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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Salicornia bigelovii is a halophyte that can produce oil, food and feed. However, its productivity depends on supplemental nitrogen fertilization. Although nitrogen fertilizer will increase yield in saline soils, it also has the potential to increase soil salinity. There is potential to use beneficial microorganisms as plant growth-promoting bacteria (PGPB) to mitigate salinization and improve the growth of Salicornia bigelovii. This study monitored the effects of inoculation of two halobacteria PGPB: Azospirillum halopraeferens (Ah) and Klebsiella pneuomoniae (Kp) in seeds of four ecotypes of S. bigelovii: Santa Rosa Grande (SRG), Santa Rosa Girl (SRCH), Santa Cruz (SC) and Cerro Prieto (CP), subjected to three concentrations of salinity (0.0, 0.25 and 0.5M NaCl). The results indicated a higher percentage of germination in the absence of NaCl, especially in the inoculated seeds. It was found that, as salinity level increased, Kp was particularly effective in increasing the fresh weight and dry weight of SRCH and CP seedlings. This study shows that inoculation with Klebsiella pneuomoniae can enhance the germination of some ecotypes of S. bigelovii. We recommend follow-up studies to determine whether the observed effects of PGPB on germination, can render increased crop production.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Divisi&oacute;n II </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de la inoculaci&oacute;n de bacterias promotoras de crecimiento vegetal sobre la germinaci&oacute;n de <i>Salicornia bigelovii</i></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of Inoculation of Plant Growth Promoting Bacteria on Germination of</b> <b><i>Salicornia bigelovii</i></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Edgar O. Rueda&#45;Puente<sup>1</sup>*, Jorge A. Villegas&#45;Espinoza<sup>2</sup>, Luis E. Gerlach&#45;Barrera<sup>1</sup>, Mario A. Taraz&oacute;n&#45;Herrera<sup>1</sup>, Bernardo Murillo&#45;Amador<sup>3</sup>, Jos&eacute; Lu&iacute;s Garc&iacute;a&#45;Hern&aacute;ndez<sup>4</sup>, Enrique Troyo&#45;Di&eacute;guez<sup>3</sup> y Pablo Preciado&#45;Rangel<sup>5</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Universidad de Sonora, Departamento de Administraci&oacute;n Agropecuaria. Carretera Internacional y Avenida 16 de Septiembre s/n, Col. La Loma. 84600 Ciudad Santa Ana, Sonora, M&eacute;xico. <sup>*</sup>Autor responsable</i> (<a href="mailto:erueda04@santana.uson.mx">erueda04@santana.uson.mx</a>).</font></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>&nbsp;Universidad Aut&oacute;noma de Baja California. Ejido Nuevo Le&oacute;n. 21705 Mexicali, Baja California, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup>&nbsp;Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Noroeste. Mar Bermejo No. 195, Col. Playa Palo de Santa Rita. Apartado Postal 128, 23090 La Paz, Baja California Sur, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4</sup>&nbsp;Universidad Ju&aacute;rez del Estado de Durango, Facultad de Agronom&iacute;a y Zootecnia. Constituci&oacute;n 404 Sur. Zona Centro. 34000 Durango, Durango, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>5</sup>&nbsp;Instituto Tecnol&oacute;gico de Torre&oacute;n. Km 7.5 Carretera Torre&oacute;n&#45;San Pedro. Apartado Postal 42, 27070 Torre&oacute;n, Coah., M&eacute;xico.</i></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: abril de 2009.    <br>     Aceptado: septiembre de 2009.</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>RESUMEN</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Salicornia bigelovii</i> es una hal&oacute;fita que puede producir aceite y alimentos para consumo humano y animal. Sin embargo, su productividad depende de la aportaci&oacute;n suplementaria de nitr&oacute;geno. Aunque la fertilizaci&oacute;n con nitr&oacute;geno incrementa el rendimiento en suelos salinos, tambi&eacute;n tiene el potencial de incrementar la salinidad del suelo. Existe el potencial de utilizar microorganismos ben&eacute;ficos halotolerantes como bacterias promotoras del crecimiento (BPCP), para mitigar la salinizaci&oacute;n y promover el crecimiento de <i>Salicornia bigelovii.</i> El objetivo del presente estudio consisti&oacute; en evaluar el efecto de la inoculaci&oacute;n de dos halobacterias BPCP: <i>Azospirillum halopraeferens</i> (Ah) y <i>Klebsiella pneuomoniae</i> (Kp), en semillas de cuatro ecotipos de <i>S. bigelovii:</i> Santa Rosa Grande (SRG), Santa Rosa Chica (SRCH), Santa Cruz (SC) y Cerro Prieto (CP), sometidas a tres concentraciones de salinidad (0.0, 0.25 y 0.5 M de NaCl). Los resultados indican un porcentaje mayor de germinaci&oacute;n en ausencia de NaCl, sobresaliendo los ecotipos inoculados. Se encontr&oacute; que, conforme la salinidad se incrementa, Kp es particularmente efectiva en aumentar el peso fresco y seco de pl&aacute;ntula de SRCH y CP. El presente estudio muestra que la inoculaci&oacute;n con <i>Klebsiella pneuomoniae</i> puede promover la germinaci&oacute;n de algunos ecotipos de <i>Salicornia bigelovii.</i> Se recomiendan estudios de seguimiento para determinar si los efectos observados de BPCP en la germinaci&oacute;n pueden traducirse en una mayor producci&oacute;n del cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> al&oacute;fita, halobacterias, microorganismos ben&eacute;ficos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Salicornia bigelovii</i> is a halophyte that can produce oil, food and feed. However, its productivity depends on supplemental nitrogen fertilization. Although nitrogen fertilizer will increase yield in saline soils, it also has the potential to increase soil salinity. There is potential to use beneficial microorganisms as plant growth&#45;promoting bacteria (PGPB) to mitigate salinization and improve the growth of <i>Salicornia bigelovii.</i> This study monitored the effects of inoculation of two halobacteria PGPB: <i>Azospirillum halopraeferens</i> (Ah) and <i>Klebsiella pneuomoniae</i> (Kp) in seeds of four ecotypes of <i>S. bigelovii:</i> Santa Rosa Grande (SRG), Santa Rosa Girl (SRCH), Santa Cruz (SC) and Cerro Prieto (CP), subjected to three concentrations of salinity (0.0, 0.25 and 0.5M NaCl). The results indicated a higher percentage of germination in the absence of NaCl, especially in the inoculated seeds. It was found that, as salinity level increased, Kp was particularly effective in increasing the fresh weight and dry weight of SRCH and CP seedlings. This study shows that inoculation with <i>Klebsiella pneuomoniae</i> can enhance the germination of some ecotypes of <i>S. bigelovii.</i> We recommend follow&#45;up studies to determine whether the observed effects of PGPB on germination, can render increased crop production.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> halophyte, halobacterium, beneficial microorganism.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El exceso de sales ejerce gran influencia en el crecimiento de las plantas. Los suelos salinos se encuentran principalmente en zonas de clima &aacute;rido o semi&aacute;rido. En este tipo de regiones, las sales solubles no pueden ser transportadas muy lejos, no solamente porque hay menor precipitaci&oacute;n para lavarlas y transportarlas, sino tambi&eacute;n como consecuencia de la elevada evaporaci&oacute;n caracter&iacute;stica del clima &aacute;rido, que las concentra en los suelos y en el agua superficial. Algunas especies de hal&oacute;fitas de alta productividad, presentan un gran potencial econ&oacute;mico para utilizar los suelos ensalitrados del desierto y zonas costeras con fines agr&iacute;colas. Muchos productos agr&iacute;colas generados por los cultivos convencionales, podr&iacute;an obtenerse de las hal&oacute;fitas. <i>Salicornia bigelovii</i> es una hal&oacute;fita que crece naturalmente a en las costas del Pac&iacute;fico de M&eacute;xico y algunos cient&iacute;ficos mexicanos se han interesado en su estudio para cultivarla en regiones costeras &aacute;ridas y semi&aacute;ridas por su utilidad agroindustrial principalmente para la producci&oacute;n de aceites vegetales, alimentos de consumo humano como ensaladas y como forraje. Salicornia, presenta una gama de ecotipos con variaci&oacute;n fenot&iacute;pica que se demuestra por su abundancia y distribuci&oacute;n, lo cual favorece su posible reproducci&oacute;n. Sin embargo, para desarrollarla como monocultivo requiere de una aplicaci&oacute;n qu&iacute;mica nitrogenada que var&iacute;a entre los 1000 a 1500 kg ha<sup>&#45;1</sup> distribuidos en tres etapas de su fenolog&iacute;a (Mota, 1980; Mota, 1990;Mota, 1996; Mota, 1999). Altas aplicaciones de fertilizantes qu&iacute;micos traen como consecuencia una gran salinizaci&oacute;n de los suelos agr&iacute;colas de zonas &aacute;ridas como lo son los de la zona del noroeste de M&eacute;xico (Mota, 1996). Una alternativa es la aplicaci&oacute;n de bacterias promotoras de crecimiento en plantas, las cuales tienen la particularidad de fijar el nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico adem&aacute;s de producir o actuar como inductores en la s&iacute;ntesis de fitohormonas, en las que figuran las auxinas y giberelinas (AG<sub>3</sub>) que promueven la germinaci&oacute;n, floraci&oacute;n y fructificaci&oacute;n de las plantas. Estudios relacionados con la interacci&oacute;n de <i>Salicornia bigelovii</i> y bacterias promotoras de crecimiento de plantas se reducen a tres estudios (Bashan <i>et al.,</i> 2000; Rueda <i>et al.,</i> 2003, 2004). El objetivo del presente estudio consisti&oacute; en evaluar el efecto de la inoculaci&oacute;n de las halobacterias promotoras de crecimiento: <i>Azospirillum halopraeferens</i> y <i>Klebsiella pneumoniae</i> en la etapa de germinaci&oacute;n, en cuatro ecotipos de <i>Salicornia bigelovii,</i> que se desarrollan de manera natural en las costas del estado de Sonora.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presente investigaci&oacute;n se desarroll&oacute; en el Laboratorio Agr&iacute;cola "Dr. Felix Ayala Chairez" de la Divisi&oacute;n de Ciencias Administrativas, Contables y Agropecuarias de la Universidad de Sonora, Campus Santa Ana.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n y selecci&oacute;n de semilla y bacterias</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se colectaron semillas de plantas maduras de cuatro ecotipos de <i>Salicornia bigelovii,</i> que se desarrollaron en forma natural en el a&ntilde;o 2005 procedentes de las siguientes regiones costeras del estado de Sonora: Estero Santa Rosa Grande (ESG), Estero Santa Rosa Chica (ESCH), Estero Santa Cruz (ESC) y, Estero Cerro Prieto (ECP). Las bacterias <i>Azospirillum halopraeferens</i> y <i>Klebsiella pneumoniae,</i> fueron proporcionadas por el Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a Ambiental del Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Noroeste (CIBNOR).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La colecta de semillas se realiz&oacute; seleccionando plantas maduras y secas de las poblaciones anteriormente citadas. Posteriormente las semillas se cirnieron utilizando una maya de 0.5 mm de di&aacute;metro. Se escogieron las semillas de mayor tama&ntilde;o (0.6 mm de longitud), con uniformidad de color y que correspondiera a cada ecotipo y sin da&ntilde;os aparentes. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o estad&iacute;stico completamente al azar con un arreglo factorial con tres factores (4 x 3 x 3): ecotipos; NaCl (0.0, 0.25 y 0.5 M) y bacterias <i>(Azospirillum halopraeferens</i> y <i>Klebsiella pneumoniae)</i> y un control sin inocular. Se consideraron cinco repeticiones de 50 semillas por repetici&oacute;n por tratamiento: 36 tratamientos con cinco repeticiones cada uno; un total de 180 unidades experimentales. Posteriormente las semillas se depositaron en recipientes con agua potable por una hora y se desecharon aquellas que flotaron (Murillo <i>et al.,</i> 2000). Se desinfectaron en una soluci&oacute;n de hipoclorito de sodio al 3% durante tres minutos y se enjuagaron con agua destilada est&eacute;ril tres veces para eliminar los excesos de cloro (Carrillo <i>et al.,</i> 1998; Rueda <i>et al.,</i> 2003).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crecimiento de las bacterias</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento de los microorganismos en estudio: <i>Azospirillum halopraeferens</i> y <i>Klebsiella pneumoniae,</i> se llev&oacute; a cabo en un medio de cultivo sin fuente enriquecida de nitr&oacute;geno Renie (Rennie, 1981) y utilizando un matraz de un litro. Posteriormente se deposit&oacute; en cada uno de los matraces 1 mL de las bacterias (cada una por separado) y se dej&oacute; transcurrir un per&iacute;odo de 16 horas de crecimiento cin&eacute;tico bacteriano, l&iacute;mite para obtener c&eacute;lulas bacterianas maduras. Se transfirieron 10 mL de cada una de las bacterias por separado a un tubo de 20 mL y se centrifug&oacute; a 7938 g durante 10 minutos, se extrajo el pelet bacteriano y fue vertido en 10 mL de soluci&oacute;n salina al 0.85% para resuspender el bot&oacute;n celular (pelet bacteriano). Se resuspendi&oacute; el bot&oacute;n y se midi&oacute; la densidad &oacute;ptica a 540 nm haciendo uso de un espectrofot&oacute;metro. La lectura considerada de densidad &oacute;ptica fue de uno, lo que nos indica que la muestra del in&oacute;culo tiene aproximadamente 10<sup>9</sup> unidades formadoras de colonias (UFC mL<sup>&#45;1</sup>). Se transfiri&oacute; 1 mL, del in&oacute;culo ajustado, a un tubo de ensayo con 9 mL de soluci&oacute;n salina al 0.85% para obtener una diluci&oacute;n de 10<sup>7</sup> UFC mL<sup>&#45;1</sup> (Carrillo <i>et al.,</i> 1998).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inoculaci&oacute;n en semilla</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inoculaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo utilizando la t&eacute;cnica denominada al vac&iacute;o como lo describe Carrillo <i>et al.</i> (1998), que consiste en el uso de una bomba al vac&iacute;o. Grupos individuales de 50 semillas de cada ecotipo, al cabo de 24 horas despu&eacute;s de la desinfecci&oacute;n, se colocaron en un matraz de 500 mL, posteriormente se a&ntilde;adieron 100 mL de medios enriquecidos con bacterias con una concentraci&oacute;n de 10<sup>7</sup> UFC mL<sup>&#45;1</sup>. Despu&eacute;s los matraces con semilla y medio bacteriano se sometieron a la acci&oacute;n del vac&iacute;o (600 mm Hg) durante 5 minutos. Cada uno de los grupos de semillas (50) con su respectivo tratamiento (ecotipo&#45;bacteria&#45;salinidad), se depositaron en cajas Petri previamente esterilizadas que presentaban una esponja de sost&eacute;n.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Condiciones <i>In Vitro</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cajas Petri se ubicaron en una incubadora a 25 &deg;C, durante 24 d&iacute;as; cada una de las cajas de cada ecotipo se irrig&oacute; de manera inicial con 25 mL y utilizando un atomizador se dieron 10 aplicaciones diariamente durante el transcurso del estudio. La germinaci&oacute;n se llev&oacute; acabo en condiciones de oscuridad continua.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables evaluadas</b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de germinaci&oacute;n se obtuvo examinando las cajas Petri al final del estudio (24 d&iacute;as) (Murillo <i>et al.,</i> 2000). La tasa de germinaci&oacute;n, que es la suma de semillas germinadas en un lapso, se contabiliz&oacute; diariamente durante los cuatro primeros d&iacute;as, y despu&eacute;s cada tercer d&iacute;a. La tasa de germinaci&oacute;n y el porcentaje se evaluaron mediante la observaci&oacute;n de la emergencia de la rad&iacute;cula (2 mm de longitud). El n&uacute;mero de semillas germinadas se realiz&oacute; mediante lecturas diarias (tasa de germinaci&oacute;n) y finalmente el porcentaje de germinaci&oacute;n se determin&oacute; a los 24 d&iacute;as. La tasa de germinaci&oacute;n se calcul&oacute; de acuerdo a Maguire (1962) con la ecuaci&oacute;n: M = n<sub>1</sub>/t<sub>1</sub> + n<sub>2</sub>/t<sub>2</sub> +.. .n<sub>24</sub>/t<sub>24</sub>. Donde n<sub>1</sub>, n<sub>2</sub>, ... n<sub>24</sub> representan el n&uacute;mero de semillas germinadas en el tiempo t<sub>1</sub>, t<sub>2</sub>, ... t<sub>24</sub> (en d&iacute;as). Utilizando el mismo dise&ntilde;o descrito, se realizaron an&aacute;lisis de varianza del porcentaje de germinaci&oacute;n transformando previamente los valores con arcoseno (Sokal y Rohfl, 1988). La tasa de germinaci&oacute;n, que es la suma de semillas germinadas contadas por d&iacute;a tambi&eacute;n se analiz&oacute;. La diferencia significativa entre las medias de los tratamientos se evalu&oacute; mediante la prueba de Rango M&uacute;ltiple de Duncan al 0.05%. Los datos se analizaron utilizando el programa de c&oacute;mputo SAS (SAS, 2001). La longitud radicular y altura de pl&aacute;ntula, se midieron con un vernier. Para conocer el n&uacute;mero de bacterias adheridas a la ra&iacute;z, se tomaron cinco pl&aacute;ntulas por repetici&oacute;n y se agitaron durante 10 segundos en tubos de ensayo en una soluci&oacute;n salina est&eacute;ril de 0.85% de NaCl. De la suspensi&oacute;n se tom&oacute; 0.1 mL y se sembr&oacute; en estr&iacute;a al cuadrante en cajas Petri con medio de cultivo de bacterias Renie. Las mismas se incubaron durante 36 horas a una temperatura de 28&deg;C. Las colonias de bacterias existentes se cuantificaron con un contador manual. Para el pesado en fresco se utiliz&oacute; una balanza anal&iacute;tica, considerando cinco pl&aacute;ntulas por repetici&oacute;n; finalmente &eacute;stas se introdujeron en una c&aacute;mara de secado a 80&deg;C y se pesaron nuevamente. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (Snedecor, 1946) para peso fresco, peso seco, longitud de pl&aacute;ntula y longitud de ra&iacute;z, as&iacute; como las unidades formadoras de colonias por mL (UFC mL<sup>&#45;1</sup>). La diferencia m&iacute;nima significativa se realiz&oacute; mediante una Prueba de Rango M&uacute;ltiple de Duncan al 0.5%.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pruebas estad&iacute;sticas se realizaron utilizando el programa estad&iacute;stico SAS (SAS Institute, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Germinaci&oacute;n de ecotipos de <i>Salicornia bigelovii</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la inoculaci&oacute;n, el ecotipo Cerro Prieto (CP) present&oacute; el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n (100%) sin presencia de NaCl, seguido de los ecotipos Santa Rosa Chica (SRCH), Santa Rosa Grande (SRG) y Santa Cruz (SC) con un 42, 27.6 y 25.2% respectivamente (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Los mismos ecotipos al hacer uso de la inoculaci&oacute;n, con las bacterias (Ah y Kp), se observ&oacute; que mostraron un mejor comportamiento al ser inoculados con Ah que con Kp (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>); los valores obtenidos con Kp (SRCH = 40.8%, SRG = 37.6%, SC = 36.8% y CP = 100) se mostraron superiores a los ecotipos no inoculados, excepto SRCH que gener&oacute; un valor de 1.2% menor al ser inoculado en comparaci&oacute;n del control. A una salinidad de 0.25 M NaCl la germinaci&oacute;n de los ecotipos se comport&oacute; diferente respecto a los que no tuvieron NaCl (considerando los no inoculados y los inoculados). En los ecotipos no inoculados se inhibi&oacute; la germinaci&oacute;n en tres de ellos (SRCH, SRG y SC en 72, 68 y 117% menor que a los tratamientos sin NaCl), mientras que el ecotipo CP tratado con Ah y Kp, sigui&oacute; mostrando el 100% de germinaci&oacute;n (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). No obstante esto &uacute;ltimo, a 0.25 M de NaCl, se observ&oacute; que el tratamiento sin inoculantes tambi&eacute;n mostr&oacute; un 100% de germinaci&oacute;n (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Con 0.5 M de NaCl, el porcentaje de germinaci&oacute;n en CP sigui&oacute; mostrando los mismo valores altos (100%) que a 0 y 0.25 M de NaCl; asimismo se logr&oacute; observar un ligero decremento no significativo en el mismo ecotipo CP sin inoculante (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Es importante indicar que aquellos ecotipos (SRCH + Ah y SC + Ah) a 0% M de NaCl, mostraron los valores m&aacute;s altos de germinaci&oacute;n en comparaci&oacute;n con 0.25 M de NaCl; excepto SRCH que se comport&oacute; mejor con Ah a 0.25 M de NaCl (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a> y <a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi3.jpg" target="_blank">3</a>). Los resultados de la inoculaci&oacute;n concuerdan con Bashan y Holguin (1997), donde indican que el uso de bacterias induce a la germinaci&oacute;n, debido a la s&iacute;ntesis de fitohormonas liberadas. Otro de los factores observados en el presente estudio y del cual, otras investigaciones resaltan (Besnier, 1988; Camacho, 1994) es la inhibici&oacute;n de la germinaci&oacute;n por efecto de algunos factores abi&oacute;ticos como temperatura, humedad, luz y salinidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este &uacute;ltimo es un factor importante que no permite a los ecotipos de <i>Salicornia bigelovii</i> germinen adecuadamente conforme la salinidad se incrementa (Ungar, 2000; Allison <i>et al,</i> 1980).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tasa de germinaci&oacute;n de ecotipos de <i>Salicornia bigelovii</i> con la inoculaci&oacute;n</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ecotipo CP alcanz&oacute; la m&aacute;xima tasa de germinaci&oacute;n (50 semillas) a los 10 d&iacute;as en comparaci&oacute;n con los restantes (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). En los tratamientos con el inoculante Kp sin NaCl, el ecotipo que mejor se comport&oacute; fue CP, ya que present&oacute; una tasa de germinaci&oacute;n de 50 semillas al octavo d&iacute;a despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (48 h por arriba en comparaci&oacute;n con los tratamientos sin inocular). Por otra parte, en los otros tratamientos con el inoculante Ah, el ecotipo CP sigui&oacute; mostrando alta tasa de germinaci&oacute;n. Sin embargo, &eacute;sta fue alcanzada a los 14 d&iacute;as de la inoculaci&oacute;n. Tambi&eacute;n se observ&oacute; una tendencia donde CP, CP + Ah y CP + Kp mostraron los valores m&aacute;ximos, en comparaci&oacute;n de los dem&aacute;s tratamientos sin NaCl.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de germinaci&oacute;n a 0.25 M de NaCl, el ecotipo CP, result&oacute; superior ya que al octavo d&iacute;a germinaron 50 semillas, sigui&eacute;ndole en segundo plano los ecotipos de SRCH, SRG y SC. Por su parte, aquellos tratamientos inoculados con Kp, mostraron una tasa de germinaci&oacute;n similar a los tratamientos no inoculados. Resultando de igual forma ser CP el mejor ecotipo. Con el inoculante Ah a 0.25 M de NaCl, el ecotipo CP present&oacute; una alta tasa de germinaci&oacute;n de 50 semillas al octavo d&iacute;a despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n en comparaci&oacute;n con los ecotipos Santa Rosa Chica, Santa Rosa Grande y Santa Cruz. Respecto a la respuesta de tasa de germinaci&oacute;n a 0.5 M de NaCl, el ecotipo CP result&oacute; superior en la tasa de germinaci&oacute;n con 49 semillas germinadas a los 12 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, en comparaci&oacute;n de los restantes ecotipos. A esta misma salinidad, los tratamientos inoculados con Kp, los resultados indican que CP present&oacute; su m&aacute;xima tasa de germinaci&oacute;n al octavo d&iacute;a. Al realizar el an&aacute;lisis de los ecotipos con la inoculaci&oacute;n de Ah a una salinidad de 0.5 M NaCl, el ecotipo que presento mejor tasa de germinaci&oacute;n fue CP (10 d&iacute;as). El presente estudio indica que ambos genotipos son beneficiados por <i>K. pneumoniae</i> y <i>A. halopraeferens</i>. Resultados similares se han obtenido para otras plantas (Puente <i>et al.,</i> 1999; Rozema <i>et al.,</i> 1975; Goodfriend <i>et al.,</i> 2000) y aunque los ensayos se hayan efectuado con otras plantas y otros microorganismos ben&eacute;ficos, algunos inhiben los efectos sobre la germinaci&oacute;n (D&iacute;az <i>et al.,</i> 2001). Sin embargo, la mayor&iacute;a muestra efectos positivos con este tipo de microorganismo (Arsac <i>et al.,</i> 1990) que tambi&eacute;n coinciden con los resultados del presente estudio. Los efectos positivos de estas bacterias observados en el presente estudio aparentemente se deben a la producci&oacute;n de sustancias promotoras de crecimiento seg&uacute;n lo reportado en otros estudios (Arsac <i>et al.,</i> 1990; Haahtela <i>et al.,</i> 1990; El&#45;Khawas y Adachi, 1999) donde el efecto en la tasa y porcentaje de germinaci&oacute;n se manifiesta de manera positiva ya que intr&iacute;nsicamente se incrementa la tasa de divisi&oacute;n celular (mitosis) (Fallik, <i>et al.,</i> 2000).</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Altura de planta y longitud radicular de ecotipos de <i>Salicornia bigelovii</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La altura de los ecotipos con una salinidad de 0 M de NaCl, CP + Kp present&oacute; los valores mayores (49.2 mm) en comparaci&oacute;n de CP+Ah y CP en el testigo con 48.7 y 48.1 respectivamente. Respecto a la longitud radicular, el mismo ecotipo CP + Ah (60.7 mm) mostr&oacute; valores superiores en comparaci&oacute;n con CP + Kp y CP (49.25 y 48.1 mm respectivamente, sin embargo, comparado con los restantes tratamientos mostraron diferencia significativa (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9fi5.jpg" target="_blank">Figura 5</a>).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos a 0.25 M de NaCl, indican que entre los tratamientos no inoculados, CP sobresali&oacute; en altura y longitud radicular (46.85 y 61.9 mm, respectivamente) en comparaci&oacute;n de los dem&aacute;s ecotipos. Sin embargo, con aquellos que se inocularon con Kp, los ecotipos CP y SRCH fueron los que presentaron una mayor altura, (46.35 y 19.5 mm) en comparaci&oacute;n de SRG y SC (6.35 y 7.15 mm respectivamente). En longitud radicular, CP y SRCH fueron superiores (62.5 y 27.15 mm). A una salinidad de 0.5 M de NaCl, el ecotipo CP en la altura y longitud radicular (inoculados y no inoculados) manifest&oacute; ser superior en comparaci&oacute;n de los dem&aacute;s ecotipos. En altura (entre los no inoculados) CP mostr&oacute; un 900% en comparaci&oacute;n con SRCH. Al comparar los tratamientos con aquellos inoculados por Kp, CP + Kp fue superior en un 218% con relaci&oacute;n a SRCH + Kp. En la inoculaci&oacute;n de Ah, de igual forma CP + Ah, fue 2.6 veces mayor que SRCH. En longitud radicular, el ecotipo CP tambi&eacute;n se comport&oacute; positivamente en comparaci&oacute;n con los dem&aacute;s tratamientos. Seg&uacute;n datos obtenidos de la investigaci&oacute;n, los ecotipos CP con las bacterias Ah y Kp se ven claramente el desarrollo en altura y longitud radicular que se tuvieron en las tres salinidades y adem&aacute;s en los dem&aacute;s ecotipos mencionados. Estas caracter&iacute;sticas de bacterias corresponden a lo dicho en Lira (2003), que han sido caracterizadas en la interacci&oacute;n de plantas y microorganismos donde indican que las auxinas, citocininas y giberelinas producidas por los microorganismos, as&iacute; como la inducci&oacute;n de las mismas en &oacute;rganos vegetativos como son las semillas en este caso donde han exhibido propiedades fuertes de regulaci&oacute;n del crecimiento y cada uno con su estructura particular y activos a muy bajas concentraciones dentro de la planta (Lira, 2003).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Peso fresco y seco de pl&aacute;ntula de ecotipos de <i>Salicornia bigelovii</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la variable peso seco, considerando los tratamientos, sin inoculantes sin NaCl, el ecotipo que present&oacute; los valores m&aacute;ximos fue SRCH (P &le; 0.05). Sin embargo, a 0.25 M de NaCl, SRCH num&eacute;ricamente es favorecida cuando es inoculada con Kp y Ah. Un similar comportamiento se observ&oacute; con SRCH a 0.5 M de NaCl.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la variable peso fresco el ecotipo SRCH sigue mostrando los valores m&aacute;s altos en comparaci&oacute;n con los dem&aacute;s tratamientos y se puede observar que sobresale cuando es inoculada con Kp sin presencia de sales. No obstante lo anterior, a 0.25 M de NaCl el ecotipo CP es el que ofrece resultados significativos, sobre todo cuando se utiliza a Kp como inoculante; un similar comportamiento es visualizado a 0.5 M de NaCl con CP, pero inoculado con Ah (<a href="../img/revistas/tl/v27n4/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados anteriores indican que ambas bacterias promueven la germinaci&oacute;n en los ecotipos de <i>Salicornia bigelovii,</i> posiblemente debido a la capacidad de las bacterias para producir y estimular la s&iacute;ntesis de compuestos hormonales como las giberellinas GA<sub>3</sub> que son mencionadas por otros autores (Reinhold <i>et al.,</i> 1987; Haahtela <i>et al.,</i> 1990). Los resultados sugieren que la especie de <i>Klebsiella pneumoniae</i> y <i>Azospirillum halopraeferens</i> pueden influir en las plantas, por lo que es importante continuar con la b&uacute;squeda de este tipo de microorganismos; asimismo, los datos sugieren que se exploren las posibilidades para continuar los estudios de inoculaci&oacute;n con otras familias o grupos de plantas hal&oacute;fitas que puedan tener fines comerciales. Las consideraciones anteriores son importantes, porque el &eacute;xito de este tipo de poblaciones halotolerantes usualmente s&oacute;lo tienen una oportunidad en su historia de vida anual para reproducirse y dispersarse, eventos que son dependientes de las respuestas mostradas durante la germinaci&oacute;n de semillas (Ungar, 2000). Tal es el caso de la germinaci&oacute;n de <i>S. bigelovii,</i> que ocurre durante un per&iacute;odo cuando en el suelo, los niveles de salinidad se encuentran reducidos (Riehl y Ungar 1982; Rozema 1975). De igual modo, los resultados obtenidos indican que los efectos ben&eacute;ficos de los microorganismos pueden tener un papel principal en las diferentes fases vegetativas, como es el proceso de la germinaci&oacute;n (Kim y Weber 1985; Goodfriend <i>et al.,</i> 2000). Sin embargo, cabe indicar que los efectos observados de manera positiva deben evaluarse en el entorno de la aplicaci&oacute;n pr&aacute;ctica, como en el caso del desarrollo o propuesta de un programa agr&iacute;cola costero (Hamdi, 1999; Neori y Zskova&#45;KonZcalova, 2001).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bacterias adheridas de <i>Klebsiella pneumoniae</i> y <i>Azospirillum halopraeferens</i> al sistema radicular de pl&aacute;ntulas de ecotipos de <i>Salicornia bigelovii</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Acorde a una salinidad de 0 M de NaCl, el n&uacute;mero de bacterias adheridas a la ra&iacute;z, la bacteria Kp mostr&oacute; una mayor afinidad con el ecotipo SRG con un promedio de 1410 UFC mL<sup>&#45;1</sup>. Considerando una molaridad de 0.25 M de NaCl, el valor m&aacute;ximo de UFC adheridas fue para el ecotipo CP con 1710, mientras que en un segundo plano SRG result&oacute; tener 1500 UFC mL<sup>&#45;1</sup>. A una salinidad de 0.5 M NaCl, se observ&oacute; con Kp en SRG (1560 UFC mL<sup>&#45;1</sup>) y Ah con CP (1420). Como se puede observar las Unidades Formadoras de Colonias de Ah y Kp, se comportaron uniformemente considerando las tres salinidades. Los anteriores resultados coinciden con investigaciones (Arsac <i>et al.,</i> 1990; Haahtela <i>et al.,</i> 1990; El&#45;Khawas y Adachi, 1999) donde indican que metabolitos secretados por los pelos radiculares juegan un papel importante para la atracci&oacute;n&#45;adhesi&oacute;n y anclaje.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Los resultados obtenidos en la presente investigaci&oacute;n, sugieren la factibilidad de usar bacterias promotoras del crecimiento de plantas como <i>Klebsiella pneumoniae</i> y <i>Azospirillum halopraeferens</i> en las etapas de vegetaci&oacute;n de germinaci&oacute;n y pl&aacute;ntula de <i>Salicornia bigelovii.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Queda demostrado que los ecotipos utilizados en esta investigaci&oacute;n con el uso de las bacterias estudiadas, la germinaci&oacute;n es superior cuando se hace uso de bajas concentraciones de salinidad; lo cual es indicativo de que en forma natural <i>Salicornia bigelovii</i> germina en las &eacute;pocas de lluvia, pues es cuando existe una reducci&oacute;n de concentraci&oacute;n de sal en el mar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;No obstante lo anterior, cuando de forma natural, la germinaci&oacute;n de salicornia es inhibida por la salinidad, se observ&oacute; que entre los ecotipos estudiados (Santa Rosa Chica, Santa Rosa Grande, Santa Cruz y Cerro Prieto) existieron diferencias significativas, obteniendo como resultado que Cerro Prieto mostr&oacute; tolerancia significativa en la variable de germinaci&oacute;n y producci&oacute;n de pl&aacute;ntula a 0.25 M de cloruro de sodio (NaCl).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;El ecotipo Cerro Prieto presenta expectativas de ser estudiada en las restantes etapas fenol&oacute;gicas de floraci&oacute;n y madurez fisiol&oacute;gica, con la interacci&oacute;n de bacterias promotoras de crecimiento de plantas con la finalidad de reafirmar sus usos como posibles y potenciales biofertilizantes en cultivos halotolerantes para la agricultura.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al Fondo Sectorial de Investigaci&oacute;n en Materia Agr&iacute;cola, Pecuaria, Acuacultura, Agro&#45;biotecnolog&iacute;a y Recursos Filogen&eacute;ticos del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT), a la Comisi&oacute;n Nacional Forestal y la Universidad de Sonora, a trav&eacute;s del proyecto clave 14651; y estancia aprobada del Dr. Bernardo Murillo Amador en Apoyos Complementarios para la Consolidaci&oacute;n Institucional de Grupos de Investigaci&oacute;n (Repatriaci&oacute;n, Retenci&oacute;n y Estancias de Consolidaci&oacute;n)&#45;2007.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA </b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arsac, J. F., C. Lamothe, D. Mulard, and J. Fages. 1990. Growth enhancement of Maize <i>(Zea Mays)</i> through <i>Azospirillum</i> <i>lipoferum</i> inoculation: effect of plant genotype and bacterial concentration. Agronomie 10: 640&#45;654.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803508&pid=S0187-5779200900040000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allison, L. E., J. W. Brown., H. E. Hayward, L.A. Richards, L. Bernstein, M. Fireman, G. A. Pearson, L. V. Wilcox, C. A. Bower, J. T. Hatcher y R. C. Reeve. 1980. Suelos salino s&oacute;dicos. Ed. Limusa. M&eacute;xico, D. F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803510&pid=S0187-5779200900040000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bashan, Y. and G. Holguin. 1997. Azospirillum&#45;plant relationship: environmental and physiological advances. Can. J. Microbiol. 43: 103&#45;121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803512&pid=S0187-5779200900040000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bashan, Y., M. Moreno and E. Troyo. 2000. Growth promotion of the seawater&#45;irrigated oilseed halophyte <i>Salicornia bigelovii</i> inoculated with mangrove rhizosphere bacteria and halotolerant <i>Azospirillum</i> spp. Biol. Fertil. Soils 32: 265&#45;272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803514&pid=S0187-5779200900040000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Besnier, F. 1989. Semillas biolog&iacute;a y tecnolog&iacute;a. Ediciones Mundi&#45;Prensa. Castell&oacute;, Madrid, Espa&ntilde;a.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803516&pid=S0187-5779200900040000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Camacho, F. 1994. Dormancia de semillas: causas y tratamientos. Ed. Trillas. M&eacute;xico, D. F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803518&pid=S0187-5779200900040000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carrillo, A., M. Puente, T. Castellanos y Y. Bashan. 1998. Aplicaciones biotecnol&oacute;gicas de ecolog&iacute;a microbiana. Manual de laboratorio. Eds. Pontificia Universidad Javeriana, Santa Fe de Bogot&aacute;, Colombia y Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas de Noroeste S. C. La Paz, Baja California Sur, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803520&pid=S0187-5779200900040000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&iacute;az Vargas, P., R. Ferrera&#45;Cerrato, J. J. Almaraz Su&aacute;rez y G. Alc&aacute;ntar Gonz&aacute;lez. 2001. Inoculaci&oacute;n de bacterias promotoras del crecimiento en lechuga. Terra 19: 327&#45;335.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803522&pid=S0187-5779200900040000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">El&#45;khawas, H. and K. Adachi. 1999. Identification and quantification of auxins in culture media of <i>Azospirillum</i> and <i>Klebsiella</i> and their effects on rice roots. Biol. Fertil. Soils 28: 377&#45;381.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803524&pid=S0187-5779200900040000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fallik, E., S. Saring. and Y. Okon. 2000. Azospirillum/plant associations. Edited by Y. Okon. CRC Press. Boca Raton, FL, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803526&pid=S0187-5779200900040000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goodfriend, W. L., M. W. Olsen, and R. J. Frye. 2000. Soil microfloral and microfaunal response to <i>Salicornia bigelovii</i> planting density and soil residue amendment. Plant Soil 223: 23&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803528&pid=S0187-5779200900040000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Haahtela, K., R. Ronkko, T. Laakso, P. H. Williams, and T. K. Korhonen. 1990. Root&#45;associated Enterobacter and <i>Klebsiella</i> in <i>Poa pratensis:</i> Characterization of an iron&#45;scavening system and a subtance stimulating root hair production. Mol. Plant&#45;Microbe Interact. 3: 358&#45;365.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803530&pid=S0187-5779200900040000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hamdi, H. 1999. Rhizobium&#45;legume symbiosis and nitrogen fixation under severe conditions and in arid climate. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 63: 968&#45;989.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803532&pid=S0187-5779200900040000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, C. K. and D. J. Weber. 1985. Distribution of VA mycorrhiza on halophytes on inland salt playas. Plant Soil 83: 207&#45;214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803534&pid=S0187-5779200900040000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lira S., R. H. 2003. Fisiolog&iacute;a vegetal. Ed. Trillas. M&eacute;xico, D. F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803536&pid=S0187-5779200900040000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maguire, J. H. 1962. Speed of germination&#45;aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Sci. 2: 176&#45;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803538&pid=S0187-5779200900040000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez, B. 1996. Producci&oacute;n agraria ecol&oacute;gica. Revista de Desarrollo Rural y Cooperativismo Agrario. Universidad de Zaragoza. Vol. 5. <a href="http://cederul.unizar.es/revista/inicio.htm" target="_blank">http://cederul.unizar.es/revista/inicio.htm</a>. (Consulta: mayo 14, 2008).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803540&pid=S0187-5779200900040000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mota, U. 1980. Las hal&oacute;fitas en el siglo XXI. pp. 495&#45;500. <i>In:</i> Primera reuni&oacute;n nacional sobre ecolog&iacute;a, manejo y domesticaci&oacute;n de las plantas &uacute;tiles del desierto. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales. Monterrey, NL, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803542&pid=S0187-5779200900040000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mota, U. 1990. Seawater irrigation crops <i>Salicornia</i> (SOS7) as an example. University of Arizona. Tucson, AZ, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803544&pid=S0187-5779200900040000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mota, U. 1996. Levels of fertilizer in <i>Salicornia bigelovii.</i> pp. 1&#45;96. <i>In:</i> First international technical seminar for <i>Salicornia.</i> Proceedings. Planetary Design Corporation. Puerto Pe&ntilde;asco, Sonora, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803546&pid=S0187-5779200900040000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mota, U. 1999. Sistemas de riego aplicados a la producci&oacute;n de alimentos con agua de mar. Primer simposium internacional sobre financiamiento para modernizaci&oacute;n de &aacute;reas de riego. Hermosillo, Sonora, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803548&pid=S0187-5779200900040000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murillo&#45;Amador, B., E. Troyo&#45;Di&eacute;guez, H. G. Jones, F. Ayala&#45;Chairez, C. L. Tinoco&#45;Ojanguren, and A. L&oacute;pez&#45;Cort&eacute;s. 2000. Screening and classification of cowpea genotypes for salt tolerance during germination. J. Exp. Bot. 67: 71&#45;84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803550&pid=S0187-5779200900040000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Neori, A., R. K. Ramesh, H. Ciscova&#45;Konkalova, and M. Agami. 2000. Bioactive chemicals and biological&#45;biochemical activities and their functions in rhizospheres of wetland plants. Bot. Rev. 66: 350&#45;378.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803552&pid=S0187-5779200900040000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Puente, M., G. Holguin, B. Glick, and Y. Bashan. 1999. Root&#45;surface colonization of black mangrove seedlings by <i>Azospirillum halopraeferens</i> and <i>Azospirillum brasilense</i> in seawater. FEMS. Microbiol. Ecol. 29: 283&#45;292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803554&pid=S0187-5779200900040000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reinhold, B., T. Hurek, I. Fendrik, B. Pot, M. Gillis, K. Kersters, S. Thielmans, and J. De Ley. 1987. <i>Azospirillum halopraeferens</i> sp. nov. a nitrogen&#45;fixing organism associated with roots of <i>Kallar</i> grass <i>(Leptochloa fusca</i> L. Kunth). Int. J. Syst. Bacteriol. 37: 43&#45;51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803556&pid=S0187-5779200900040000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rennie, R. J. 1981. A single medium for the isolation of acetylene reducing (dinitrogen&#45;fixing) bacteria from soils. Can. J. Microbiol. 27: 8&#45;14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803558&pid=S0187-5779200900040000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rueda Puente, E. O., T. Castellanos, E. Troyo Di&eacute;guez, and J. L. D&iacute;az de Le&oacute;n&#45;Alvarez. 2004. Effect of <i>Klebsiella pneumoniae</i> and <i>Azospirillum halopraeferens</i> on the growth and development of two <i>Salicornia bigelovii</i> genotypes. Australian J. Exp. Agrie 44: 65&#45;74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803560&pid=S0187-5779200900040000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rueda Puente, E., T. Castellanos, E. Troyo Di&eacute;guez, J. L. D&iacute;az de Le&oacute;n&#45;Alvarez, and B. Murillo Amador. 2003. Effects of nitrogen&#45;fixing indigenous bacterium <i>(Klebsiella pneumoniae)</i> on the growth and development of the halophyte <i>Salicornia bigelovii</i> as a new crop for saline environments. J. Agron. Crop Sci. 189: 323&#45;332.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803562&pid=S0187-5779200900040000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rozema, J. 1975. The influence of salinity, inundation and temperature on the germination of some halophytes and non&#45;halophytes. Oecol. Plant. 10: 341&#45;353.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803564&pid=S0187-5779200900040000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute. 2001. SAS user's guide: statistics. Version 6.12 SAS, Institute, Cary, NC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803566&pid=S0187-5779200900040000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Snedecor, G. W. 1946. Statistical methods applied to experiments in agriculture and biology. The Iowa State College Press. Ames, IA, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803568&pid=S0187-5779200900040000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sokal, R. and J. Rohfl. 1988. Biometry: the principles and practice of statistics in biological research. Freeman &amp; Co. San Francisco, CA, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803570&pid=S0187-5779200900040000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ungar, I. A. 2000. Ecophysiology of vascular halophytes. CRC Press. Boca Raton, FL, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9803572&pid=S0187-5779200900040000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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