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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Mecanismos de muerte neuronal asociados a la hipoglucemia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In physiological conditions blood glucose concentration (80-90 mg/dl) is maintained through highly regulated systemic mechanisms. Disruption of, these mechanisms leads to hypoglycemia, whose decreases to levels lower to 20 mg/dl blocks the electrical activity of the brain. This condition is known as hypoglycemic coma and can be overcome by intravenous administration of glucose. Subsequently to the hypoglycemic episode, it occurs brain damage determined by the high dependency of brain on glucose blood supply, which is the main energy source necessary for its normal functioning. Many neuronal functions are compromised during energy failure such as the maintenance of ionic gradients, the release and reuptake of neurotransmitters, the intracellular buffering of calcium, and the mitochondrial function. Excitotoxical glutamate activity in hypoglycemic neuronal damage is well documented, and a role of oxidative stress in this process has recently raised. The contribution of these processes to hypolgycemic brain damage is the main subject of this review.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4"> Art&iacute;culo de revisi&oacute;n</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4">  <b>Mecanismos de muerte neuronal asociados a la hipoglucemia</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Mechanisms involved in neural damage associated to hypoglycemia</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">  &nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"> <b>Ma. Luisa Haces del Blanco, Lourdes Massieu&#150;Trigo*</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">  &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <i>* Departamento de Neurociencias, Instituto de Fisiolog&iacute;a Celular, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, M&eacute;xico D.F., M&eacute;xico.</i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Correspondencia:</b>     <br>   <i>Ma. Luisa Haces del Blanco.     <br> Departamento de Neurociencias. Instituto de Fisiolog&iacute;a Celular. Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico.     <br> Apartado Postal 70&#150;253, 04510,     <br> M&eacute;xico D.F., M&eacute;xico. </i>    <br> <b> E&#150;mail</b>: <a href="mailto:mlhaces@ifc.unam.mx">mlhaces@ifc.unam.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Recibido: 1  octubre 2004.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  Aceptado: 22 octubre 2004.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La concentraci&oacute;n fisiol&oacute;gica de la glucosa sangu&iacute;nea en los humanos (80&#150;90 mg/dl) se mantiene en este rango a trav&eacute;s de mecanismos sist&eacute;micos altamente regulados. Cuando estos mecanismos no operan adecuadamente, la glucosa sangu&iacute;nea disminuye dando lugar a un estado de hipoglucemia. La disminuci&oacute;n de glucosa por debajo de los 20 mg/dl induce un estado de coma hipogluc&eacute;mico caracterizado por el cese o aplanamiento de la actividad cerebral el&eacute;ctrica. Dicho estado puede revertirse a trav&eacute;s de la administraci&oacute;n intravenosa de glucosa. Como consecuencia de un episodio hipogluc&eacute;mico ocurre da&ntilde;o neuronal debido a que el cerebro es altamente dependiente del aporte sangu&iacute;neo de glucosa; la cual es la fuente de energ&iacute;a principal necesaria para su correcto funcionamiento. Una gran variedad de funciones celulares se alteran en condiciones de deficiencia energ&eacute;tica; como tales: el mantenimiento de los gradientes i&oacute;nicos, la liberaci&oacute;n y recaptura de neurotransmisores, la regulaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n intracelular de calcio y la funci&oacute;n mitocondrial. Muchas evidencias se&ntilde;alan la articipaci&oacute;n del glutamato como excitotoxina en la muerte neuronal hipogluc&eacute;mica y recientemente; se ha propuesto que el estr&eacute;s oxidativo juega un papel importante en este proceso. En esta revisi&oacute;n analizamos los factores que contribuyen al desarrollo de da&ntilde;o cerebral en hipoglucemia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font><font face="verdana" size="2"><b>Palabras </b>clave: hipoglucemia, da&ntilde;o neuronal, estr&eacute;s oxidativo, excitotoxicidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> In physiological conditions blood glucose concentration (80&#150;90 mg/dl) is maintained through highly regulated systemic mechanisms. Disruption of, these mechanisms leads to hypoglycemia, whose decreases to levels lower to 20 mg/dl blocks the electrical activity of the brain. This condition is known as hypoglycemic coma and can be overcome by intravenous administration of glucose. Subsequently to the hypoglycemic episode, it occurs brain damage determined by the high dependency of brain on glucose blood supply, which is the main energy source necessary for its normal functioning. Many neuronal functions are compromised during energy failure such as the maintenance of ionic gradients, the release and reuptake of neurotransmitters, the intracellular buffering of calcium, and the mitochondrial function. Excitotoxical glutamate activity in hypoglycemic neuronal damage is well documented, and a role of oxidative stress in this process has recently raised. The contribution of these processes to hypolgycemic brain damage is the main subject of this review.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;<b>Key words:</b> hypoglycemia, brain damage, oxidative stress, excitotoxicity.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La concentraci&oacute;n fisiol&oacute;gica de glucosa en sangre oscila entre 80&#150;90 mg/dl (normoglucemia) y se modifica en diversas situaciones. La ingesta de alimentos induce un aumento en los niveles de glucosa alrededor de 200 mg/dl (hiperglucemia), mientras que en el ayuno prolongado su nivel disminuye hasta 60&#150;40 mg/dl (hipoglucemia moderada). Si el nivel de glucosa disminuye a&uacute;n m&aacute;s (menor 20 mg/dl) se puede presentar una hipoglucemia severa que se acompa&ntilde;a del cese de la actividad el&eacute;ctrica del cerebro o de coma hipogluc&eacute;mico. Existen mecanismos compensatorios encargados de mantener los niveles de glucosa dentro del rango fisiol&oacute;gico, uno de ellos es la liberaci&oacute;n de insulina que ocurre como respuesta a la hiperglucemia. La insulina es una hormona pancre&aacute;tica que provoca una disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n sangu&iacute;nea de glucosa, ya que aumenta su captura en diversos tipos celulares, y en especial en el h&iacute;gado en donde favorece la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno y de &aacute;cidos grasos, consider&aacute;ndose por eso una hormona anab&oacute;lica. Por su parte, la hipoglucemia provoca la liberaci&oacute;n de hormona de crecimiento, cortisol y epinefrina. Esta &uacute;ltima, induce la liberaci&oacute;n de glucagon hacia la sangre y la acci&oacute;n conjunta de todas ellas favorecen principalmente la liberaci&oacute;n hep&aacute;tica de glucosa <a href="#f1">(figura 1)</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">  <a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">  <img src="/img/revistas/aneuroc/v10n2/a5f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El cerebro depende del aporte continuo de glucosa para su buen funcionamiento, de tal manera que cuando &eacute;ste se interrumpe, por ejemplo durante la isquemia o la hipoglucemia, se puede presentar da&ntilde;o neuronal. La vulnerabilidad de las distintas regiones cerebrales a la muerte en estas dos situaciones es la misma, siendo m&aacute;s sensibles la corteza, el hipocampo y el cuerpo estriado, pero la distribuci&oacute;n del da&ntilde;o es diferente<sup>1</sup>. Por ejemplo, en el hipocampo en condiciones de hipoglucemia se lesionan zonas mediales de la regi&oacute;n CA1 y el sub&iacute;culo, mientras que &eacute;ste es resistente a la isquemia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La hipoglucemia es un estado generalmente transitorio, aunque puede presentarse en forma cr&oacute;nica, tanto en adultos como en infantes con trastornos hormonales, como es la deficiencia de glucagon o alteraciones en la hormona del crecimiento, entre otras. Los pacientes diab&eacute;ticos dependientes de insulina (diabetes tipo 1) tambi&eacute;n est&aacute;n expuestos a estados de hipoglucemia, ya que al administrarse la insulina pueden excederse en la dosis y provocar as&iacute; una disminuci&oacute;n excesiva en los niveles sangu&iacute;neos de glucosa. La hipoglucemia tambi&eacute;n puede presentarse como consecuencia de un insulinoma que al sintetizar y liberar insulina de manera excesiva, produce la hipoglucemia. Se ha demostrado que la hipoglucemia moderada afecta los procesos de memoria en humanos<sup>2</sup>, y que episodios repetidos de hipoglucemia severa, frecuentes en los pacientes diab&eacute;ticos tipo 1, causan d&eacute;ficit cognoscitivo irreversible<sup>3</sup>, el cual correlaciona con el da&ntilde;o a estructuras cerebrales como el hipocampo<sup>4</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Para estudiar el da&ntilde;o neuronal asociado a la hipoglucemia se han desarrollado diversos modelos animales. El modelo <i>in vivo </i>m&aacute;s utilizado es la inyecci&oacute;n sist&eacute;mica de insulina en ratas, la cual provoca una disminuci&oacute;n progresiva de la concentraci&oacute;n sangu&iacute;nea de glucosa hasta alcanzar niveles menores a 20 mg/dl e induce un estado de coma o periodo isoel&eacute;ctrico. Si &eacute;ste se prolonga por m&aacute;s de 15 min se produce muerte neuronal. Para restablecer la normoglucemia y la actividad cerebral, y por consiguiente evitar la muerte del animal; se administra glucosa por v&iacute;a intravenosa. El da&ntilde;o subsiguiente al coma hipogluc&eacute;mico tiene una relaci&oacute;n directa con la duraci&oacute;n de &eacute;ste, entre mas largo sea el periodo isoel&eacute;ctrico mayor extensi&oacute;n tendr&aacute; la lesi&oacute;n<sup>5</sup>. Por otra parte, se han desarrollado modelos <i>in vitro </i>en cultivos celulares de tejido cerebral, en los cuales se mimetiza la condici&oacute;n hipogluc&eacute;mica mediante la privaci&oacute;n de glucosa. Sin embargo, las conclusiones derivadas de los estudios <i>in vitro </i>no siempre son extrapolabas a lo que ocurre en sistemas <i>in vivo. </i>Estos dos tipos de modelos han sido muy &uacute;tiles para estudiar los mecanismos de muerte neuronal inducida por la ausencia de glucosa. A continuaci&oacute;n se describen las observaciones m&aacute;s concluyentes en este campo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Los amino&aacute;cidos excitadores, la excitotoxicidad y el da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El glutamato es el neurotrasmisor excitador distribuido m&aacute;s ampliamente en el sistema nervioso central, cuya liberaci&oacute;n de la presinapsis ocurre por exocitosis a trav&eacute;s de la fusi&oacute;n vesicular dependiente de Ca<sup>2+</sup>. Una vez en el espacio sin&aacute;ptico el glutamato se une a dos variedades de receptores postsin&aacute;pticos; los receptores ion&oacute;tropicos que son en s&iacute; canales i&oacute;nicos y los receptores metabotr&oacute;picos que est&aacute;n acoplados a cascadas intracelulares de segundos mensajeros.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los receptores ion&oacute;tropicos se han clasificado de acuerdo a sus propiedades electrofisiol&oacute;gicas y farmacol&oacute;gicas, y se han denominado de acuerdo a su agonista espec&iacute;fico: el receptor a N&#150;metil&#150;D&#150;aspartato (NMDA), el receptor a kainato y el receptor al &aacute;cido a&#150;amino&#150;3&#150;hidroxi&#150;5&#150;metiloxazol&#150;4&#150;propi&oacute;nico (AMPA). A estos dos &uacute;ltimos se les agrupa como receptores no&#150;NMDA. Los receptores no&#150;NMDA son principalmente permeables a Na<sup>+</sup>, mientras que los NMDA son permeables a Ca<sup>2+</sup> y a Na<sup>+</sup>. Estos &uacute;ltimos en condiciones de reposo mantienen bloqueado su canal i&oacute;nico por un ion Mg<sup>2+</sup>. Esto los hace dependientes de voltaje pues es necesario que la membrana se despolarice para que se libere dicho ion y permita el paso de Ca<sup>2+</sup>. La despolarizaci&oacute;n puede ser consecuencia de la activaci&oacute;n de los receptores no&#150;NMDA. Un agonista de los receptores NMDA es el aspartato que tambi&eacute;n es un amino&aacute;cido con funci&oacute;n de neurotransmisor excitador en el cerebro.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> En los a&ntilde;os cincuentas, se describieron las propiedades t&oacute;xicas del glutamato<sup>6</sup>; sin embargo, el t&eacute;rmino de excitotoxicidad no fue acu&ntilde;ado sino hasta 1969 por Olney. La excitotoxicidad se refiere a la capacidad del glutamato y otros amino&aacute;cidos excitadores, de causar neurodegeneraci&oacute;n por la estimulaci&oacute;n prolongada de sus receptores possin&aacute;pticos<sup>7</sup>. Este tipo de toxicidad se ha descrito en diversos tipos de lesiones como las causadas por un accidente vascular cerebral, por el coma hipogluc&eacute;mico o por una hemorragia cerebral. Los mecanismos de muerte en estas condiciones no se han esclarecido completamente, pero se sabe que el Ca<sup>2+</sup>, al igual que los amino&aacute;cidos excitadores, interviene en su desarrollo<sup>8</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Dadas las propiedades t&oacute;xicas del glutamato, su concentraci&oacute;n extracelular est&aacute; finamente regulada a trav&eacute;s de su captura del espacio sin&aacute;ptico por transportadores espec&iacute;ficos, una vez que se libera de la terminal sin&aacute;ptica. Estos transportadores se localizan principalmente en la membrana plasm&aacute;tica de los astrocitos, y tambi&eacute;n se encuentran en neuronas. La captura de glutamato es dependiente Na<sup>+</sup> y por tanto est&aacute; acoplada al gradiente electroqu&iacute;mico de Na<sup>+</sup>/K<sup>+</sup>, que le sirve de fuerza motora para transportar dicho amino&aacute;cido al interior de la c&eacute;lula<sup>9</sup>. El proceso de captura es por tanto dependiente de energ&iacute;a pues el mantenimiento del gradiente de Na <sup>+</sup> /K<sup>+</sup> depende del funcionamiento de las bombas Na<sup>+</sup>/K<sup>+</sup> que son dependientes de ATP.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El papel del glutamato y del aspartato en el da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico ha sido objeto de estudio de varios grupos y ha quedado establecido el papel preponderante de la excitotoxicidad en el da&ntilde;o producido por la disminuci&oacute;n de los niveles de glucosa. Hasta la fecha se sabe por estudios de microdialisis que estos amino&aacute;cidos excitadores son liberados desde que se inicia el periodo isoel&eacute;ctrico<sup>10</sup>. En estos experimentos se observ&oacute; que la cantidad de aspartato liberado es mayor que la de glutamato y esto se debe a que el glutamato es utilizado como sustrato metab&oacute;lico en esta condici&oacute;n, y por tanto su disponibilidad como transmisor se ve limitada favoreci&eacute;ndose la vesiculaci&oacute;n y la liberaci&oacute;n del aspartato<sup>11&#150;13</sup>. La acumulaci&oacute;n de los amino&aacute;cidos excitadores en el espacio sin&aacute;ptico puede deberse b&aacute;sicamente a dos eventos: que su liberaci&oacute;n est&eacute; aumentada o que los sistemas de captura est&eacute;n comprometidos. Ambas posibilidades son factibles, pues al colapsarse el gradiente electroqu&iacute;mico, la membrana presin&aacute;ptica se despolariza y se activan los canales de Ca<sup>2+ </sup>dependientes de voltaje increment&aacute;ndose la concentraci&oacute;n intracelular de este ion. El aumento de Ca<sup>2+</sup> intracelular favorece la liberaci&oacute;n por exocitosis de neurotransmisor. Por otra parte, si el estado energ&eacute;tico no es el &oacute;ptimo por la ausencia de glucosa, se altera el proceso de captura que es dependiente de energ&iacute;a. Todav&iacute;a no se ha establecido cual de estos eventos es m&aacute;s importante en la hipoglucemia. Experimentos <i>in vitro </i>sugieren la disfunci&oacute;n de los transportadores de glutamato/aspartato ya que si se restablece la concentraci&oacute;n de glucosa despu&eacute;s de un periodo de privaci&oacute;n, el glutamato extracelular vuelve a sus niveles normales siendo este proceso dependiente de Na<sup>+14</sup>. Al parecer los sistemas de captura no funcionan adecuadamente en condiciones de hipoglucemia debido a la deficiencia energ&eacute;tica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La acumulaci&oacute;n de amino&aacute;cidos excitadores en el espacio sin&aacute;ptico, debido al bloqueo de sus transportadores, en s&iacute; no es suficiente para provocar muerte neuronal. Se ha demostrado que la acumulaci&oacute;n <i>in vivo </i>de estos amino&aacute;cidos, despu&eacute;s de la administraci&oacute;n de un inhibidor de la captura de glutamato, no causa da&ntilde;o en condiciones normales<sup>15</sup>, pero s&iacute; cuando el metabolismo energ&eacute;tico est&aacute; inhibido<sup>16,17</sup>. Estos trabajos apuntan a que el estado energ&eacute;tico celular es fundamental en el desarrollo de la lesi&oacute;n excitot&oacute;xica por lo que mas adelante se discutir&aacute; su papel en el da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Otra evidencia que apoya a la excitotoxicidad como el mecanismo de da&ntilde;o subsecuente a la hipoglucemia, es la observaci&oacute;n de que la muerte neuronal en el estriado inducida en condiciones de hipoglucemia, se previene cuando se eliminan las v&iacute;as glutamat&eacute;rgicas cortico&#150;estriatales<sup>18</sup>. Esto sugiere que la liberaci&oacute;n de glutamato por las terminales glutamat&eacute;rgicas es necesaria para que se produzca la lesi&oacute;n hipogluc&eacute;mica. Por otra parte, la administraci&oacute;n de antagonistas de los receptores NMDA previene la muerte neuronal<sup>19</sup> a&uacute;n cuando &eacute;stos se administren despu&eacute;s del periodo isoel&eacute;ctrico<sup>20</sup>. Este efecto no est&aacute; relacionado con la inducci&oacute;n de hipotermia descrita para algunos antagonistas de estos receptores<sup>21</sup>. Estos resultados tambi&eacute;n han sido obtenidos en experimentos <i>in vitro, </i>donde se ha demostrado que diversos antagonistas glutamat&eacute;rgicos previenen el da&ntilde;o de manera dosis dependiente en condiciones de privaci&oacute;n de glucosa<sup>22</sup>. Los receptores no&#150;NMDA posiblemente tambi&eacute;n intervienen en el desarrollo del da&ntilde;o pues el tratamiento con sus antagonistas reduce el &aacute;rea lesionada<sup>20</sup>, aunque en menor proporci&oacute;n. Su participaci&oacute;n quiz&aacute;s est&aacute; relacionada con la despolarizaci&oacute;n necesaria para activar los receptores NMDA. Estas evidencias sin duda son contundentes para sugerir que el glutamato y la activaci&oacute;n de sus receptores juega un papel importante y temprano en el desarrollo del da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>El estado energ&eacute;tico celular en la hipoglucemia</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Como se mencion&oacute; anteriormente, la acumulaci&oacute;n de amino&aacute;cidos excitadores en el espacio extracelular despu&eacute;s de inhibir sus transportadores, no causa muerte neuronal en la rata o en neuronas cultivadas energ&eacute;ticamente competentes, pero cuando el metabolismo energ&eacute;tico es deficiente se induce muerte excitot&oacute;xica. El cerebro tiene la capacidad de adaptarse a la disminuci&oacute;n del suministro de glucosa; sin embargo, &eacute;sta es limitada. La adaptaci&oacute;n del cerebro ocurre b&aacute;sicamente por dos eventos: el aumento en el flujo sangu&iacute;neo cerebral y el uso de reservorios de sustratos alternativos a la glucosa.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Un aumento del flujo sangu&iacute;neo durante la hipoglucemia ha sido demostrado por varios grupos<sup>23,24</sup>, pero a&uacute;n se encuentra en discusi&oacute;n el mecanismo por el cual que &eacute;ste ocurre. Existen estudios que apoyan la participaci&oacute;n del &oacute;xido n&iacute;trico como factor relajante de las c&eacute;lulas endoteliales en condiciones de hipoglucemia<sup>25</sup>, pero &eacute;sto ha sido puesto en duda por otros autores<sup>26</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Al parecer el metabolismo energ&eacute;tico en la hipoglucemia s&oacute;lo se altera en condiciones muy severas o muy prolongadas, pues el consumo de O<sub>2 </sub>se mantiene durante la hipoglucemia lo que sugiere que otros sustratos est&aacute;n siendo utilizados para obtener energ&iacute;a<sup>23,27,28</sup>. La cantidad de gluc&oacute;geno en las neuronas es limitada y cl&aacute;sicamente se piensa que &eacute;ste se agota en los primeros 5 minutos del periodo isoel&eacute;ctrico<sup>23</sup>. Estudios recientes sugieren que el gluc&oacute;geno puede ser utilizado como sustrato metab&oacute;lico por periodos de tiempo m&aacute;s extensos cuando el aporte de glucosa cerebral es inadecuado<sup>29</sup>, o cuando se presentan episodios repetidos de hipoglucemia. Los amino&aacute;cidos constituyen tambi&eacute;n un sustrato end&oacute;geno que se agota r&aacute;pidamente<sup>11</sup> ya que se pueden incorporar al ciclo de Krebs alterando su concentraci&oacute;n tisular durante la hipoglucemia tanto <i>in vivo </i>como <i>in vitro<sup>13,30</sup>. </i>Otros sustratos que se utilizan son los fosfol&iacute;pidos, lo que conduce a un aumento en la concentraci&oacute;n de &aacute;cidos grasos libres, entre ellos el &aacute;cido araquid&oacute;nico cuyo metabolismo genera radicales libres, los cuales son t&oacute;xicos para la c&eacute;lula<sup>31</sup>. La lip&oacute;lisis es un proceso dependiente de Ca<sup>2+</sup>,y el aumento de este ion promueve el metabolismo de los fosfol&iacute;pidos lo que puede alterar las propiedades de la membrana plasm&aacute;tica, y por lo tanto las de las prote&iacute;nas que est&aacute;n embebidas en ella.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La concentraci&oacute;n de ATP se mantiene constante incluso durante la hipoglucemia moderada, y no es sino hasta que se presenta el estado de coma acompa&ntilde;ado de los primeros cambios en las concentraciones i&oacute;nicas (entrada de K<sup>+</sup> y Ca<sup>2+</sup>), que los niveles de ATP disminuyen en un 40%<sup>30,</sup><sup>31</sup>. &Eacute;stos disminuyen progresivamente conforme avanza el estado de coma, sugiriendo que &eacute;ste se acompa&ntilde;a de una deficiencia de sustratos metab&oacute;licos tal, que ocasiona un d&eacute;ficit energ&eacute;tico severo en el tejido cerebral<sup>32</sup>. La concentraci&oacute;n de ATP ha sido medida tambi&eacute;n en estudios <i>in vitro </i>durante la privaci&oacute;n de glucosa, y se ha observado una disminuci&oacute;n importante no s&oacute;lo de ATP sino de fosfocreatina<sup>33</sup>. La disminuci&oacute;n de los niveles energ&eacute;ticos compromete el funcionamiento de la bomba Na<sup>+</sup>/K<sup>+</sup>, impidiendo que la c&eacute;lula se repolarice y que los mecanismos de amortiguamiento de Ca<sup>2+</sup> funcionen adecuadamente. As&iacute;, se genera una sobrecarga de Ca<sup>2+</sup> en la mitocondria, la cual pierde su polaridad y su capacidad de producir ATP. Se ha observado que los niveles de ATP se mantienen disminuidos en el cerebro incluso 3 h despu&eacute;s del restablecimiento de glucosa, subsecuente al coma hipogluc&eacute;mico<sup>30</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Ca<sup>2+</sup> y el da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Dado que entre los receptores a glutamato los del tipo NMDA son los mayormente permeables a Ca<sup>2+</sup>, &eacute;stos son los que juegan un papel m&aacute;s importante en la muerte neuronal excitot&oacute;xica. En condiciones normales, la concentraci&oacute;n intracelular de Ca<sup>2+</sup>est&aacute; finamente regulada; es decir, existen incrementos transitorios de su concentraci&oacute;n pero r&aacute;pidamente &eacute;sta regresa a su nivel basal. Los mecanismos responsables de esta regulaci&oacute;n incluyen prote&iacute;nas citoplasm&aacute;ticas con varios sitios de uni&oacute;n a Ca<sup>2+</sup> (ej. calsecuestrina), bombas de Ca<sup>2+</sup>situadas en la membrana plasm&aacute;tica; que lo destruyen de manera dependiente de ATP, as&iacute; como la captura o secuestro de este i&oacute;n en algunos organelos intracelulares (ret&iacute;culo endopl&aacute;smico y mitocondria). Cuando se pierde la homeostasis de Ca<sup>2+</sup> intracelular debido a la falla en sus sistemas de extrusi&oacute;n o almacenamiento ocurre muerte neuronal. La activaci&oacute;n dependiente de Ca<sup>2+</sup> de proteasas, endonucleasas, fosfolipasas y de la &oacute;xido n&iacute;trico sintasa contribuir&aacute; al da&ntilde;o neuronal<sup>34</sup> <a href="#f2">(figura 2)</a>. La importancia del &oacute;xido n&iacute;trico ser&aacute; discutida m&aacute;s adelante.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="verdana"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="verdana"><img src="/img/revistas/aneuroc/v10n2/a5f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Se conoce que la concentraci&oacute;n extracelular de Ca<sup>2+</sup>y de K<sup>+</sup> disminuye desde el inicio del periodo isoel&eacute;ctrico<sup>31</sup>, mientras que el Ca<sup>2+</sup> intracelular contin&uacute;a aumentando durante el coma, para despu&eacute;s regresar a su nivel basal tras la inyecci&oacute;n de glucosa<sup>35</sup>. Por otro lado, trabajos; <i>in vitro </i>de privaci&oacute;n de glucosa han demostrado que en neuronas cultivadas ocurre un gran aumento en la concentraci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> intracelular que est&aacute; relacionado directamente con el da&ntilde;o neuronal<sup>36</sup>. El aumento citos&oacute;lico de Ca<sup>2+</sup>y su escaso amortiguamiento provocan la entrada masiva de este i&oacute;n a la mitocondria y esto desencadena la p&eacute;rdida del potencial de membrana mitocondrial, una interrupci&oacute;n de la s&iacute;ntesis de ATP y la apertura del poro de transici&oacute;n de la permeabilidad mitocondrial (MPT). El MTP es un poro situado en la membrana interna de la mitocondria que permite la salida de mol&eacute;culas de un tama&ntilde;o menor a 1500 KDa y que se ha involucrado en el da&ntilde;o asociado a eventos isqu&eacute;micos e hipogluc&eacute;micos<sup>37</sup>. La composici&oacute;n del MTP a&uacute;n no es muy clara aunque se acepta que el translocador de nucleotidos de adenina y el canal de aniones dependiente de voltaje forman parte de su estructura.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Papel de la mitocondria</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La mitocondria es un organelo intracelular donde se llevan a cabo importantes procesos metab&oacute;licos como el ciclo de Krebs y la fosforilaci&oacute;n oxidativa, que tienen como fin &uacute;ltimo la s&iacute;ntesis de ATP. Esta s&iacute;ntesis est&aacute; &iacute;ntimamente ligada al potencial de membrana mitocondrial, y cuando &eacute;ste se disipa la ATP sintetasa puede actuar en forma inversa y degradar ATP. Por su parte, la fosforilaci&oacute;n oxidativa es una fuente constante de especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS), que en condiciones normales son controladas por las defensas antioxidantes celulares. Cuando su generaci&oacute;n aumenta &eacute;stas pueden contribuir de manera importante a la muerte neuronal hipogluc&eacute;mica, como se discutir&aacute; m&aacute;s adelante. Como se mencion&oacute; anteriormente la entrada excesiva de Ca<sup>2+</sup>, por el uniportador de este i&oacute;n, despolariza a la mitocondria e induce la apertura del MPT. Se ha observado que el tratamiento con un inhibidor espec&iacute;fico de este poro reduce el da&ntilde;o asociado a la hipoglucemia<sup>38</sup> sugiriendo la participaci&oacute;n de la disfunci&oacute;n mitocondrial en el da&ntilde;o neuronal. Por otro lado, se sabe que la mitocondria libera factores proapopt&oacute;ticos cuando se abre el MPT como son el citocromo C y el factor inductor de la apoptosis (AIF)<sup>39,40</sup>. Se ha reportado liberaci&oacute;n de citocromo C y de AIF, as&iacute; como activaci&oacute;n de caspasa 3 asociadas a la hipoglucemia <i>in vivo </i><sup>41</sup> <a href="#f2">(figura 2)</a>. Adem&aacute;s, la despolarizaci&oacute;n mitocondrial induce el desacople de la cadena transportadora de electrones y con ello la generaci&oacute;n de radicales libres, cuyo exceso llevar&aacute; a la c&eacute;lula a un estado de estr&eacute;s oxidativo. Por otro lado, se ha observado una disminuci&oacute;n de la actividad de los complejos I y IV de dicha cadena, en todas las regiones cerebrales asociada a la hipoglucemia inducida en un modelo <i>in vivo<sup>42</sup>. </i>La disfunci&oacute;n mitocondrial puede deberse a la presencia de radicales libres, ya que &eacute;stos pueden da&ntilde;ar a los diferentes componentes de la cadena respiratoria<sup>43</sup>. La despolarizaci&oacute;n mitocondrial ha sido observada tambi&eacute;n in vitro en condiciones de privaci&oacute;n de glucosa.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>La apoptosis: activaci&oacute;n de caspasas y calpainas en la hipoglucemia</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La apoptosis es un tipo de muerte ordenado dependiente de energ&iacute;a, en el cual la integridad de la membrana plasm&aacute;tica se conserva evitando una respuesta inflamatoria. Hay activaci&oacute;n de proteasas espec&iacute;ficas ya sea de caspasas o de calpainas que hidrolizan distintos sustratos<sup>45</sup>. Adem&aacute;s, existen otras prote&iacute;nas involucradas en las cascadas de muerte apopt&oacute;tica, as&iacute; como en su regulaci&oacute;n; la familia de Bcl&#150;2, la familia de los AIF y la de las prote&iacute;nas inhibidoras de la apoptosis (IAP), entre otras<sup>46</sup>. Las caspasas se clasifican en iniciadoras y ejecutoras, las m&aacute;s estudiadas son la caspasa 9 que es iniciadora y la caspasa 3 que es ejecutora. La caspasa 9 que forma parte de un complejo proteico constituido por la asociaci&oacute;n del citocromo C, dATP, el AIF&#150;1 y la procaspasa 9, que al unirse se auto&#150;activa y as&iacute; puede activar a la procaspasa 3. Durante el coma hipogluc&eacute;mico no hay ATP para formar dicho complejo, pero despu&eacute;s, es decir, despu&eacute;s de la administraci&oacute;n de glucosa los niveles de ATP se recuperan y se activa la caspasa 9. La actividad de la caspasa 3 ocurre hasta 3 h despu&eacute;s de iniciado el periodo de recuperaci&oacute;n. En cambio la liberaci&oacute;n del citocromo C ocurre a los 30 min de iniciado el periodo isoel&eacute;ctrico, y la translocaci&oacute;n al n&uacute;cleo del AIF ocurre 30 min despu&eacute;s de iniciada la recuperaci&oacute;n. En este modelo <i>in vivo </i>tambi&eacute;n se ha observado la activaci&oacute;n de la calpaina, la cual es miembro de una familia de proteasas que se cree est&aacute;n involucradas en la activaci&oacute;n de algunas caspasas y por tanto en la muerte apopt&oacute;tica<sup>41</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Oxido n&iacute;trico, radicales libres y estr&eacute;s oxidativo en la hipoglucemia</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los radicales libres son mol&eacute;culas que poseen un electr&oacute;n desapareado en el &uacute;ltimo orbital, lo que los hace altamente reactivos pues tienden ya sea a donar ese electr&oacute;n a alguna mol&eacute;cula vecina o bien a remover un electr&oacute;n de otra para que su &uacute;ltimo orbital quede completo. Si las defensas antioxidantes celulares se ven sobrepasadas por la generaci&oacute;n de radicales libres, ya sea por la producci&oacute;n excesiva de &eacute;stos, por la p&eacute;rdida de los mecanismos antioxidantes o por ambas, se crea una situaci&oacute;n conocida como estr&eacute;s oxidativo. Una de las principales consecuencias del estr&eacute;s oxidativo es que da&ntilde;a a algunas macromol&eacute;culas indispensables para la viabilidad celular como son: los l&iacute;pidos de membrana, el ADN, y las prote&iacute;nas. <i>In vivo </i>se ha observado que la hipoglucemia induce lipoperoxidaci&oacute;n de la membrana plasm&aacute;tica a&uacute;n antes del per&iacute;odo isoel&eacute;ctrico<sup>47</sup>, lo que sugiere que es un evento temprano en la lesi&oacute;n hipogluc&eacute;mica y que puede ocurrir a&uacute;n en presencia de niveles bajos de glucosa. Tambi&eacute;n se ha observado lipoperoxidaci&oacute;n de las membranas mitocondriales y da&ntilde;o al ADN de este organelo en condiciones de glucosa baja<sup>43</sup>, lo que sugiere que los radicales da&ntilde;an directamente a la mitocondria. <i>In vitro </i>se ha observado que la privaci&oacute;n de glucosa aumenta los niveles de especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS)<sup>44</sup> y que el da&ntilde;o en estas condiciones es prevenido con antioxidantes como la vitamina B<sup>8</sup>. La actividad de algunas enzimas encargadas de amortiguar a ciertas ROS, como son la super&oacute;xido dismutasa y la catalasa se encuentra aumentada en condiciones de hipoglucemia<sup>42</sup>, lo que indica de manera indirecta la presencia de super&oacute;xido y de per&oacute;xido. El mecanismo de da&ntilde;o oxidativo en la hipoglucemia ha sido poco explorado, ya que no se sabe cuales son las principales fuentes de radicales libres.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Una de las principales defensas antioxidantes celulares es el glutati&oacute;n, el cual es un trip&eacute;ptido compuesto por glicina, glutamato y ciste&iacute;na, que funciona como un amortiguador del estado redox de la c&eacute;lula. En condiciones normales, el glutati&oacute;n se encuentra en su estado reducido, pero en presencia de ROS pasa a su estado oxidado que consiste en dos mol&eacute;culas de glutati&oacute;n unidas por un enlace disulfuro. Se ha observado que en el modelo de hipoglucemia inducida por insulina los niveles de glutati&oacute;n reducido no se encuentran disminuidos, pero la actividad de las enzimas encargadas tanto de su s&iacute;ntesis como de su reciclaje se encuentran aumentadas. Esto sugiere que hay producci&oacute;n de radicales que consumen el glutati&oacute;n reducido, y que la actividad aumentada de estas enzimas hace que los niveles del glutati&oacute;n reducido se mantengan constantes, pudiendo ser &eacute;ste un mecanismo adaptativo ante la lesi&oacute;n hipogluc&eacute;mica<sup>42</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El &oacute;xido n&iacute;trico es un mensajero celular de vida media corta que est&aacute; involucrado en diversos procesos celulares, tiene poca reactividad como radical pero cuando se combina con el super&oacute;xido se genera peroxinitrito y &eacute;ste es un radical altamente reactivo con una vida media muy corta que oxida mol&eacute;culas cercanas. <i>In vitro, </i>se ha observado que un inhibidor de la oxido n&iacute;trico sintasa previene el da&ntilde;o en condiciones de privaci&oacute;n de glucosa<sup>48</sup>. Por otro lado <i>in vivo, </i>se ha observado que en condiciones de hipoglucemia aumenta la inmunoreactividad a la nitrotirosina en algunas zonas cerebrales<sup>49</sup>. La nitrotirosina se genera a partir de la reacci&oacute;n del peroxinitrito con los residuos de tirosina y por lo tanto es un buen marcador de la presencia de ese radical libre, lo que indica su producci&oacute;n en estas condiciones. En ese mismo trabajo se demuestra que la administraci&oacute;n de un inhibidor de la sintasa neuronal del oxido n&iacute;trico (nNOS) durante el periodo isoel&eacute;ctrico, disminuye la presencia de nitrotirosina y reduce el da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El da&ntilde;o al ADN causado por radicales libres, activa a la polimerasa de poli&#150;ADPribosa (PARP). Esta enzima normalmente repara el ADN pero su sobreactivaci&oacute;n conduce a la muerte por un proceso que involucra el consumo de ATP y la liberaci&oacute;n de factores pro&#150;apopt&oacute;ticos. Experimentos tanto <i>in vivo </i>como <i>in vitro </i>han demostrado que un inhibidor espec&iacute;fico de la PARP protege a las c&eacute;lulas del da&ntilde;o hipogluc&eacute;mico, incluso cuando &eacute;ste es administrado dos horas despu&eacute;s de la recuperaci&oacute;n de los niveles de glucosa sangu&iacute;nea<sup>49</sup>. Estos resultados sugieren que la activaci&oacute;n de la PARP, posiblemente mediada por el peroxinitrito, es fundamental en la muerte neuronal observada en condiciones de hipoglucemia, y que posiblemente su activaci&oacute;n sea un evento tard&iacute;o y determinante para la generaci&oacute;n de la muerte. Evidencias recientes, sugieren que el zinc es otro factor importante en la activaci&oacute;n de la PARP, y que &eacute;ste es liberado de las fibras musgosas en condiciones de hipoglucemia, y acumulado en las neuronas de la regi&oacute;n CA1 del hipocampo. El mecanismo de entrada del zinc a la c&eacute;lula a&uacute;n se desconoce, pero el tratamiento con un quelante de zinc reduce no solo la activaci&oacute;n de la PARP sino el da&ntilde;o neuronal subsecuente a la hipoglucemia<sup>50</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El cerebro tiene un alto contenido de l&iacute;pidos poli&#150;insaturados, entre ellos el &aacute;cido araquid&oacute;nico, el cual al metabolizarse a eicosanoides produce radicales libres, los cuales como ya se mencion&oacute; pueden participar en el da&ntilde;o a los componentes celulares. En condiciones de hipoglucemia se ha demostrado un aumento en la concentraci&oacute;n de &aacute;cidos grasos libres, siendo el &aacute;cido araquid&oacute;nico el que m&aacute;s aumenta<sup>31</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Aunque a la fecha se conocen algunos de los eventos involucrados en la muerte neuronal hipogluc&eacute;mica, su temporalidad y secuencia a&uacute;n no es muy clara. Asimismo se desconoce si estos eventos son parte de una sola cascada de muerte, o si son mecanismos paralelos que conforman se&ntilde;ales redundantes de muerte. Se sabe que muchos de estos mecanismos de muerte se presentan en otras patolog&iacute;as como la isquemia, por lo que es importante un conocimiento m&aacute;s profundo de estos procesos con el fin de encontrar alternativas terap&eacute;uticas para disminuir la lesi&oacute;n cerebral y contribuir a la recuperaci&oacute;n de los pacientes. En conclusi&oacute;n, el aumento en los niveles extracelulares de amino&aacute;cidos excitadores, la p&eacute;rdida de la homeostasis del Ca<sup>2+</sup>, la deficiencia energ&eacute;tica, la disfunci&oacute;n mitocondria y el estr&eacute;s oxidativo son todos componentes importantes de la muerte que se presenta en condiciones de hipoglucemia. En la <a href="#f2">figura 2</a>, se resumen los diversos componentes que participan en el desarrollo del da&ntilde;o neuronal asociado a la hipoglucemia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <i>Este trabajo fue realizado gracias al apoyo PAPIIT (IN222503) a Lourdes Massieu y una beca CONACYT No 181312 y DGEP&#150;UNAM a Ma. Luisa Haces. Los autores agradecen a el Dr. J. Moran y al Dr. C. S&aacute;nchez por sus comentarios a este trabajo.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 1. Auer RN, Wieloch T, Olsson Y, Siesjo BK. The distribution of hypoglycemic brain damage. <i>Acta Neuropathol </i>1984; 64:177&#150;91.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171278&pid=S0187-4705200500020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 2. Sommerfield AJ, Deary IJ, Mcaulay V, Frier BM. Moderate hypoglycemia impairs multiple memory functions in healthy adults. <i>Neuropsychol </i>2003; 17:125&#150;32.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171279&pid=S0187-4705200500020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 3. Akyol A, Kiylioglu N, Bolukbasi O, Guney E, Yurekli Y. Repeated hyploglycemia and cognitive decline. A case report. <i>Neuroendocrinol Lett </i>2003; 24:54&#150;6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171280&pid=S0187-4705200500020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 4. Carrol MF, Burge MR, Schade DS. Severe hypoglycemia in adults. <i>Rev End Metab Dis</i> 2003; 4:149&#150;57.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171281&pid=S0187-4705200500020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 5. Auer RN, Olsson Y, Siesjo BK. Hypoglycemic brain injury in the rat. Correlation of density of brain damage with EEG isoelectric time: a quantitative study. <i>Diabetes </i>1984; 33:1090&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171282&pid=S0187-4705200500020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 6. Lucas D, Newhouse J. The toxic effect of sodium L&#150;glutamate on the inner layers of the retina. <i>Arch Opthalmol </i>1957; 58:193&#150;201.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171283&pid=S0187-4705200500020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 7. Olney J. Excitatory transmitter neurotoxicity. <i>Neurobiol Aging </i>1994; 15:259&#150;60.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171284&pid=S0187-4705200500020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 8. Choi D. Excitotoxic cell death. <i>J Neurol </i>1992; 23:1261&#150;76.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171285&pid=S0187-4705200500020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 9. Gegelashvili G, Schousboe A. Cellular distribution and kinetic properties of high&#150;affinity glutamate transporters. <i>Brain Res Bull </i>1998; 45:233&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171286&pid=S0187-4705200500020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 10. Sandberg M, Nystr&oacute;m B, Hamberger A. Extracellular overflow of neuroactive amino acids during severe insulin&#150;induced hypoglycemia: <i>In vivo </i>dialysis of the rat hippocampus. <i>J Neurochem </i>1986; 47:178&#150;84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171287&pid=S0187-4705200500020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 11.&nbsp;Engelsen B, Westerberg E, Fonnum F, Wieloch T. Effect of insulin&#150;induced hypoglycemia on the concentrations of glutamate and related amino acids and energy metabolites in the intact and decorticated rat neostriatum. <i>J Neurochem </i>1986; 47:1634&#150;41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171288&pid=S0187-4705200500020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 12.&nbsp;Gundersen V, Fonnum F, Ottersen OP, Storm&#150;Mathisen J. Redistribution of neuroactive amino acids in hippocampus and striatum during hyplogycemia: a quantitative immunogold study. <i>J Cereb Blood Flow Metab </i>2001; 21:41 &#150;51.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171289&pid=S0187-4705200500020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 13.&nbsp;Honegger P, Braissant O, Henry H, Boulat O, Bachmann C, Zurich MG, <i>et al. </i>Alteration of amino acid metabolism in neuronal aggregate cultures exposed to hypoglycemic conditions. <i>J Neurochem </i>2002; 51:1141&#150;51.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171290&pid=S0187-4705200500020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 14.&nbsp;Takata T, Hirai H, Shigemoto T, Okada Y. The release of glutamate and accumulation of intracellular calcium in the guinea pig hippocampal slices during glucose deprivation. <i>Neurosci Lett </i>1995; 189:21&#150;4.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171291&pid=S0187-4705200500020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 15. Massieu L, Morales&#150;Villagr&aacute;n A, Tapia R. Accumulation of extracellular glutamate by inhibition of its uptake is not sufficient for inducing neuronal damage: an <i>in vivo </i>microdialysis study. <i>J Neurochem </i>1995; 64:2262&#150;72.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171292&pid=S0187-4705200500020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 16.&nbsp;S&aacute;nchez&#150;Carbente M, Massieu L. Transient inhibition of glutamate uptake <i>in vivo </i>induces neurodegeneration when energy metabolism is impaired. <i>J Neurochem </i>1999; 27:129&#150;38.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171293&pid=S0187-4705200500020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 17.&nbsp;Massieu L, G&oacute;mez&#150;Rom&aacute;n N, Montiel T. <i>In vivo </i>potentiation of glutamate&#150;mediated  neuronal  damage after chronic administration of the glycolysis inhibitor iodoacetate. <i>Exp Neurol </i>2000; 165:257&#150;67.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171294&pid=S0187-4705200500020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 18. Wieloch T, Engelsen B, Westerberg E, Auer R. Lesions of the glutamatergic cortico&#150;striatal projections in the rat ameliorate hypoglycemic brain damage in the striatum. <i>Neurosci Lett </i>1985; 58:25&#150;30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171295&pid=S0187-4705200500020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 19.&nbsp;Wieloch T. Hypoglycemia&#150;induced neuronal damage prevented by an N&#150;Methyl&#150;D&#150;aspartate antagonist. <i>Science </i>1985; 230:681&#150;3.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171296&pid=S0187-4705200500020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 20.&nbsp;Nellgard B, Wieloch T. Cerebral protection by AMPA&#150; and NMDA&#150;receptor antagonists administered after severe insulin&#150;induced hypoglycemia. <i>Exp Brain Res </i>1992; 92:259&#150;66.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171297&pid=S0187-4705200500020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 21.&nbsp;Papagapiou MP, Auer RN. Regional neuroprotective effects of the NMDA receptor antagonist MK&#150;801  (dizocilpine) in  hypoglycemic brain damage. <i>J Cereb Blood Flow Metab </i>1900<i>; </i>10:270&#150;6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171298&pid=S0187-4705200500020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 22.&nbsp;Monyer H, Goldberg MP, Choi DW. Glucose deprivation neuronal injury in cortical culture. <i>Brain Res </i>1989; 483:347&#150;54.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171299&pid=S0187-4705200500020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 23.&nbsp;Norberg K, Siesj&oacute; BK. Oxidative metabolism of the cerebral cortex of the rat in severe insulin&#150;induced hypoglycaemia. J <i>Neurochem </i>1976; 26:345&#150;52.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171300&pid=S0187-4705200500020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 24.&nbsp;Hollinger BR, Bryan RM. b&#150;receptor&#150;mediated increase in cerebral blood during hypoglycemia. <i>Am J Physiol </i>1987; 253:949&#150;55.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171301&pid=S0187-4705200500020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 25.&nbsp;Diegu&eacute;z G, Fern&aacute;ndez N, Garc&iacute;a JL, Garc&iacute;a&#150;Villal&oacute;n AL, Monge L, G&oacute;mez B. Role of nitric oxide in the effects of hypoglycemia on the cerebral circulation in awake goats. <i>Eur J Pharmacol </i>1997; 330:185&#150;93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171302&pid=S0187-4705200500020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 26. Horinaka N, Artz N, Jehle J, Takahashi S, Kennedy C, Sokollof L. Examination of potential mechanisms in the enhacement of cerebral blood flow by hypoglycemia and pharmacological doses of deoxyglucose. <i>J Cereb Blood Flow Metab </i>1997; 17:54&#150;63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171303&pid=S0187-4705200500020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 27.&nbsp;Krolicki L, Leniger&#150;Follert E. Oxygen supply of the brain cortex (rat) during severe hypoglycemia. <i>Fl&uuml;gers Arch </i>1980; 387: 121&#150;216.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171304&pid=S0187-4705200500020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 28.&nbsp;Agardh CD, Chapman AG, Nilsson B, Siesj&oacute; BK. Endogenous substrates utilized by rat brain in severe insulin&#150;induced hypoglycemia. <i>J Neurochem </i>1981; 36:490&#150;500.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171305&pid=S0187-4705200500020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 29.&nbsp;Choi IY, Seaquist ER, Gruetter R. Effect of hypoglycemia on brain glycogen metabolism <i>in vivo. J Neurosci Res </i>2003; 72:25&#150;32.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171306&pid=S0187-4705200500020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 30.&nbsp;Agardh CD, Folbergrov&aacute; J, Siesj&ouml; BK. Cerebral metabolic changes in profound insulin&#150;induced hypoglycemia, and in the recovery period following glucose administration. <i>J Neurochem </i>1978; 31:1135&#150;42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171307&pid=S0187-4705200500020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 31. Wieloch T, Harris RJ, Symon L, Siesj&ouml; BK. Influence of severe hypoglycemia on brain extracellular calcium and potassium activities, energy and phospholipid metabolism. <i>J Neurochem </i>1984; 43:160&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171308&pid=S0187-4705200500020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 32.&nbsp;Lewis LD, Ljunggreb B, Ratcheson RA, Siesj&ouml; BK. Cerebral energy state in insulin&#150;induced hypoglycemia related to blood glucose and to EEG. <i>J Neurochem </i>1974; 21:673&#150;9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171309&pid=S0187-4705200500020000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 33.&nbsp;Brooks KJ, Porteous R, Bachelard HS. Effects of hypoglycemia and hypoxia on the intracellular pH of cerebral tissue as measured by <sup>31</sup>P nuclear magnetic resonance. <i>J Neurochem </i>1989; 52:604&#150;10.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171310&pid=S0187-4705200500020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 34. Reynold I. Intracellular calcium and magnesium: critical determinants of excitotoxicity? En: Ottersen O, Langmoen L, Gjerstad I, editores. Progress in brain research. <i>Elsevier Science </i>1998; 116:225&#150;43.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171311&pid=S0187-4705200500020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 35.&nbsp;Uematsu D, Greenberg JH, Reivich M, Karp A. Cytosolic free calcium, NAD/NADH redox state and hemodynamic changes in the cat cortex during severe hypoglycemia. <i>J Cereb Blood Flow Metab </i>1989; 9:149&#150;55.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171312&pid=S0187-4705200500020000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 36. Cheng B, McMahon DG, Mattson MP. Modulation of calcium current, intracellular calcium levels and cell survival by glucose deprivation and growth factors in hippocampal neurons. <i>Brain Res </i>1993; 607:275&#150;85.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171313&pid=S0187-4705200500020000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 37.&nbsp;Friberg H, Wieloch T. Mitochondrial permeability transition in acute neurodegeneration. <i>Biochemie </i>2002; 84:241&#150;50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171314&pid=S0187-4705200500020000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 38.&nbsp;Friberg H, Ferrand&#150;Drake M, Bengtsson F, Halestrap AP, Wieloch T. Cyclosporin A, but not FK 506 protects mitochondria and neurons against hypoglycemic damage and implicates the mitochondrial permeability transition in cell death. <i>J Neurosci </i>1998; 18:5151&#150;9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171315&pid=S0187-4705200500020000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 39.&nbsp;Liu X, Kim CN, Yang J, Jemmerson R, Wang X. Induction of apoptotic program in cell&#150;free extracts: requirement for dATP and citochrome C. <i>Cell </i>1996; 86:147&#150;57.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171316&pid=S0187-4705200500020000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 40.&nbsp;Susin SA, Zamzami N, Castedo M, Hirsch T, Marchetti P, Macho A, <i>et al. </i>Bcl&#150;2 inhibits the mitochondrial release of an apoptogenic protease. <i>J Exp Med </i>1996; 184:1331 &#150;3141.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171317&pid=S0187-4705200500020000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 41.&nbsp;Ferrand&#150;Drake M, Changlian Z, Gunilla G, Hansen AJ, Karlsson J&#150;O, Bahr BA, et <i>al. </i>Cyclosporin A prevents calpain activation despite increased intracellular calcium concentrations, as well as translocation of apoptosis&#150;inducing factor, cytochrome c and caspase&#150;3 activation in neurons exposed to transient hypoglycemia. <i>J Neurochem </i>2003; 85:31&#150;42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171318&pid=S0187-4705200500020000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 42.&nbsp;Bhardwaj SK, Sharma ML, Gulati G, Chhabra A, Kaushik R, Sharma P, et <i>al. </i>Effect of starvation and insulin&#150;induced hypoglycemia on oxidative stress scavenger system and electron transport chain complexes from rat brain, liver, and kidney. <i>Molec Chem Neuropathol </i>1998; 34:157&#150;68.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171319&pid=S0187-4705200500020000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 43.&nbsp;Ballesteros JR, Mishra OP, McGowan JE. Alterations in cerebral mitochondria during acute hypoglycemia. <i>Biol Neonate </i>2003; 84:159&#150;63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171320&pid=S0187-4705200500020000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 44.&nbsp;Liu Y, Xiao&#150;Dong S, Liu W, Zhang T&#150;Y, Zuo J. Glucose deprivation induces mitochondrial dysfunction and oxidative stress in PC12 cell line. <i>J Cell Mol Med </i>2003; 7:49&#150;56.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171321&pid=S0187-4705200500020000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 45.&nbsp;McConkey D. Biochemical determinants of apoptosis and necrosis. <i>Toxicol Lett </i>1998; 99:442&#150;9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171322&pid=S0187-4705200500020000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 46.&nbsp;Hengartner M. The biochemistry of apoptosis. <i>Nature </i>2000; 407:770&#150;6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171323&pid=S0187-4705200500020000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 47.&nbsp;Patockova J, Mahol P, Tumova E, Krsiak M, Rokyta R, Stipek S, <i>et al.</i> Oxidative stress in the brain tissue of laboratory mice with acute post insulin hypoglycemia. <i>Physiol Res </i>2003; 52:131&#150;5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171324&pid=S0187-4705200500020000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 48.&nbsp;Rego AC, Santos MS, Oliveira CR. Influence of the antioxidants vitamin E and idebenone on retinal cell injury mediated by chemical ischemia, hypoglycemia or oxidative stress. <i>Free Rad Biol Med </i>1999; 26:1405&#150;7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171325&pid=S0187-4705200500020000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 49.&nbsp;Suh SW, Aoyama K, Chen Y, Gamier P, Matsumori Y, Gum E, <i>et al</i><i>. </i>Hypoglycemic neuronal death and cognitive impairment are prevented by poly (ADP&#150;ribose) polymerase inhibitors administered after hypoglycemia. <i>J Neurosci </i>2003; 23:10681&#150;90.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171326&pid=S0187-4705200500020000500049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 50.&nbsp;Suh SW, Gamier P, Aoyama K, Chen Y, Swanson RA. Zinc release contributes to hypoglycemia&#150;induced neuronal death. <i>Neurobiol Dis </i>2004; 16:538&#150;45.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1171327&pid=S0187-4705200500020000500050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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