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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The decay rate (k) of PRD1 and MS2 was evaluated in situ at "La Juventud" recreational dam. Its relation with temperature (T), pH, electrical conductivity (EC), total suspended solids (TSS), dissolved oxygen (DO), and the amount of total (TC) and fecal coliform (FC) was also analyzed. For both coliphages, the lowest survival was in summer and the highest one during the winter, probably as a result of water temperature. The k for MS2 was higher than for PRD1, which survive longer on the bottom of the column than on the surface. There was not a relationship between EC or DO concentration and k at the sampling sites. The TSS ranged from 45 to 80 mg/L, TC from 75 to 335 colony forming units (cfu)/100 mL, and FC between 25 and 125 cfu per 100 mL of sample. These values are well below the maximum permissible levels for wastewater discharges to national waters complying with the Mexican standards for recreational waters in TSS and FC.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Sobrevivencia de bacteri&oacute;fagos en una presa recreativa del noreste de M&eacute;xico</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font size="3" face="verdana"><b>Bacteriophage survival in a recreation dam of the northeast of M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Luis SAMANIEGO&#45;MORENO<sup>1</sup>, Juan A. VIDALES&#45;CONTRERAS<sup>2*</sup>, Rodolfo A. GARC&Iacute;A&#45;ZAMBRANO<sup>2</sup>, Humberto RODR&Iacute;GUEZ&#45;FUENTES<sup>2</sup>, Emilio OLIVARES&#45;S&Aacute;ENZ<sup>2</sup>, Rigoberto V&Aacute;ZQUEZ&#45;ALVARADO<sup>2</sup>, Ernesto J. S&Aacute;NCHEZ&#45;ALEJO<sup>2</sup> y Pablo GORTARES&#45;MOROYOQUI<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro, Departamento de Riego y Drenaje. Calzada Antonio Narro No. 1923, C.P. 25315, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico</i> *Autor responsable; <a href="mailto:javidalesc@hotmail.com">javidalesc@hotmail.com</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n, UANL, Facultad de Agronom&iacute;a, Av. Universidad s/n Ciudad Universitaria, San Nicol&aacute;s de los Garza, Nuevo Le&oacute;n, C.P. 66451, M&eacute;xico</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido noviembre 2010,    <br> 	aceptado mayo 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de decaimiento (k) de los colifagos PRD1 y MS2, modelos de virus ent&eacute;ricos, fue evaluada <i>in situ</i> en el agua de la presa recreativa "La Juventud" ubicada en Mar&iacute;n, N.L., M&eacute;xico. Su relaci&oacute;n con la temperatura (T), pH, conductividad el&eacute;ctrica (CE), s&oacute;lidos suspendidos totales (SST), ox&iacute;geno disuelto (OD) y coliformes totales (CT) y fecales (CF) fue tambi&eacute;n analizada. Los resultados mostraron que para ambos colifagos la menor sobrevivencia fue en verano y la mayor en invierno. Comparado con PRD1, MS2 present&oacute; mayor tasa de decaimiento. Sin embargo, PRD1 sobrevivi&oacute; por m&aacute;s tiempo en el fondo de la columna de agua de la presa que en su superficie. La tasa de decaimiento no estuvo relacionada con la CE &oacute; la concentraci&oacute;n de OD medida en cada uno de los sitios de muestreo. La concentraci&oacute;n de SST fluctu&oacute; entre 45 y 80 mg/L, CT entre 75 y 335 unidades formadoras de colonias (UFC)/100 mL, mientras que la densidad de Cf se ubic&oacute; entre 25 y 125 UFC/100 mL de muestra. Estos valores est&aacute;n muy por debajo de los m&aacute;ximos permisibles para descargas de aguas residuales a aguas y bienes nacionales, cumpliendo con las normas mexicanas para aguas de recreaci&oacute;n en SST y CF.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> inactivaci&oacute;n, colifagos, PRD1, MS2, pat&oacute;genos</font>.</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The decay rate (k) of PRD1 and MS2 was evaluated <i>in situ</i> at "La Juventud" recreational dam. Its relation with temperature (T), pH, electrical conductivity (EC), total suspended solids (TSS), dissolved oxygen (DO), and the amount of total (TC) and fecal coliform (FC) was also analyzed. For both coliphages, the lowest survival was in summer and the highest one during the winter, probably as a result of water temperature. The <i>k</i> for MS2 was higher than for PRD1, which survive longer on the bottom of the column than on the surface. There was not a relationship between EC or DO concentration and <i>k</i> at the sampling sites. The TSS ranged from 45 to 80 mg/L, TC from 75 to 335 colony forming units (cfu)/100 mL, and FC between 25 and 125 cfu per 100 mL of sample. These values are well below the maximum permissible levels for wastewater discharges to national waters complying with the Mexican standards for recreational waters in TSS and FC.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> inactivation, coliphages, PRD1, MS2, pathogen</font>.</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una de las formas m&aacute;s comunes de contaminaci&oacute;n de los cuerpos de agua superficiales es por pat&oacute;genos ent&eacute;ricos asociados a las heces fecales de individuos infectados. Entre estos pat&oacute;genos, los virus ent&eacute;ricos han sido considerados la causa m&aacute;s com&uacute;n de muerte entre la ni&ntilde;ez a nivel mundial, especialmente en pa&iacute;ses subdesarrollados (Walsh y Warren 1979, Butler 1984, Clark y McKendrick 2004). Al ser evacuados al ambiente ellos pueden alcanzar los cuerpos de agua superficiales, que abastecen a las poblaciones o que se utilizan como sitios de recreaci&oacute;n, poniendo en riesgo la salud p&uacute;blica al ser capaces de causar diversas enfermedades entre la poblaci&oacute;n (Bosch <i>et al.</i> 2006); por ejemplo, gastroenteritis, hepatitis A, hepatitis E, meningitis y miocarditis, entre otras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de virus ent&eacute;ricos en cuerpos de agua superficiales o subterr&aacute;neos es un riesgo importante que puede afectar la salud p&uacute;blica, ya que ellos pueden sobrevivir por largos periodos manteniendo la posibilidad de brotes de enfermedades ent&eacute;ricas o en casos m&aacute;s graves epidemias. Para determinar la tasa de decaimiento en el ambiente se puede recurrir a virus no patog&eacute;nicos; por ejemplo, colifagos, incapaces de reproducirse en el ambiente (Campos 1993, Grabow 2001), con una morfolog&iacute;a similar a la que presentan los virus ent&eacute;ricos y con la ventaja de que su an&aacute;lisis es relativamente sencillo, econ&oacute;mico y r&aacute;pido (Vidales&#45;Contreras <i>et al.</i> 2006). Los m&aacute;s com&uacute;nmente utilizados como modelos de virus ent&eacute;ricos son PRD1 y MS2. Entre otras caracter&iacute;sticas, PRD1 infecta bacterias gram negativas como <i>Escherichia coli</i> y <i>Salmonella typhimurium,</i> posee una membrana l&iacute;pido&#45;prot&eacute;ica bajo su c&aacute;pside similar al adenovirus y al rotavirus (McNulty 1978, Balakireva <i>el at.</i> 2003). El virus es de forma icosa&eacute;drica, con un tama&ntilde;o de 62 nm y 24 x 10<sup>6</sup> daltones de peso molecular (Olsen <i>et al.</i> 1974). MS2 es un virus desnudo, similar a los enterovirus, coxsackievirus, polivirus y enterovirus. Infecta a <i>Escherichia coli ATCC15597,</i> es de forma icosa&eacute;drica, con un tama&ntilde;o de 27 nm y tiene un peso molecular de 3.5 x 10<sup>6</sup> daltones (Kuzmanovic <i>et al.</i> 2003, Harvey y Ryan 1993).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los factores que pueden afectar a la sobrevivencia del virus en agua incluyen a la temperatura, materia org&aacute;nica, microorganismos aer&oacute;bicos y luz solar, entre otros (Bosch <i>et al.</i> 2006). Sin embargo, el factor m&aacute;s importante es la temperatura, ya que su incremento favorece el decaimiento del virus principalmente por la actividad de enzimas extracelulares (Gundy <i>et al.</i> 2009) y en casos extremos la desnaturalizaci&oacute;n de prote&iacute;nas (Hurst <i>et al.</i> 1980). Yahya <i>et al.</i> (1993) evaluaron la sobrevivencia de PRD1 y MS2 en agua subterr&aacute;nea de diferentes sitios de Estados Unidos de Am&eacute;rica a diferentes temperaturas. Las tasas de decaimiento observadas fueron 0.05 y 0.55 log<sub>10</sub>/d&iacute;a para PRD1 y MS2, respectivamente, a 23 &deg;C en agua colectada de Tucson AZ, EUA. A 7 &deg;C la diferencia en decaimiento para ambos colifagos fue despreciable. Por otra parte, John y Rose (2005) realizaron una revisi&oacute;n de factores que afectan la sobrevivencia de microorganismos en agua subterr&aacute;nea. En este estudio el valor de la media geom&eacute;trica para las tasas de inactivaci&oacute;n para colifagos, poliovirus, echovirus, bacterias coliformes, enterococos y <i>Salmonella spp.,</i> fue aproximadamente de 0.07&#45;0.1 log<sub>10</sub>/d&iacute;a, mientras que las tasas de inactivaci&oacute;n para el virus de hepatitis A, coxsackievirus y PRD1 fueron de 0.02&#45;0.04 log<sub>10</sub>/d&iacute;a. Los estudios anteriores sugieren que la tasa de decaimiento de colifagos y virus ent&eacute;ricos es dependiente de la temperatura, mayor decaimiento a mayores temperaturas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presa "La Juventud" ubicada al noreste de M&eacute;xico, recibe anualmente 32 000 visitantes con fines de recreaci&oacute;n y pesca deportiva. A esta presa llegan principalmente los escurrimientos superficiales producidos por las precipitaciones que ocurren en su cuenca, sin embargo, en ella se ubican peque&ntilde;os desarrollos urbanos y explotaciones de cerdos y ganado vacuno, adem&aacute;s del predio donde se confinan los desechos de la cabecera municipal de Mar&iacute;n N. L. M&eacute;xico. La presa se encuentra aproximadamente a 1.5 km de un sistema de lagunas de oxidaci&oacute;n donde se tratan las aguas residuales de la cabecera municipal, lo que sugiere que en temporada de precipitaciones existe el riesgo que efluentes contaminados lleguen a ella. Es importante mencionar que al noreste de la presa se establecen cultivos irrigados con agua residual tratada. Los objetivos de la presente investigaci&oacute;n fueron: (i) evaluar <i>in situ</i> la tasa de decaimiento de los colifagos PRD1 y MS2; (ii) analizar su relaci&oacute;n con T, pH, CE, OD y SST, y (iii) cuantificar CT y CF en las aguas de la presa para compararla con las normas oficiales mexicanas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presa "La Juventud" (<a href="#a1f1"><b>Fig. 1</b></a>) pertenece a la Facultad de Agronom&iacute;a de la Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n (FAUANL), est&aacute; ubicada en el kil&oacute;metro 15.5 de la carretera Zuazua&#45;Mar&iacute;n, su extensi&oacute;n es de 54.47 ha. El clima de la regi&oacute;n es extremoso, la precipitaci&oacute;n anual fluct&uacute;a entre 250 y 500 mm; de los cuales, la mayor parte ocurre en agosto y septiembre. Las mayores temperaturas se presentan en julio y agosto con una m&aacute;xima de 40 &deg;C. La m&iacute;nima es de 4 &deg;C y la media anual 22 &deg;C, la direcci&oacute;n predominante de los vientos es de norte a sur (Mar&iacute;n 2008).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sitio para la prueba de sobrevivencia (<a href="#a1f1"><b>Fig. 1</b>)</a> de MS2 y PRD1 se localiz&oacute; a los 25&deg; 52' 29'' N, 100&deg; 04' 07'' O, con una profundidad de 4 m al inicio del estudio y de aproximadamente 3 m durante la &eacute;poca de estiaje. Los colifagos PRD1 y MS2 se obtuvieron del Laboratorio de Remediaci&oacute;n Ambiental y An&aacute;lisis de Aguas, Suelos y Plantas de la FAUANL. Ambos virus fueron replicados por el m&eacute;todo de doble capa (Adams, 1959) usando como hospedero <i>Salmonella typhimurium</i> LT2 y <i>Escherichia coli</i> 15597, respectivamente, en agar de soya tripticaseina (BDBioxon, M&eacute;xico) a concentraci&oacute;n de 40 g/L. Una al&iacute;cuota de 0.1 mL de una suspensi&oacute;n del virus se mezcl&oacute; con 0.5 mL de su hospedero en 30 g/L de caldo de soya tripticaseina (BDBioxon, M&eacute;xico) preparado con agar bacteriol&oacute;gico al 1.0 % (BDBioxon, M&eacute;xico). Esta suspensi&oacute;n se a&ntilde;adi&oacute; a la placa de agar de soya y posterior a su solidificaci&oacute;n se incub&oacute; a 37 &deg;C por 24 h. Inmediatamente despu&eacute;s de este periodo se a&ntilde;adieron 6 mL de agua destilada est&eacute;ril incub&aacute;ndose por 3 h a temperatura ambiente (25 &deg;C). La suspensi&oacute;n se recuper&oacute; en una botella de polipropileno de 250 mL y se centrifug&oacute; a 15 000 x g (Centrifuge 5804 R Eppendorf) por 15 min. El sobrenadante se filtr&oacute; a trav&eacute;s de una membrana de nitrocelulosa de 47 mm de di&aacute;metro y 0.45 &#956;m de tama&ntilde;o de poro (Millipore, Billerica, MA, EUA). La sobrevivencia se realiz&oacute; <i>in situ</i> utilizando membranas de di&aacute;lisis (Spectra/Por Spectrum) con un umbral de permeabilidad de 12 000 a 14 000 daltones de peso molecular, lo que permite que los iones solubles del agua pasen la membrana e impidiendo el paso de MS2 y PRD1 (3.5 y 24 x 10<sup>6</sup> daltones, respectivamente). Se colocaron bolsas de aproximadamente 100 mm de largo y 25 mm de ancho en agua destilada para suavizarlas y atarlas en uno de sus extremos. Las bolsas se llenaron con 3 mL de una mezcla de 300 mL de agua de la presa y 0.3 mL de soluci&oacute;n concentrada de cada colifago, atando su extremo superior. La concentraci&oacute;n de PRD1 y MS2 (Co) en esta suspensi&oacute;n fue cuantificada, <a href="/img/revistas/rica/v28n3/a1c1.jpg" target="_blank"><b>cuadro I</b></a>, al inicio de cada experimento.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Inicialmente los ensayos se llevaron a cabo colocando grupos de 12 bolsas con la suspensi&oacute;n viral previamente preparada a 0, 1, 2, 3 y 4 m de profundidad en la primavera del 2007 (17&#45;24 de abril). Posteriormente, los periodos de monitoreo fueron: primavera (23 de abril&#45;02 de mayo) y verano del 2008 (01&#45;11 de julio), a profundidades de 0, 1, 2, y 3 m. Sin embargo, esta condici&oacute;n cambio en oto&ntilde;o del 2008 (12&#45;21 de diciembre), debido a las precipitaciones ocurridas en julio de ese a&ntilde;o e invierno del 2009 (23&#45;28 de enero) cuando la altura de la columna del agua fue de 4 m. Diariamente una bolsa de di&aacute;lisis colectada de cada profundidad de muestreo se coloc&oacute; en un recipiente con hielo y se llev&oacute; al Laboratorio de Remediaci&oacute;n Ambiental An&aacute;lisis de Suelos Aguas y Plantas de la FAUANL para su an&aacute;lisis por el m&eacute;todo de doble capa (Adams 1959). Una al&iacute;cuota de 0.5 mL de <i>S. tiphymuruim</i> LT2 o <i>E. coli</i> 15597 para los colifagos PRD1 y MS2, respectivamente, y 0.1 mL de la suspensi&oacute;n de la bolsa de di&aacute;lisis diluida mediante diluciones decimales sucesivas, se mezclaron en 4.5 mL de caldo de soya tripticaseina (30 g/L), conteniendo 1.0 % de agar bacteriol&oacute;gico, mantenido en ba&ntilde;o Mar&iacute;a a una temperatura de 47 &deg;C. Esta mezcla se vaci&oacute; en una placa de agar de soya tripticaseina (40 g/L); una vez solidificada, se incub&oacute; por 24 h a 37 &deg;C. La concentraci&oacute;n (C) se determin&oacute; mediante el promedio de la enumeraci&oacute;n de las unidades formadoras de placa (UFP) por placas Petri, preparadas por duplicado, multiplicado por el factor de diluci&oacute;n (F), el cual es expresado como:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1form1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde <i>v</i> es el volumen ensayado, 0.1 mL, y <i>d</i> es la diluci&oacute;n usada para el an&aacute;lisis, 10<sup>&#45;1</sup>, 10<sup>&#45;2</sup>, 10<sup>&#45;3</sup>, y as&iacute; sucesivamente, que permiti&oacute; la cuantificaci&oacute;n de los colifagos. Al momento del muestreo y a las profundidades mencionadas anteriormente fueron medidos pH, CE y T, con un medidor multipar&aacute;metros de campo (YSI Mod. 63150, EUA), lo mismo para OD (Hanna Instruments, HI 9143 EUA). Sin embargo, las observaciones de pH fueron realizadas s&oacute;lo en primavera, verano y oto&ntilde;o de 2008.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de SST se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de diferencias de peso (APHA 1992), tom&aacute;ndose solamente muestras de la superficie del sitio de muestreo. Brevemente, una muestra bien mezclada se filtr&oacute; a trav&eacute;s de un filtro de fibra de vidrio de 47 mm de di&aacute;metro (Whatman EUA) y el residuo retenido se sec&oacute; hasta peso constante a 103&#45;105 &deg;C. El incremento en el peso del filtro representa el total de s&oacute;lidos suspendidos. Los vol&uacute;menes de muestra, por triplicado, que se usaron fueron de 20 mL. La medici&oacute;n de turbidez (Hanna Instruments, HI 93703, EUA) se realiz&oacute; <i>in situ.</i> Para CT y CF se tomaron muestras de agua de la superficie de los sitios de muestreo, conservadas en hielo y llevadas al laboratorio para su an&aacute;lisis por la t&eacute;cnica de filtraci&oacute;n por membrana (APHA 1992) utilizando M&#45;Endo para CT y MFc (Difco, EUA) para CF. Las membranas de filtraci&oacute;n fueron de nitrocelulosa de 47 mm de di&aacute;metro y 0.45 &#956;m de tama&ntilde;o de poro (Millipore, Billerica, MA, EUA). Al&iacute;cuotas de 1 y 10 mL fueron los vol&uacute;menes ensayados, por duplicado, para determinar la concentraci&oacute;n de ambos grupos bacterianos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la concentraci&oacute;n relativa (C/Co) de los colifagos expresada en unidades logar&iacute;tmicas base 10 en el eje de las ordenadas y el d&iacute;a de muestreo como pareja ordenada en el eje de las abscisas, se traz&oacute; un modelo de regresi&oacute;n lineal para determinar <i>k</i> mediante la pendiente del modelo. Los valores de <i>k</i> reportados como negativos indican inactivaci&oacute;n, mientras m&aacute;s negativo m&aacute;s alta la tasa de decaimiento (Yates <i>et al.</i> 1985, McLaughlin y Brooks 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos de precipitaci&oacute;n y la temperatura ambiente y del agua que se registraron durante los experimentos se muestran en la <a href="#a1f2"><b>figura 2</b></a> y en todos ellos el mayor valor se encontr&oacute; en verano (INIFAP 2009).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sobrevivencia de PRD1 y MS2, representada como el promedio de las concentraciones relativas de los colifagos, a lo largo de toda la columna de agua, se muestran en las <a href="#a1f3"><b>Figs. 3</b></a> y <a href="#a1f4"><b>4</b></a>, respectivamente. Las tasas de decaimiento se ilustran en el <a href="#a1c2"><b>cuadro II</b></a>. Para ambos virus la menor sobrevivencia fue en verano y la mayor en invierno. En comparaci&oacute;n con PRD1, MS2 exhibi&oacute; una mayor tasa de decaimiento a excepci&oacute;n de la primavera de 2008. Es importante se&ntilde;alar que en este periodo solo se consideraron los datos obtenidos en el punto ubicado a 3 m de profundidad para MS2, debido a las pocas observaciones realizadas en los puntos superficiales (<a href="#a1f5"><b>Fig. 5</b></a>). Comparando los resultados entre profundidades de muestreo, la tendencia general, a excepci&oacute;n del verano 2008, fue que el PRD1 sobrevivi&oacute; por periodos m&aacute;s largos en el fondo de la columna de agua (<a href="#a1f6"><b>Fig. 6</b></a>) que en la superficie. Con respecto a MS2, este comportamiento tambi&eacute;n se observ&oacute;, sin embargo, los dos sitios intermedios no siempre mostraron menor sobrevivencia comparado con el fondo de la columna. La mayor sobrevivencia de PRD1 en relaci&oacute;n con MS2 ha sido observada en diversos estudios (Yates <i>et al.</i> 1985, Yahya <i>et al.</i> 1993, Blanc y Nasser 1996, Schijven <i>et al.</i> 2000, Enriquez <i>et al.</i> 2003, Brion <i>et al.</i> 2004). Por ejemplo, Yahya <i>et al.</i> (1993) observaron que PRD1 sobrevivi&oacute; periodos 7 a 10 veces m&aacute;s prolongados que MS2 en muestras de agua subterr&aacute;nea. En comparaci&oacute;n con MS2, Enriquez <i>et al.</i> (2003) encontraron una mayor sobrevivencia de PRD1 en suelos; mientras que Blanc y Nasser (1996) sugieren que PRD1 es un indicador m&aacute;s adecuado que MS2 para predecir la sobrevivencia de virus patog&eacute;nicos a temperatura ambiente.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f3.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f4.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f5.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f6"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f6.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1c2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados para pH, T, CE y OD se presentan en las <a href="#a1f7"><b>Figs. 7</b></a>, <a href="#a1f8"><b>8</b></a>, <a href="#a1f9"><b>9</b></a> y <a href="#a1f10"><b>10</b></a>, respectivamente. Para pH, su tendencia fue a incrementarse hacia la superficie del agua probablemente a consecuencia de una mayor actividad fotosint&eacute;tica de las algas presentes que consumieron el CO<sub>2</sub> modificando su equilibrio (Jenkis 1999) e incrementando el pH. Durante los estudios no se observ&oacute; alguna relaci&oacute;n entre la tasa de decaimiento con la CE u OD en cada uno de los sitios de muestreo. Sin embargo, comparado con los valores en la superficie, la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno y temperatura fueron menores en el fondo de la columna, probablemente, como consecuencia del efecto del viento, la estratificaci&oacute;n por temperatura, la baja capacidad de difusi&oacute;n del ox&iacute;geno en el agua, la capacidad fotosint&eacute;tica de las algas presentes y la actividad microbiol&oacute;gica en el fondo de la presa. Algo similar se observ&oacute; con la CE, aunque es valioso se&ntilde;alar que las curvas A y B (<a href="#a1f9"><b>Fig. 9</b></a>) corresponden al mismo periodo de monitoreo en el verano 2008, durante el cual se presentaron fuertes precipitaciones en la cuenca, resultando en una reducci&oacute;n de la CE, curva B. La mayor CE en el fondo de la presa puede atribuirse a una renovaci&oacute;n m&aacute;s r&aacute;pida del agua en la superficie de la columna debido al vertido del volumen almacenado por el vertedor de demas&iacute;as. Para los muestreos mensuales, los SST fluctuaron entre 45 y 80 mg/L ligeramente superior a los 75 mg/L de promedio mensual se&ntilde;alados como l&iacute;mite m&aacute;ximo para aguas recreativas, aunque inferior a los 125 mg/L de promedio diario, establecidos por la Norma Oficial Mexicana NOM&#45;001&#45;ECOL&#45;1996 (SEMARNAT 1996). Los niveles de turbidez se ubicaron entre 15 y 33 unidades nefelom&eacute;tricas durante los meses de muestreo del presente estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, las concentraciones de CT fluctuaron entre 75 y 335 UFC/100 mL mientras que las CF se ubicaron entre 25 y 125 UFC/100 mL de muestra. Estos valores est&aacute;n muy por debajo de los m&aacute;ximos permisibles, NOM&#45;003&#45;ECOL&#45;1997 (SEMARNAT 1997), para descargas de aguas residuales a aguas y bienes nacionales (1000 UFC/100 mL de promedio mensual para coliformes fecales &oacute; 2000 UFC/100 mL de promedio diario). Por lo que hasta el momento de llevar a cabo esta investigaci&oacute;n, la calidad microbio&#45;l&oacute;gica, con base en CT y CF, as&iacute; como f&iacute;sica, SST, de las aguas de la presa se encuentran en los niveles recomendados por la normatividad mexicana.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f7"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f7.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f8"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f8.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f9"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f9.jpg">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a1f10"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n3/a1f10.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En comparaci&oacute;n con MS2, los resultados del presente estudio sugieren que PRD1, al sobrevivir por m&aacute;s tiempo en el ambiente, es un indicador m&aacute;s adecuado para evaluar la sobrevivencia de virus ent&eacute;ricos en el agua de la presa "La Juventud". En comparaci&oacute;n con PRD1, MS2 podr&iacute;a indicar una tasa de decaimiento m&aacute;s alta que virus ent&eacute;ricos similares a PRD1 como adenovirus o rotavirus. Aparentemente, los pat&oacute;genos de efluentes residuales municipales podr&iacute;an sobrevivir por mayor tiempo durante el invierno que en otra &eacute;poca del a&ntilde;o, lo que significa un mayor riesgo para las personas que visitan la presa durante ese tiempo, en caso de una descarga de agua residual. Actualmente, el embalse cumple con las normas mexicanas para aguas de recreaci&oacute;n en SST y CF, sin embargo, el crecimiento urbano de la cabecera municipal de Mar&iacute;n, N.L., puede cambiar estas condiciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adams M.H. (1959). <i>Bacteriophage.</i> Interscience Publishers, Nueva York, EUA. 592 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248418&pid=S0188-4999201200030000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Balakireva L., Schoehn G., Thouvenin E. y Chroboczek J. (2003). Binding of adenoviruses capsid to dopalmitoyl phosphatidylcholine provides a novel pathway for virus entry. J. Virol. 77, 4858&#45;4866.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248420&pid=S0188-4999201200030000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Blanc R. y Nasser A. (1996). Effect of effluent quality and temperature on the persistence of viruses in soils. Water Sci. Technol. 33, 237&#45;242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248422&pid=S0188-4999201200030000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bosch A., Pint&oacute; R.M. y Abad F.X. (2006) Survival and transport of enteric viruses in the environment. En: Food Microbiology and Food Safety (S.M. Goyal, Ed.). Springer, EUA, pp.151&#45;187.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248424&pid=S0188-4999201200030000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brion G.M., O`Banion N.B. y Marchin G.L. (2004). Comparison of bacteriophages for use in iodine inactivation: batch and continuous flow studies. J. Water Health 2, 261&#45;266.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248426&pid=S0188-4999201200030000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Butler T. (1984). Diarrheal diseases caused by viruses: A review of mechanisms and prospects for prophylactic intervention. <i>PJMID,</i> 13, 65&#45;73. &#91;En l&iacute;nea&#93;: <a href="http://psmid.org.ph/vol13/vol13num2topic1.pdf" target="_blank">http://psmid.org.ph/vol13/vol13num2topipic1.pdf</a> (revisado: 15/01/2012).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248428&pid=S0188-4999201200030000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Campos P.C. (1993). Indicadores de contaminaci&oacute;n fecal en aguas. (En l&iacute;nea): <a href="http://tierra.rediris.es/hidrored/ebooks/ripda/contenido/capitulo20.html" target="_blank">http://tierra.rediris.es/hidrored/ebooks/ripda/contenido/capitulo20.htm</a>l (revisado: 06/02/09).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248430&pid=S0188-4999201200030000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clark B. y McKendrick M. (2004). A review of viral gastroenteritis. Curr. Opin. Infect. Dis. 17, 461&#45;469.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248432&pid=S0188-4999201200030000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Enriquez C., Alum A., Suarez&#45;Rey E.M., Choi C.Y., Oron G. y Gerba C.P. (2003). Bacteriophages MS2 and PRD1 in turfgrass by subsurface drip irrigation. J. Environ. Eng. 129, 852&#45;857.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248434&pid=S0188-4999201200030000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grabow W. (2001). Bacteriophages: update on application as models for viruses in water. Water S.A. 27, 251&#45;267</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248436&pid=S0188-4999201200030000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gundy P.M., Gerba C.P. y Pepper I.L. (2009). Survival of coronaviruses in water and wastewater. Food Environ. Virol. 1, 10&#45;14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248437&pid=S0188-4999201200030000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Harvey R.W. y Ryan J.N. (2004). Use of PRD1 bacteriophage in groundwater viral transport, inactivation, and attachment studies. Microb. Ecol. 49, 3&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248439&pid=S0188-4999201200030000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hurs C.J., Gerba C.P. y Cech I. (1980). Effects of environmental variables and soil characteristics on virus survival in soil. Appl. Environ. Microbiol. 40, 1067&#45;1079</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248441&pid=S0188-4999201200030000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">INIFAP (2009). Red Nacional de Estaciones Estatales Agroclimatol&oacute;gicas Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias, M&eacute;xico. &#91;En l&iacute;nea&#93;: <a href="http://clima.inifap.gob.mx" target="_blank">http://clima.inifap.gob.mx</a> (Revisado: 06/02/09).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248442&pid=S0188-4999201200030000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jenkis D. (1999). Qu&iacute;mica del agua. Limusa. M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248444&pid=S0188-4999201200030000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">John D.E. y Rose J.B. (2005). Review of factors affecting microbial survival in groundwater. Environ. Sci. Technol. 39, 7345&#45;7356</font>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248446&pid=S0188-4999201200030000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuzmanovic D.A., Elashvili I., Wick Ch., O'Conell C. y Krueger S. (2003). Bacteriophage MS2: molecular weight and spatial distribution of the protein and RNA components by small&#45;angle neutron scattering and virus counting. Structure 11, 1339&#45;1348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7248448&pid=S0188-4999201200030000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
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