271&#45;278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263503&pid=S0188-4999201200030000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodier J. (1981). <i>An&aacute;lisis de las aguas.</i> 1a ed. Omega, Barcelona, 1080 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263505&pid=S0188-4999201200030000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rossetti S., Blackall L.L., Levantesi C., Uccelletti D. y Tandoi V (2003). Phylogenetic and physiological characterization of a heterotrophic, chemolithoautotrophic <i>Thiothrix</i> strain isolated from activated sludge. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 53, 1271&#45;1276.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263507&pid=S0188-4999201200030000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruby E.G., Wirsen C.O. y Jannasch H.W. (1981). Chemo&#45;lithotrophic sulfur&#45;oxidizing bacteria from the Galapagos Rift hydrothermal vents. Appl. Environ. Microbiol 42, 317&#45;324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263509&pid=S0188-4999201200030000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sekowska A., Kung H.F. y Danchin A. (2000). Sulfur metabolism in <i>Escherichia coli</i> and related bacteria: Facts and fiction. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2, 145&#45;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263511&pid=S0188-4999201200030000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sorokin D.Y., Robertson L.A. y Kuenen J.G. (1996). Sulfur cycling in <i>Catenococcus thiocyclus.</i> FEMS Microbiol. Ecol. 19, 117&#45;125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263513&pid=S0188-4999201200030000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sorokin D.Y. (2003). Oxidation of inorganic sulfur compounds by obligately organotrophic bacteria. Microbiology. 72, 725&#45;739.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263515&pid=S0188-4999201200030000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stottmeister U., Wiebner A., Kuschk P., Kappelmeyer U., K&auml;stner M., Bederski O., M&uuml;ller R.A. y Moormann H. (2003). Effects of plants and microorganisms in constructed wetlands for wastewater treatment. Biotechnol. Adv. 22, 93&#45;117.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263517&pid=S0188-4999201200030000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stubner S., Wind T. y Conrad R. (1998). Sulfur oxidation in rice field soil: activity, enumeration, isolation and characterization of thiosulfate&#45;oxidizing bacteria. Syst. Appl. Microbiol. 21, 569&#45;578.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263519&pid=S0188-4999201200030000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Suzuki I. (1999). Oxidation of inorganic sulfur compounds: chemical and enzymatic reactions. Can. J. Microbiol. 45, 97&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263521&pid=S0188-4999201200030000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Syed M., Soreanu G., Falletta P. y B&eacute;land M. (2006). Removal of hydrogen sulfide from gas streams using biological processes &#45; A review. Can. Biosyst. Eng. 48, 1&#45;14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263523&pid=S0188-4999201200030000200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Whitmire S.L. y Hamilton S.K. (2005). Rapid removal of nitrate and sulfate in freshwater wetland sediments. J. Environ. Qual. 34, 2062&#45;2071.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263525&pid=S0188-4999201200030000200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ye Z.H., Lin Z.Q., Whiting S.N., De Souza M.P. y Terry N. (2003). Possible use of constructed wetland to remove selenocyanate, arsenic, and boron from electric utility wastewater. Chemosphere 52, 1571&#45;1579.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7263527&pid=S0188-4999201200030000200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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