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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de las micorrizas arbusculares en el crecimiento, fotosíntesis y anatomía foliar de plantas jóvenes de Agave tequilana]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of vesicular arbuscular micorrhizal symbiosis (VAM) in growth, seasonal photosynthesis, and foliar anatomy was evaluated on young plants of Agave tequilana. These were established in pots and inoculated with one of two strains of VAM fungi: Glomus fasciculatum (Gf) or Glomus intraradices (Gi), and compared with control plants without inoculation. To evaluate these treatments a completely randomized experimental design was used with six replications and 18 experimental units. The physiological and morphological variables evaluated were: photosynthetic rate, number of young leaves, length and thickness of mature leaves, and percentage of root colonization by VAM fungi. The inoculation increased photosynthetic rate, which was highest in plants inoculated with the Gi strain than both those inoculated with the Gf and the control plants, and it was related with an increase in mesophyll thickness that was most noticeable in the chlorenchyma tissue. However, the variables related to growth, length and width of leaves were unaffected.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de las micorrizas arbusculares en el crecimiento, fotos&iacute;ntesis y anatom&iacute;a foliar de plantas j&oacute;venes de <i>Agave tequilana</i></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of arbuscular mycorrhiza in the growth, photosynthesis and foliar anatomy on young plants of <i>Agave tequilana</i></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Eulogio Pimienta&#150;Barrios<sup>1</sup>, Julia Za&ntilde;udo&#150;Hern&aacute;ndez<sup>1</sup> y Eduardo L&oacute;pez&#150;Alcocer<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Universidad de Guadalajara, Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias, Departamento de Ecolog&iacute;a, km 15.5 carretera a Nogales, 45110 Las Agujas, Zapopan, Jalisco, M&eacute;xico.</i> <a href="mailto:epimient@cucba.udg.mx">epimient@cucba.udg.mx</a> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Universidad de Guadalajara, Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias, Departamento de Ciencias Ambientales, km 15.5 carretera a Nogales, 45110 Las Agujas, Zapopan, Jalisco, M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en noviembre de 2007    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado en junio de 2009</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; el efecto de la simbiosis de hongos micorr&iacute;cicos ves&iacute;culo arbusculares (MVA) en el crecimiento, la fotos&iacute;ntesis estacional y la anatom&iacute;a foliar en plantas j&oacute;venes de <i>Agave tequilana. </i>&Eacute;stas se establecieron en macetas y fueron inoculadas con una de dos cepas de hongos MVA: <i>Glomus fasciculatum </i>(Gf) o <i>Glomus intraradices </i>(Gi), para su comparaci&oacute;n con testigos sin inoculaci&oacute;n. Para la evaluaci&oacute;n de estos tratamientos se us&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, con seis repeticiones, en un total de 18 unidades experimentales. Las variables fisiol&oacute;gicas y morfol&oacute;gicas evaluadas fueron: tasa de fotos&iacute;ntesis, n&uacute;mero de hojas j&oacute;venes, longitud, ancho y grosor de hojas maduras, y porcentaje de colonizaci&oacute;n de ra&iacute;ces por hongos MVA. La inoculaci&oacute;n increment&oacute; la fotos&iacute;ntesis, siendo &eacute;sta mayor en individuos tratados con la cepa Gi que con la Gf y las plantas testigo, lo cual se relacion&oacute; con un aumento en el grosor del mes&oacute;filo, que fue m&aacute;s notable en el clor&eacute;nquima. Sin embargo, las micorrizas no afectaron las variables relacionadas con el crecimiento, la longitud y el ancho de las hojas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Agave tequilana, </i>anatom&iacute;a foliar, crecimiento, fotos&iacute;ntesis estacional, Metabolismo &Aacute;cido de las Crasul&aacute;ceas, simbiosis micorr&iacute;cica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The effect of vesicular arbuscular micorrhizal symbiosis (VAM) in growth, seasonal photosynthesis, and foliar anatomy was evaluated on young plants of <i>Agave tequilana. </i>These were established in pots and inoculated with one of two strains of VAM fungi: <i>Glomus fasciculatum </i>(Gf) or <i>Glomus intraradices </i>(Gi), and compared with control plants without inoculation. To evaluate these treatments a completely randomized experimental design was used with six replications and 18 experimental units. The physiological and morphological variables evaluated were: photosynthetic rate, number of young leaves, length and thickness of mature leaves, and percentage of root colonization by VAM fungi. The inoculation increased photosynthetic rate, which was highest in plants inoculated with the Gi strain than both those inoculated with the Gf and the control plants, and it was related with an increase in mesophyll thickness that was most noticeable in the chlorenchyma tissue. However, the variables related to growth, length and width of leaves were unaffected.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Agave tequilana, </i>Crassulacean Acid Metabolism, growth, leaf anatomy, mycorrhizal symbiosis, seasonal photosynthesis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La historia evolutiva de las plantas vasculares indica una estrecha asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica con microorganismos del suelo (Morton, 2000; Trappe, 2005; Wang y Quiu, 2006). Una de las relaciones m&aacute;s ampliamente estudiadas es la simbiosis micorr&iacute;cica ves&iacute;culo arbuscular (MVA), que es una vinculaci&oacute;n entre hongos biotr&oacute;ficos del orden Glomales (clase Zygomycetes) y el sistema radical de los vegetales (Morton y Benny, 1990). Las estructuras comunes de los hongos MVA en la ra&iacute;z de las plantas que colonizan son: ves&iacute;cula, arb&uacute;sculo, hifa y micelio externo (Smith y Read, 1997). Aunque cada uno de estos elementos desempe&ntilde;a un papel importante en la simbiosis micorr&iacute;cica (Ferrera&#150;Cerrato y Gonz&aacute;lez&#150;Ch&aacute;vez, 1998), el arb&uacute;sculo se considera como la estructura m&aacute;s importante desde el punto de vista fisiol&oacute;gico, ya que en &eacute;sta se lleva a cabo el intercambio nutricional entre el hongo y el hospedero (Orcutt y Nilsen, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mutua dependencia del organismo hospedante y del hu&eacute;sped (hongos MVA) consiste en que el primero representa una fuente directa de carbono y nitr&oacute;geno, elementos indispensables para el desarrollo del segundo; por su parte, el hu&eacute;sped forma una red f&uacute;ngica laxa con desarrollo intra e intercelular en la corteza radical de la planta, que se extiende hacia su entorno. Mediante este ret&iacute;culo las ra&iacute;ces absorben agua y minerales (sobre todo f&oacute;sforo) en regiones del suelo que est&aacute;n fuera de los l&iacute;mites naturales de exploraci&oacute;n radical y que son transportados a los diferentes &oacute;rganos del vegetal. Tal proceso favorece su desarrollo, pues se incrementa la provisi&oacute;n de estos recursos, lo que se refleja en una mayor eficiencia fotosint&eacute;tica y una menor incidencia de organismos pat&oacute;genos (Safir, 1990; Kyde y Gould, 2000). Adem&aacute;s, los hongos MVA modifican las relaciones h&iacute;dricas de las plantas mediante diferentes mecanismos, los cuales incluyen una ampliaci&oacute;n en el &aacute;rea de superficie de ra&iacute;ces micorr&iacute;cicas, regulaci&oacute;n estom&aacute;tica y una menor resistencia en el transporte del agua y los solutos, mejorando su movilidad en el hospedero. Todo esto se refleja en un incremento en la conductividad hidr&aacute;ulica (Ruiz&#150;Lozano y Azc&oacute;n, 1995; Orcutt y Nilsen, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estudios sobre los efectos de la simbiosis micorr&iacute;cica en la fisiolog&iacute;a de plantas con metabolismo &aacute;cido de las crasul&aacute;ceas (CAM, siglas en ingl&eacute;s), como es el caso de <i>Agave tequilana, </i>son escasos en comparaci&oacute;n con las del tipo C<sub>3</sub> (Cui y Nobel, 1992; Pimienta&#150;Barrios et al., 2003). El presente trabajo se realiz&oacute; despu&eacute;s de que uno de los autores (Pimienta&#150;Barrios) llevara a cabo observaciones que mostraron que la especie mencionada increment&oacute; su desarrollo en respuesta a la inoculaci&oacute;n con hongos micorr&iacute;cicos; sin embargo, no se especificaron algunos de los posibles efectos de tal reacci&oacute;n. Por lo tanto, en esta investigaci&oacute;n se evalu&oacute; el efecto de dos cepas f&uacute;ngicas MVA en el crecimiento, la anatom&iacute;a foliar y la fotos&iacute;ntesis en <i>A. tequilana, </i>con el prop&oacute;sito de determinar la existencia de una correlaci&oacute;n entre ellos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Descripci&oacute;n del sitio de estudio</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio se efectu&oacute; de septiembre de 1999 a noviembre de 2000 en el campo experimental del Departamento de Ecolog&iacute;a de la Universidad de Guadalajara en Zapopan, Jalisco, M&eacute;xico, ubicado en 20&deg;5' N, 103&deg;32' O, a 1420 m de altitud. De acuerdo con la clasificaci&oacute;n de K&oacute;ppen modificada por Garc&iacute;a (1981), el clima es del tipo Aw<sub>0</sub>(w)(e)g, que se caracteriza por ser subh&uacute;medo, con 930 mm de precipitaci&oacute;n pluvial en promedio anual, de la cual la mayor parte (alrededor de 90%) se presenta en el verano (junio&#150;octubre), con lluvias escasas en invierno. La temperatura promedio anual es de 21 &deg;C, con una oscilaci&oacute;n en el a&ntilde;o entre 7 y 28 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos de precipitaci&oacute;n y de temperaturas m&aacute;ximas y m&iacute;nimas durante el experimento se obtuvieron de la Quinta Base A&eacute;rea Militar Mexicana, que se ubica a 10 km del sitio de estudio, y los datos clim&aacute;ticos hist&oacute;ricos de 1990 al 2006 los proporcion&oacute; la Comisi&oacute;n Nacional del Agua (CONAGUA).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Establecimiento del experimento</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El 12 de febrero de 1999 se trasplantaron hijuelos de <i>A. tequilana </i>de dos a&ntilde;os de edad en 18 recipientes de pl&aacute;stico (20 l de capacidad), los cuales estaban llenos hasta la mitad con suelo de textura franco&#150;arenosa, pH 5.5 y 3.1% de materia org&aacute;nica, proveniente del sitio de recolecci&oacute;n de las plantas y previamente desinfectado con bromuro de metilo. Despu&eacute;s se combinaron con &eacute;l 100 g de in&oacute;culo de una de dos cepas de hongos micorr&iacute;cicos ves&iacute;culo arbusculares (MVA), para establecer los dos siguientes tratamientos: (1) <i>glomus fasciculatum </i>(Gf) y (2) <i>glomus intraradices </i>(Gi), adem&aacute;s del control (T), consistente en plantas con suelo sin inocular. En seguida, se trasplant&oacute; un hijuelo de agave por recipiente. Posteriormente se agreg&oacute; otra porci&oacute;n de suelo y se les reg&oacute; con 2 l de agua cada tercer d&iacute;a durante los primeros tres meses (febrero a mayo de 1999) hasta el comienzo del periodo de lluvias en junio. Para evaluar los tratamientos se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, con seis repeticiones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada uno de ellos se realizaron las siguientes determinaciones:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Fotos&iacute;ntesis estacional. Las tasas instant&aacute;neas de asimilaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> se registraron cada 2 h en periodos de 24 h con un sistema port&aacute;til de medici&oacute;n de intercambio de gases (LI&#150;COR LI&#150;6200), en seis hojas de diferentes plantas, en las fechas siguientes: 15&#150;16 septiembre, 12&#150;13 noviembre de 1999, 14&#150;15 enero, 17&#150;18 marzo, 30&#150;31 mayo, 19&#150;20 julio, 1&#150;2 septiembre y 29&#150;30 noviembre de 2000. La c&aacute;mara original para registrar el intercambio de gases de 0.25 l fue modificada para poder realizar la medici&oacute;n en hojas suculentas (Raveh et al., 1998; Pimienta&#150;Barrios et al., 2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de asimilaci&oacute;n neta diaria de CO<sub>2</sub> se obtuvieron mediante la estimaci&oacute;n con integrales del &aacute;rea de valores positivos de incorporaci&oacute;n (tasas instant&aacute;neas &gt; 0) y los de asimilaci&oacute;n negativa (tasas instant&aacute;neas &lt; 0). A los valores de ganancia positiva se les restaron los negativos para obtener los totales para un periodo de 24 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Colonizaci&oacute;n por hongos MVA. Para evaluar esta variable, se recolectaron ra&iacute;ces formadas al inicio de las lluvias, conocidas como "ra&iacute;ces de lluvia" (Nobel, 1988), las cuales fueron fijadas en FAA (formaldeh&iacute;do:&aacute;cido ac&eacute;tico: etanol 10:5:85) y aclaradas en una soluci&oacute;n de KOH (10%), para su ablandamiento en una autoclave por 10 min a 10 libras. Esta soluci&oacute;n se decant&oacute; y las ra&iacute;ces se lavaron para agregarles HCl (3%). Por &uacute;ltimo, se ti&ntilde;eron con azul de tripano (0.05%) en lactoglicerol (Phillips y Hayman, 1970). El porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;cica se evalu&oacute; en 10 segmentos de ra&iacute;z de 1 cm, aplicando el m&eacute;todo descrito por McGonigle et al. (1990) y con ayuda de un microscopio Zeiss.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Caracter&iacute;sticas anat&oacute;micas. Se hicieron cortes transversales con la ayuda de una navaja de rasurar y &eacute;stos se ti&ntilde;eron con azul de toluidina (0.5%). Se midi&oacute; el espesor del clor&eacute;nquima y par&eacute;nquima medular.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Crecimiento vegetativo. De septiembre de 1999 a noviembre de 2000 se midi&oacute; cada mes el crecimiento vegetativo, mediante el registro del n&uacute;mero de hojas que se formaron en el &aacute;pice de la planta ("cogollo") y la medici&oacute;n de la longitud, el ancho y el espesor de las mismas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En 1999 los promedios mensuales diarios de las temperaturas m&iacute;nimas durante el periodo en estudio oscilaron entre 4 y 15 &deg;C durante la noche, y las m&aacute;ximas entre 25 y 29 &deg;C durante el d&iacute;a, mientras que en el a&ntilde;o 2000 variaron de 5 a 17 &deg;C en la noche y 26 a 34 &deg;C en el d&iacute;a. Estos datos difieren de manera notable de los promedios mensuales registrados de 1990 a 1998, ya que en esos a&ntilde;os la temperatura m&iacute;nima oscil&oacute; de 9 a 19 &deg;C durante la noche y de 27 a 36 &deg;C durante el d&iacute;a (An&oacute;nimo, 2006). Los meses m&aacute;s c&aacute;lidos fueron abril y mayo en 2000. Las noches m&aacute;s fr&iacute;as se presentaron en noviembre y diciembre de 1999, y en enero y febrero de 2000 (<a href="#f1">Fig. 1</a>). El inicio del periodo de lluvias vari&oacute; entre los a&ntilde;os, ya que en algunos (1991, 1993 y 1998) comenz&oacute; en junio. En 2000, las primeras precipitaciones se presentaron en mayo y se incrementaron durante el verano; en 1999 y 2000 la temporada de lluvias termin&oacute; en octubre. La precipitaci&oacute;n pluvial total en 2000 fue de 1009 mm (<a href="#f1">Fig. 1</a>). Este valor fue mayor que el que se present&oacute; en 1993 (820 mm) y cercano al de 1997 (1146 mm) (An&oacute;nimo, 2006).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el <a href="#c1">Cuadro 1</a> se muestran los porcentajes de colonizaci&oacute;n en las ra&iacute;ces finas de <i>Agave tequilana </i>inoculadas con las cepas Gf y Gi de julio a octubre de 1999. Los n&uacute;meros indican la ausencia de esta acci&oacute;n en T y su incremento de julio a septiembre, llegando a un valor de 47% para Gf y de 57% para Gi. Su disminuci&oacute;n en octubre se atribuye al hecho de que al final del verano las ra&iacute;ces inician su senescencia y es el momento en que termina la actividad de la simbiosis micorr&iacute;cica (Nobel, 1988).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de colonizaci&oacute;n por hongos micorr&iacute;cicos observados en <i>A. tequilana </i>fueron superiores a los reportados para <i>Agave deserti </i>por Cui y Nobel (1992), especie en la que alcanzaron un m&aacute;ximo de 64%; dichos autores relacionaron este valor con un incremento de 19% en la asimilaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> y atribuyeron tal respuesta a que la simbiosis micorr&iacute;cica mejora la absorci&oacute;n de agua y nutrimentos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, en <i>Opuntia robusta </i>la supresi&oacute;n de la colonizaci&oacute;n de las ra&iacute;ces por hongos MVA con la aplicaci&oacute;n del fungicida benlate en su riz&oacute;sfera caus&oacute; una reducci&oacute;n de 30% en la fotos&iacute;ntesis en comparaci&oacute;n con las plantas sin el mencionado tratamiento. Sin embargo, no hubo diferencias en la absorci&oacute;n de f&oacute;sforo y agua entre las plantas a las que se aplic&oacute; benlate y a las que esto no se hizo (Pimienta&#150;Barrios et al., 2003). En contraste, en <i>Opuntia robusta </i>la supresi&oacute;n de la colonizaci&oacute;n de hongos MVA por el fungicida redujo la fotos&iacute;ntesis en 30% (Pimienta&#150;Barrios et al., 2003), pero esta disminuci&oacute;n no se imput&oacute; a que la simbiosis micorr&iacute;cica mejor&oacute; la absorci&oacute;n de agua y nutrimentos, como fue observado en <i>Agave deserti.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante 1999, el valor m&aacute;ximo de asimilaci&oacute;n neta diaria de CO<sub>2</sub> se detect&oacute; en septiembre con Gi (321 mmol m<sup>&#150;2</sup> d<sup>&#150;1</sup>), seguido de Gf (257 mmol m<sup>&#150;2</sup> d<sup>&#150;1</sup>), mientras que el menor se registr&oacute; en T (222 mmol m<sup>&#150;2</sup> d<sup>&#150;1</sup>). En cambio, se redujo de manera significativa en noviembre, en particular en los individuos inoculados con Gf y en T, en los que se observaron valores negativos (&#150;35.0 mmol m<sup>&#150;2</sup> d<sup>&#150;1</sup> y &#150;120 mmol m<sup>&#150;2 </sup>d<sup>&#150;1</sup> respectivamente), mientras que en el tratamiento Gi se present&oacute; una asimilaci&oacute;n positiva relativamente baja (28 mmol m<sup>&#150;2</sup> d<sup>&#150;1</sup>) (<a href="#f2">Fig. 2</a>). Dicha disminuci&oacute;n se debe a que en este mes se registraron tasas fotosint&eacute;ticas negativas durante el d&iacute;a, que se prolongaron durante las primeras horas de la noche (<a href="#f3">Figs. 3</a>, <a href="#f4">4</a>, y <a href="#f5">5</a>). En Gf y T las tasas de asimilaci&oacute;n positiva despu&eacute;s de la medianoche fueron iguales o inferiores a 1.0 (&micro;mol m<sup>&#150;2</sup> s<sup>&#150;1</sup> (<a href="#f3">Figs. 3</a> y <a href="#f5">5</a>); en contraste, en Gi fueron m&aacute;s altas y oscilaron entre 1.0 y 7 (&micro;mol m<sup>&#150;2</sup> s<sup>&#150;1</sup> (<a href="#f4">Fig. 4</a>). Esta reducci&oacute;n fue causada por una baja brusca en la temperatura (4 &deg;C) cuando todav&iacute;a el ambiente estaba todav&iacute;a c&aacute;lido y sugiere que las plantas de <i>A. tequilana </i>no tuvieron oportunidad de aclimatarse a tal descenso; adem&aacute;s, indica que esta planta presenta menor resistencia a las temperaturas bajas, en comparaci&oacute;n con otras especies de agave (Nobel et al., 1998).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5f2.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5f3.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5f4.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5f5.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En estudios con <i>Agave americana </i>y <i>Agave tequilana </i>(Raveh et al., 1998; Pimienta&#150;Barrios et al., 2001) se ha encontrado que la mayor parte de la asimilaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> se presenta durante la noche, cuando las temperaturas son frescas y la humedad relativa es alta. Estas condiciones reducen la p&eacute;rdida de agua por transpiraci&oacute;n (Nobel, 1994). Sin embargo, los datos sobre la asimilaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> en plantas de A. <i>tequilana </i>inoculadas con Gi y Gf, y en T, durante 24 h en la mayor&iacute;a de los meses evaluados (<a href="#f3">Figs. 3</a>, <a href="#f4">4</a> y <a href="#f5">5</a>) mostraron que adem&aacute;s de la absorci&oacute;n nocturna (ruta fotosint&eacute;tica CAM), tambi&eacute;n se capta CO<sub>2</sub> durante el d&iacute;a (al final de la tarde o al amanecer) a trav&eacute;s de la ruta fotosint&eacute;tica C<sub>3</sub>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La comparaci&oacute;n del grosor del tejido fotosint&eacute;tico (clor&eacute;nquima) con los promedios de asimilaci&oacute;n neta diaria de CO<sub>2</sub> registrados entre septiembre de 1999 y noviembre de 2000 mostr&oacute; un incremento del primero en las plantas inoculadas con Gf y Gi. Este resultado se relacion&oacute; con una mayor asimilaci&oacute;n diaria de CO<sub>2</sub>, que alcanz&oacute; valores de 77% en plantas con Gi y de 2% con Gf (<a href="#c2">Cuadro 2</a>) con respecto a T. No obstante que la simbiosis micorr&iacute;cica increment&oacute; la asimilaci&oacute;n anual de carbono y el espesor del clor&eacute;nquima y de las hojas, no tuvo un efecto positivo en las variables relacionadas con la morfolog&iacute;a foliar, como el n&uacute;mero, largo y ancho de las hojas (<a href="#c3">Cuadro 3</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5c2.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/abm/n89/a5c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es probable que el aumento en el espesor est&eacute; relacionado con un fomento en la incorporaci&oacute;n de nitr&oacute;geno, como se encontr&oacute; en otras especies (Patton y Jones, 1989; Garnier et al., 1999; Slaton y Smith, 2002). Este elemento estimula el crecimiento en los &oacute;rganos (i.e. las hojas) en desarrollo (MacAdam et al., 1989; Rademacher y Nelson, 2001). El aumento en el espesor foliar en A. <i>tequilana </i>se puede atribuir a que la simbiosis micorr&iacute;cica mejora de forma notable la absorci&oacute;n de los minerales del suelo (Smith y Read, 1997; Clark y Zeto, 2000). Sin embargo, el ensanchamiento tambi&eacute;n podr&iacute;a deberse a un efecto hormonal, ya que la simbiosis micorr&iacute;cica estimula la actividad metab&oacute;lica radical y probablemente aumente la s&iacute;ntesis de citocininas en las ra&iacute;ces, donde se lleva a cabo este proceso (Salisbury y Ross, 1992; Srivastava, 2002). Las mencionadas fitohormonas activan la divisi&oacute;n celular y por consecuencia el crecimiento de diferentes &oacute;rganos de la planta (Walch&#150;Liu et al., 2000), como las hojas, donde adem&aacute;s promueven la formaci&oacute;n de cloroplastos e inducen la bios&iacute;ntesis de clorofila (Srivastava, 2002). Lo anterior sugiere que los efectos estructurales y fisiol&oacute;gicos observados en las hojas de A. <i>tequilana </i>en respuesta a la colonizaci&oacute;n por MVA no se pueden atribuir s&oacute;lo a la absorci&oacute;n de agua y minerales (Hart y Trevors, 2005). Estas observaciones indican que la planta en cuesti&oacute;n presenta cierta dependencia fisiol&oacute;gica de las micorrizas, como ocurre en otras especies vegetales, principalmente en sus primeras etapas de desarrollo (Salisbury y Ross, 1992; Lambers et al., 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios recientes muestran que la agricultura se desarroll&oacute; en el siglo XX sin enfocarse en el manejo de los microorganismos de la riz&oacute;sfera, no obstante que su actividad suele desempe&ntilde;ar un papel elemental en el aprovechamiento agr&iacute;cola sustentable (Vandermeer, 1995; Hart y Trevors, 2005), pues estos constituyentes del suelo son importantes para las funciones b&aacute;sicas como la descomposici&oacute;n de materiales org&aacute;nicos, la adquisici&oacute;n y la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo, que son parte esencial de las redes tr&oacute;ficas. Investigaciones recientes revelaron que tales componentes mejoran las relaciones h&iacute;dricas de las plantas al influir en las conductancias estom&aacute;tica e hidr&aacute;ulica (Auge, 2001), adem&aacute;s de que promueven el establecimiento de pl&aacute;ntulas, la resistencia a pat&oacute;genos, la tolerancia a herb&iacute;voros y a metales pesados, y que mejoran la estructura de los suelos (Hart y Trevors, 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los &uacute;ltimos 50 a&ntilde;os se han utilizado m&eacute;todos de manejo que incrementan el rendimiento agr&iacute;cola o reducen el tiempo hasta la cosecha, con apoyo de fertilizantes, herbicidas y plaguicidas. Estas pr&aacute;cticas han erradicado a la mayor&iacute;a de los microbios de la riz&oacute;sfera en los principales agroecosistemas (Matson et al., 1997), lo que en consecuencia puede obstaculizar la introducci&oacute;n o recuperaci&oacute;n de poblaciones ben&eacute;ficas de microorganismos en los suelos as&iacute; afectados.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Eacute;ste es el caso del cultivo del agave a partir de la &uacute;ltima d&eacute;cada, a causa de la creciente demanda nacional e internacional del tequila. Si bien debe reconocerse que con ello se tiene un mayor &eacute;xito en la producci&oacute;n, el empleo intensivo de agroqu&iacute;micos acompa&ntilde;ado de m&eacute;todos de manejo del suelo orientados al control de malezas puede disminuir con el tiempo las poblaciones de estos microbios asociados a la riz&oacute;sfera de las plantaciones de <i>A. tequilana. </i>Este hecho puede afectar las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas, as&iacute; como las cadenas o redes tr&oacute;ficas del suelo, y a la larga su fertilidad natural y su salud, a causa de la alteraci&oacute;n de los ciclos de algunos de los principales minerales (Bethlenfalvay y Linderman, 1992; Smith y Read, 1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n de plantas j&oacute;venes de <i>Agave tequilana </i>con hongos micorr&iacute;cicos aument&oacute; la asimilaci&oacute;n neta diaria de CO<sub>2</sub>, siendo &eacute;sta mayor en la cepa Gi en comparaci&oacute;n con Gf. Ambas fueron superiores a los valores de ganancia de carbono observados sin hongos MVA. El incremento de la fotos&iacute;ntesis se asoci&oacute; con cambios en la estructura foliar, ya que en los individuos tratados de esta manera las hojas tuvieron mayor espesor, sobre todo en el clor&eacute;nquima. Por el contrario, no se detectaron diferencias en el crecimiento entre plantas inoculadas y las que no lo fueron.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece a Tequila Herradura por el financiamiento de la investigaci&oacute;n; un reconocimiento especial al Dr. Servando Carvajal Hern&aacute;ndez y a la Dra. Blanca C. Ram&iacute;rez Hern&aacute;ndez por su valiosa colaboraci&oacute;n en la revisi&oacute;n y edici&oacute;n del manuscrito as&iacute; como al comit&eacute; editorial de la revista y a los revisores por sus aportaciones al escrito.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">An&oacute;nimo. 2006. Registro hist&oacute;rico de 1990 hasta 2006. Comisi&oacute;n Nacional del Agua. M&eacute;xico, D.F.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027810&pid=S0187-7151200900040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Auge, R. M. 2001. Water relations, drought and vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal symbiosis. Mycorrhiza 11(1): 3&#150;42. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027811&pid=S0187-7151200900040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bethlenfalvay, G. J. y R. G. Linderman (Eds.). 1992. Mycorrhizae in sustainable agriculture. Am. Soc. Agron. ASA Special publication No. 54. Madison, WI. 124 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027812&pid=S0187-7151200900040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clark, R. B. y S. K. Zeto. 2000. Mineral acquisition by arbuscular mycorrhizal plants J. Plant Nut. 23(7): 867&#150;902. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027813&pid=S0187-7151200900040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cui, M. y P. S. Nobel. 1992. Nutrient status, water uptake and gas exchange for three desert succulents infected with mycorrhizal fungi. New Phytol. 122(4): 643&#150;649. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027814&pid=S0187-7151200900040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ferrera&#150;Cerrato, R. y C. Gonz&aacute;lez&#150;Ch&aacute;vez. 1998. La simbiosis micorr&iacute;zica en el manejo del vivero de los c&iacute;tricos. In: Ferrera&#150;Cerrato, R. y J. P&eacute;rez&#150;Moreno (eds.). Manejo de agroecosistemas sostenibles. Textos Universitarios. Universidad Aut&oacute;noma de Tlaxcala. Tlaxcala. pp. 37&#150;64. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027815&pid=S0187-7151200900040000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garc&iacute;a, E. 1981. Modificaciones al sistema de clasificaci&oacute;n clim&aacute;tica de K&ouml;ppen (para adaptarlo a las condiciones de la Rep&uacute;blica Mexicana). Instituto de Geograf&iacute;a, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. M&eacute;xico, D.F. 252 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027816&pid=S0187-7151200900040000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garnier, E., J. L. Salager, G. Laurent y L. Soni&eacute;. 1999. Relationships between photosynthesis, nitrogen and leaf structure in 14 grass species and their dependence on the basis of expression. New Phytol. 143(1): 119&#150;129.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027817&pid=S0187-7151200900040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hart, M. y J. T. Trevors. 2005. Microbe management: application of mycorrhyzal fungi in a sustainable agriculture. Frontiers in Ecology and the Environment 10(3): 533&#150;539. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027818&pid=S0187-7151200900040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kyde, M. M y A. B. Gould. 2000. Mycorrhizal endosymbiosis. In: Bacon, C. W. y J. F. White (eds.). Microbial endophytes liver. Marcel Dekker Blackwell. Londres. pp. 161&#150;198. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027819&pid=S0187-7151200900040000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lambers, H., F. S. Chapin III y T. L. Pons. 1998. Plant physiological ecology. Springer&#150;Verlag. Nueva York. 540 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027820&pid=S0187-7151200900040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MacAdam, J. W., J. J. Volenec y C. J. Nelson. 1989. Effects of nitrogen on mesophyll cell division and epidermal cell elongation in tall fescue leaf blades. Plant Physiol. 89(2): 549&#150;556.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027821&pid=S0187-7151200900040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matson, A. P. A., W. J. Parton, A. G. Power y M. J. Swift. 1997. Agricultural intensification and ecosystem properties. Science 277(5325): 504&#150;509.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027822&pid=S0187-7151200900040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McGonigle, T. P., M. H. Miller, D. G. Evans, G. L. Fairchild y J. A. Swan. 1990. A new method which gives an objective measure of colonization of roots by vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal fungi. New Phytol. 115(3): 495&#150;501. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027823&pid=S0187-7151200900040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morton, J. B. 2000. Evolution of endophytism in arbuscular mycorrhizal fungi of Glomales. In: Bacon, W. C. y F. J. White (eds.). Microbial endophytes. Marcel Dekker Balckwell, Inc. Nueva York. pp. 121&#150;140. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027824&pid=S0187-7151200900040000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morton, J. B. y G. L. Benny. 1990. Revised classification of arbuscular mycorrhizal fungi (Zigomycetes): a new order, Glomales, two new suborders, Glomineae and Gigasporinae, and two new families, Acaulosporeceae and Gigasporaceae, with an amendation of Glomaceae. Mycotaxon 37(1): 471&#150;491. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027825&pid=S0187-7151200900040000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nobel, P. S. 1988. Environmental biology of agaves and cacti. Cambridge University Press. Cambridge. 270 pp.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027826&pid=S0187-7151200900040000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nobel, P. S. 1994. Remarkable agaves and cacti. Oxford University Press. Nueva York. 180 pp.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027827&pid=S0187-7151200900040000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nobel, P. S., G. Casta&ntilde;eda, G. North, E. Pimienta&#150;Barrios y J. A. Ruiz&#150;Corral. 1998. Temperatures influences on leaf CO<sub>2</sub> exchanges, cell viability and cultivation range for <i>Agave tequilana. </i>J. Arid Environ. 39(1): 1&#150;19. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027828&pid=S0187-7151200900040000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Orcutt, M. D. y E. T. Nilsen. 2000. The physiology of plants under stress: soil and biotic factors. John Wiley &amp; Sons. Nueva York. 684 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027829&pid=S0187-7151200900040000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Patton, L. y M. B. Jones. 1989. Some relationships between leaf anatomy and photosynthetic characteristics of willows. New Phytol. 111(4): 657&#150;661. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027830&pid=S0187-7151200900040000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phillips, J. M. y D. S. Hayman. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular&#150;arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Trans. Br. Mycol. Soc. 55: 158&#150;161.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027831&pid=S0187-7151200900040000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pimienta&#150;Barrios E., C. Robles&#150;Murgu&iacute;a y P. S. Nobel. 2001. Net CO<sub>2</sub> uptake for <i>Agave tequilana </i>in a warm and a temperate environment. Biotropica 33(2): 312&#150;318.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027832&pid=S0187-7151200900040000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pimienta&#150;Barrios, E., A. Mu&ntilde;oz&#150;Urias, M. E. Gonz&aacute;lez del Castillo&#150;Aranda y P. S. Nobel. 2003. Effects of benomyl and drought on the mycorrhizal development and daily net CO<sub>2</sub> uptake of a wild platyopuntia in a rocky semiarid environment. Ann. Bot. 92(2): 1&#150;7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027833&pid=S0187-7151200900040000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rademacher, I. F. y J. C. Nelson. 2001. Nitrogen effects on leaf anatomy within the intercalary meristems of tall fescue leaf blades. Ann Bot. 88(5): 893&#150;903.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027834&pid=S0187-7151200900040000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Raveh, E., N. Wang y P. S. Nobel. 1998. Gas exchange and metabolite fluctuations in green and yellow bands of variegated leaves of monocotyledonous CAM species <i>Agave americana. </i>Physiologia Plantarum 103(1): 99&#150;106.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027835&pid=S0187-7151200900040000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruiz&#150;Lozano, J. M. y R. Azc&oacute;n. 1995. Hyphal contribution to water uptake in mycorrhizal plants as affected by the fungal species and water status. Physiologia Plantarum 95(3): 472&#150;478.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027836&pid=S0187-7151200900040000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Safir, G. R. 1990. Micorrizas arb&uacute;sculo&#150;vesicular y la productividad agr&iacute;cola. In: Carlson, P. S. (ed.). Biolog&iacute;a de la productividad de cultivos. AGT Editor, S.A. M&eacute;xico, D.F. pp. 201&#150;222.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027837&pid=S0187-7151200900040000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salisbury, F. B. y C. W. Ross. 1992. Plant physiology. 4a. ed. Wadsworth, Belmont. 422 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027838&pid=S0187-7151200900040000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Slaton, M. y W. K. Smith. 2002. Mesophyll architecture and cell exposure to intercellular air space in alpine, desert, and forest species. Int. J. Plant Sci. 163(6): 937&#150;948. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027839&pid=S0187-7151200900040000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smith, S. E. y D. J. Read. 1997. Mycorrhizal symbiosis. 2a. ed. Academic Press. San Diego. 605 pp.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027840&pid=S0187-7151200900040000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Srivastava, M. L. 2002. Plant, growth and development: hormones and environment. Academic Press. San Diego. 772 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027841&pid=S0187-7151200900040000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Trappe, J. M. 2005. A. B. Frank and mycorrhizae: the challenge to evolutionary and ecologic theory. Mycorrhiza 15(4): 277&#150;281. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027842&pid=S0187-7151200900040000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vandermeer, J. 1995. The ecological basis of alternative agriculture. Ann. Rev. Ecol. Syst. 26: 201&#150;224.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027843&pid=S0187-7151200900040000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Walch&#150;Liu, P., G. Neumann, F. Bangerth y C. Engels. 2000. Rapid effects of nitrogen form on leaf morphogenesis in tobacco. J. Exp. Bot. 51(343): 227&#150;237.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027844&pid=S0187-7151200900040000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wang, B. y Y. L. Quiu. 2006. Phylogenetic distribution and evolution of mycorrhizas in land plants. Mycorrhiza 16(15): 299&#150;379.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=027845&pid=S0187-7151200900040000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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