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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to evaluate the capacity of chromium and color removal of the white rot fungus Pleurotus ostreatus, Phanerochaete chrysosporium, Trametes versicolor and the deuteromycete Aspergillus niger, using chromium salts and tanning wastewater, the tolerance to two chromium salts using the inhibitory minimum concentration test (IMC) was studied. According to the results, significant differences (p <0.0001) demonstrate that P. chrysosporium was the most tolerant microorganism with IMC of 30,000 mg L-1 for chromium sulfate and 7,500 mg L-1 for dichromate of potassium. The effect of the dilution of residual on the capacity of biodecoloration and the formation of biomass were evaluated using a 2² experimental design. P. chrysosporium displayed greater capacity of decoloration associated with the amount of biomass with values of 39% and 16 mg L-1 in 10 days of evaluation. When supplementing this microorganism with carbon and nitrogen sources it was observed that both nutritional conditions could be used without significant differences (p>0.0001) between treatments. From these results the microorganisms were immobilized in polyurethane foam to carry out the experiments of treatment capacity of residual to the 100% by 10 days at 25° C, observing that the immobilized viable biomass removed 97% of CrT, 97% of Cr(III), 85% Cr(VI), 12% DQO and 67% of color. These parameters were correlated positively with the amount of biomass immobilized and the enzymatic activity type LiP (0.2 U L-1) and MnP (7 U L-1). The immobilized and inactivated biomasses, and the foam as unique support, were also efficient concerning the previous parameters but in smaller proportion. Micro EDX analysis indicated that both the viable and inactive biomasses present important adsorptive characteristics that favored the expressed total chromium removal in atomic percentage.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Evaluaci&oacute;n de tres hongos lignol&iacute;ticos<i> y de  Aspergillus niger </i>como alternativa para el tratamiento de aguas residuales del curtido de pieles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Phanerochaete chrysosporium, <i>Trametes versicolor, Plerotus ostreatus</i> and <i>Aspergillus niger</i> as alternative for the tanning wastewater treatment</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Sandra G&Oacute;MEZ&#150;BERTEL<sup>2</sup>, Diana AMAYA&#150;BULLA<sup>2</sup>, Claudia MALDONADO&#150;SAAVEDRA<sup>1</sup>, Mar&iacute;a Mercedes MART&Iacute;NEZ&#150;SALGADO<sup>2</sup>, Balkys QUEVEDO&#150;HIDALGO<sup>1</sup>, Ana Bertha SOTO&#150;GUZM&Aacute;N<sup>3 </sup>y Aura Marina PEDROZA&#150;RODR&Iacute;GUEZ<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup>&nbsp;<i>Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a Aplicada. Grupo de Biotecnolog&iacute;a Ambiental e Industrial. Pontificia Universidad Javeriana, Carrera 7 No. 43&#150;82, Bogot&aacute;, Colombia.</i> Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:apedroza@javeriana.edu.co">apedroza@javeriana.edu.co</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup>&nbsp;<i>Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Ambiental y Suelos. Grupo de Biotecnolog&iacute;a Ambiental e Industrial. Pontificia Universidad Javeriana</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>3</sup>&nbsp;<i>Departamento de F&iacute;sica. Centro de Investigaciones y de Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional. CINVESTAV&#150;IPN. Avenida Polit&eacute;cnico Nacional 2508. M&eacute;xico D.F., M&eacute;xico</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido septiembre 2007    <br> Aceptado febrero 2008</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de evaluar la capacidad de biodecoloraci&oacute;n y remoci&oacute;n de cromo por parte de los hongos <i>Pleurotus ostreatus, Phanerochaete chrysosporium, Trametes versicolor </i>y <i>Aspergillus niger, </i>usando aguas residuales proveniente de la etapa de curtido de pieles y soluciones con dicromato de potasio y sulfato de cromo, se determin&oacute; la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibidora de cada sal siguiendo el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en agar. <i>P. chrysosporium </i>fue significativamente m&aacute;s tolerante (p&lt; 0.0001) con valores de 30,000 mg L<sup>&#150;1</sup> para sulfato de cromo y 7500 mg L<sup>&#150;1</sup> para dicromato de potasio. El efecto de la diluci&oacute;n del residual sobre la capacidad de biodecoloraci&oacute;n y formaci&oacute;n de biomasa fue evaluada utilizando un dise&ntilde;o experimental <i>2<sup>2</sup>. P. chrysosporium </i>present&oacute; mayor capacidad de decoloraci&oacute;n asociada con la cantidad de biomasa con valores de 39 % y 16 mg L<sup>&#150;1</sup> a los diez d&iacute;as de evaluaci&oacute;n. En respuesta a la suplementaci&oacute;n del agua residual con carbono y nitr&oacute;geno este microorganismo puede emplearse bajo las dos condiciones nutricionales sin que se presenten diferencias significativas (p&gt;0.0001) entre tratamientos. A partir de estos resultados la cepa fue inmovilizada en espuma de poliuretano para llevar a cabo los experimentos de tratabilidad del residual al 100 % (v/v) por diez d&iacute;as a 25 &deg;C, observando que la biomasa viable inmovilizada removi&oacute; el 97 % de Cr<sub>T</sub>, 97 % de Cr (III), 85 % Cr(VI), 12 % DQO y 67 % de color; estos par&aacute;metros se correlacionaron positivamente con la cantidad de biomasa inmovilizada y la actividad enzim&aacute;tica tipo LiP (0.2 U L<sup>&#150;1</sup>) y MnP (7 U L<sup>&#150;1</sup>). La biomasa inmovilizada e inactiva y la espuma como &uacute;nico soporte, tambi&eacute;n fueron eficientes frente a los par&aacute;metros anteriores pero en menor proporci&oacute;n. Al realizar el microan&aacute;lisis de EDX se encontr&oacute; que tanto la biomasa viable como la inactiva presentan importantes caracter&iacute;sticas que favorecieron la adsorci&oacute;n de cromo total expresado como porcentaje at&oacute;mico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> cromo, <i>Phanerochaete chrysosporium, Pleurotus ostreatus, Trametes versicolor, Aspergillus niger, </i>poliuretano, bioadsorci&oacute;n</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In order to evaluate the capacity of chromium and color removal of the white rot fungus <i>Pleurotus ostreatus, Phanerochaete chrysosporium, Trametes versicolor </i>and the deuteromycete <i>Aspergillus niger, </i>using chromium salts and tanning wastewater, the tolerance to two chromium salts using the inhibitory minimum concentration test (IMC) was studied. According to the results, significant differences (p &lt;0.0001) demonstrate that <i>P. chrysosporium </i>was the most tolerant microorganism with IMC of 30,000 mg L<sup>&#150;1</sup> for chromium sulfate and 7,500 mg L<sup>&#150;1</sup> for dichromate of potassium. The effect of the dilution of residual on the capacity of biodecoloration and the formation of biomass were evaluated using a 2<sup>2</sup> experimental design. <i>P. chrysosporium </i>displayed greater capacity of decoloration associated with the amount of biomass with values of 39% and 16 mg L<sup>&#150;1</sup> in 10 days of evaluation. When supplementing this microorganism with carbon and nitrogen sources it was observed that both nutritional conditions could be used without significant differences (p&gt;0.0001) between treatments. From these results the microorganisms were immobilized in polyurethane foam to carry out the experiments of treatment capacity of residual to the 100% by 10 days at 25&deg; C, observing that the immobilized viable biomass removed 97% of CrT, 97% of Cr(III), 85% Cr(VI), 12% DQO and 67% of color. These parameters were correlated positively with the amount of biomass immobilized and the enzymatic activity type LiP (0.2 U L<sup>&#150;1</sup>) and MnP (7 U L<sup>&#150;1</sup>). The immobilized and inactivated biomasses, and the foam as unique support, were also efficient concerning the previous parameters but in smaller proportion. Micro EDX analysis indicated that both the viable and inactive biomasses present important adsorptive characteristics that favored the expressed total chromium removal in atomic percentage.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> leather tanning wastewaters, chromium, <i>Phanerochaete chrysosporium, Pleurotus ostreatus, Trametes versicolor, Aspergillus niger, </i>polyurethane, biosorption</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el incremento de la actividad industrial en el mundo, los cuerpos de agua reciben continuamente descargas de contaminantes t&oacute;xicos de tipo met&aacute;lico que exceden la capacidad de autodepuraci&oacute;n, trayendo como consecuencia graves problemas de contaminaci&oacute;n ambiental y alto riesgo toxicol&oacute;gico para el hombre y los animales (Filipov&iacute;c <i>et al. </i>2000, Park <i>et al. </i>2005, Iqbal y Saeed 2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Colombia la industria procesadora de pieles para marroquiner&iacute;a es una de las responsables de la contaminaci&oacute;n acu&aacute;tica por el vertimiento de cromo trivalente y hexavalente. Durante el proceso productivo se utilizan como materias primas pieles de animales, especialmente vacunos y caprinos, que son sometidas a una serie de tratamientos con sustancias llamadas curtientes, con el fin de producir modificaciones qu&iacute;micas y f&iacute;sicas en las pieles y convertirlas en un material duradero, suave, el&aacute;stico y flexible (T&eacute;llez <i>et al. </i>2004). Las aguas residuales generadas durante todo el proceso se vierten directamente al r&iacute;o Bogot&aacute; en especial en las zonas cercanas al Municipio de Villapinz&oacute;n, donde existen cerca de 190 curtiembres artesanales y con tecnificaci&oacute;n media. Adicionalmente se presenta contaminaci&oacute;n por materia org&aacute;nica (pelo, sangre, esti&eacute;rcol, grasas, carne y cuero) y elementos qu&iacute;micos como cromo, cloro, azufre, amoniaco, taninos, sulfuros y sulfatos, lo que resulta en concentraciones altas de DBO<sub>5</sub> (3750 mg L<sup>&#150;1</sup>), DQO (11,776 mg L<sup>&#150;1</sup>), pH (3.8), color, sulfuros disueltos (1803 mg L<sup>&#150;1</sup>) s&oacute;lidos totales (32,110 mg L<sup>&#150;1</sup>) y cromo total (1840 mg L<sup>&#150;1</sup>) (CAR 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En lo concerniente al cromo, este metal se encuentra presente en el ambiente principalmente en dos estados de oxidaci&oacute;n como Cr(VI) y Cr(III). La proporci&oacute;n de cromo hexavalante es m&aacute;s baja que el cromo trivalente, sin embargo esta es la forma m&aacute;s t&oacute;xica para plantas y animales, ya que se considera un agente fuertemente oxidante y potencialmente carcinog&eacute;nico, bioacumulable y biomagnificable (Park <i>et al. </i>2005, Ahluwalia y Goyal 2007). Por el contrario el cromo trivalente generalmente es t&oacute;xico solamente para plantas a elevadas concentraciones y es menos t&oacute;xico para animales (Anderson 1997). Por estas diferencias la Environmental Protection Agency de los EUA (EPA) determin&oacute; que las descargas de Cr(VI) en aguas superficiales deben ser menores de 0.005 mg L<sup>&#150;1</sup>, mientras que las de cromo total, incluyendo cromo trivalente, hexavalente y en otros estados, deben ser de 2 mg L<sup>&#150;1</sup> (Baral y Engelken 2002). En Colombia, seg&uacute;n la Corporaci&oacute;n Aut&oacute;noma Regional de Cundinamarca (CAR 2004), las concentraciones m&aacute;ximas permisibles para verter en un cuerpo de agua o red de alcantarillado p&uacute;blico no deben exceder de 0.005 mg L<sup>&#150;1</sup> para Cr (VI) y de 0.01 mg L<sup>&#150;1</sup> para cromo total. Con respecto al uso del agua para fines agr&iacute;colas, pecuario y preservaci&oacute;n de flora y fauna, el decreto 1594/84 del Ministerio de Salud de Colombia estipula que las concentraciones para cada uno de los casos no deben exceder 0.1 mg L<sup>&#150;1</sup>, 1.0 mg L<sup>&#150;1</sup> y 0.001 mg L<sup>&#150;1</sup> CL<sub>50</sub><sup>96</sup>, respectivamente. Por esta raz&oacute;n es imperativo reducir las descargas, promover la reutilizaci&oacute;n del agua dentro de las empresas y desarrollar m&eacute;todos de tratamiento que sean eficientes, econ&oacute;micos y ambientalmente amigables (Ministerio de Salud 1984, Coulibaly <i>et al. </i>2003, <i>Morato et al. </i>2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los m&eacute;todos convencionales para la remoci&oacute;n de metales pesados como precipitaci&oacute;n qu&iacute;mica, &oacute;xido reducci&oacute;n qu&iacute;mica, filtraci&oacute;n, intercambio i&oacute;nico y tratamiento electroqu&iacute;mico (Zouboulis <i>et al. </i>2004, Srivastava y Thakur 2006, Iqbal y Saeed 2007) pueden tener algunas desventajas como los costos, producci&oacute;n de residuos secundarios, poca efectividad a bajas concentraciones y r&aacute;pida saturaci&oacute;n, lo que los convierte en m&eacute;todos inviables para peque&ntilde;as comunidades. Como alternativa surge la posibilidad de utilizar la biomasa viable e inactiva de los hongos lignol&iacute;ticos que crecen sobre la madera (Dilek <i>et al. </i>2002, Jarosz&#150;Wilkolazka et al. 2002, Qingbiao <i>et al. </i>2004, BayramoÄŸlu <i>et al. </i>2005). La remoci&oacute;n de metales pesados con este grupo de microorganismos se puede llevar a cabo como proceso activo dependiente del metabolismo, tambi&eacute;n conocidos como bioacumulaci&oacute;n y reacciones de oxido&#150;reducci&oacute;n asociadas con enzimas o de forma pasiva independiente del metabolismo por medio de quelaci&oacute;n, quimiosorci&oacute;n, complej aci&oacute;n y bioadsorci&oacute;n (Kapoor y Viraraghavan 1995, Coulibaly <i>et al. </i>2003). Esta &uacute;ltima se define como la capacidad que tiene la biomasa f&uacute;ngica viva o inactiva para unir y concentrar metales pesados a partir de soluciones acuosas, la cual puede ser, f&iacute;sica o qu&iacute;mica determinando que la biomasa f&uacute;ngica act&uacute;e como un posible intercambiador de tipo biol&oacute;gico (Ahluwalia y Goyal 2007). El principal responsable de este proceso es la presencia de quitina, quitosano y glucanos en la pared celular (Coulibaly <i>et al. </i>2003). Es por esto que producir grandes cantidades de biomasa empleando subproductos agroindustria&#150;les permite utilizarla como bioadsorbente natural, econ&oacute;mico y de f&aacute;cil obtenci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente trabajo se evalu&oacute; la tolerancia de los hongos <i>Phanerochaete chrysosporium, Trametes versicolor, Pleurotus ostreatus </i>y <i>Aspergillus niger </i>frente al dicromato de potasio y sulfato de cromo, encontrando que <i>P. chrysosporium </i>es un hongo hipertoletante a las dos sales y fue empleado para el tratamiento de aguas residuales de curtiembres, inmoviliz&aacute;ndolo sobre un soporte inerte para comparar la eficiencia entre biomasa viable, inactiva y el soporte solo, por un periodo de diez d&iacute;as sin control de esterilidad durante el proceso.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Microorganismos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron tres hongos ligninocelulol&iacute;ticos <i>Phanerochaete chrysosporium </i>(CINVESTAV&#150;IPN. M&eacute;xico), <i>Trametes versicolor </i>y <i>Pleurotus ostreatus </i>(Pontificia Universidad Javeriana, Colombia) y <i>Aspergillus niger </i>(Universidad Industrial de Santander, Colombia). La reactivaci&oacute;n de los tres primeros se realiz&oacute; en agar extracto de salvado (G&oacute;mez <i>et al. </i>2005) y para <i>A. niger </i>se utiliz&oacute; agar extracto de levadura (Morato <i>et al. </i>2003); todas las cajas se incubaron durante ocho d&iacute;as a 25 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n del agua residual</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agua residual fue obtenida de una industria procesadora de cuero, luego del tratamiento de curtido de piel con sulfato de amonio y sulfato de cromo. A trav&eacute;s de la caracterizaci&oacute;n inicial se determin&oacute; que ten&iacute;a la siguiente composici&oacute;n: 2360 mg L<sup>&#150;1</sup> de cromo total (Cr<sub>T</sub>), 100 &micro;g L<sup>&#150;1</sup> de cromo hexavalente Cr(VI), 4462 mg L<sup>&#150;1</sup> de demanda qu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DQO), 8295 unidades de color, pH 4.0 y la presencia de hongos levaduriformes en recuentos de 52x10<sup>4 </sup>UFC mL<sup>&#150;1</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibidora (CMI)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tolerancia a diferentes concentraciones de sulfato de cromo y dicromato de potasio se realiz&oacute; sembrando masivamente 0.1 mL de una suspensi&oacute;n de 1x10<sup>8</sup> conidios mL<sup>&#150;1</sup> en agar extracto de salvado <i>(P. ostreatus </i>y <i>P. chrysosporium) </i>y agar extracto de levadura <i>(A. niger) </i>en presencia de las sales de cromo. Como testigo negativo se inocularon 0.1 mL de la suspensi&oacute;n de conidios en agar sin sales de cromo, todas las cajas se incubaron a 25 &deg;C por ocho d&iacute;as (Shaheen <i>et al. </i>2007, modificado por los autores). Para <i>T. versicolor </i>se modific&oacute; la t&eacute;cnica, adicionando las diferentes concentraciones de las sales de cromo al agar extracto de salvado y posteriormente se coloc&oacute; un disco de agar colonizado con micelio de <i>T. versicolor. </i>El crecimiento radial se evalu&oacute; al octavo d&iacute;a. El testigo negativo fue el mismo medio sin sales, que se sembr&oacute; en la misma forma que los tratamientos. La CMI fue definida como la concentraci&oacute;n de metal pesado que inhibe totalmente el crecimiento de los hongos evaluados (Shaheen <i>et al. </i>2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de la diluci&oacute;n del residual sobre la capacidad de decoloraci&oacute;n, producci&oacute;n de biomasa libre y actividad enzim&aacute;tica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar el efecto de la diluci&oacute;n del residual sobre la capacidad de decoloraci&oacute;n, producci&oacute;n de biomasa y actividad enzim&aacute;tica, se llev&oacute; a cabo un dise&ntilde;o experimental 2<sup>2</sup>. Las pruebas se realizaron en matraces Erlenmeyer de 100 mL que conten&iacute;an 20 mL de efluente preparado de acuerdo con cada tratamiento y 20 discos de agar obtenidos de la zona de crecimiento activo para cada hongo. Los Erlenmeyer fueron incubados en un agitador orbital (150 rpm) a 25 &deg;C durante diez d&iacute;as. El dise&ntilde;o gener&oacute; una matriz de cuatro tratamientos por triplicado. Los factores estudiados fueron diluci&oacute;n del residual y el tipo de cepa; como variables de respuesta se evaluaron la decoloraci&oacute;n en porcentaje, biomasa seca en mg mL<sup>&#150;1</sup>, actividad enzim&aacute;tica manganeso peroxidasa (MnP) en U L<sup>&#150;1</sup> (Michel <i>et al. </i>1991), lignino peroxidasa (LiP) en U L<sup>&#150;1</sup> (Tien y Kirk 1988) y actividad lacasa en U L<sup>&#150;1</sup> (Tinoco <i>et al. </i>2001). En el <b><a href="/img/revistas/rica/v24n3/a1c1.jpg" target="_blank">cuadro I</a></b> se observa la matriz generada para cada factor y su respectivo nivel (Montgomery 2003). El an&aacute;lisis de datos se realiz&oacute; usando los programas SAS 9.0 y Desing Expert 6.0 y los resultados fueron tratados con un modelo emp&iacute;rico el cual relaciona las respuestas cuantificadas con los factores evaluados y sus respectivos niveles. Para un dise&ntilde;o de dos factores el modelo de primer orden es:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1s1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde <i>y, </i>corresponde a la variable dependiente; <i>b<sub>o</sub> </i>es el intercepto, <i>b<sub>1</sub>, b<sub>2</sub>, </i>son los coeficientes lineales y <i>x<sub>1</sub> x<sub>2</sub> </i>son los factores o variables independientes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de dos condiciones nutricionales sobre la capacidad de decoloraci&oacute;n y formaci&oacute;n de biomasa</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se llev&oacute; a cabo en un matraz Erlenmeyer de 100 mL con 20 mL de agua residual al 100 % (v/v), con y sin suplemento de glucosa (2.5 g L<sup>&#150;1</sup>) y extracto de levadura (1 g L <sup>&#150;1</sup>). Cada tratamiento se inocul&oacute; con 20 discos de agar extracto de salvado crecidos con cada microorganismo. Los Erlenmeyer fueron incubados en un agitador orbital (150 rpm) a 25 &deg;C por diez d&iacute;as. Las variables de respuesta fueron decoloraci&oacute;n, biomasa mg mL<sup>&#150;1</sup>, actividad LiP, MnP, az&uacute;cares reductores totales y pH (G&oacute;mez <i>et al. </i>2005, Pedroza et al. 2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Comparaci&oacute;n de la capacidad de remoci&oacute;n con biomasa viable e inactiva inmovilizadas sobre espuma de poliuretano</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La biomasa de <i>P. chrysosporium </i>se inmoviliz&oacute; en cubos de espuma de poliuretano de 1 cm<sup>3</sup>, sembr&aacute;ndolos en matraces Erlenmeyer de 1000 mL que conten&iacute;an 250 mL de caldo extracto de salvado de trigo. Cada Erlenmeyer con 50 cubos fue inoculado con 10 discos agar con micelio de <i>P. chrysosporium </i>(Mart&iacute;nez <i>et al. </i>2005). La colonizaci&oacute;n del soporte se realiz&oacute; por ocho d&iacute;as a 25 &deg;C con agitaci&oacute;n continua de 150 rpm. El producto de la inmovilizaci&oacute;n se recuper&oacute; por filtraci&oacute;n con papel filtro Whatman N&deg; 22 y posteriormente se tomaron veinte cubos colonizados y se transfirieron a un Erlenmeyer de 500 mL que conten&iacute;a 200 mL de efluente de curtido al 100 % (v/v), sin ajuste nutricional. Se evaluaron tres tratamientos: biomasa viable inmovilizada sobre espuma, biomasa inactiva inmovilizada sobre el mismo soporte y espuma de poliuretano sin biomasa f&uacute;ngica. El proceso se mantuvo por 10 d&iacute;as a 25 &deg;C, 150 rpm. Al finalizar el experimento se recuper&oacute; el efluente tratado para determinar pH, az&uacute;cares reductores totales (Miller 1959), porcentaje de decoloraci&oacute;n (Mart&iacute;nez <i>et al. </i>2005), Cr<sub>T</sub> por medio de espectroscop&iacute;a de absorci&oacute;n at&oacute;mica de llama (Barajas <i>et al. </i>2007), Cr(VI) por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico de difenilcarbazida n&uacute;mero 3500B, demanda qu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DQO) por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico de reflujo cerrado 5220D reportado en los m&eacute;todos est&aacute;ndar (Eaton <i>et al. </i>2005), actividad enzim&aacute;tica tipo manganeso peroxidasa (Michel <i>et al. </i>1991), lignino peroxidasa (Tien y Kirk 1988), lacasa (Tinoco <i>et al. </i>2001) y recuento de poblaciones microbianas presentes en el agua residual que se realiz&oacute; mediante la t&eacute;cnica de microgota reportada por Doyle (2000). Las diferencias entre tratamientos se determinaron por una prueba de comparaci&oacute;n de medias (Tukey, &alpha;= 0.05). Los datos se analizaron con el programa estad&iacute;stico SAS 9.0&reg;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adicionalmente los cubos colonizados con biomasa de <i>P. chrysosporium </i>se prepararon para microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido siguiendo la metodolog&iacute;a reportada por Pedroza <i>et al. </i>(2007). Se utiliz&oacute; un microscopio electr&oacute;nico marca JEOL JSM&#150;6300 adaptado a un detector de rayos X por dispersi&oacute;n de energ&iacute;a No ral Voyager II software 1100/1110, para llevar a cabo el microan&aacute;lisis de cromo total en porcentaj e at&oacute;mico por la t&eacute;cnica de espectrometr&iacute;a de dispersi&oacute;n de energ&iacute;a de rayos X (EDX).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibidora</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de CMI sugieren que la tolerancia al cromo depende del estado de oxidaci&oacute;n, la concentraci&oacute;n de la sal de cromo y el microorganismo evaluado. El di cromato de potasio fue la forma m&aacute;s t&oacute;xica para los cuatro microorganismos investigados, con valores de 300, 1000, 4500 y 7500 mg L<sup>&#150;1</sup> para <i>T. versicolor, A. niger, P. ostreatus </i>y <i>P. chrysosporium, </i>respectivamente. Con relaci&oacute;n al sulfato de cromo las concentraciones m&iacute;nimas inhibidoras fueron de 5000, 12,500, 15,000 y 30,000 mg L<sup>&#150;1</sup> para <i>A. niger, P. ostreatus, T. versicolor </i>y <i>P. chrysosporium, </i>respectivamente (<a href="#f1">Fig. 1</a>). De acuerdo con el an&aacute;lisis estad&iacute;stico, el hongo <i>P. chrysosporium </i>fue significativamente m&aacute;s tolerante alas dos sales de cromo (p&lt;0.0001). La raz&oacute;n por la cual esta cepa fue superior podr&iacute;a estar relacionada con un mecanismo adaptativo asociado a tolerancia gen&eacute;tica o fisiol&oacute;gica que surgi&oacute; por la exposici&oacute;n prolongada al cromo, ya que progresivamente fue cultivada en concentraciones ascendentes de las dos sales por periodos de ocho d&iacute;as en cada una. Durante cada tratamiento la cepa pudo desarrollar de manera paralela varios mecanismos que le permitieron adquirir la tolerancia, como un engrosamiento de la pared para bioadsorber mayor cantidad de cromo, s&iacute;ntesis de melaninas como la 1,8 dihidroxinaftaleno (DHN) y la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos como el &aacute;cido ox&aacute;lico que act&uacute;a como quelante para formar cristales con los metales que precipitan a nivel extracelular (Cervantes y Guti&eacute;rrez 1994). Es factible que los dos primeros mecanismos se hayan llevado a cabo, ya que en las fotograf&iacute;as obtenidas por microscop&iacute;a &oacute;ptica se observ&oacute; un engrosamiento de las hifas, que tomaron una pigmentaci&oacute;n caf&eacute; claro (datos no mostrados). Los resultados obtenidos en esta prueba concuerdan con la definici&oacute;n de tolerancia a metales propuesta por Shaheen <i>et al. </i>(2007). Estos autores definen la tolerancia como la habilidad que tiene un organismo para sobrevivir en presencia de un metal por medio de la activaci&oacute;n de mecanismos directos e indirectos que pueden ser inmediatos o progresivos como respuesta a la exposici&oacute;n del metal.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f1.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>P. chrysosporium </i>ha sido ampliamente reportado para la bioadsorci&oacute;n de metales pesados como cadmio, plomo, n&iacute;quel y cobre, por ser tolerante, producir cantidades significativas de biomasa con gran &aacute;rea superficial apta para la remoci&oacute;n y por la facilidad de cultivo con c&eacute;lulas libres e inmovilizadas (Say <i>et al. </i>2001, Kacar <i>et al. </i>2002, Qingbiao <i>et al. </i>2004, Iqbal y Saeed 2007). Sin embargo, la utilizaci&oacute;n de <i>P. chrysosporium </i>para la remoci&oacute;n y biodecoloraci&oacute;n de aguas residuales de la etapa de curtido de pieles no ha sido reportada, lo que resalta la importancia de los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n, especialmente porque esta especie toler&oacute; elevadas concentraciones de las dos formas de cromo. As&iacute; se convierte en una alternativa econ&oacute;mica para la remoci&oacute;n de metales pesados, por la facilidad con que se cultiva en sustratos agroindustriales como el salvado de trigo y por sus elevados rendimientos de biomasa, tal como lo reporta Pedroza (2006) en su estudio con <i>T. versicolor, P. chrysosporium </i>y <i>P. ostreatus, </i>inmovilizados sobre espuma para el tratamiento de aguas residuales de la industria papelera.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>A. niger </i>es uno de los hongos de la subdivisi&oacute;n Deuteromycotina que m&aacute;s se ha investigado para la remoci&oacute;n de cromo (Kovacevic <i>et al. </i>2000, Nasseri <i>et al. </i>2002, Acosta <i>et al. </i>2004, Srivastava y Thakur 2006). En estudios previos realizados por Morato <i>et al. </i>(2003), se observ&oacute; que esta cepa se inhib&iacute;a en presencia de 900 mg L<sup>&#150;1</sup> de dicromato y 4000 mg L<sup>&#150;1</sup> de sulfato, con agua residual sint&eacute;tica, por tal raz&oacute;n en este trabajo se quiso evaluar este hongo, pero con agua residual proveniente de la industria de procesamiento de cuero.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de la diluci&oacute;n del residual sobre la capacidad de decoloraci&oacute;n y crecimiento de la biomasa f&uacute;ngica libre a escala de Erlenmeyer dise&ntilde;o factorial 2<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con el an&aacute;lisis de varianza para porcentaje de decoloraci&oacute;n <b>(<a href="/img/revistas/rica/v24n3/a1c1.jpg" target="_blank">cuadros I</a> y <a href="/img/revistas/rica/v24n3/a1c2.jpg" target="_blank">II</a>)</b> en la interacci&oacute;n de <i>x<sub>1</sub> </i>(tipo de cepa) y <i>x<sub>2</sub> </i>(concentraci&oacute;n del residual) no se present&oacute; un efecto significativo en la variable de respuesta (p&gt;0.0001); sin embargo el factor <i>x<sub>1</sub> </i>en su nivel bajo tuvo un efecto significativo (p=0.0005) sobre la decoloraci&oacute;n, alcanzando valores de 39 % cuando se utiliza la cepa de <i>P. chrysosporium </i>con efluente sin diluir y 41 % cuando el efluente se diluye al 80 % (v/v) con agua destilada. Al realizar una comparaci&oacute;n de medias entre los dos tratamientos no se presentaron diferencias significativas (p=0.0001) que determinen la influencia de la diluci&oacute;n del residual sobre la decoloraci&oacute;n. Con base en estos resultados el residual se podr&iacute;a utilizar sin modificaci&oacute;n alguna respecto a su salida de la etapa de curtido, lo que representa un ahorro en el costo de tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto al efecto de la interacci&oacute;n de x<sub>1 </sub>y <i>x<sub>2</sub> </i>sobre la cantidad de biomasa formada no se present&oacute; un efecto significativo (p=0.0039), la mayor cantidad de biomasa se obtuvo con la cepa de <i>P. crhysosporium </i>con efluente al 100 % con un valor m&aacute;ximo de 16 mg L<sup>&#150;1</sup>. La caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica del efluente indic&oacute; DQO de 4462 mg L<sup>&#150;1</sup> y DBO<sub>5</sub> de 250 mg L<sup>&#150;1</sup><i>, </i>con relaci&oacute;n DBO<sub>5</sub>/DQO igual a 0.05. Esto indica una relaci&oacute;n baja de C/N del residual y por ende la dif&iacute;cil degradaci&oacute;n, lo que sugiere entonces que compuestos como restos de grasa, prote&iacute;nas y az&uacute;cares reductores, posiblemente provenientes de la fase de ribera, fueron utilizados por P. <i>chrysosporium </i>para mantener su metabolismo (&Aacute;lvarez <i>et al. </i>2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la actividad LiP y MnP la interacci&oacute;n de <i>x<sub>1</sub> </i>y <i>x<sub>2</sub> </i>fue muy significativa, la actividad LiP fue similar en los cuatro tratamientos con valores para<i> P. chrysosporium </i>de 1.4 U L<sup>&#150;1</sup> y 1.7 U L<sup>&#150;1</sup> en el residual al 100 y 80 %. Con respecto a la actividad MnP, esta se cuantific&oacute; &uacute;nicamente con <i>A. niger </i>en residual al 100 %. Los posibles mecanismos implicados en la producci&oacute;n de las enzimas podr&iacute;an ser explicados por dos teor&iacute;as asociadas con la presencia de metales pesados. La primera considera que estos elementos estimulan procesos a nivel transcripcional, generando un incremento en los niveles de ARNm, dando como resultado un incremento en la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas relacionadas con la protecci&oacute;n, como las metalotione&iacute;nas (Cervantes y Guti&eacute;rrez 1994, Palmieri <i>et al. </i>2000, Galhaup y Haldrich 2001). La segunda tiene que ver con la producci&oacute;n de melaninas por la presencia de los metales, actividad considerada como un mecanismo de protecci&oacute;n en la que intervienen las peroxidasas y las polifenol oxidasas (Caesar <i>et al. </i>1995). La actividad de la lacasa no se detect&oacute; en ninguno de los tratamientos, resultado esperado ya que <i>P. chrysosporium </i>no produce esta enzima (Kirk y Farell 1997, D&aacute;vila y V&aacute;zquez&#150;Duhalt 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de dos condiciones nutricionales sobre la capacidad de decoloraci&oacute;n y formaci&oacute;n de biomasa</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a la respuesta de las dos cepas a la suplementaci&oacute;n con carbono y nitr&oacute;geno se observ&oacute; nuevamente que <i>P. chrysosporium </i>present&oacute; mayor capacidad de decoloraci&oacute;n con 38 y 39 % para residual sin suplemento y con suplemento, indicando adicionalmente correlaci&oacute;n positiva con la biomasa producida (16 y 18 mg L<sup>&#150;1</sup>). Con respecto a la actividad enzim&aacute;tica solamente se cuantific&oacute; LiP con valores de 1.4 y 0.7 U L<sup>&#150;1</sup>, respectivamente <b>(<a href="#f2">Fig. 2</a>, <a href="#c3">cuadro III</a>)</b>. Este ligero incremento en las variables de respuesta pudo estar relacionado con un fen&oacute;meno de competencia, por la fuente de carbono y nitr&oacute;geno, con un hongo levaduriforme que se recuper&oacute; a partir del agua residual, microorganismo que present&oacute; un incremento de 52x10<sup>4</sup> UFC mL<sup>&#150;1</sup> a 58x10<sup>5</sup> UFC mL<sup>&#150;1</sup> al final de experimento. Los resultados obtenidos son contrarios a los publicados por Nasseri <i>et al. </i>(2002) y Srivastava y Thakur (2006) quienes sugieren que al incrementar la relaci&oacute;n C/N tanto en agua residual como en agua sint&eacute;tica, se incrementa la remoci&oacute;n de cromo hexavalente, trivalente y el porcentaje de decoloraci&oacute;n producto de la asimilaci&oacute;n r&aacute;pida de sustratos carbonados y nitrogenados que facilitan la mayor producci&oacute;n de biomasa metab&oacute;licamente activa con capacidad de bioadsorci&oacute;n. Es importante resaltar que en los estudios de Nasseri <i>et al. </i>y Srivastava y Thakur mencionados arriba, la condici&oacute;n de esterilidad se control&oacute; permanentemente, lo que permite garantizar que el ajuste nutricional solamente es aprovechado por el microorganismo modelo.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f2.jpg"></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="verdana"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="verdana"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la capacidad de remoci&oacute;n con c&eacute;lulas inmovilizadas a escala de Erlenmeyer empleando el agua residual de curtido </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracter&iacute;sticas de la biomasa inmovilizada y de la actividad enzim&aacute;tica. </b>En la <b><a href="#f3">figura 3</a> </b>se observa la caracter&iacute;stica microsc&oacute;pica del soporte empleado para la inmovilizaci&oacute;n. Corresponde a un material poroso, con densidad baja y elevada &aacute;rea superficial, estructuralmente formado por una extensa red de canales de diferentes tama&ntilde;os, los cuales se convierten en sitios potenciales para la colonizaci&oacute;n. Una vez que se llev&oacute; a cabo el protocolo de inmovilizaci&oacute;n, se realizaron cortes para visualizar la biomasa y la profundidad de la colonizaci&oacute;n, observando que <i>P. chrysosporium </i>form&oacute; hifas delgadas septadas con presencia de esporas <b>(<a href="#f4">Fig. 4a, b</a>)</b>, estructuras que posiblemente fueron utilizadas como mecanismos para acceder a varias zonas de la espuma, en especia a las &aacute;reas m&aacute;s superficiales en las que la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto es superior y no es un factor limitante para el crecimiento. Choi <i>et al. </i>(2002), observaron una colonizaci&oacute;n similar al inmovilizar a <i>P. chrysosporium </i>en espuma, y proponen que hacia el interior se pueden presentar concentraciones muy bajas de ox&iacute;geno que afectan el metabolismo del microorganismo.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f3.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f4.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n de biomasa final en el tratamiento fue de 37 mg cm<sup>&#150;3</sup>, es decir, 2 miligramos m&aacute;s que al inicio del experimento, el incremento se present&oacute; por la utilizaci&oacute;n de az&uacute;cares reductores que al final estaban en una concentraci&oacute;n de 0.110 g L<sup>&#150;1</sup> <b>(<a href="/img/revistas/rica/v24n3/a1f5.jpg" target="_blank">Fig. 5</a>)</b>, lo que demuestra que posiblemente fueron utilizados por el hongo inmovilizado, sin descartar una competencia con el hongo levaduriforme. En los dem&aacute;s tratamientos el consumo fue menor y se llev&oacute; a cabo por el microorganismo presente en el agua residual. Varios autores reportan que la remoci&oacute;n de metales pesados en ecosistemas acu&aacute;ticos y en el suelo es facilitada por la presencia o adici&oacute;n de una fuente de carbono sencilla que favorece el incremento de la biomasa en funci&oacute;n del tiempo, obteniendo mayor cantidad de bioadsorbente (Nasseri <i>et al. </i>2002, Srivastava y Thakur 2006). Es importante resaltar que a diferencia de estas investigaciones en el presente trabajo no se realiz&oacute; ning&uacute;n ajuste nutricional al agua residual, el hongo solamente utiliz&oacute; la materia org&aacute;nica disponible.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto al comportamiento del pH, la acidificaci&oacute;n (pH 3.0) del residual a expensas de los &aacute;cidos org&aacute;nicos producidos (posiblemente &aacute;cido ox&aacute;lico) es un cambio favorable para la remoci&oacute;n de metales pesados, b&aacute;sicamente porque a pH &aacute;cido la protonaci&oacute;n de los grupos amino presentes en la pared favorecen la bioadsorci&oacute;n de cromo (Park <i>et al. </i>2005). El fen&oacute;meno ha sido reportado por BayramoÄŸlu <i>et al. </i>(2005), quienes trabajaron con micelio del basidiomiceto <i>Lentinus sajor&#150;caju </i>para la remoci&oacute;n de Cr(VI), y observaron que a valores de pH &aacute;cido la bioadsorci&oacute;n se favorece al comparar con valores de pH alcalinos y neutros.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad enzim&aacute;tica se present&oacute; &uacute;nicamente para el tratamiento en el que se us&oacute; la biomasa viva con valores de 7 U L<sup>&#150;1</sup> para MnP y 0.22 U L<sup>&#150;1</sup> LiP; la producci&oacute;n de las dos enzimas se correlacion&oacute; positivamente con la decoloraci&oacute;n, remoci&oacute;n de DQO y cromo total (p&lt;0.0001) <b>(<a href="/img/revistas/rica/v24n3/a1f5.jpg" target="_blank">Fig. 5</a>)</b>. La actividad enzim&aacute;tica se relacionar&iacute;a con los mecanismos de tolerancia al metal, ya que al presentarse una posible s&iacute;ntesis de melaninas, quedaron expuestos adicionalmente grupos funcionales del tipo carboxilo, fen&oacute;lico, hidroxilo y amino que sirvieron como sitios activos de uni&oacute;n para el cromo (Fogarty y Tobin 1996). Por otro lado la producci&oacute;n de enzimas ligninol&iacute;ticas tambi&eacute;n se estar&iacute;a relacionando con una posible transici&oacute;n hacia metabolismo secundario, desencadenado por un d&eacute;ficit en la fuente de carbono o de nitr&oacute;geno. Este comportamiento ha sido el m&aacute;s estudiado y se considera como el mecanismo m&aacute;s importante en la regulaci&oacute;n de la expresi&oacute;n enzim&aacute;tica en hongos de podredumbre blanca (Kirk y Farell 1997). Sin embargo, en aguas residuales con elevadas concentraciones de metales pesados y contenido bajo de materia org&aacute;nica, no se han realizado estudios m&aacute;s detallados para confirmar cu&aacute;l de los dos mecanismos ser&iacute;a el predominante o si por el contrario los dos pueden estar actuando de manera combinada.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Remoci&oacute;n de color y DQO</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al inicio del experimento el agua residual present&oacute; un color verde oscuro, asociado con las altas concentraciones de sulfato de cromo, el cual fue cambiando progresivamente hasta alcanzar un verde claro que correspondi&oacute; a un porcentaje de decoloraci&oacute;n del 67 y 61 % para la biomasa inmovilizada viable e inactiva; la decoloraci&oacute;n obtenida con la espuma fue significativamente menor (49 % p&lt;0.0001) (<a href="#f6">Fig. 6</a>). En este tipo de aguas residuales la decoloraci&oacute;n est&aacute; relacionada con la bioadsorci&oacute;n de las sales met&aacute;licas a la pared f&uacute;ngica y al soporte de inmovilizaci&oacute;n. En relaci&oacute;n con esto, varios autores sugieren que no se lleva a cabo ninguna modificaci&oacute;n de tipo estructural en la sal que genere un cambio en el espectro de absorci&oacute;n. Adicionalmente se obtuvo una correlaci&oacute;n positiva muy significativa (p&lt;0.0001) entre la concentraci&oacute;n de biomasa, porcentaje de decoloraci&oacute;n y remoci&oacute;n de cromo total. Varios autores como Fu y Viraraghavan (2001), Pedroza <i>et al. </i>(2007) y Henao&#150;Jaramillo <i>et al. </i>(2007), demostraron que al utilizar hongos de podredumbre blanca para el tratamiento de aguas residuales papeleras y remoci&oacute;n de colorantes, la cantidad de biomasa y decoloraci&oacute;n est&aacute;n directamente relacionadas.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a la remoci&oacute;n de DQO, el residual inicial conten&iacute;a 4462 mg L<sup>&#150;1</sup> de DQO; al finalizar los tres tratamientos los porcentajes de remoci&oacute;n obtenidos fueron de 12, 7 y 6 % para la biomasa viable, inactiva y espuma <b>(<a href="#f6">Fig. 6</a>)</b>. La remoci&oacute;n de DQO fue baja, por lo tanto el sistema tendr&iacute;a restricciones si se utiliza como &uacute;nico tratamiento, ya que no cumple con los l&iacute;mites m&aacute;ximos permisibles para vertimiento puntual despu&eacute;s de haber realizado tratamiento biol&oacute;gico, que en Colombia son de 120 mg L<sup>&#150;1</sup> para DQO y 60 mg L<sup>&#150;1</sup> DBO<sub>5</sub> (CAR 2004). La presencia de ciertos compuestos como sulfatos que no fueron cuantificados, pudieron afectar parcialmente el metabolismo de <i>P. chrysosporium </i>y del hongo levaduriforme acompa&ntilde;ante, interfiriendo en la remoci&oacute;n de DQO, pues como lo demostraron Ram <i>et al. </i>(1999), la eficiencia en la remoci&oacute;n de DQO, DBO<sub>5</sub> y cromo total presente en agua de curtiembres se puede incrementar si previamente al tratamiento con lodos activados se realiza un pretratamiento con coagulantes para disminuir la concentraci&oacute;n de sulfitos y de cromo. Igualmente, Rama y Ligy (2005), empleando <i>Ganoderma lucidum </i>para el tratamiento de aguas residuales de curtiembres, encontraron que el hongo inmovilizado en gravilla remueve aproximadamente el 40 % de la DQO inicial, lo que permite suponer que en este tipo de residuales de dif&iacute;cil degradaci&oacute;n la remoci&oacute;n de <b>DQO </b>es muy alta.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Remoci&oacute;n de cromo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto al comportamiento del cromo en los tratamientos evaluados se determin&oacute; que no existen diferencias significativas entre la remoci&oacute;n obtenida con biomasa inmovilizada viable e inactiva. Cualquiera de los dos sistemas podr&iacute;a ser utilizado para el tratamiento, pero el preparar un producto inmovilizado para luego inactivarlo por tratamiento t&eacute;rmico se convertir&iacute;a en un paso adicional que implicar&iacute;a m&aacute;s tiempo y costo <b>(<a href="#f7">Fig. 7</a>)</b>. Esto se justificar&iacute;a con estudios complementarios que demuestren que la biomasa inactiva es m&aacute;s eficiente y estable por largos periodos de operaci&oacute;n y con diferentes lotes de agua residual. La remoci&oacute;n obtenida con la espuma fue menor (p&lt;0.0001) que en los tratamientos con biomasa f&uacute;ngica. El soporte sin microorganismo inmovilizado puede tener propiedades adsortivas altas debido a que su composici&oacute;n es una mezcla de poliol e isocianato, compuestos de carga negativa que actuar&iacute;an como intercambiador cati&oacute;nico de tipo qu&iacute;mico (Castillo y Ortega 2007). Los porcentajes de remoci&oacute;n obtenidos para Cr<sub>T</sub> fueron 97, 96 y 65 % para biomasa viable, inactiva y espuma. Para Cr(VI) 85, 50, 11 y 97 % y 96 % para Cr(III) respectivamente para cada tratamiento. La remoci&oacute;n de los dos tipos de cromo present&oacute; correlaci&oacute;n positiva muy significativa con la decoloraci&oacute;n y con la cantidad de biomasa retenida en el soporte (p&lt;0.0001).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f7"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f7.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los posibles mecanismos implicados en la remoci&oacute;n del metal fueron de tres tipos: reducci&oacute;n de Cr(VI) a Cr(III) en soluci&oacute;n; el segundo la uni&oacute;n del Cr(VI) a grupos amino cargados positivamente presentes en la pared f&uacute;ngica para que se lleve a cabo una reducci&oacute;n de Cr(VI) a Cr(III) y por &uacute;ltimo la liberaci&oacute;n de Cr(III) a la soluci&oacute;n acuosa (desorci&oacute;n) por la repulsi&oacute;n de cargas entre los grupos cargados positivamente y el cromo trivalente (Park <i>et al. </i>2005). Esta &uacute;ltima opci&oacute;n posiblemente no se present&oacute;, pues el cromo trivalente no aument&oacute;, por el contrario disminuy&oacute;, por esta raz&oacute;n es factible considerar que pudo sufrir un proceso de precipitaci&oacute;n como Cr(OH)<sub>3</sub> o se present&oacute; una complejaci&oacute;n con ciertas fracciones de materia org&aacute;nica presentes en el agua residual (Rama y Ligy 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La biomasa inactivada por tratamiento t&eacute;rmico pudo modificarse y adherirse fuertemente a la espuma, de esta forma se generaron otros sitios de uni&oacute;n para el metal y se increment&oacute; el &aacute;rea superficial disponible para la adsorci&oacute;n (Bai y Abraham 2001). Esto se observ&oacute; al analizar las fotograf&iacute;as de microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido en las cuales se visualiz&oacute; adelgazamiento y compactaci&oacute;n de las hifas con el soporte <b>(<a href="#f8">Fig. 8</a>)</b>. Bayramoglu <i>et al. </i>(2005) reportaron que los tratamientos f&iacute;sicos y qu&iacute;micos pueden incrementar la capacidad adsorbente de la biomasa inactiva, b&aacute;sicamente porque los &aacute;cidos causan desnaturalizaci&oacute;n de prote&iacute;nas y protonaci&oacute;n de la hexosamina con lo que se incrementan los sitios activos de uni&oacute;n (&#150;NH<sub>2</sub>) y la posibilidad de adsorber mayor cantidad de metal a pH &aacute;cido.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f8"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f8.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al comparar este estudio con otros trabajos, es importante destacar que la remoci&oacute;n de cromo con <i>P. chrysosporium </i>inmovilizado en espuma no ha sido reportado y las eficiencias alcanzadas son altas tanto con biomasa viable como con inactiva. Rama y Ligy (2005) utilizaron el hongo de la madera <i>Ganoderma lucidum </i>inmovilizado en gravilla en reactor de mezcla completa y obtuvieron un remoci&oacute;n de cromo hexavalente del 80 % a las ocho horas de tratamiento, datos similares a los obtenidos con P. <i>chrysosporium </i>inmovilizado en espuma de poliuretano sin control de esterilidad durante el proceso.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Espectrometr&iacute;a de dispersi&oacute;n de energ&iacute;a por rayos X (EDX)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adicionalmente se realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n y semicuantificaci&oacute;n por EDX antes y despu&eacute;s del tratamiento con el agua residual <b>(<a href="#f3">Figs. 3</a>, <a href="#f4">4</a> </b>y <b><a href="#f8">8</a>) </b>y se observ&oacute; que el cromo total est&aacute; presente en la biomasa inmovilizada viable, inactiva y en la espuma. Sin embargo, el porcentaje at&oacute;mico en esta &uacute;ltima fue significativamente menor (p&lt; 0.0001) con respecto al acumulado en la biomasa viable e inactiva, resultados que ayudaron a confirmar por m&eacute;todos f&iacute;sicos que la biomasa inmovilizada es mejor para la remoci&oacute;n del metal. Como testigo se utiliz&oacute; una muestra de micelio de <i>P. chrysosporium </i>que no estuvo en contacto con el agua residual y en el microan&aacute;lisis de EDX (<a href="#f9">Fig. 9</a>) no se observ&oacute; la presencia de cromo. La elevada resoluci&oacute;n de los picos obtenidos en el EDX indican que el cromo total se uni&oacute; significativamente a la biomasa. Por otro lado se encontraron trazas de otros elementos como azufre, cloro, n&iacute;quel, sodio, aluminio, carbono y ox&iacute;geno, presentes en las tres muestras de residual. Estos elementos provienen del agua y tambi&eacute;n fueron adsorbidos a la superficie de los materiales evaluados. Fahim <i>et al. </i>(2006) confirman que es factible que el azufre y el cloro est&eacute;n presentes en concentraciones superiores a 1000 ppm en aguas residuales de curtiembres . Akar <i>et al. </i>(2005) tambi&eacute;n demostraron que otros materiales diferentes al metal pesado pueden observarse en los microan&aacute;lisis de EDX cuando se utiliza a <i>Botrytis cinerea </i>como nuevo bioadsorbente para la remoci&oacute;n de Pb (II) en soluci&oacute;n.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f9"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n3/a1f9.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>P. chrysosporium </i>fue significativamente m&aacute;s tolerante al sulfato de cromo (30,000 mg L<sup>&#150;1</sup>) y al dicromato de potasio (7500 mg L<sup>&#150;1</sup>) que <i>A. niger, T. versicolor y P. ostreatus, </i>demostrando que es una cepa hipertolerante a cromo no reportada como tal hasta el momento. Esta capacidad pudo ser desarrollada por medio de mecanismos adaptativos generados como respuesta a la exposici&oacute;n prolongada y ascendente a las sales de cromo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diluci&oacute;n del agua residual con agua potable y la suplementaci&oacute;n nutricional de la misma con carbono y nitr&oacute;geno no tuvieron efectos significativos sobre la capacidad de biodecoloraci&oacute;n de <i>P. chrysosporium. </i>Esto significa que la cepa podr&iacute;a ser utilizada para tratar el agua tal y como sale de la etapa de curtido, lo que disminuir&iacute;a los costos de tratamiento, por no ser necesario un acondicionamiento previo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>P. chrysosporium </i>se inmoviliz&oacute; en espuma de poliuretano para desarrollar un portador bif&aacute;sico resistente y eficiente para la remoci&oacute;n de color, DQO y cromo provenientes de aguas residuales de la etapa de curtido. Se demostr&oacute; que tanto la biomasa viable como la inactiva podr&iacute;an ser utilizadas como alternativa biotecnol&oacute;gica no convencional para el tratamiento de este tipo de aguas residuales sin control de esterilidad durante el proceso.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio forma parte del proyecto No. 000410 registrado en la Oficina de Fomento a la Investigaci&oacute;n de la Vicerrector&iacute;a Acad&eacute;mica de la Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, Colombia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los investigadores expresan su agradecimiento a las doctoras Refugio Rodr&iacute;guez V&aacute;zquez y Martha Barajas Aceves, investigadoras del Laboratorio de Compuestos Xenobi&oacute;ticos, Departamento de Biotecnolog&iacute;a y Bioingenier&iacute;a del Centro de Investigaciones y de Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional, CINVESTAV&#150;IPN, M&eacute;xico, D.F., por su autorizaci&oacute;n para evaluar la cepa de <i>Phanerochaete chrysosporium </i>en Colombia y por su asesor&iacute;a t&eacute;cnica, como parte del convenio de cooperaci&oacute;n interinstitucional CINVESTAV&#150;IPN/Pontificia Universidad Javeriana 2000.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los investigadores expresan su agradecimiento al Dr. Ciro Falcony, investigador del Departamento de F&iacute;sica por el apoyo en los estudios de microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido y los microan&aacute;lisis de EDX.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Acosta I., Rodr&iacute;guez X., Guti&eacute;rrez C. y Moctezuma M.G. (2004). Biosorption of chromium (VI) from aqueous solutions onto fungal biomass. Bioorganic. Chem. Appl. 2, 1&#150;2.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236245&pid=S0188-4999200800030000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahluwalia S. y Goyal D. (2007). Microbial and plant derived biomass for removal of heavy metals from wastewater. Bioresour. Technol. 98, 2243&#150;2257.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236246&pid=S0188-4999200800030000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Akar T., Tunali S. y Kiran I. (2005). <i>Botrytis cinerea </i>as a new fungal biosorbent for removal of Pb(II) from aqueous solutions. Biochem. Eng. J. 25, 227&#150;235.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236247&pid=S0188-4999200800030000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anderson R.A. (1997). Chromium as an essential nutrient for humans. Regul. Toxicol. Pharmacol. 26, S35&#150;S41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236248&pid=S0188-4999200800030000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;lvarez S., Maldonado M., Gerth A. y Kuschk P. (2004). Characterization of tannery effluents and study of the water hyacinth in chromium recovery. Informaci&oacute;n Tecnol&oacute;gica. 15, 75&#150;80.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236249&pid=S0188-4999200800030000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bai R.S. y Abraham T.E. (2003). Studies on chromium (VI) adsorption&#150;desorption using immobilized fungal biomass. Bioresour. Technol. 87, 17&#150;26.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236250&pid=S0188-4999200800030000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barajas&#150;Aceves M., Ocampo&#150;Vel&aacute;squez R. y Rodr&iacute;guez&#150;V&aacute;zquez R. (2007). Effects of Cr<sup>3+</sup>, Cr6+ and tannery sludge on C and N mineralization and microbial activity in semi&#150;arid soils. J. Hazard. Mat. 143, 522&#150;531.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236251&pid=S0188-4999200800030000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baral A. y Engelken R.D. (2002). Chromium&#150;based regulations and greening in metal finishing industries in the USA. Environ. Sci. Policy. 5, 121&#150;133.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236252&pid=S0188-4999200800030000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bayramoglu G., Celik G., Yalcin E., Yilmaz M. y Yakup&#150;Arica M. (2005). Modification of surface properties of <i>Lentinus sajor&#150;caju </i>mycelia by physical and chemical methods: evaluation of their Cr<sup>6+</sup> removal efficiencies from aqueous medium. J. Hazard. Mat. B119, 219&#150;229.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236253&pid=S0188-4999200800030000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Caesar T.C., Kloeke F.V., Geesey G. y Henson J. (1995). Melanin production by a filamentous soil fungus in response to copper and localization of copper sulfide by sulfide silver staining. Appl. Environ. Microbiol. 61, 1968&#150;1975.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236254&pid=S0188-4999200800030000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CAR (Corporaci&oacute;n Aut&oacute;noma Regional) (2004). Acuerdo 08 del 2004. Norma de vertimiento de la industria de curtido de pieles, pp. 1&#150;20.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236255&pid=S0188-4999200800030000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castillo L. y Ortega K. (2007). Efecto del soporte de inmovilizaci&oacute;n y co&#150;sustrato sobre la capacidad de remoci&oacute;n del negro reactivo 5, empleando <i>T. versicolor. </i>Tesis de Pregrado. Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, Colombia, 56 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236256&pid=S0188-4999200800030000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cervantes C. y Guti&eacute;rrez C. (1994). Copper resistance mechanisms in bacteria and fungi. FEMS. Microbiol. Rev. 4, 121&#150;138.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236257&pid=S0188-4999200800030000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Choi S., Moon S. y Gu M. (2002). Biodegradation of chlorophenols using the cell&#150;free culture broth of <i>Phanerochaete chrysosporium </i>immobilized in polyurethane foam. J. Chem. Technol. and Biotech. 77, 999&#150;1004.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236258&pid=S0188-4999200800030000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coulibaly L., Gourene G. y Spiros A. (2003). Utilization of fungi for biotreatment of raw wastewaters. African J. Biotech. 2, 620&#150;630.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236259&pid=S0188-4999200800030000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DAMA (Departamento T&eacute;cnico Administrativo del Medio Ambiente) (1997). Norma 1074/97. Rep&uacute;blica de Colombia. Est&aacute;ndares Ambientales en t&eacute;rminos de vertimientos. 1&#150;2.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236260&pid=S0188-4999200800030000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&aacute;vila A. y V&aacute;zquez&#150;Duhalt R. (2006). Enzimas ligninol&iacute;ticas f&uacute;ngicas para fines ambientales. Mensaje Bioqu&iacute;mico. 30, 29&#150;55.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236261&pid=S0188-4999200800030000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dilek F.B., Erbay A. y Yetis U. (2002). Ni(II) biosorption by <i>Polyporous versicolor. </i>Process Biochem. 37, 723&#150;726.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236262&pid=S0188-4999200800030000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doyle M. (2000). <i>Microbiolog&iacute;a de los alimentos. Fundamentos y fronteras. </i>Acribia, Zaragoza, Espa&ntilde;a, pp. 312&#150;320.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236263&pid=S0188-4999200800030000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eaton A., Clesceri L., Rice E. y Greenberg A. (2005). <i>Standard methods for the examination of water and wastewater. </i>21 ed. American Public Health Association. Washington, D.C, 1368 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236264&pid=S0188-4999200800030000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fahim N.H., Barsoum B.N., Eid A.E. y Khalil M.S. (2006). Removal of chromium (III) from tannery wastewater using activated carbon from sugar industrial waste. J. Hazard. Mat. B136, 303&#150;309.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236265&pid=S0188-4999200800030000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Filipov&iacute;c&#150;Kovacevic Z., Sipos L. y Briski F. (2000). Biosorption of chromium, copper, nickel and zinc ions onto fungal pellets of <i>Aspergillus niger </i>405 from aqueous solutions. Food Technol. Biotechnol. 38, 211&#150;216.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236266&pid=S0188-4999200800030000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fogarty R. y Tobin J. (1996). Fungal melanins and their interaction with metals. Enz. Microbial. Technol. 19, 311&#150;317.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236267&pid=S0188-4999200800030000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fu Y. y Viraraghavan T. (2001). Fungal decolorization of dye wastewater: a review. Bioresour. Technol. 79, 251&#150;261.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236268&pid=S0188-4999200800030000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Galhaup C. y Haltrich D. (2001). Enhanced formation of laccase activity by the white&#150;rot fungus <i>Trametes </i><i>pubescens </i>in the presence of copper. Appl. Microbiol. Biotechnol. 56, 225&#150;232.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236269&pid=S0188-4999200800030000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&oacute;mez&#150;Dorado C., Mart&iacute;nez&#150;Salgado M.M., Nieto&#150;Mosquera D., Pedroza&#150;Rodr&iacute;guez A., Rodr&iacute;guez&#150;V&aacute;zquez R. y Rosas&#150;Acosta J. (2005). Estudio de efecto de dos inductores y un protector enzim&aacute;tico sobre la actividad lacasa y MnP producida por <i>T. versicolor </i>y su efecto en la decoloraci&oacute;n de efluentes papeleros. Universitas Scientiarum, 10, 37&#150;45.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236270&pid=S0188-4999200800030000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Henao&#150;Jaramillo L., Fern&aacute;ndez&#150;Gonz&aacute;lez J., Castillo&#150;Carvajal L., Ortega&#150;Gonz&aacute;lez K., Quevedo&#150;Hidalgo B., Florido&#150;Cu&eacute;llar A. y Pedroza&#150;Rodr&iacute;guez A.M. (2007). Remoci&oacute;n del colorante negro reactivo 5 con biomasa viable e inmovilizada de hongos de podredumbre blanca. Memorias de XII Congreso Nacional de Biotecnolog&iacute;a y Bioingenier&iacute;a. Morelia, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico, 23 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236271&pid=S0188-4999200800030000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Iqbal M. y Saeed A. (2007). Production of an immobilized hybrid biosorbent for the sorption of Ni(II) from aqueous solution. Process. Biochem. 42, 148&#150;157.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236272&pid=S0188-4999200800030000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jarosz&#150;Wilkolazka A., Bieta&#150;Malarczyk E., Pirszel J., Skowronuski T. y Leonowicz A. (2002). Uptake of cadmium ions in white rot fungus <i>Trametes versicolor: </i>Effect of Cd (II) ions in the activity of laccase. Cell Biol. Inter. 26, 605&#150;613.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236273&pid=S0188-4999200800030000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kacar Y., Arpa C., Tan S., Denizli A., Genc O. y Arica M. (2002). Biosorption of Hg(II) and Cd(II) from aqueous solutions: comparison of biosorptive capacity of alginate and immobilized live and heat inactivated <i>Phanerochaete chrysosporium. </i>Process Biochem. 37, 601&#150;610.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236274&pid=S0188-4999200800030000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kapoor A. y Viraraghavan T. (1995). Fungal biosorption, an alternative treatment option for heavy metal bearing wastewater: A review. Bioresour. Technol. 53, 195&#150;206.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236275&pid=S0188-4999200800030000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kirk K. y Farrell R. (1997). Enzymatic combustion: the microbial degradation of lignin. Ann. Rew. 41, 465&#150;505.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236276&pid=S0188-4999200800030000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kovacevic Z., Sipos L. y Briski F. (2000). Biosorption of chromium, copper, nickel and zinc ions onto fungal pellets of <i>Aspergillus niger </i>405 from aqueous solutions. Food Technol. Biotechnol. 38, 211&#150;216.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236277&pid=S0188-4999200800030000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez&#150;Salgado M.M., Pedroza&#150;Rodr&iacute;guez A., Rodr&iacute;guez&#150;V&aacute;zquez R. y Rosas&#150;Acosta J. (2005). Efecto de la glucosa y nitrato de amonio sobre las enzimas ligninol&iacute;ticas producidas por <i>T. versicolor </i>inmovilizado en espuma y la decoloraci&oacute;n de un efluente papelero en un reactor de lecho fluidizado. Universitas Scientiarum, 10, 27&#150;36.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236278&pid=S0188-4999200800030000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Michel F., Balachandra S., Grulke E. y Adinarayana C. (1991). Role of manganese peroxidases and lignin peroxidases of <i>Phanerochaete chrysosporium </i>in the decolorization of kraft bleach plant effluent. Appl. Environ. Microbiol. 57, 2368&#150;2375.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236279&pid=S0188-4999200800030000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Miller G. (1959). Use of dinitrosalicilic acid reagent for determination of reducing sugar. Ana. Chem. 35, 426&#150;428.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236280&pid=S0188-4999200800030000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ministerio de Salud Rep&uacute;blica de Colombia. (1984). Decreto 1594. Usos del agua y residuos l&iacute;quidos. pp. 1&#150;52.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236281&pid=S0188-4999200800030000100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Montgomery D.C. (2003). <i>Dise&ntilde;o y an&aacute;lisis de experimentos. </i>Limusa Wiley, M&eacute;xico D.F. 218 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236282&pid=S0188-4999200800030000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morato R., R&iacute;os M., Pedroza A.M. y Mart&iacute;nez M.M. (2003). Evaluaci&oacute;n de un sistema de flujo discontinuo para la remoci&oacute;n de cromo con <i>Aspergillus niger. </i>Memorias de III Congreso de Investigaci&oacute;n de la Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, Colombia, p. 67.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236283&pid=S0188-4999200800030000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nasseri S., Mazaheri&#150;Assadi M., Moori&#150;Sepehr M., Rostami Kh., Shariat M. y Nasadfi K. (2002). Chromium removal from tanning effluents using biomass of <i>Aspergillus oryzae. </i>Pakistan J. Biol. Sci. 5, 1056&#150;1059.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236284&pid=S0188-4999200800030000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Palmieri G., Giardina P., Bianco P., Fontanella B. y Sannia G. (2000). Copper induction of laccase isoenzyme in the ligninolytic fungus <i>Pleurotus ostreatus. </i>Appl. Environ. Microbiol. 66, 920&#150; 924.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236285&pid=S0188-4999200800030000100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Park D., Yun J., Jo J. y Parka J. (2005). Mechanism of hexavalent chromium removal by dead fungal biomass of <i>Aspergillus niger. </i>Water Res. 39,533&#150;540.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236286&pid=S0188-4999200800030000100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedroza&#150;Rodr&iacute;guez A.M., Mosqueda R., Alonso&#150;Vante N. y Rodr&iacute;guez&#150;V&aacute;zquez R. (2007). Sequential treatment <i>via T. versicolor </i>and UV/TiO<sub>2</sub>/Ru<sub>x</sub>Se<sub>y</sub> to reduce contaminants in waste water resulting from the bleaching process during paper production. Chemosphere. 67, 793&#150;801.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236287&pid=S0188-4999200800030000100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedroza&#150;Rodr&iacute;guez A.M. (2006). Tratamiento de aguas residuales de la industria papelera mediante un sistema secuencial: hongos ligninol&iacute;ticos y un proceso fotocatal&iacute;tico nanoestructurado de TiO<sub>2</sub>/Ru<sub>x</sub>Se<sub>y</sub>. Tesis de Doctorado en Ciencias. Centro de Investigaciones y de Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional. M&eacute;xico D.F, M&eacute;xico. 219 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236288&pid=S0188-4999200800030000100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Qingbiao L., Songtao W., Gang L., Xinkai L., Xu D., Daohua S., Yuelin H. y Yili H. (2004). Simultaneous biosorption of cadmium (II) and lead (II) ions by pretreated biomass of <i>Phanerochaete chrysosporium. </i>Separat. Purificat Technol. 34, 135&#150;142.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236289&pid=S0188-4999200800030000100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rama K. y Ligy P. (2005). Bioremediation of Cr(VI) in contaminated soils. J. Hazard. Mater. B121, 109&#150;117.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236290&pid=S0188-4999200800030000100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ram B., Bajpai P. y Parwane H. (1999). 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Evaluation of bioremediation and detoxification potentiality of isolation and process parameter optimization <i>of Aspergillus </i>sp. for removal of chromium from tannery effluent. Bioresour. Technol. 97, 1167&#150;1173.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236294&pid=S0188-4999200800030000100050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">T&eacute;llez M. J., Carvajal R.M. y Gait&aacute;n A.M. (2004). Aspectos toxicol&oacute;gicos relacionados con la utilizaci&oacute;n del cromo en el proceso productivo de curtiembres. Rev. Fac. Med. Univ. Nal. 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Kinetic differences of purified lacease from <i>six Pleurotus ostreatus </i>strains. Letter Appl. Microbiol. 32, 331&#150;335.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7236297&pid=S0188-4999200800030000100053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zouboulis A.I., Loukidou M.X. y Matis K.A. (2004). Biosorption of toxic metals from aqueous solutions by bacteria strains isolated from metal&#150;polluted soils. Process. 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