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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inoculación con hongos micorrícicos arbusculares y el crecimiento de plántulas de leucaena]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Leucaena leucocephala (leucaena) is a forage legume that can be used as a protein complement for animals. However, establishment of this plant species presents some problems. Considering that legumes are highly susceptible to association with arbuscular mycorrhizal (AM) fungi, this work was conducted to determine the effect of Glomus intraradices and G. etunicatum on the growth of L. leucocephala under nursery conditions. Height, number of leaves, and stem diameter were recorded every seven days during the experiment. Mycorrhizal colonization and root length were determined at the end of the experiment. The optimal height for transplanting (30 cm) was achieved at 83 days; which is normally required from Day 90 till 120. The highest values were found in all plant variables inoculated with G. intraradices (P&#8804; 0.05). These results suggest that these AM fungi may be an option for improving production of leucaena seedlings in nursery.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Divisi&oacute;n II</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3">Nota de investigaci&oacute;n</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>          <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Inoculaci&oacute;n con hongos micorr&iacute;cicos arbusculares y el crecimiento de pl&aacute;ntulas de leucaena<a href="#nota">*</a></b> </font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of Inoculating Leucaena Seedlings with AM Fungi</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a del Roc&iacute;o Flores&#45;Bello<sup>1</sup>, Sergio Aguilar&#45;Espinosa<sup>2</sup>, Ram&oacute;n Garc&iacute;a Calvario<sup>1</sup>, Alejandra Zamora Cruz<sup>2</sup>, Javier Farias&#45;Larios<sup>2</sup> y Jos&eacute; Gerardo L&oacute;pez&#45;Aguirre<sup>2&#8225;</sup></b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, </i></font><i><font face="verdana" size="2">Universidad de Colima., Autopista Colima&#45;Manzanillo km. 40, Apdo. Postal 36, 28100 Tecom&aacute;n, Col., M&eacute;xico.</font></i></p>     <p align="justify"><i><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup> Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias, Universidad de Colima., Autopista Colima&#45;Manzanillo km. 40, Apdo. Postal 36, 28100 Tecom&aacute;n, Col., M&eacute;xico. </font></i><font face="verdana" size="2"><sup><i>&#8225;</i></sup><i>Autor responsable</i> (<a href="mailto:jglopez@ucol.mx">jglopez@ucol.mx</a>)</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: marzo de 2006.     <br> Aceptado: noviembre de 2007.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Leucaena leucocephala</i> (leucaena) es una leguminosa forrajera que puede ser usada como complemento proteico para animales. Sin embargo, presenta problemas para su establecimiento. Tomando en cuenta que es una leguminosa y estas son susceptibles a asociarse con hongos micorr&iacute;cico&#45;arbusculares (HMA), el presente trabajo tuvo como objetivo determinar el efecto de <i>Glomus intraradices</i> y <i>G. etunicatum</i> en el crecimiento de <i>L. leucocephala</i> bajo condiciones de vivero. La altura, el n&uacute;mero de hojas y el di&aacute;metro de tallo se tomaron cada siete d&iacute;as durante el periodo del experimento, al final se determin&oacute; la colonizaci&oacute;n micorr&iacute;cica y la longitud radicular. En las plantas inoculadas con ambos hongos la altura &oacute;ptima de trasplante (30 cm) se alcanz&oacute; a los 83 d&iacute;as, en lugar de los 90 a 120 d&iacute;as normalmente requeridos. Los valores m&aacute;s altos se registraron en todas las variables de las plantas inoculadas con <i>G. intraradices</i> (<i>P</i> &#8804; 0.05). Los resultados sugieren que este hongo puede ser una opci&oacute;n para mejorar la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas de leucaena en vivero.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Glomus intraradices</i>, <i>Glomus etunicatum</i>, micorriza arbuscular, leguminosa, forrajes, prote&iacute;nas, longitud de ra&iacute;z.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Leucaena leucocephala</i> (leucaena) is a forage legume that can be used as a protein complement for animals. However, establishment of this plant species presents some problems. Considering that legumes are highly susceptible to association with arbuscular mycorrhizal (AM) fungi, this work was conducted to determine the effect of <i>Glomus intraradices</i> and <i>G. etunicatum</i> on the growth of <i>L. leucocephala</i> under nursery conditions. Height, number of leaves, and stem diameter were recorded every seven days during the experiment. Mycorrhizal colonization and root length were determined at the end of the experiment. The optimal height for transplanting (30 cm) was achieved at 83 days; which is normally required from Day 90 till 120. The highest values were found in all plant variables inoculated with <i>G. intraradices</i> (<i>P</i>&#8804; 0.05). These results suggest that these AM fungi may be an option for improving production of leucaena seedlings in nursery.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Glomus intraradices</i>, <i>Glomus etunicatum</i>, arbuscular mycorrhiza, legume, forages, protein, root length.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El incremento de la poblaci&oacute;n mundial y la correspondiente necesidad de productos agr&iacute;colas han estimulado la necesidad de aumentar la productividad de forrajes y cultivos (Cantrell y Linderman, 2001). En muchas &aacute;reas, especialmente en las regiones &aacute;ridas y semi&aacute;ridas, la producci&oacute;n animal est&aacute; limitada por una amplia deficiencia de prote&iacute;nas, particularmente en regiones con sequ&iacute;a prolongada cuando la calidad del forraje es m&aacute;s baja. Las leguminosas proveen nitr&oacute;geno al sistema suelo, el cual es tomado por las plantas y transformado a prote&iacute;nas las que al ser consumidas por los animales incrementan la producci&oacute;n de carne, sin necesidad de aplicar fertilizaci&oacute;n qu&iacute;mica (Stamford <i>et al.,</i> 1997; 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Leucaena leucocephala</i> es una leguminosa muy utilizada en bancos de prote&iacute;na (Vald&eacute;s, 1992), ya que puede proporcionar hasta un 22% de &eacute;sta (Brewbaker, 1987; Su&aacute;rez, 1994), lo que la hace un forraje de buena </font><font face="verdana" size="2">calidad en la dieta de los animales (Brewbaker, 1987). La leucaena es un arbusto de porte alto que se adapta a diversos suelos, adem&aacute;s es muy resistente al pastoreo. El desarrollo de bancos de prote&iacute;na permite sustituir el uso de concentrados de importaci&oacute;n o la alimentaci&oacute;n complementaria, por esto, la leucaena debe ser tratada como un cultivo de alto valor, tanto alimenticio como econ&oacute;mico, adem&aacute;s si se maneja adecuadamente puede persistir indefinidamente. Por estas razones, todas las inversiones que se hagan para su establecimiento est&aacute;n justificadas y ser&aacute;n recompensadas en t&eacute;rminos econ&oacute;micos y de producci&oacute;n (Vald&eacute;s, 1992).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La explotaci&oacute;n intensa de agrosistemas naturales y agropecuarios en los tr&oacute;picos es la responsable de la degradaci&oacute;n de los ecosistemas estables. Entre los cambios bi&oacute;ticos se incluye una disminuci&oacute;n en la densidad de esporas de hongos micorr&iacute;cicos arbusculares (HMA), aspecto que no debe ser pasado por alto, debido al efecto de los HMA en el establecimiento y crecimiento de pl&aacute;ntulas, lo que se ha demostrado a trav&eacute;s de los resultados positivos obtenidos con plantas inoculadas con HMA al ser trasplantadas (Michelsen y Rosendahl, 1990). Tomando en cuenta la importancia que la leucaena tiene como planta forrajera y su transformaci&oacute;n a prote&iacute;na animal para consumo humano y el tener una ra&iacute;z pivotante (Su&aacute;rez, 1994), la hace un modelo de estudio importante para continuar el estudio de su relaci&oacute;n con los HMA (Morton y Benny, 1990), adem&aacute;s de que el uso de estos microorganismos permite lograr una agricultura sostenible que resulta pr&aacute;ctica y econ&oacute;mica, y tambi&eacute;n favorece el reciclaje de nutrientes para mejorar la fertilidad del suelo, por lo tanto, se convierte en una alternativa para contribuir al establecimiento de sistemas de producci&oacute;n sostenibles, competitivos y rentables (Molina <i>et al.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los HMA forman abundantes hifas externas y estimulan el desarrollo de las ra&iacute;ces con lo que aumenta la capacidad del sistema radical para absorber y traslocar elementos, principalmente el f&oacute;sforo, lo que mejora el crecimiento de la planta (Daniels&#45;Hylton y Ahmad, 1994). Las leguminosas y los pastos que crecen en condici&oacute;n natural o de cultivo generalmente establecen asociaci&oacute;n con HMA (Saif, 1987; Khasa <i>et al.</i> , 1992). Esta asociaci&oacute;n no presenta especificidad, aunque cada d&iacute;a hay m&aacute;s evidencias de que algunos HMA pueden formar asociaciones preferenciales con ciertas plantas hospedantes (Secilia y Bagyaraj, 1992). De este modo, la eficiencia depender&aacute;, parcialmente, </font><font face="verdana" size="2">de las caracter&iacute;sticas del hongo simbionte (Abbott y Robson, 1986). El objetivo de este trabajo fue determinar el efecto de dos cepas de <i>Glomus</i> en la respuesta de crecimiento de <i>Leucaena leucocephala</i> en condiciones de vivero.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se realiz&oacute; en el &aacute;rea de posgrado de la Universidad de Colima, ubicado a 103&deg; 52' O, 18&deg; 55' N con una altitud de 33 m, con precipitaci&oacute;n media anual de 750 mm y una temperatura promedio anual de 26 &deg;C. El experimento se realiz&oacute; en el vivero a una temperatura promedio de 22 &deg;C (Estaci&oacute;n meteorol&oacute;gica, Universidad de Colima).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material Biol&oacute;gico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas de leucaena que se utilizaron para el experimento proven&iacute;an de plantas silvestres de la zona cercana a la localidad denominada Cofrad&iacute;a de Ju&aacute;rez, municipio de Armer&iacute;a, Colima. Las semillas se desinfestaron superficialmente con soluci&oacute;n de formol durante 30 min, posteriormente fueron lavadas cuatro veces con agua destilada est&eacute;ril y despu&eacute;s se escarificaron mec&aacute;nicamente lijando la testa ligeramente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los dos hongos micorr&iacute;cicos empleados fueron <i>Glomus etunicatum</i> Becker y Gerdemann (aislado UT&#45;123) y <i>Glomus intraradices</i> Schenck y Smith (aislado WV&#45;944), adquiridas en la West Virginia University, Virginia, USA.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Propagaci&oacute;n del In&oacute;culo Micorr&iacute;cico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas se propagaron en condiciones de invernadero, usando <i>Panicum maximum</i> y <i>Phaseolus vulgaris</i> cv. negro jamapa, como cultivos trampa, en recipientes de pl&aacute;stico con capacidad de 40 kg de sustrato, por seis meses (dos generaciones del frijol); el sustrato utilizado fue arena:suelo (2:1 v/v) previamente tratado en autoclave por dos horas. Durante el periodo de propagaci&oacute;n, los recipientes se regaron cada siete d&iacute;as con la soluci&oacute;n nutritiva Long Ashton (Sutcliffe y Baker, 1976), agregando un cuarto de la cantidad propuesta de f&oacute;sforo en dicha soluci&oacute;n. Al t&eacute;rmino de la propagaci&oacute;n, antes de ser usado, el inoculante se almacen&oacute; a 10 &deg;C por 10 d&iacute;as para romper la latencia de las esporas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Germinaci&oacute;n y Trasplante</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La germinaci&oacute;n de las semillas de leucaena se llev&oacute; a cabo en charolas de germinaci&oacute;n que conten&iacute;an arena tratada con calor h&uacute;medo a una temperatura de 120 &deg;C durante 120 min. A los 20 d&iacute;as, se seleccionaron pl&aacute;ntulas de tama&ntilde;o uniforme y se trasplantaron en bolsas de polietileno negras (10 x 30 cm) con una mezcla de suelo:arena (2:1), previamente desinfectadas con alcohol </font><font face="verdana" size="2">al 70%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inoculaci&oacute;n</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pl&aacute;ntulas se inocularon con uno u otro hongo mediante la t&eacute;cnica de inoculaci&oacute;n, propuesta por Brundrett y Abbott (1991), para la que se emple&oacute; un promedio de 1000 esporas (Huante <i>et al.,</i> 1993). Se utilizaron 24 repeticiones para cada uno de los tratamientos incluyendo al testigo (sin inocular). Su distribuci&oacute;n fue completamente al azar con redistribuci&oacute;n semanal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Colonizaci&oacute;n Micorr&iacute;cica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al finalizar el experimento, la colonizaci&oacute;n micorr&iacute;cica se determin&oacute; mediante la t&eacute;cnica de laminilla (Giovannetti y Mosse, 1980), por lo que las ra&iacute;ces fueron clareadas en KOH al 10% y te&ntilde;idas con fucsina &aacute;cida </font><font face="verdana" size="2">(Kormanik y McGraw, 1982).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento desde la siembra hasta la cosecha concluy&oacute; a los 99 d&iacute;as. Las pl&aacute;ntulas estuvieron 15 d&iacute;as en charola a partir de la germinaci&oacute;n y a partir de los 35 d&iacute;as posteriores al trasplante se tomaron datos cada siete d&iacute;as por siete semanas. Las variables medidas fueron: altura de planta, di&aacute;metro de tallo, n&uacute;mero de hojas y volumen de la parte a&eacute;rea.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos se procesaron mediante an&aacute;lisis de varianza con <i>P</i> &#8804; 0.05, mediante prueba de medias de Tukey, usando el programa estad&iacute;stico SAS (SAS </font><font face="verdana" size="2">Institute, 1999).</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La altura &oacute;ptima de trasplante de 30 cm se alcanz&oacute; entre los 76 y 83 d&iacute;as, esto es, antes de los 90 a 120 d&iacute;as que requiere de manera habitual (Brewbaker, 1987) con 38.25 cm y 37.5 cm para <i>G. intraradices</i> y <i>G. etunicatum,</i> respectivamente (<a href="/img/revistas/tl/v26n2/a5c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). En cuanto al n&uacute;mero de hojas, ambos HMA indujeron un comportamiento similar <a href="/img/revistas/tl/v26n2/a5c2.jpg" target="_blank">(Cuadro 2</a>). Respecto al di&aacute;metro de tallo (<a href="/img/revistas/tl/v26n2/a5c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), a partir de los 76 d&iacute;as se registraron diferencias significativas respecto al testigo, mientras que en las dos &uacute;ltimas fechas de muestreo (90 y 97 d&iacute;as), las plantas inoculadas con <i>G. intraradices</i> presentaron las mayores diferencias.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el <a href="#c4">Cuadro 4</a> se muestran los valores de la micorrizaci&oacute;n al final del experimento, donde no se presentaron diferencias entre ambos hongos, as&iacute; como </font><font face="verdana" size="2">para longitud radicular, incluyendo en este caso al testigo. Ahiabor e Hirata (1995), al estudiar un grupo de leguminosas, no observaron respuestas significativas en la longitud radical y, en cambio, se produjo una mayor cantidad de ra&iacute;ces delgadas, lo que coincide con los resultados observados en las plantas de leucaena micorrizadas en el presente experimento.</font></p> 	    <p align="center"><a name="c4"></a><img src="/img/revistas/tl/v26n2/a5c4.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, los dos hongos micorr&iacute;cicos promovieron el crecimiento y desarrollo vegetativo de las plantas y resultaron igualmente infectivos, sin embargo, los resultados del &uacute;ltimo muestreo indican que <i>G. intraradices</i> fue m&aacute;s efectivo para promover el crecimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lo anterior coincide con lo reportado por Ahiabor e Hirata (1995) quienes, al probar varias especies de hongos micorr&iacute;cicos arbusculares del mismo g&eacute;nero sobre tres especies de leguminosas, observaron que el crecimiento de estos vegetales dependi&oacute; de la combinaci&oacute;n planta&#45;hongo. As&iacute; mismo, Abbott y Robson (1985) indican que la infectividad (habilidad para colonizar las ra&iacute;ces) y la efectividad de HMA (habilidad para estimular el crecimiento) aparentemente var&iacute;a dependiendo del hongo y el hospedero. Estos mismos autores sostienen que <i>G. intraradices</i> puede ser m&aacute;s efectivo debido a su capacidad para colonizar r&aacute;pidamente y formar una extensa y efectiva red externa de hifas alrededor de las ra&iacute;ces que facilita la adquisici&oacute;n de nutrimentos. Es probable que a esto se deban los resultados del presente trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al mejorar el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de leucaena micorrizadas se demuestra el potencial de la inoculaci&oacute;n micorr&iacute;cica en la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas que resistan el trasplante (Michelsen y Rosendahl, 1990) y, como consecuencia, ser&aacute;n probablemente competidoras m&aacute;s exitosas en ambientes con niveles bajos de nutrimentos que aquellas plantas no colonizadas con estos hongos (Majunath y Habte, 1989). Rey <i>et al.</i> (2005) obtuvieron resultados similares con respecto a la altura de planta y colonizaci&oacute;n; estos autores utilizaron una doble inoculaci&oacute;n, tanto de HMA como de rizobios.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Glomus intraradices</i> es una opci&oacute;n para asociarse simbi&oacute;ticamente con leucaena durante su estancia en el vivero, ya que las plantas asociadas con este hongo disminuyeron el tiempo de manejo de las pl&aacute;ntulas de leucaena en el vivero. Esto repercutir&aacute; directamente en la obtenci&oacute;n de plantas vigorosas que podr&aacute;n superar mejor el trasplante. Es recomendable continuar los estudios realizando determinaciones acerca del contenido prote&iacute;nico de las plantas y, con ello, establecer el efecto de las aplicaciones de los hongos micorr&iacute;cico&#45;arbusculares (HMA) en este cultivo de una manera m&aacute;s precisa.</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RECONOCIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen a la Universidad de Colima su apoyo para la realizaci&oacute;n de este trabajo, el cual se realiz&oacute; con apoyo del Fondo Ram&oacute;n &Aacute;lvarez&#45;Buylla de Aldana.</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abbott, L. K. and A. D. Robson. 1985. Formation of external hyphae in soil by four species of vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal fungi. </font><font face="verdana" size="2">New Phytol. 99: 245&#45;255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792749&pid=S0187-5779200800020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abbott, L. K. and A. D. Robson. 1986. Managing vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal fungi to increase the efficiency of fertilizer use. Rev. Rural Sci. 6: 198&#45;206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792751&pid=S0187-5779200800020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahiabor, B. D. and H. Hirata. 1995. Influence of growth stage on the association between some tropical legumes and two variant species of <i>Glomus</i> in an Andosol. Soil Sci. Plant Nutr. 41: </font><font face="verdana" size="2">481&#45;496.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792753&pid=S0187-5779200800020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brewbaker, J. L. 1987. <i>Leucaena:</i> a multipurpose tree genus for tropical agroforestry. pp. 289&#45;320. <i>In:</i> H. A. Steppler and P. K. R. Nair (eds.). Agroforestry, a decade of development. International Council for Research on Agroforestry. Nairobi, Kenya.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792755&pid=S0187-5779200800020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brundrett, M. C. and L. K. Abbott. 1991. Roots of Jarrah forest plants. I. Mycorrhizal associations of shrubs and herbaceous </font><font face="verdana" size="2">plants. Aust. J. Bot. 39: 445&#45;457.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792757&pid=S0187-5779200800020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cantrell, I. C. and R. G. Linderman. 2001. Preinoculation of lettuce and onion with VA mycorrhizal fungi reduces deleterious effects of soil salinity. Plant Soil 233: 269&#45;281.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792759&pid=S0187-5779200800020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Daniels&#45;Hylton, K. D. M. and M. H. Ahmad. 1994. Inoculation response in kidney beans <i>(Phaseolus vulgaris</i> L.) to vesicular&#45;arbuscular fungi and rhizobia in non&#45;sterilized soil. Biol. Fertil. </font><font face="verdana" size="2">Soils 18: 95&#45;98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792761&pid=S0187-5779200800020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Giovannetti, M. and B. Mosse. 1980. An evaluation of techniques measuring vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal infection in roots. </font><font face="verdana" size="2">New Phytol. 84: 489&#45;500.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792763&pid=S0187-5779200800020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Huante, P., E. Rinc&oacute;n, and E. B. Allen. 1993. Effect of vesicular&#45;arbuscular mycorrhizae on seedling growth of four tree species from the tropical deciduous forest in Mexico. Mycorrhiza 2: </font><font face="verdana" size="2">141&#45;145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792765&pid=S0187-5779200800020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khasa, P., V. Furlan, and J. A. Fortin. 1992. Response of some tropical plant species to endomycorrhizal fungi under field conditions. Trop. Agric. (Trinidad). 69: 279&#45;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792767&pid=S0187-5779200800020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kormanik, P. P. and A. C. McGraw. 1982. Quantification of vesicular&#45;arbuscular mycorrhizae in plant roots. pp. 37&#45;45. <i>In:</i> N. C. Schenk (ed.). Methods and principles of mycorrhizal research. The American Phytopathological Society. St. Paul, </font><font face="verdana" size="2">MN, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792769&pid=S0187-5779200800020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Majunath, A. and M. Habte. 1989. Rate variables associated with P uptake, utilization and growth of mycorrhizal and non&#45;mycorrhizal <i>Leucaena leucocephala.</i> J. Plant Nutr. 12: 755&#45;768.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792771&pid=S0187-5779200800020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Michelsen, A. and S. Rosendahl. 1990. The effect of VA mycorrhizal fungi, phosphorus and drought stress on the growth of <i>Acacia nilotica</i> and <i>Leucaena leucocephala</i> seedlings. Plant Soil </font><font face="verdana" size="2">124: 7&#45;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792773&pid=S0187-5779200800020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Molina L., M., L. Mahecha y M. Medina. 2005. Importancia del manejo de hongos micorriz&oacute;genos en el establecimiento de &aacute;rboles en sistemas silvopastoriles. Rev. Col. Cienc. Pec. </font><font face="verdana" size="2">18: 162&#45;175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792775&pid=S0187-5779200800020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morton, J. B. and G. L. Benny. 1990. Revised classification of arbuscular mycorrhizal fungi <i>(Zygomicetes):</i> a new order, <i>Glomales,</i> two new suborders, <i>Glomineae</i> and <i>Gigasporineae,</i> and two new families, <i>Acaulosporaceae</i> and <i>Gigasporaceae,</i> with an emendation of <i>Glomaceae.</i> Mycotaxon 37: 471&#45;491.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792777&pid=S0187-5779200800020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rey, A. M., D. R. Chamorro y M. Ram&iacute;rez. 2005. Efecto de la doble inoculaci&oacute;n de rizobios y micorrizas sobre la producci&oacute;n y calidad de forraje de <i>Leucaena leucocephala.</i> Rev. Corpoica </font><font face="verdana" size="2">6: 52&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792779&pid=S0187-5779200800020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saif, S. R. 1987. Growth responses of tropical forage plant species to vesicular&#45;arbuscular mycorrhizae. Plant Soil 97: 25&#45;35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792781&pid=S0187-5779200800020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute. 1999. SAS User's guide: statistics. SAS Institute. Cary, NC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792783&pid=S0187-5779200800020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Secilia, J. and D. J. Bagyaraj. 1992. Selection of efficient vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal fungi for wetland rice <i>(Oryza sativa L.).</i> Biol. Fertil. Soils 13: 108&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792785&pid=S0187-5779200800020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stamford, N. P., A. D. Ortega, F. Temprano, and D. R. Santos. 1997. Effects of phosphorus fertilization and inoculation of <i>Bradyrhizobium</i> and mycorrhizal fungi on growth of <i>Mimosa caesalpiniaefolia</i> in an acid soil. Soil Biol. Biochem. 29: 959&#45;964.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792787&pid=S0187-5779200800020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stamford, N. P., J. T. Ara&uacute;jo Filho, and A. J. N. Silva. 2000. Growth and nitrogen fixation of <i>Leucaena leucocephala</i> and <i>Mimosa caesalpiniaefolia</i> in a saline soil of the Brazilian semi&#45;arid region as affected by sulphur, gypsum and saline water. Trop. Grasslands 34: 1&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792789&pid=S0187-5779200800020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Su&aacute;rez, J. J. 1994. Banco proteico de leucaena forrajera. Asociaci&oacute;n Cubana de Producci&oacute;n Animal 2: 28&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792791&pid=S0187-5779200800020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sutcliffe, J. F. and D. A. Baker. 1976. Plants and mineral salts. Camelot Press. London, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792793&pid=S0187-5779200800020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vald&eacute;s, L. R. 1992. Banco de prote&iacute;nas para la ganader&iacute;a Cubana. Asociaci&oacute;n Cubana de Producci&oacute;n Animal 1: 12&#45;18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9792795&pid=S0187-5779200800020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    ]]></body>
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