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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta de crecimiento y tolerancia a metales pesados de Cyperus elegans y Echinochloa polystachya inoculadas con una rizobacteria aislada de un suelo contaminado con hidrocarburos derivados del petróleo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The benefic interactions between cultures of plants and bacteria have been demonstrated to be useful for the decrease of toxicity produced by heavy metals and nutritional deficiency. With this, the microbial communities have been applied as tools for bioremediation, particularly the plant growth promoting rhizobacteria (PGPR's). This study evaluated the growth response and tolerance to heavy metals of two swamp plant species: Cyperus elegans and Echinochloa polystachya, both inoculated with phosphate solubilizing rhizobacteria Bacillus sp. exposed to cadmium (Cd) and zinc (Zn). The growth response of both species was favored by the presence of the rhizobacteria without metals; although, the grown with both metals and inoculated with the rhizobactera metal tolerant did not show a significant promotion of their growth; this suggests that their response to the metals are related with the doses and the exposition time and to the intrinsic tolerance of the plant species to these metals. Even these results, the presence of the rhizobacteria maintained the growth of C. elegans seedlings exposed to the heavy metals assessment; this could be associated with a plant protecting effect that diminishes the metal toxicity. It is relevant to emphasize the research importance about the colonization by rhizobacteria not only at the spermosphere but also at the roots of the inoculated seedlings with the increase of the radical surface for the metals absorption and the protecting role of the rhizobacteria against the toxicity of metals, that allows the establishment of a better growth and development of plant species to the stabilization, vegetation recover and the remediation of contaminated soils with heavy metals.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Respuesta de crecimiento y tolerancia a metales pesados de <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i> inoculadas con una rizobacteria aislada de un suelo contaminado con hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Growth response and tolerance to heavy metals of <i>Cyperus elegans</i> and <i>Echinochloa polystachya</i> inoculated with a rhizobacteria isolated from soil polluted with petroleum derived hydrocarbons </b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Daniela LABRA&#150;CARD&Oacute;N<sup>1</sup>, Leonor Ang&eacute;lica GUERRERO&#150;Z&Uacute;&Ntilde;IGA<sup>3</sup>, A&iacute;da Ver&oacute;nica RODR&Iacute;GUEZ&#150;TOVAR<sup>2</sup>, Silvano MONTES&#150;VILLAF&Aacute;N<sup>1</sup>, Sandra P&Eacute;REZ&#150;JIM&Eacute;NEZ<sup>1</sup> y Ang&eacute;lica RODR&Iacute;GUEZ&#150;DORANTES<sup>1*</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Laboratorio Fisiolog&iacute;a Vegetal, Departamento de Bot&aacute;nica, Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas, IPN, Prol. Carpio y Plan de Ayala s/n. C.P.11340, M&eacute;xico, D.F. *Correo electr&oacute;nico: </i><a href="mailto:rodorantes@yahoo.com.mx">rodorantes@yahoo.com.mx</a>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup><i> Laboratorio Micolog&iacute;a M&eacute;dica, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas, I.P.N., Prol. Carpio y Plan de Ayala s/n. C.P.11340, M&eacute;xico, D.F.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Direcci&oacute;n de Seguridad y Medio Ambiente, Instituto Mexicano del Petr&oacute;leo, Eje Central L&aacute;zaro C&aacute;rdenas 152, C.P. 07730, M&eacute;xico, D.F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido agosto 2010    <br>   Aceptado septiembre 2011</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>RESUMEN</b></font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se ha demostrado que las interacciones ben&eacute;ficas entre cultivos de plantas y bacterias son &uacute;tiles en la disminuci&oacute;n de la toxicidad producida por metales, as&iacute; como en el aporte de nutrientes esenciales; por ello, las comunidades microbianas han sido empleadas para la biorremediaci&oacute;n, en particular las rizobacterias promotoras del crecimiento (PGPR's por sus siglas en ingl&eacute;s). Este estudio evalu&oacute; la respuesta del crecimiento y la tolerancia a metales pesados de dos especies de plantas de pantano: <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i>, inoculadas con una rizobacteria solubilizadora de fosfatos identificada como <i>Bacillus</i> sp. y expuestas a cadmio (Cd) y zinc (Zn). El crecimiento de ambas especies se favoreci&oacute; en presencia de la rizobacteria; sin embargo, las pl&aacute;ntulas crecidas con los metales e inoculadas con la rizobacteria, no mostraron diferencias significativas en las variables de crecimiento, lo que sugiere que su respuesta ante los metales est&aacute; relacionada tanto con la dosis como con el tiempo de exposici&oacute;n, as&iacute; como con la tolerancia intr&iacute;nseca de estas especies. No obstante esto, la presencia de la rizobacteria mantuvo el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> ante los metales pesados, lo que podr&iacute;a estar asociado con un efecto protector a las pl&aacute;ntulas con la disminuci&oacute;n de la toxicidad de ambos metales. Es importante enfatizar la importancia de la investigaci&oacute;n sobre la colonizaci&oacute;n de las rizobacterias, no solamente en la espermosfera, sino tambi&eacute;n en las ra&iacute;ces de las pl&aacute;ntulas inoculadas con el incremento de la superficie radical para la absorci&oacute;n de metales, as&iacute; como con el papel protector de las rizobacterias contra la toxicidad de metales en el suelo, lo que permitir&aacute; establecer un mejor crecimiento y desarrollo de especies vegetales para la estabilizaci&oacute;n, la revegetaci&oacute;n y la remediaci&oacute;n de suelos contaminados con metales pesados.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> metales pesados, rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal, <i>Cyperus</i>, <i>Echinochloa</i>.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The benefic interactions between cultures of plants and bacteria have been demonstrated to be useful for the decrease of toxicity produced by heavy metals and nutritional deficiency. With this, the microbial communities have been applied as tools for bioremediation, particularly the plant growth promoting rhizobacteria (PGPR's). This study evaluated the growth response and tolerance to heavy metals of two swamp plant species: <i>Cyperus elegans</i> and <i>Echinochloa polystachya</i>, both inoculated with phosphate solubilizing rhizobacteria <i>Bacillus</i> sp. exposed to cadmium (Cd) and zinc (Zn). The growth response of both species was favored by the presence of the rhizobacteria without metals; although, the grown with both metals and inoculated with the rhizobactera metal tolerant did not show a significant promotion of their growth; this suggests that their response to the metals are related with the doses and the exposition time and to the intrinsic tolerance of the plant species to these metals. Even these results, the presence of the rhizobacteria maintained the growth of <i>C. elegans</i> seedlings exposed to the heavy metals assessment; this could be associated with a plant protecting effect that diminishes the metal toxicity. It is relevant to emphasize the research importance about the colonization by rhizobacteria not only at the spermosphere but also at the roots of the inoculated seedlings with the increase of the radical surface for the metals absorption and the protecting role of the rhizobacteria against the toxicity of metals, that allows the establishment of a better growth and development of plant species to the stabilization, vegetation recover and the remediation of contaminated soils with heavy metals.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> heavy metals, plant growth promoting rhizobacteria, <i>Cyperus</i>, <i>Echinochloa</i>.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El suelo, el agua superficial y el agua subterr&aacute;nea pueden ser contaminados con compuestos peligrosos como consecuencia de actividades naturales (<i>e.g</i>. la erosi&oacute;n y filtraciones salinas) y de actividades humanas (<i>e.g</i>. industria, agricultura, tratamiento de aguas residuales, construcciones y la miner&iacute;a) (Arthur <i>et al</i>. 2005). Dentro de los compuestos peligrosos que son considerados como contaminantes de naturaleza inorg&aacute;nica se tiene a los metales pesados, nitratos, fosfatos y &aacute;cidos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los metales pesados como plomo (Pb), ars&eacute;nico (As), cadmio (Cd), cobre (Cu), zinc (Zn), n&iacute;quel (Ni) y mercurio (Hg), se adicionan en forma continua a los suelos a trav&eacute;s de actividades agr&iacute;colas, actividades industriales, incineraci&oacute;n y emisiones de los veh&iacute;culos (Khan 2005). Tanto el Cd como el Zn son elementos que poseen propiedades ambientales y geoqu&iacute;micas similares; donde el procesamiento y la liberaci&oacute;n subsecuente de Zn al ambiente se acompa&ntilde;a normalmente por Cd (Kabata&#150;Pendias y Pendias 1992). El Cd es considerado un metal pesado que se libera al ambiente como resultado de una gran variedad de actividades antr&oacute;picas. No obstante que no es un elemento esencial para las plantas, este metal se absorbe por las ra&iacute;ces y se transporta hacia las hojas en muchas especies. Por lo que altas concentraciones de &eacute;ste ocasionan toxicidad en las plantas por su alta movilidad (Arduini <i>et al</i>. 2006, Singh <i>et al</i>. 2006, Matusik <i>et al</i>. 2008, Li <i>et al</i>. 2009). Generalmente, causa da&ntilde;os en las hojas produciendo clorosis y enrollamiento de las mismas; as&iacute; como tambi&eacute;n la disminuci&oacute;n del crecimiento de las ra&iacute;ces y el brote (Milone <i>et al</i>. 2003, Xu <i>et al</i>. 2008, Tang <i>et al</i>. 2009).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Zn es considerado como un micronutriente esencial para el crecimiento de las plantas; ya que es un constituyente vital de varias enzimas metab&oacute;licas (Saravan <i>et al</i>. 2007), sin embargo tambi&eacute;n puede ser muy t&oacute;xico cuando &eacute;ste se presenta a una concentraci&oacute;n excesiva (K&uuml;pper <i>et al</i>. 2000, Clemens, 2006, Broadley <i>et al</i>. 2007). El Zn se adiciona a las plantas a trav&eacute;s de fertilizantes como ZnSO<sub>4</sub> que, en los suelos, puede transformarse a formas insolubles dependiendo de las condiciones ed&aacute;ficas de los mismos. Se menciona que la solubilizaci&oacute;n del Zn por microorganismos es un proceso de suma importancia para el aporte a las plantas de este micronutriente (Di Simine <i>et al</i>. 1998, Fasim <i>et al</i>. 2002).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un m&eacute;todo alternativo para la recuperaci&oacute;n de suelos contaminados es la biorremediaci&oacute;n que se define como la acci&oacute;n de microorganismos o de otros sistemas biol&oacute;gicos para la degradaci&oacute;n de agentes contaminantes del ambiente, con el uso de m&eacute;todos <i>in situ</i> y <i>ex situ</i> para eliminar la contaminaci&oacute;n de suelos (Kuiper <i>et al</i>. 2004). La riz&oacute;sfera se considera como una interfase importante entre el suelo y la planta, ya que desempe&ntilde;a un papel fundamental en el establecimiento de la biorremediaci&oacute;n de suelos contaminados. Entre los microorganismos rizosf&eacute;ricos que est&aacute;n involucrados en las interacciones con suelos contaminados con metales pesados, las bacterias rizosf&eacute;ricas promotoras del crecimiento vegetal denominadas PGPR (por sus siglas en ingl&eacute;s, Plant Growth Promoting Rhizobacteria, t&eacute;rmino establecido por Kloepper (1989)), tienen una atenci&oacute;n especial (Ma <i>et al</i>. 2011). Se consideran microorganismos que migran del suelo a la rizosfera de las plantas y colonizan sus ra&iacute;ces (Kloepper y Schroth 1978); act&uacute;an como agentes protectores contra diversos pat&oacute;genos, son consideradas como fertilizadores del suelo por su capacidad para movilizar nutrientes, producen fitohormonas que modifican la fisiolog&iacute;a de las plantas y tambi&eacute;n participan en el establecimiento de procesos simbi&oacute;ticos que son de extrema importancia ecol&oacute;gica. Dentro de las PGPR&acute;s existen bacterias pertenecientes a un gran n&uacute;mero de g&eacute;neros bacterianos como <i>Azotobacter, Acetobacter, Azospirillum, Burkholderia, Pseudomonas</i> y <i>Bacillus</i> (Tenuta 2003). El manejo biol&oacute;gico que implica el uso de plantas y de su microbiota rizosf&eacute;rica asociada, ha generado mucho inter&eacute;s para remediar y secuestrar sustancias peligrosas del ambiente (Zaidi <i>et al</i>. 2006) y se ha utilizado como una herramienta m&aacute;s para tratar sitios contaminados, en particular, con metales pesados (Kuiper <i>et al</i>. 2004, Wu <i>et al</i>. 2006) al favorecer el desarrollo de las plantas crecidas en presencia de metales como Ni, Pb y Zn, al generar un crecimiento radical mayor durante las primeras etapas de su crecimiento (Glick <i>et al</i>. 1998).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La promoci&oacute;n del crecimiento radical es uno de los marcadores principales para medir los efectos ben&eacute;ficos de las PGPR (Glick <i>et al</i>. 1995); ya que las fitohormonas que estimulan el crecimiento de las plantas y que se producen por estas rizobacterias dentro de la zona radical, incrementan la densidad y la longitud de los pelos radicales. El establecimiento r&aacute;pido de las ra&iacute;ces, sea por elongaci&oacute;n de las ra&iacute;ces primarias o por la proliferaci&oacute;n de ra&iacute;ces laterales y adventicias, es ventajoso para las pl&aacute;ntulas conforme incrementan su habilidad de anclaje al suelo, as&iacute; como el incremento en la superficie de absorci&oacute;n de agua y nutrientes de su ambiente, lo que potencia su capacidad de sobrevivencia (Volkmar y Bremer 1998, Hariprasad <i>et al</i>. 2009). Las asociaciones entre plantas y microorganismos tolerantes a metales pesados merecen una atenci&oacute;n particular; ya que &eacute;stos poseen el potencial para bioacumular metales de ambientes contaminados o favorecen su movilizaci&oacute;n e inmovilizaci&oacute;n, que en consecuencia incrementan la absorci&oacute;n de &eacute;stos y favorecen el crecimiento de las plantas, lo que ayuda a la limpieza de suelos con metales pesados (Singh <i>et al</i>. 2007, Glick 2010, Ma <i>et al</i>. 2011). Este estudio evalu&oacute; la respuesta del crecimiento y de la tolerancia a metales pesados de dos especies vegetales de pantano: <i>Cyperus elegans</i> L. y <i>Echinochloa polystachya</i> H.B.K. inoculadas con una rizobacteria solubilizadora de fosfato identificada como <i>Bacillus</i> sp., las pl&aacute;ntulas estuvieron expuestas a Cd y Zn en sistemas hidrop&oacute;nicos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Manejo e identificaci&oacute;n de la rizobacteria solubilizadora de fosfatos de un suelo contaminado con hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa bacteriana empleada fue aislada de una zona de un suelo contaminado con hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo, cuya concentraci&oacute;n de hidrocarburos de fracci&oacute;n ligera (HCFL) es de 90 ppm, de hidrocarburos de fracci&oacute;n media (HCFM) de 100 ppm y de hidrocarburos de fracci&oacute;n pesada (HCFP) de 450 ppm. La rizobacteria aislada present&oacute; la propiedad de solubilizar fosfatos <i>in vitro</i> (datos no mostrados) y su identificaci&oacute;n por morfolog&iacute;a macrosc&oacute;pica de los aislados bacterianos se realiz&oacute; considerando aspectos convencionales como: morfolog&iacute;a bacteriana, afinidad tintorial y arreglo celular, para lo cual se us&oacute; la t&eacute;cnica de tinci&oacute;n de Gram.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la identificaci&oacute;n molecular de la rizobacteria seleccionada, se llev&oacute; a cabo la amplificaci&oacute;n del gen completo que codifica para el fragmento 16S rDNA, cuya caracter&iacute;stica principal es el alto nivel de conservaci&oacute;n, por lo que se ha utilizado como un marcador molecular efectivo para la identificaci&oacute;n y clasificaci&oacute;n microbiana usando herramientas moleculares y bioinform&aacute;ticas. En este caso, se emplearon los iniciadores universales fD1 y rD1, que fueron dise&ntilde;ados por Weisburg <i>et al</i>. (1991) para la amplificaci&oacute;n completa del gen de aproximadamente 1500 pb. Se obtuvo ADN gen&oacute;mico de cada aislado bacteriano usando el m&eacute;todo descrito por Allers y Lichten (2000) y la amplificaci&oacute;n del marcador molecular 16S rDNA con la siguiente mezcla de reacci&oacute;n: 50 ng de ADN gen&oacute;mico, 200 mM de dNTPs, 3 mM de Mg<sup>++</sup>, 50 pmol de cada iniciador y 2.5 U de la enzima Taq polimerasa (Invitrogene, CA) en un volumen final de 100 &micro;L. Dicha mezcla de reacci&oacute;n se someti&oacute; a las siguientes condiciones de amplificaci&oacute;n: una desnaturalizaci&oacute;n inicial de 5 minutos a 95 &ordm;C, seguido de 30 ciclos a 95 &ordm;C por 2 minutos, 42 &ordm;C por 40 segundos y 72 &ordm;C por 4 minutos; finalmente, un ciclo de polimerizaci&oacute;n de 72 &ordm;C por 20 minutos. Los productos de PCR fueron separados por electroforesis en geles de agarosa al 1 % y te&ntilde;idos con bromuro de etidio; estos productos se purificaron y se obtuvo la secuencia de nucle&oacute;tidos (FES&#150;Iztacala, UNAM). Las secuencias resultantes, se compararon con las secuencias reportadas en el banco de genes disponible de la NCBI (National Center for Biotechnology Information), utilizando la herramienta BLAST con la finalidad de conocer la similitud con otras secuencias ya reportadas y tener, entonces, una identificaci&oacute;n de la cepa bacteriana.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal y la determinaci&oacute;n de la tolerancia a metales pesados de <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El material vegetal se obtuvo a partir de la limpieza y selecci&oacute;n de semillas de <i>Cyperus elegans</i> L. (Cyperaceae) y <i>Echinochloa polystachya</i> H.B.K. (Poaceae), provenientes de una de las zonas contaminadas del Pantano Santa Alejandrina situado en las inmediaciones de la refiner&iacute;a L&aacute;zaro C&aacute;rdenas del R&iacute;o, en Minatitl&aacute;n, Veracruz, ubicada dentro de la planicie costera del sureste de M&eacute;xico (N 17&ordm; 58&prime; 12.7" y W 94&ordm; 30&prime; 52.2") y colectadas en &eacute;poca de verano y ambas especies en etapa de floraci&oacute;n. Para la evaluaci&oacute;n de la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal de estas especies se establecieron los cultivos hidrop&oacute;nicos en frascos de vidrio con tapas magenta (Sigma, Aldrich) usando 25 mL de medio mineral que conten&iacute;an las siguientes sales: 0.20M NH<sub>4</sub>H<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>, 0.50M NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub>, 1.15M Ca(NO<sub>3</sub>)<sub>2</sub>, 0.26M CaCl<sub>2</sub>, 0.20M MgCl<sub>2</sub>&#903;6H<sub>2</sub>O, 0.20M Mg(NO<sub>3</sub>)<sub>2</sub>&#903;6H<sub>2</sub>O, 0.40M MgSO<sub>4</sub> 7H<sub>2</sub>O, 0.20M KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>, 1.20M KNO<sub>3</sub>, 0.50M K<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>, 0.040M FeCl<sub>3</sub>&#903;6H<sub>2</sub>O, 1.2 &times; 10&#150;2M H<sub>3</sub>BO<sub>3</sub>, 1.2 &times; 10&#150;4M CuCl<sub>2</sub>&#903;H<sub>2</sub>O, 2.3 &times; 10&#150;3M ZnCl<sub>2</sub>, 4.4 &times; 10&#150;4M MnCl<sub>2</sub>&#903;4H<sub>2</sub>O, 6 &times; 10&#150;6M Na<sub>2</sub>MoO<sub>4</sub>&#903;H<sub>2</sub>O, EDTA y FeSO<sub>4</sub>&#903;7H<sub>2</sub>O, con un pH= 6, con la adici&oacute;n de agar bacteriol&oacute;gico al 6 % (medio mineral blando).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una colonia del aislado bacteriano (rizobacteria XIII) se resuspendi&oacute; en 5 mL de agua destilada est&eacute;ril para obtener un in&oacute;culo de 3.5 &times; 10<sup>7</sup> UFC/mL, con esta suspensi&oacute;n se inocularon semillas por separado de <i>C. elegans</i> y de <i>E. polystachya</i>, previamente desinfectadas con 10 mL de alcohol al 70 % durante 3 minutos y con 10 mL de hipoclorito de sodio al 10 % durante 5 minutos, enjuagando cinco veces con agua destilada est&eacute;ril. Las semillas de ambas especies se dejaron embebidas por 30 minutos en la suspensi&oacute;n bacteriana preparada. Tambi&eacute;n se embebieron semillas de ambas especies (previamente desinfectadas) en agua destilada est&eacute;ril por 30 minutos, antes de colocarlas sobre la superficie del medio mineral blando.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; tanto la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal por <i>Bacillus</i> sp. en los experimentos como tambi&eacute;n el indicio de la tolerancia que confiri&oacute; este aislado al incrementar el crecimiento vegetal bajo la presencia de los metales pesados seleccionados: Cd (3CdSO4&bull;8H2O: 0.01, 0.05 y 0.1 mM) y Zn (ZnCl2: 3, 4 y 5 mM), con experimentos con y sin la adici&oacute;n de los contaminantes. La siembra de las semillas en el medio mineral blando y con los tratamientos, se realiz&oacute; bajo condiciones de esterilidad; los cultivos con el material seminal se mantuvieron en un cuarto de incubaci&oacute;n bajo condiciones controladas de temperatura (+/&#150;36 &ordm;C) y fotoper&iacute;odo (12:12), por 45 d&iacute;as. El n&uacute;mero de semillas por experimento fue de 60 y los ensayos se realizaron por triplicado.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez concluido el tiempo de incubaci&oacute;n de los cultivos, se extrajeron las pl&aacute;ntulas obtenidas de cada experimento para la medici&oacute;n de la longitud foliar y radical tanto de las plantas inoculadas como las plantas sin inocular y con metales pesados. Los resultados obtenidos se consideraron para la determinaci&oacute;n del &iacute;ndice de tolerancia (IT) (Wilkins 1978, Burd <i>et al</i>. 1998), por la expresi&oacute;n: IT = LR<sub>m</sub> / LR<sub>c</sub>, donde: LRm es la longitud radical de las pl&aacute;ntulas que crecieron en presencia del metal espec&iacute;fico adicionado y LRc es la longitud radical de las pl&aacute;ntulas crecidas en ausencia del metal, lo mismo con la longitud foliar. Se consideraron tambi&eacute;n los experimentos de ambas especies con y sin el in&oacute;culo bacteriano. Todos los valores de IT se multiplicaron por 100 para obtener los porcentajes de crecimiento. A todos los resultados obtenidos se les aplic&oacute; el an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y laprueba de Tukey&#150;Kramer de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple, empleando el paquete estad&iacute;stico GraphPad InStat, V2.03 (Aceves 1993).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n e identificaci&oacute;n de la rizobacteria solubilizadora de fosfato aislada de un suelo contaminado con hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De 23 aislados bacterianos que se obtuvieron del suelo rizosf&eacute;rico contaminado con hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo se seleccion&oacute; a la rizobacteria XIII que es una bacteria solubilizadora de fosfato. La morfolog&iacute;a microsc&oacute;pica de la rizobacteria fue la de un bacilo corto Gram positivo esporulado. De los resultados de su an&aacute;lisis molecular, la b&uacute;squeda y alineamiento de las secuencias amplificadas del gen 16S rDNA con las secuencias incluidas en el banco de genes, se obtuvo como resultado un alto porcentaje de similitud (89 %) con el g&eacute;nero <i>Bacillus</i> sp. Para la asignaci&oacute;n taxon&oacute;mica al nivel de especie, con base en la comparaci&oacute;n de secuencias de este gen, se debe guardar una similitud mayor al 97.5 %; mientras que para la identificaci&oacute;n a nivel de g&eacute;nero se requiere del 85 hasta el 95 % con la mejor secuencia relacionada (Rossello&#150;Mora y Amman 2001). En este caso, las caracter&iacute;sticas de la morfolog&iacute;a microsc&oacute;pica y el comportamiento Gram, tambi&eacute;n lo corroboraron.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Promoci&oacute;n del crecimiento de <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i> con la inoculaci&oacute;n de la rizobacteria</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de las interacciones entre plantas y microorganismos rizosf&eacute;ricos ben&eacute;ficos ha mostrado que &eacute;stos incrementan la producci&oacute;n de biomasa y la tolerancia de las plantas a metales pesados, dando lugar a considerarlos como componentes importantes de las tecnolog&iacute;as de fitorremediaci&oacute;n (Wenzel <i>et al</i>. 1999, Glick 2003). Las rizobacterias promotoras del crecimiento de vida libre, as&iacute; como las simbiontes pueden mejorar la nutrici&oacute;n de las plantas y el crecimiento, la competitividad vegetal y las respuestas a los factores de estr&eacute;s externos (Burd <i>et al</i>. 2000, Egamberdiyeva y Hoflish 2004, Mantelin y Touraine 2004).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La rizobacteria XIII, identificada como <i>Bacillus</i> sp. que se emple&oacute; para la inoculaci&oacute;n de semillas de <i>C. elegans</i> y <i>E. polystachya</i> promovi&oacute; el crecimiento tanto radical como foliar de las plantas. En particular, la promoci&oacute;n del crecimiento radical en <i>C. elegans</i> (633 % &plusmn; 628.8) comparada con la promoci&oacute;n radical de <i>E. polystachya</i> (95.4 % &plusmn; 89.6) y la promoci&oacute;n del crecimiento foliar en las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> (166.2 % &plusmn; 115.3 ) y de <i>E. polystachya</i> (116 % &plusmn; 100.4), en ambos casos, comparando con el crecimiento de las pl&aacute;ntulas testigo sin inocular. Esta respuesta evidenci&oacute; la relaci&oacute;n sin&eacute;rgica entre esta bacteria y las especies vegetales consideradas en estos bioensayos. Es importante mencionar que dentro de los mecanismos involucrados en la interacci&oacute;n de plantas y microorganismos, la colonizaci&oacute;n exitosa de una PGPR como inoculante es un requerimiento para promover el crecimiento vegetal (Compant <i>et al</i>. 2010). Esta colonizaci&oacute;n puede ocurrir sobre la superficie completa de algunas c&eacute;lulas rizod&eacute;rmicas y las bacterias pueden establecerse como microcolonias o biopel&iacute;culas (Benizri <i>et al</i>. 2001). En este caso, la colonizaci&oacute;n en la espermosfera de las semillas de estas dos especies result&oacute; un primer evento importante en la promoci&oacute;n del crecimiento de las pl&aacute;ntulas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto causado por la rizobacteria <i>Bacillus</i> sp. sobre el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i> expuestas a Cd</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respuesta de ambas especies ante la presencia de Cd, en general mostr&oacute; que son poco tolerantes a las concentraciones de Cd empleadas; el efecto fue inhibitorio a medida que se increment&oacute; la concentraci&oacute;n del metal con respecto a las pl&aacute;ntulas testigo (<a href="/img/revistas/rica/v28n1/a1f1.jpg" target="_blank">Figs. 1a y 1b</a>) y, en particular, la respuesta de las pl&aacute;ntulas de <i>E. polystachya</i> present&oacute; un efecto inhibitorio total en la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de Cd por lo que, no se reporta respuesta en este ensayo. Sin embargo, para las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i>, la concentraci&oacute;n de 0.01 mM de Cd promovi&oacute; el crecimiento radical en un 289 % (&plusmn; 254) m&aacute;s que las pl&aacute;ntulas testigo, lo que sugiere que este metal pudiera promover el crecimiento de las pl&aacute;ntulas, comportamiento muy similar al obtenido por Yang <i>et al</i>. (2004) con plantas de <i>Sedum alfredii</i> Hance (Crassulaceae) y <i>Arabis paniculata</i> Franchet (Brassicaceae) (Tang <i>et al</i>. 2009), donde se observ&oacute; un efecto estimulante al incrementar la biomasa de estas especies expuestas a Cd. Estos hechos sugieren que ciertos metales sin importar si son ben&eacute;ficos o t&oacute;xicos, pueden en cierta medida ser estimuladores del crecimiento.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se han desarrollado algunos estudios que implican el an&aacute;lisis del efecto de las PGPR tolerantes a metales sobre el crecimiento de pl&aacute;ntulas en presencia de metales pesados; dentro de ellos, la aplicaci&oacute;n del bioensayo de la medici&oacute;n de la promoci&oacute;n de la elongaci&oacute;n radical, conocido como PREP (Plant Root Elongation Promotion), basado en la evaluaci&oacute;n de la actividad promotora del crecimiento radical de las pl&aacute;ntulas como indicador del efecto de acci&oacute;n sin&eacute;rgica entre la rizobacteria y la pl&aacute;ntula (Dell' Amico <i>et al</i>. 2008).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad PREP de <i>Bacillus</i> sp. sobre el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> en presencia de Cd, mostr&oacute; que este aislado es tolerante a las concentraciones de Cd probadas y favoreci&oacute; su crecimiento comparado con las pl&aacute;ntulas de <i>E. polystachya</i> (<a href="/img/revistas/rica/v28n1/a1f1.jpg" target="_blank">Figs. 1a y 1b</a>). No se mostr&oacute; una diferencia significativa para el crecimiento radical (ns, p&gt;0.05) pero s&iacute; con el crecimiento foliar de las plantas inoculadas con y sin Cd (*** = p&lt; 0.001, ** = p&lt; 0.01, * = p&lt; 0.05); caso que podr&iacute;a ser comparable con el reportado en la literatura donde algunas bacterias promueven el crecimiento de Brassica juncea (L.) Coss y <i>Brassica napus</i> L. (Brassicaceae) ante la presencia de este metal (Belimov <i>et al</i>. 2005, Sheng y Xia 2006). Una alta concentraci&oacute;n elevada de Cd para las plantas puede producir un efecto severo sobre el crecimiento radical y como consecuencia, dar como resultado el da&ntilde;o en la ra&iacute;z, la reducci&oacute;n de los pesos fresco y seco de la planta; as&iacute; como tambi&eacute;n la reducci&oacute;n en la absorci&oacute;n de agua y nutrientes (Singh y Tewari 2003). Para estas especies, la concentraci&oacute;n empleada de Cd result&oacute; t&oacute;xica, no obstante que es tolerable para la rizobacteria empleada (resultados no mostrados aqu&iacute;).</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto causado por la rizobacteria <i>Bacillus</i> sp. sobre el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i> expuestas a Zn</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respuesta general de <i>C. elegans</i> y de <i>E. polystachya</i>, ante la presencia de Zn, mostr&oacute; que tambi&eacute;n en este caso, al igual que con el Cd, el crecimiento tanto radical como foliar, en ambas especies, disminuy&oacute; a medida que se increment&oacute; la concentraci&oacute;n de Zn en los bioensayos (<a href="/img/revistas/rica/v28n1/a1f2.jpg" target="_blank">Figs. 2a y 2b</a>). Es decir, estas especies vegetales tampoco toleran estas concentraciones de Zn en el medio, lo que evidencia que un exceso del micronutriente ocasiona da&ntilde;os en el desarrollo de &eacute;stas; como la apariencia de clorosis y marchitamiento. Aqu&iacute;, el efecto de la presencia de Zn en el cultivo hidrop&oacute;nico a la concentraci&oacute;n de 3 mM, potenci&oacute; ligeramente el desarrollo de las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> comparadas con las pl&aacute;ntulas testigo, al igual que en el caso del Cd. Esta respuesta, aunque a la concentraci&oacute;n m&aacute;s baja de exposici&oacute;n, result&oacute; muy similar en su conjunto a la que presentaron plantas de <i>A. paniculata</i> Franchet expuestas a los dos metales (Tang <i>et al</i>. 2009). Se menciona que este fen&oacute;meno es similar al proceso denominado hormesis que es un t&eacute;rmino com&uacute;nmente utilizado en la toxicolog&iacute;a para referirse a los efectos estimulantes a bajos niveles de exposici&oacute;n ante agentes t&oacute;xicos (Forbs 2000, Roosens <i>et al</i>. 2003). Tang <i>et al</i>. (2009) sugieren que la l&iacute;nea de uni&oacute;n y diferencia entre la hormesis y el efecto estimulador del crecimiento inducido por la presencia de Cd y Zn en su estudio con <i>A. paniculata</i> Franchet, al igual que la presente investigaci&oacute;n, no est&aacute; del todo completamente claro, este es el mismo caso observado de la respuesta positiva de exposici&oacute;n a estos dos metales en las ra&iacute;ces de <i>Thlaspi caerulescens</i> L. (Brassicaceae) en un suelo heterog&eacute;neo (Schwartz <i>et al</i>. 1999, Whiting <i>et al</i>. 2000, Schwartz <i>et al</i>. 2003), donde la concentraci&oacute;n de Cd dio una respuesta similar a la exposici&oacute;n con Zn.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de la rizobacteria <i>Bacillus</i> sp. no caus&oacute; incremento en el desarrollo particular de las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> expuestas a Zn, ya que el crecimiento radical y foliar, en general, no es diferente al obtenido por las pl&aacute;ntulas expuestas a Zn a las concentraciones probadas de 3, 4 y 5 mM, concentraciones a las que la rizobacteria es tolerante; sin embargo, se present&oacute; una diferencia significativa al compararla con las pl&aacute;ntulas inoculadas y los tratamientos con los metales (* = p&lt; 0.05, ** =p&lt; 0.01). Al igual que con la presencia de Cd, el Zn mantuvo el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i>, atenuando el efecto de las concentraciones de ambos metales a las cuales fueron expuestas (<a href="/img/revistas/rica/v28n1/a1f2.jpg" target="_blank">Figs. 2a y 2b</a>). Al igual que para las pl&aacute;ntulas de <i>E. polystachya</i> inoculadas con esta rizobacteria, su efecto de la promoci&oacute;n del crecimiento en estas dos especies vegetales en las concentraciones m&aacute;s bajas de los metales pesados probados, pudo estar relacionado con la s&iacute;ntesis de fitohormonas y la biodisponibilidad de minerales en el medio de cultivo en interacci&oacute;n con las plantas (Jacobson <i>et al</i>. 1994, Glick <i>et al</i>. 1998, Gupta <i>et al</i>. 2002).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal y la determinaci&oacute;n de la tolerancia a metales pesados de <i>Cyperus elegans</i> y <i>Echinochloa polystachya</i> en presencia de la rizobacteria <i>Bacillus</i> sp. XIII</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, el efecto medido de la presencia de ambos metales sobre el crecimiento de estas dos especies con referencia a las pl&aacute;ntulas testigo sin metales y sin inocular, se evalu&oacute; en t&eacute;rminos del porcentaje del crecimiento obtenido, donde un crecimiento mayor del 100 % hace referencia al incremento de ellas en m&aacute;s del 100 % del testigo comparado. En ambas especies, la tolerancia a la presencia de los metales, tambi&eacute;n fue determinada en funci&oacute;n de su crecimiento, donde para el caso del Cd, las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> presentaron un incremento en el desarrollo radical (con 289 y 175 %, respectivamente) a las concentraciones de 0.01 y 0.05 mM (<a href="#c1">Cuadro I</a>).</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n1/a1c1.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n con la rizobacteria promovi&oacute; el crecimiento radical de <i>C. elegans</i> en 139 % m&aacute;s que el testigo, con la exposici&oacute;n a la concentraci&oacute;n de Cd de 0.01 mM; disminuyendo &eacute;ste a las otras dos concentraciones del metal. En las pl&aacute;ntulas inoculadas el crecimiento foliar fue menor al testigo, lo mismo para <i>E. polystachya</i> (menor al 60 %).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la exposici&oacute;n de las pl&aacute;ntulas al Zn, tambi&eacute;n se obtuvo un porcentaje de desarrollo radical mayor al testigo a la concentraci&oacute;n de 3 mM, para <i>C. elegans</i> de 154 % manteniendo su crecimiento a las concentraciones de 4 y 5 mM en un 23 % en promedio, tanto foliar como radical. Lo que no ocurri&oacute; con <i>E. polystachya</i>, que tuvo porcentajes muy bajos de crecimiento de las pl&aacute;ntulas (menores al 17 %) (<a href="#c1">Cuadros I</a> y <a href="#c2">II</a>).</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28n1/a1c2.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En ambos casos, la inoculaci&oacute;n con la rizobacteria <i>Bacillus</i> sp. promovi&oacute; una respuesta del crecimiento en ambas especies, en particular notable en las pl&aacute;ntulas de <i>C. elegans</i> sin la adici&oacute;n del metal, con la misma respuesta de promoci&oacute;n en la concentraci&oacute;n mas baja de Cd y Zn. As&iacute; mismo, las pl&aacute;ntulas mantuvieron su crecimiento en las otras dos concentraciones de ambos metales, con lo que esta especie result&oacute; m&aacute;s tolerante al efecto t&oacute;xico de estos metales que <i>E. polystachya</i> con un crecimiento menor.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dell' Amico <i>et al</i>. (2008) mencionan que entre m&aacute;s propiedades posee una PGPR (producci&oacute;n de sider&oacute;foros, solubilizaci&oacute;n de fosfato y producci&oacute;n de fitohormonas), &eacute;stas la har&aacute;n un inoculante recomendable; no obstante que no todas sus propiedades se expresen en un tiempo o etapa determinada del crecimiento vegetal, lo que var&iacute;a tambi&eacute;n dependiendo de la cepa bacteriana y del patr&oacute;n de crecimiento a evaluar (Belimov <i>et al</i>. 2001, 2005). En este estudio, el manejo del bioensayo de la promoci&oacute;n de la elongaci&oacute;n radical (PRP) evidenci&oacute; que en la germinaci&oacute;n y el establecimiento de las pl&aacute;ntulas, la relaci&oacute;n sin&eacute;rgica entre la rizobacteria y las pl&aacute;ntulas fu&eacute; exitosa dado su efecto colonizador y promontorio del crecimiento vegetal.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas de <i>Cyperus elegans</i> y de <i>Echinochloa polystachya</i> crecidas en presencia de los metales Cd y Zn e inoculadas con la rizobacteria <i>Bacillus</i> sp. XIII y tolerante a estos metales, no mostraron una promoci&oacute;n significativa de su crecimiento. Esto sugiere que la respuesta ante la presencia de los metales est&aacute; relacionada estrechamente tanto con la dosis como con el tiempo de exposici&oacute;n de las plantas a los contaminantes, no obstante que la presencia de las rizobacteria mantuvo el crecimiento de las plantas de <i>C. elegans</i> ante los metales pesados probados. Esto podr&iacute;a estar asociado con un efecto protector a la planta con la disminuci&oacute;n de la toxicidad de ambos metales. Es importante enfatizar la importancia de la investigaci&oacute;n sobre la colonizaci&oacute;n de las rizobacterias, no solamente en la espermosfera, sino tambi&eacute;n en las ra&iacute;ces de las plantas inoculadas con el incremento de la superficie radical para la absorci&oacute;n de metales, as&iacute; como en el papel protector de las rizsobacterias contra la toxicidad de metales, lo que permite establecer un mejor crecimiento y desarrollo de especies vegetales para la estabilizaci&oacute;n, la revegetaci&oacute;n y la remediaci&oacute;n de suelos contaminados con metales pesados.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece a la Secretar&iacute;a de Investigaci&oacute;n y Posgrado del IPN, el apoyo financiero otorgado al Proyecto SIP: 20080061, para la realizaci&oacute;n de este trabajo.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aceves J. (1993). GraphPad Software. GraphPad InStat, V2.03.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208587&pid=S0188-4999201200010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allers T. y Linchen M. (2000). A method for preparing genomic DNA that restrains branch migration of Holiday junctions. Nucleic Acids Res. 15, 28&#150;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208589&pid=S0188-4999201200010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arduini I., Ercoli I., Mariotti M. y Masoni A. (2006). Response of Miscanthus to toxic cadmium applications during the period of maximum growth. Environ. Exp. Bot. 55, 29&#150;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208591&pid=S0188-4999201200010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arthur E.L., Rice P.J., Rice P.J., Anderson T.A., Baladi S.M., Henderson K.L.D. y Coats J.R. (2005). Phytoremediation&#150;An Overview. Crit. Rev. Plant Sci. 24, 109&#150;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208593&pid=S0188-4999201200010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Belimov A.A., Safronova V.I., Sergeyeva T.A., Egorova T.N., Matveyeva V.A., Tsyganov V.E., Borisov A.Y. y Tikhonovich I.A. (2001). Characterization of plant growth&#150;promoting rhizobacteria isolated from polluted soils and containing 1&#150;aminocyclopropane&#150;1&#150; carboxylate deaminase. Can. J. Microbiol. 47, 642&#150;652.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208595&pid=S0188-4999201200010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Belimov A.A., Hontzeas N., Safronova V.I., Demchinskaya S.V., Piluzza G., Bullitta S. y Glick B.R. (2005). Cadmium&#150;tolerant plant growth&#150;promoting bacteria associated with the roots of Indian mustard (Brassica juncea L. Czern.). Soil Biol. Biochem. 37, 241&#150;250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208597&pid=S0188-4999201200010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Benizri E., Baudoin E. y Guckert A. (2001). Root colonization by inoculated plant growth rhizobacteria. Biocontrol Sci. Techn. 11, 557&#150;574.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208599&pid=S0188-4999201200010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Broadley M.R., White P.J., Hammond J.P., Zelko I. y Lux A. (2007). Zinc in plants. New Phytol. 173, 677&#150;702.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208601&pid=S0188-4999201200010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burd G.I., Dixon D.G. y Glick B.R. (1998). A plant growth&#150;promoting bacterium that decreases nickel toxicity in seedlings. Appl. Environ. Microbiol. 64, 3663&#150;3668.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208603&pid=S0188-4999201200010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burd G.I., Dixon G.D. y Glick B.R. (2000). Plant growth promoting bacteria that decrease heavy metal toxicity in plants. Can. J. Microbiol. 46, 237&#150;245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208605&pid=S0188-4999201200010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clemens S. (2006). Toxic metal accumulation, responses to exposure and mechanisms of tolerance in plants. Biochimie 88, 1707&#150;1719.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208607&pid=S0188-4999201200010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Compant S., Cl&eacute;ment C. y Sessitsch A. (2010). Plant growth&#150;promoting bacteria in the rhizo&#150; and endosphere of plants: Their role, colonization, mechanisms involved and prospects for utilization. Soil Biol. Biochem. 42, 669&#150;678</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208609&pid=S0188-4999201200010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dell'Amico E., Cavalca L. y Andreoni V. (2008). Improvement of <i>Brassica napus</i> growth under cadmium stress by cadmium&#150;resistant rhizobacteria. Soil Biol. Biochem. 40, 74&#150;84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208610&pid=S0188-4999201200010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Di Simine C.D., Sayer J.A. y Gadd G.M. (1998). Solubilization of zinc phosphate by a strain of Pseudomonas fluorescens isolated from a forest soil. Biol. Fertil. Soils. 28, 87&#150;94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208612&pid=S0188-4999201200010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Egamberdiyeva D. y Hoflich G. (2004). Effect of plant growth&#150;promoting bacteria on growth and nutrient uptake of cotton and pea in a semi&#150;arid region of Uzbekistan. J. Arid Environ. 56, 293&#150;301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208614&pid=S0188-4999201200010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fasim F., Ahmed H., Parsons R. y Gadd G.M. (2002). Solubilization of zinc salts by a bacterium isolated from the air environment of a tannery. FEMS Microbiol. Lett. 213, 1&#150;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208616&pid=S0188-4999201200010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Forbs V.E. (2000). Is hormesis an evolutionary expectation? Funct. Ecol. 14, 12&#150;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208618&pid=S0188-4999201200010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glick B.R., Karaturovic D.M. y Newell P.C. (1995). A novel procedure for rapid isolation of plant growth promoting pseudomonads. Can. J. Microbiol. 41, 533&#150;536.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208620&pid=S0188-4999201200010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glick B.R., Penrose D.M. y Li J. (1998). A model for the lowering of plant ethylene concentrations by plant growth&#150;promoting bacteria. J. Theor. Biol. 190, 63&#150;68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208622&pid=S0188-4999201200010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glick B.R. (2003). Phytoremediation: synergistic use of plants and bacteria to clean up the environment. Biotechnol. Adv. 21, 383&#150;393.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208624&pid=S0188-4999201200010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glick B.R. (2010). Using soil bacteria to facilitate phytoremediation. Biotechnol. Adv. 28, 367&#150;74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208626&pid=S0188-4999201200010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gupta C.P., Dubey R.C. y Maheshwari D.K. (2002). Plant growth enhancement and suppression of Macrophomina phaseolina causing charcoal rot of peanut by fluorescent Pseudomonas. Biol. Fert. Soils 35, 399&#150;405.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208628&pid=S0188-4999201200010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hariprasad P., Navya H.M.,Chandranayaka M. y Niranjana S.R. (2009). Advantage of using PSIRB over PSRB and IRB to improve plant health of tomato. Biol. Control. 50, 307&#150;316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208630&pid=S0188-4999201200010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jacobson C.B., Pasternak J.J. y Glick B.R. (1994). Partial purification and characterization of ACC deaminase from the plant growth&#150;promoting rhizobacterium Pseudomonas putida GR12&#150;2. Can. J. Microbiol. 40, 1019&#150;1025.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208632&pid=S0188-4999201200010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kabata&#150;Pendias A. y Pendias H, (1992). Trace elements in soils and plants. 3a. CRC. Press, Boca Raton, pp. 131&#150;154.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208634&pid=S0188-4999201200010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khan A.G. (2005). Role of soil microbes in the rhizospheres of plants growing on trace metal contaminated soils in phytoremediation. J. Trace Elem. Med. Bio. 18, 355&#150;364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208636&pid=S0188-4999201200010000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kloepper J.W. y Schroth M.N. (1978). Plant growth&#150;promoting rhizobacteria on radishes. Proceedings of the 4th International Conference on Plant Pathogen Bacteria, 2. p. 879&#150;82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208638&pid=S0188-4999201200010000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kloepper J.W., Lifshitz R. y Zablotowicz R.M. (1989). Free&#150;living bacterial inocula for enhancing crop productivity. Trends Biotechnol. 7, 39&#150;43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208640&pid=S0188-4999201200010000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuiper I., Lagendijk E.L., Bloemberg G.V. y Lugtenberg B.J.J. (2004). Rhizoremediation: a beneficial plant&#150;microbe interaction. Mol. Plant Microbe In. 17, 6&#150;15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208642&pid=S0188-4999201200010000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">K&uuml;pper H., Lombi E., Zhao F.J. y McGrath S.P. (2000). Cellular compartmentation of cadmium and zinc in relation to other elements in the hyperaccumulator Arabidopsis halleri. Planta 212, 75&#150;84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208644&pid=S0188-4999201200010000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li T., Yang X., Lu L., Islam E. y He Z. (2009). Effects of zinc and cadmium interactions on root morphology and metal translocation in hyperaccumulating species under hydroponic conditions. J. Hazard. Mater. 169, 734&#150;741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208646&pid=S0188-4999201200010000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ma Y., Prasad M.N.V., Rajkumar M. y Freitas H. (2011). Plant growth promoting rhizobacteria and endophytes accelerate phytoremediation of metalliferous soils. Biotechnol. Adv. 29, 248&#150;258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208648&pid=S0188-4999201200010000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mantelin S. y Touraine B. (2004). Plant growth&#150;promoting bacteria and nitrate availability: impacts on root development and nitrate uptake. J. Exp. Bot. 55, 27&#150;34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208650&pid=S0188-4999201200010000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matusik J., Bajda T. y Manecki M. (2008). Immobilization of aqueous cadmium by addition of phosphates. J. Hazard. Mater. 152, 1332&#150;1339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208652&pid=S0188-4999201200010000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Milone M.T., Sgherri C., Clijsters H. y Navari&#150;Izzo F. (2003). Antioxidative responses of wheat treated with realistic concentration of cadmium. Environ. Exp. Bot. 50, 265&#150;276.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208654&pid=S0188-4999201200010000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roosens N., Verbruggen N., Meerts P., Ximenez&#150;Embun P. y Smith J.A.C. (2003). Natural variation in cadmium tolerance and its relationship to metal hyperaccumulation for seven populations of <i>Thlaspi caerulescens</i> from western Europe. Plant Cell Environ. 26, 1657&#150;1672.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208656&pid=S0188-4999201200010000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rossello&#150;Mora R. y Amann R. (2001). The species concept for prokaryotes. FEMS Microbiol. Rev. 25, 39&#150;67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208658&pid=S0188-4999201200010000100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saravan V.S., Madhaiyan M. y Thangaraju, M. (2007). Solubilization of zinc compounds by the diazotrophic, plant growth promoting bacterium Gluconacetobacter diazotrophicus. Chemosphere. 66, 1794&#150;1798.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208660&pid=S0188-4999201200010000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schwartz C., Morel J.L., Saumier S., Whiting S.N. y Baker A.J.M. (1999). Root development of the zinc&#150;hyperaccumulator plant <i>Thlaspi caerulescens</i> as affected by metal origin, content and localization in soil. Plant Soil. 208, 103&#150;115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208662&pid=S0188-4999201200010000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schwartz C., Echevarria G. y Morel J.L. (2003). Phytoextraction of cadmium with <i>Thlaspi caerulescens</i>. Plant Soil 249, 27&#150;35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208664&pid=S0188-4999201200010000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sheng X.F. y Xia J.J. (2006). Improvement of rape (<i>Brassica napus</i>) plant growth and cadmium uptake by cadmium&#150;resistant bacteria. Chemosphere 64, 1036&#150;1042.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208666&pid=S0188-4999201200010000100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Singh P.K. y Tewari R.K. (2003). Cadmium toxicity induced changes in plant water relations and oxidative metabolism of Brassica juncea L. plants. J. Environ. Biol. 24, 107&#150;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208668&pid=S0188-4999201200010000100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Singh S., Eapen S. y D'Souza S.F. (2006). Cadmium accumulation and its influence on lipid peroxidation and antioxidative system in an aquatic plant, Bacopa monnieri L. Chemosphere. 62, 233&#150;246.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208670&pid=S0188-4999201200010000100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Singh J.S., Pandey V.Ch. y Singh D.P. (2011). Efficient soil microorganisms: A new dimension for sustainable agriculture and environmental development. Agr. Ecosyst. Environ.140, 339&#150;353.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208672&pid=S0188-4999201200010000100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tang Y., Qiua R., Zenga X., Yinga R. Yua F. y Zhoua X. (2009). Lead, zinc, cadmium hyperaccumulation and growth stimulation in <i>Arabis paniculata</i> Franch. Environ. Exp. Bot. 66, 126&#150;134</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208674&pid=S0188-4999201200010000100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tenuta M. (2003). Plant growth promoting rhizobacteria: prospects for increasing nutrient acquisition and disease control. (en l&iacute;nea). <a href="http://www.umanitoba.ca/afs/agronomists_conf/2003/pdf/tenuta_rhizobacteria.pdf" target="_blank">http://www.umanitoba.ca/afs/agronomists_conf/2003/pdf/tenuta_rhizobacteria.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208675&pid=S0188-4999201200010000100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Volkmar K.M. y Bremer E. (1998). Effects of seed inoculation with a strain of <i>Pseudomonas fluorescens</i> on root growth and activity of wheat in well&#150;watered and drought&#150;stressed glass&#150;fronted rhizotrons. Can. J. Plant Sci. 78, 545&#150;551.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208677&pid=S0188-4999201200010000100047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Weisburg W.G., Barns S.M., Pelletier D.A. y Lane D.J. (1991). 16 Ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J. Bacteriol. 131, 697&#150;703.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208679&pid=S0188-4999201200010000100048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wenzel W.W., Lombi E. y Adriano D.C. (1999). Biogeochemical processes in the rhizosphere: role in phytoremediation of metal&#150;polluted sites. En: <i>Heavy metal stress in plants&#150; from molecules to ecosystems</i>. (M.N.V. Prasad y J. Hagemeyer Eds.), Springer, Heidelberg, Berl&iacute;n, Nueva York, pp. 273&#150;303.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208681&pid=S0188-4999201200010000100049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Whiting S.N., Leake J.R., McGrath S.P. y Baker A.J.M. (2000). Positive responses to Zn and Cd by roots of the Zn and Cd hyperaccumulator <i>Thlaspi caerulescens</i>. New Phytol. 145, 199&#150;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208683&pid=S0188-4999201200010000100050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wilkins D.A. 1978. The measurement of tolerance to edaphic factors by means of root growth. New Phytol. 80, 623&#150;633.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208685&pid=S0188-4999201200010000100051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wu S.C., Cheung K.C., Luo Y.M. y Wong M.H. (2006). Effects of inoculation of plant growth&#150;promoting rhizobacteria on metal uptake by <i>Brassica juncea</i>. Environ. Pollut. 140, 124&#150;135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208687&pid=S0188-4999201200010000100052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xu P., Zou J., Meng Q., Zou J., Jiang W. y Liu D. (2008). Effects of Cd<sup>2+</sup> on seedling growth of garlic (<i>Allium sativum</i> L.) and selected physiological and biochemical characters. Biores. Technol. 99, 6372&#150;6378.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208689&pid=S0188-4999201200010000100053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yang X.E., Long X.X., Ye H.B. He Z.L., Calvert D.V. y Stoffella P.J. (2004). Cadmium tolerance and hyperaccumulation in a new Zn&#150;hyperaccumulating plant species (<i>Sedum alfredii</i> Hance). Plant Soil 259, 181&#150;189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208691&pid=S0188-4999201200010000100054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zaidi S., Usmami S., Singh B.R. y Musarrat J. (2006). Significance of <i>Bacillus</i> subtilis strain SJ&#150;101 as a bioinoculant for concurrent plant grown promotion and nickel accumulation in <i>Brassica juncea</i>. Chemosphere 64, 991&#150;997.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7208693&pid=S0188-4999201200010000100055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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