Caracterización de los extractos metanólicos de poda de vid y paja de trigo y su oxidación por enzimas extracelulares de Lentinula edodes

Characterization of methanolic extracts of vineyard pruning and wheat straw and its oxidation by extracellular enzymes from Lentinula edodes

Rosina Cabrera¹, Elisa M. Valenzuela-Soto¹, Yolanda Reyes-Vidal¹, Martín Esqueda², Ali Asaff ¹

² Coordinación de Tecnología de Alimentos de Origen Vegetal, Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo A.C., Carretera a La Victoria Km 0.6, C.P. 83304, Hermosillo, Sonora, México.

* Autor para correspondencia:
Ali Asaff asaff@ciad.mx

Recibido 19 de octubre 2011;
Aceptado 5 de junio 2013.

Abstract

Key words: shiitake, laccases, agricultural wastes, oxidation.

Resumen

Lentinula edodes es un hongo de interés comercial que puede ser cultivado sobre diversos residuos lignocelulósicos, como poda de vid y paja de trigo. En el presente trabajo se obtuvieron los extractos metanólicos de poda de vid y paja de trigo y el extracto enzimático crudo de L. edodes. Los extractos metanólicos fueron analizados y caracterizados por cromatografía de capa fina y espectrofotometría encontrando que el extracto de poda de vid contiene al menos 6 fracciones claramente visibles a la luz UV y que las 3 de mayor polaridad (R_f< 0.5) son fácilmente oxidables por el extracto enzimático del hongo, con o sin el uso del mediador ABTS. Por su parte, el extracto metanólico de paja de trigo mostró solo tres fracciones tenuemente reveladas a la luz UV, no oxidables por el extracto enzimático aun empleando al mediador ABTS. La presencia en el extracto de poda de vid de un mayor número de subfracciones, su posible mayor concentración y la facilidad con que algunas de ellas son transformadas por las enzimas extracelulares del hongo contribuyen a explicar parcialmente porque la poda de vid es un mejor sustrato para el cultivo de L. edodes que la paja de trigo.

Palabras clave: shiitake, lacasas, residuos agrícolas, oxidación.

Introducción

Lentinula edodes (Berk.) Pegler, conocido como shiitake, es un hongo que pertenece al grupo de los hongos que causan la pudrición blanca. Su producción es de gran interés comercial, pues sus cuerpos fructíferos son comestibles y contienen sustancias bioactivas con propiedades medicinales (Chang, 1996). Este hongo tiene la capacidad de crecer sobre residuos lignocelulósicos, por lo que se cultiva en pajas y salvados de trigo, cebada, arroz y residuos de algodón con rendimientos aceptables (Sánchez y Royse, 2001).

También se ha reportado que la poda de vid es un excelente sustrato para el cultivo de L. edodes, ya que reduce el tiempo de fructificación, incrementa la bioconversión del sustrato (Fragoso et al., 2004; Gaitán-Hernández et al., 2006) y aumenta la actividad de sus principales enzimas ligninolíticas (Harris-Valle et al., 2007). La reducción en el tiempo de fructificación se relaciona con un aumento en la velocidad específica de crecimiento en relación a la obtenida con paja de trigo (Cabrera, 2010).

En años recientes las lacasas, un tipo de fenoloxidasas, también han sido utilizadas para la oxidación de compuestos no fenólicos mediante la acción de sustancias co-oxidantes denominadas mediadores (Bourbonnais et al., 1998). El ácido 2,2'-azino-bis (3-etilbenzotiazolina-6 sulfónico) (ABTS) es el mediador de lacasa más estudiado debido a su alta estabilidad y su conocida química redox (Collins et al., 1998).

El objetivo del presente trabajo fue caracterizar los extractos metanólicos de poda de vid y paja de trigo a través de cromatografía de capa fina y espectros de absorción y evaluar la oxidación del material contenido por el complejo enzimático extracelular de L. edodes.

Materiales y métodos

Obtención de los extractos metanólicos

Se obtuvieron los extractos metanólicos de poda de vid y paja de trigo por maceración. Las muestras se trituraron en un molino mecánico hasta un tamaño de partícula homogénea de 0.5 mm, se dejaron reposar en ausencia de luz durante 16 días a 25°C. Los extractos se concentraron eliminando el solvente con un rotavapor.

Los extractos se caracterizaron por cromatografía en capa fina (TLC). Se utilizó como fase estacionaria placas de aluminio (sílicagel 60F254), como fase móvil la mezcla cloroformo-metanol-ácido fórmico (85:15:1) y se reveló con luz UV (λ=260nm).

Microorganismos y medios de cultivo

Para la obtención del extracto enzimático extracelular crudo, la cepa se creció en matraces Erlenmeyer conteniendo 30 mL de un medio de composición químicamente definida, descrito por Kirk et al. (1976), conteniendo 2 g de KH₂PO₄, 0.5 g de MgSO₄ 7H₂O, 0.1 g de CaCl₂, 2 g de NH₄NO₃ y 5 g de carboximetilcelulosa (CMC), pH 4.5. Los matraces se inocularon con 6 discos, manteniéndolos a 25 °C y una agitación de 150 rpm durante 14 días.

Obtención del extracto enzimático crudo

Primeramente se separó el micelio del medio de cultivo por filtración con una membrana de nitrocelulosa (0.45 μm). El filtrado se empleó para obtener las proteínas extracelulares por precipitación con acetona, manteniendo una relación de 15 mL de acetona por cada 3 mL de filtrado. El extracto obtenido se colocó a -20 °C durante 6 h, para después centrifugar a 5000 rpm por 10 min.

El precipitado se resuspendió en un volumen de solución amortiguadora de acetato de sodio 50 mM y KCl 10 mM, pH 4.0 y 250 μM de fenil-metil-sulfonil fluoruro como inhibidor de proteasas que representaba el 1% del volumen utilizado en la precipitación. Las muestras se conservaron a -80 °C hasta su utilización para los ensayos de actividad enzimática (Harris-Valle et al., 2007).

Ensayo de actividad de oxidorreductasa

La actividad oxidasa se cuantificó midiendo la oxidación de 2,2'-azino-bis (3-etil-benzotiazolina-6-sulfonato) (ABTS) 0.3 mM en una solución de malonato de sodio 5 mM, pH 4.5, monitoreando la absorbancia a 420 nm en un espectrofotómetro (Ultrospec 4000, Pharmacia) y utilizando un coeficiente de extinción molar de 36 000 M^-1cm^-1 (Zhao et al., 1996).

Se obtuvieron espectros de absorción en un rango de longitud de onda de 200-900 nm. Las mediciones se hicieron en un espectrofotómetro (Ultrospec 4000, Pharmacia) colocando 40 μL de extracto crudo y 960 μL de mezcla de reacción (buffer malonato de sodio 5 mM, pH 4.5; ABTS 0.3 mM; extracto metanólico en una concentración final de 2 mg/mL).

El extracto de poda de vid se solubilizó en acetona-agua (relación 3:1 en volumen) y se centrifugó a 8000 rpm durante 6 min para eliminar la fracción insoluble y recuperar la porción soluble, con la cual se realizaron los ensayos.

Los estudios de interacción de oxidorreductasas con las fracciones separadas de los extractos metanólicos por cromatografía de capa fina fueron realizados directamente sobre las placas. Para el efecto, las placas eluidas con la fase móvil cloroformo-metanol-ácido fórmico (85:15:1) fueron secadas hasta eliminar la fase, luego asperjadas con una solución de ABTS al 0.2%. De la periferia del inóculo cultivado en cajas de Petri se cortaron pequeños discos de 6 mm de diámetro con desarrollo micelial reciente del hongo y conteniendo su secretoma. Estos discos fueron puestos a lo largo de las placas de cromatografía en los lugares que contenían alguna fracción del extracto (marcados luego de revelar con luz UV). Finalmente el sistema fue depositado en cajas Petri de vidrio, conteniendo algodón húmedo para evitar la desecación de los discos de agar con el hongo, mantenidas a 28°C durante 48 h, al cabo de las cuales se observaron los cambios de color.

Resultados y discusión

En la Figura 1 se presentan las placas de cromatografía de capa fina de los extractos metanólicos de paja de trigo (Figura 1A) y poda de vid (Figura 1B). En el caso del extracto de paja de trigo se observaron 3 subfracciones tenuemente reveladas por luz UV, mientras que el extracto de poda de vid (EMPV) mostró la presencia de al menos seis subfracciones de diferente intensidad. De las fracciones del EMPV, al menos 4 tuvieron R_f menores a 0.5 lo que indica, de acuerdo a las fases utilizadas, que son compuestos polares, posiblemente de naturaleza ácida. Justamente estas subfracciones, que además se observan como las más abundantes o altamente activas a la luz UV, promovieron la pigmentación parda de discos de agar, conteniendo el secretoma de L. edodes, que fueron depositados sobre las cromatoplacas luego de su aspersión con ABTS (Figura 1C). De manera diferente, los discos depositados sobre las fracciones con R_f >0.5, desarrollaron un color azul característico del radical catiónico ABTS+, indicando que el secretoma únicamente logró la oxidación del ABTS. Aunque no se presenta en la Figura 1, la placa cromatográfica del extracto de paja de trigo sometida a una prueba similar promovió únicamente la pigmentación azul de los discos de agar. Existen estudios realizados con hongos de la pudrición café o moderadamente ligninolíticos, en donde se ha observado el desarrollo de una pigmentación café del sustrato ocasionado por una oxidación parcial de la lignina (Martínez et al., 2005).

En la Figura 2 se presentan los espectros de absorción característicos de la molécula de ABTS y del producto de la acción enzimática del extracto crudo (EEC) sobre el ABTS. Aunque en esta figura se observa que las muestras empleadas estuvieron muy concentradas al alcanzar absorbancias máximas cercanas a las 4 UA, los perfiles del ABTS y su producto de oxidación ABTS + son idénticos a los descritos por la literatura (Solís-Oba et al., 2005). Al no ser una prueba cuantitativa, no resulta relevante una posible saturación del sistema. En el caso de la molécula de ABTS se observan dos máximos a 320 y 365 nm mientras que en el producto de oxidación, estos máximos disminuyen ligeramente y se generan nuevos picos con máximos a los 410, 650 y 730 nm. Cabe mencionar que estos máximos corresponden al espectro característico del primer estado de oxidación del ABTS, el radical catiónico ABTS+, tal como es reportado por Solís-Oba et al. (2005), con máximos a 414, 646 y 728 nm. Las lacasas son capaces de oxidar compuestos fenólicos o al ABTS en presencia de O₂ atmosférico (Youn et al., 1995). A diferencia de las lacasas, las peroxidasas si bien pueden oxidar el ABTS, requieren de H₂O₂ como co-sustrato (Tien y Kirk, 1984), el cual sin embargo, es generado en la reacción catalizada por las lacasas. Todos estos aspectos sugieren que la oxidación del ABTS puede ser ocasionada por estos tipos de fenol oxidasas contenidas en el EEC de L. edodes.

Se ha demostrado que la lacasa puede catalizar el acoplamiento del ABTS con derivados fenólicos en pocos minutos y que el radical catiónico se encuentra involucrado en dicho proceso (Matsumura et al., 1986). Apoyando esta hipótesis, Bourbonnais et al. (1998) demostraron que el radical catiónico ABTS⁺ reacciona eficientemente con compuestos fenólicos, tales como alcohol vainillínico, formando radicales vainillil, dicho proceso se encuentra involucrado en la degradación de lignina. De acuerdo a esto y a los cambios observados en los espectros de absorción de este estudio, posiblemente en el EMPV se encuentren presentes compuestos fenólicos que interactúan con el radical catiónico (ABTS⁺), generándose de esta forma un ciclo de acoplamiento entre las especies reaccionantes. El modelo propuesto para la reacción de las enzimas lacasas sobre moléculas mediadoras de bajo peso molecular como el ABTS y la acción oxidante de su radical se presenta en la Figura 4.

Cuando se añadió directamente el EEC de L. edodes sobre el EMPV, el fenómeno descrito fue similar al del sistema anterior en el que se hizo reaccionar el radical ABTS⁺ con el EMPV. En el espectro de los productos de la reacción destacaron la disminución en los máximos de absorción del EMPV (210, 230, 250, 275, 285, 310, 330 y 350 nm) y la presencia de dos máximos a 310 y 350 nm, muy similar a lo observado en la Figura 3. Este hecho sugiere que los compuestos contenidos en el EMPV pueden ser directamente oxidados por el EEC, prescindiendo del uso del mediador ABTS.

No se detectaron diferencias en los espectros de absorción cuando a los productos de reacción se les adicionó ABTS (Figura 5). Al parecer los picos máximos a 410, 650 y 730 nm del ABTS⁺ no se alcanzan a observar porque se encuentran traslapados con el espectro de los productos de oxidación del EMPV. Otra posibilidad es que el ABTS⁺ continúe reaccionando con compuestos del EMPV retomando inmediatamente a su forma reducida (ABTS), carente de dichos picos. La reactividad de la enzima lacasa y otras oxidorreductasas depende del potencial redox de los compuestos que pueda utilizar como sustrato, así se requieren sustratos con potencial redox alto para que la enzima pueda iniciar su ciclo catalítico (d' Acunzo et al., 2002). Las moléculas mediadoras como el ABTS, tienen como función activar a la enzima iniciando el proceso de oxidación de los residuos no fenólicos de la lignina y de grupos fenólicos no accesibles para la enzima (Bourbonnais et al., 1998). Los resultados obtenidos en este experimento sugieren que los compuestos del EMPV, oxidados por el EEC, son compuestos fenólicos no complejos, de fácil acceso a la enzima y de potencial redox elevado, por lo que no requieren de un mediador para ser oxidados. Cabe señalar que estos estudios se centraron sobre el EMPV como resultado de la primera prueba de cromatografía de capa fina donde se observó una cantidad mínima de compuestos en el extracto de paja de trigo y que prácticamente éstos no pudieron ser oxidados con el secretoma de L. edodes, aún con el uso del mediador ABTS.

Los resultados muestran que a diferencia del extracto metanólico de paja de trigo, el EMPV contiene una importante cantidad de subfracciones, varias de las cuales pueden ser oxidadas por las fenol oxidasas excretadas por L. edodes, sugiriendo que la poda de vid está formada por un material que puede ser metabolizado más fácilmente por el sistema enzimático del hongo. Los productos de oxidación probablemente son empleados como nutrientes por el hongo, aspecto que explicaría el incremento de su velocidad específica de crecimiento, la reducción del tiempo de fructificación y el incremento del rendimiento de conversión en relación a cuando es crecido sobre otros sustratos, tal como han reportado algunos autores.

Los autores agradecen el apoyo técnico de: Q.B. Socorro Vallejo Cohen, M.C. Aldo Gutiérrez y M.C. Alfonso Sánchez. RCR agradece el apoyo de CONACyT por su beca para estudios de maestría.

Literatura citada

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