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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Crecimiento, esporulación y germinación in vitro de cinco cepas de Metarhizium y su virulencia en huevos y ninfas de Bemisia tabaci]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se evaluó el crecimiento, esporulación y germinación in vitro de cuatro cepas nativas y una comercial de Metarhizium y su virulencia en huevos y ninfas de segundo instar de Bemisia tabaci bajo condiciones de laboratorio e invernadero. El crecimiento radial de la cepa MaSin (0.30 cm/día) fue significativamente menor a lo observado en el resto de las cepas. La esporulación fue significativamente mayor en la cepa MaSin (8.5 x 10(6) conidios/ml) y MaCol (6 x 10(6) conidios/ml). No se observó diferencia significativa en la germinación de conidios. La virulencia se evaluó por inmersión de B. tabaci en una suspensión de 1 x 10(7) conidios/ml. No se observó diferencia significativa en la mortalidad de huevos en laboratorio (9.9-32.2%) e invernadero (18.7-30.7%) por efecto de las cepas. Tampoco se observó diferencia significativa en la mortalidad de ninfas (67.7 a 88.2%) por efecto de las cepas en las evaluaciones de laboratorio. Sin embargo, en las evaluaciones de invernadero, las cepas MaSan y MaCol ocasionaron significativamente mayor mortalidad, con 60 y 50.5%, respectivamente. Los resultados indican que las cepas evaluadas presentan más virulencia en ninfas que en huevos de B. tabaci. Las cepas MaSan y MaCol podrían ser consideradas buenos candidatos para el manejo de B. tabaci.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Contribuciones</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Crecimiento, esporulaci&oacute;n y germinaci&oacute;n <i>in vitro</i> de cinco cepas de <i>Metarhizium</i> y su virulencia en huevos y ninfas de <i>Bemisia tabaci</i></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b><i>In vitro</i> growth, sporulation and germination of five strains of <i>Metarhizium</i> and their virulence on <i>Bemisia tabaci</i> eggs and nymphs</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Esa&uacute; Ruiz&#150;S&aacute;nchez<sup>1</sup>, Wilberth Chan&#150;Cupul<sup>1</sup>, Alfonzo P&eacute;rez Guti&eacute;rrez<sup>1</sup>, Jairo Crist&oacute;bal&#150;Alejo<sup>1</sup> Basilio Uch&#150;V&aacute;zquez<sup>1</sup>, Jos&eacute; M. Tun&#150;Su&aacute;rez<sup>1</sup>, Ricardo Mungu&iacute;a&#150;Rosales<sup>2</sup></b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal. Divisi&oacute;n de Estudios de Posgrado e Investigaci&oacute;n. Km 16.3 Antigua Carretera M&eacute;rida&#150;Motul, Conkal, Yucat&aacute;n.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Comite Estatal de Sanidad Vegetal del Estado de Yucat&aacute;n. Calle 19 # 443 Colonia Ciudad Industrial, M&eacute;rida, Yucat&aacute;n. C. P. 97288.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Autor para correspondencia:</b>    <br> 	Esa&uacute; Ruiz    <br> 	<a href="mailto:esau_ruiz@hotmail.com">esau_ruiz@hotmail.com</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido 4 de agosto 2009;    <br> 	aceptado 21 de septiembre 2010.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>In vitro</i> growth, sporulation and germination of four wild and one commercial strains of <i>Metarhizium</i> and their virulence on Bemisia tabaci eggs and second instar nymphs under laboratory and greenhouse conditions were evaluated. The radial growth of the colony was significantly lower for MaSin strain (0.30 cm/day). The sporulation was significantly higher in MaSin (8.5x10<sup>6</sup> conidia/ml) and MaCol strains (6x10<sup>6</sup> conidia/ml). The conidial germination was not significantly different between the strains evaluated. The virulence of the <i>Metarhizium</i> strains on B. tabaci was evaluated by immersion of leaves that contained eggs or nymphs in conidial suspension (1 x 10<sup>7</sup> conidia/ml). There was no significant difference on mortality of eggs under laboratory (9.9&#150;32.2%) or greenhouse (18.7&#150;30.7%) conditions by the effects of the <i>Metarhizium</i> isolates. There was no difference either on mortality of nymphs (67.7&#150;88.2%) by the effects of the strains in laboratory conditions. However, in greenhouse conditions, MaSan and MaCol strains caused significantly higher mortality, with values of 60 y 50.5%, respectively. These results indicated that all strains are more virulent for nymphs than for eggs of <i>B. tabaci</i>. MaSan and MaCol strains could be potential candidates for the management of <i>B. tabaci</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> biological control, entomophatogenic fungi, whitefly.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; el crecimiento, esporulaci&oacute;n y germinaci&oacute;n <i>in vitro</i> de cuatro cepas nativas y una comercial de <i>Metarhizium</i> y su virulencia en huevos y ninfas de segundo instar de <i>Bemisia tabaci</i> bajo condiciones de laboratorio e invernadero. El crecimiento radial de la cepa MaSin (0.30 cm/d&iacute;a) fue significativamente menor a lo observado en el resto de las cepas. La esporulaci&oacute;n fue significativamente mayor en la cepa MaSin (8.5 x 10<sup>6</sup> conidios/ml) y MaCol (6 x 10<sup>6</sup> conidios/ml). No se observ&oacute; diferencia significativa en la germinaci&oacute;n de conidios. La virulencia se evalu&oacute; por inmersi&oacute;n de <i>B. tabaci</i> en una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios/ml. No se observ&oacute; diferencia significativa en la mortalidad de huevos en laboratorio (9.9&#150;32.2%) e invernadero (18.7&#150;30.7%) por efecto de las cepas. Tampoco se observ&oacute; diferencia significativa en la mortalidad de ninfas (67.7 a 88.2%) por efecto de las cepas en las evaluaciones de laboratorio. Sin embargo, en las evaluaciones de invernadero, las cepas MaSan y MaCol ocasionaron significativamente mayor mortalidad, con 60 y 50.5%, respectivamente. Los resultados indican que las cepas evaluadas presentan m&aacute;s virulencia en ninfas que en huevos de <i>B. tabaci</i>. Las cepas MaSan y MaCol podr&iacute;an ser consideradas buenos candidatos para el manejo de <i>B. tabaci</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> control biol&oacute;gico, entomopat&oacute;genos, mosquita blanca.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mosquita blanca <i>Bemisia tabaci</i> (Hemiptera: Aleyrodidae) es un insecto fit&oacute;fago, pol&iacute;fago y cosmopolita que se alimenta de una gran variedad de plantas cultivadas. En M&eacute;xico esta especie es considerada plaga principal de cultivos hort&iacute;colas y ornamentales (Castellanos <i>et al.,</i> 2007), debido a los da&ntilde;os que ocasiona de manera directa mediante la succi&oacute;n de savia e indirecta por la transmisi&oacute;n de enfermedades de etiolog&iacute;a viral (Mu&ntilde;iz y Nombela, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El control qu&iacute;mico de <i>B. tabaci</i> es la estrategia m&aacute;s utilizada para el manejo, debido a su r&aacute;pida acci&oacute;n y persistencia. Sin embargo, el abuso en la utilizaci&oacute;n de estos productos ha provocado resistencia de las poblaciones de <i>B. tabaci</i> y efectos negativos en el ambiente, as&iacute; como riesgos para la salud humana (Monz&oacute;n, 2001). El uso de hongos entomopat&oacute;genos constituye una alternativa de gran valor en el manejo de <i>B. tabaci,</i> pues resulta inocuo al ambiente, al hombre y otros organismos superiores (Tanada y Kaya, 1993; James, 2001). Se han documentado m&aacute;s de 20 especies de hongos entomopat&oacute;genos con potencial infectivo en <i>B. tabaci,</i> destac&aacute;ndose por su importancia los hongos Hyphomycetes de los g&eacute;neros <i>Paecilomyces, Beauveria, Lecanicillium, Aschersonia</i> y <i>Metarhizium</i> (Dos Santos y del Pozo, 2003).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Metarhizium</i> (Moniliales: Moniliaceae) presenta amplio rango de hospederos. Se ha documentado que puede parasitar m&aacute;s de 300 especies de insectos de diversos &oacute;rdenes (G&oacute;mez <i>et al., 1997). Metarhizium</i> ha sido usado exitosamente en varios programas de control biol&oacute;gico de plagas agr&iacute;colas, como <i>Aeneolamia</i> spp. en ca&ntilde;a de az&uacute;car y pastos (Bautista y Gonz&aacute;lez, 2005), <i>Schistocerca piceifrons</i> (Orthoptera: Acrididae) en ma&iacute;z (Hern&aacute;ndez <i>et al.,</i> 2003), <i>Alabama argillacea</i> (Lepidoptera: Noctuidae) y <i>Maconellicoccus hirsutus</i> (Hemiptera: Pseudococcidae) en algod&oacute;n (Filho <i>et al.,</i> 2002; Ujjan y Shahzad, 2007) y <i>Sitophilus granarius</i> (Coleoptera: Curculionidae) en granos almacenados (Khashaveh <i>et al.,</i> 2008). Espec&iacute;ficamente para <i>B. tabaci,</i> existen antecedentes limitados de la actividad patog&eacute;nica de <i>Metarhizium.</i> Uno de los trabajos m&aacute;s detallados es el de Malsam <i>et al.</i> (2002), quienes encontraron que <i>M. anisopliae </i>puede causar hasta 50% de mortalidad bajo condiciones de laboratorio, inclusive tal eficiencia puede incrementarse al 100% si se usa aceite en la formulaci&oacute;n de las esporas y aditivos al momento de la aplicaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aislamiento y determinaci&oacute;n de la patogenicidad de nuevas cepas es necesario para iniciar la selecci&oacute;n de cepas con potencial para programas de control microbiano con hongos (Vidal <i>et al.,</i> 1997), ya que las caracter&iacute;sticas de desarrollo <i>in vitro</i> (crecimiento y viabilidad) proporcionan datos asociados a la virulencia de los hongos (Heale <i>et al.,</i> 1989; Estrada <i>et al.,</i> 1997). Por lo tanto, el objetivo de esta investigaci&oacute;n fue caracterizar el desarrollo <i>in vitro</i> de cuatro cepas nativas y uno comercial de <i>Metarhizium</i> y evaluar su virulencia en huevos y ninfas de <i>B. tabaci</i> bajo condiciones de laboratorio e invernadero.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas de <i>Metarhizium</i> se obtuvieron del laboratorio de reproducci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos del Comit&eacute; Estatal de Sanidad Vegetal del estado Yucat&aacute;n. Las cepas se aislaron de diferentes hospederos y lugares (<a href="/img/revistas/rmm/v33/a3t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). La identidad de las cepas se confirm&oacute; mediante caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y coloraci&oacute;n del conidio, conidi&oacute;foro y micelio, seg&uacute;n Humber (1998) y Barnett y Hunter (2003). En el estudio se incluy&oacute; como referencia una cepa de <i>Metarhizium</i> comercialmente disponible (Agrobionsa, M&eacute;xico). Las cepas fueron reactivadas en Sabouraud Dextrosa Agar (SDA) (Merck, Alemania) m&aacute;s 5 &micro;g ml de cloramfenicol (Lab. Sophia S. A. de C. V. M&eacute;xico), incub&aacute;ndose en laboratorio a 27&plusmn;3&deg;C, 75&plusmn;5% de humedad relativa y fotoper&iacute;odos de 14 h luz/10 h oscuridad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n del crecimiento radial de los micelios se sigui&oacute; la metodolog&iacute;a de Skrobek (2001). En el centro de una caja de Petri (60 x 15 mm) con medio de cultivo SDA, se deposit&oacute; 1 &micro;l de una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios/ml. Las cajas de Petri se incubaron bajo las condiciones indicadas anteriormente. El crecimiento (mm/d&iacute;a) se obtuvo del promedio de la medici&oacute;n del di&aacute;metro de los micelios en direcci&oacute;n vertical y horizontal. Las mediciones se realizaron durante 15 d&iacute;as por el reverso de la caja. Cada caja de Petri represent&oacute; una unidad experimental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A los cultivos desarrollados en cajas de Petri se les agregaron 10 ml de agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s 5 &micro;l de Tween 80 (Merck, Alemania). Posteriormente, el micelio se rasp&oacute; con una esp&aacute;tula est&eacute;ril y el producto obtenido se filtr&oacute; a trav&eacute;s de gasa est&eacute;ril para separar los conidios del micelio y fragmentos de medio nutritivo. La concentraci&oacute;n de conidios de la suspensi&oacute;n se determin&oacute; con una c&aacute;mara de Neubauer (Marienfeld, Alemania) y un microscopio compuesto (Leica Inc., USA) (Li y Holdom, 1994; Gindin <i>et al,</i> 2000). La suspensi&oacute;n de conidios extra&iacute;da de cada caja de Petri represent&oacute; una unidad experimental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n de la germinaci&oacute;n de conidios se sigui&oacute; la metodolog&iacute;a de Berlanga&#150;Padilla y Hern&aacute;ndez&#150;Vel&aacute;zquez (2002). Se colocaron cinco puntos de 2 &micro;l de una suspensi&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios/ml en cajas de Petri (100 x 15 mm) con SDA. Sobre estos puntos se colocaron cubreobjetos para facilitar la observaci&oacute;n, y cada hora con ayuda de un microscopio compuesto (Leica Inc., USA) en cada punto se observaron 100 conidios y se registr&oacute; el n&uacute;mero de conidios germinados. Se obtuvo entonces el valor promedio de los cinco puntos y este valor represent&oacute; directamente la tasa de germinaci&oacute;n (porcentaje/hora) de una unidad experimental. Se consider&oacute; conidio germinado el que presentara la longitud del tubo germinativo al menos del tama&ntilde;o del conidio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la patogenicidad de <i>Metarhizium</i> en huevos y ninfas de <i>B. tabaci,</i> la colonia de la mosquita se estableci&oacute; en el invernadero de adaptaci&oacute;n del Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal (ITC), en Conkal, Yucat&aacute;n, en jaulas entomol&oacute;gicas de 1.2 x 1.2 x 1 m, constru&iacute;das con aluminio y malla anti&aacute;fidos. Los adultos de <i>B. tabaci</i> se colectaron en cultivos de chile habanero <i>(Capsicum chinense</i> Jacq.) del &aacute;rea de producci&oacute;n hort&iacute;cola del ITC. Se confirm&oacute; la identidad de los insectos con las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de las ninfas, pupas y adultos como lo describe Ortega (2002). La colonia de <i>B. tabaci</i> se mantuvo en pl&aacute;ntulas de 30&#150;45 d&iacute;as de edad de <i>C. chinense,</i> establecidas en macetas de pl&aacute;stico con sustrato Cosmopeat (Cosmocel, Canad&aacute;). Cada 15&#150;20 d&iacute;as se introduc&iacute;an nuevas pl&aacute;ntulas y se retiraban las anteriores con el fin de proveer hospederos nuevos a <i>B. tabaci.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estados inmaduros de <i>B. tabaci</i> para las pruebas de patogenicidad se obtuvieron siguiendo la metodolog&iacute;a de Mu&ntilde;iz y Nombela (2001). Se tomaron cinco adultos de la colonia de <i>B. tabaci</i> y se depositaron en una jaula pinza de 1 cm de di&aacute;metro, colocada en una hoja completamente extendida de la parte superior de las plantas de <i>C. chinense</i> de 30 d&iacute;as de edad. Los adultos y las jaulas pinza se retiraron a las 24 horas y los huevos ovipositados se usaron inmediatamente para los bioensayos respectivos. En el caso de los bioensayos con ninfas, los huevos se dejaron en las hojas por 5 a 6 d&iacute;as hasta obtener ninfas de segundo instar. La unidad experimental fue un grupo de 25 a 30 huevos o ninfas establecidas en una hoja.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para realizar los bioensayos se obtuvieron suspensiones de esporas de los micelios cultivados en SDA, como se describi&oacute; anteriormente (Gindin <i>et al.,</i> 2000). Los tratamientos se llevaron a cabo por inmersi&oacute;n de hojas de <i>C. chinense</i> que conten&iacute;an huevos o ninfas de <i>B. tabaci,</i> por 15 segundos en una soluci&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> esporas/ml (Al&#150;Deghairi, 2008). El testigo fue tratado con agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s Tween 80 al 0.05% v/v. Para las evaluaciones de laboratorio, las plantas tratadas se mantuvieron en el Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a del ITC a 27&plusmn;3&deg;C y humedad relativa de 75&plusmn;8%. Para las evaluaciones de invernadero, las plantas fueron depositadas en un invernadero r&uacute;stico a 39&plusmn;6&deg;C y humedad relativa de 65&plusmn;10%. Las evaluaciones de mortalidad se realizaron diariamente por 7 d&iacute;as en los bioensayos con huevos y 12 d&iacute;as en los bioensayos con ninfas, de tal forma que en los resultados se presenta la mortalidad acumulada en cada caso. El registro de los individuos muertos se realiz&oacute; con un microscopio estereosc&oacute;pico, contabilizando como huevos muertos los micosados, deformes y no eclosionados (Gindin <i>et al.,</i> 2000; Skrobek, 2001); en los bioensayos con ninfas se consideraron ninfas muertas aquellas con cambios de coloraci&oacute;n, brillo, forma y aspecto del cuerpo, as&iacute; como con crecimiento de micelio sobre &eacute;ste (del Pozo y Rodr&iacute;guez, 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todos los experimentos se emple&oacute; un dise&ntilde;o estad&iacute;stico completamente al azar con cinco repeticiones. Cada repetici&oacute;n estuvo representada por una unidad experimental. El an&aacute;lisis de varianza y comparaci&oacute;n de medias Tukey (p&lt;0.05) de las variables de desarrollo <i>in vitro</i> y patogenicidad se analizaron con el programa GraphPad InStat (GraphPad Software Inc.).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento radial de los micelios vari&oacute; de 0.31 a 0.37 cm/d&iacute;a (<a href="/img/revistas/rmm/v33/a3t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Las cepas MaCol, MaQui y MaVer con 0.37, 0.35 y 0.35 cm/d&iacute;a, presentaron valores m&aacute;s altos (p&lt;0.05) que el observado en la cepa MaSin. Los valores observados en el presente trabajo son similares a los encontrados por Skrobek (2001), quien al evaluar el crecimiento micelial de <i>M. anisopliae</i> var. <i>anisopliae</i> sobre SDA a 26 &deg;C, registr&oacute; velocidad de crecimiento de 0.33 a 0.36 cm/d&iacute;a. Por su parte, Rachappa <i>et al.</i> (2007) reportaron valores de crecimiento micelial de 0.38 a 0.39 cm/d&iacute;a en aislamientos de <i>M. anisopliae,</i> los cuales son ligeramente superiores a los encontrados en el presente estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de germinaci&oacute;n de los conidios variaron entre 17.4 y 21.1%/h, no observ&aacute;ndose diferencias significativas entre las muestras evaluadas. Todas las cepas presentaron alta viabilidad <i>in vitro,</i> ya que alcanzaron 100% de germinaci&oacute;n entre las 6 a 7 h de incubaci&oacute;n. Otros estudios han reportado porcentajes m&aacute;s bajos de germinaci&oacute;n de conidios, por ejemplo, Hern&aacute;ndez <i>et al.</i> (2007) reportaron 80% de germinaci&oacute;n de conidios de <i>M. anisopliae</i> a las 21 h posteriores a la inoculaci&oacute;n en SDA incubado a 25 &plusmn; 1&deg;C, y Khashaveh <i>et al.</i> (2008) encontraron porcentajes de germinaci&oacute;n de 89 a 94% a las 24 h en SDA. La capacidad de desarrollo <i>in vitro,</i> particularmente crecimiento de la micelios y germinaci&oacute;n de conidios, ha sido asociada directamente a la virulencia de los hongos entomopat&oacute;genos (Heale <i>et al.,</i> 1989; Estrada <i>et al.,</i> 1997), sin embargo, de acuerdo con los datos observados en el presente trabajo, no se podr&iacute;a inferir cu&aacute;l cepa podr&iacute;a presentar mayor virulencia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La virulencia de las cepas de <i>Metarizium</i> en huevos de <i>B. tabaci</i> fue similar en las condiciones de laboratorio e invernadero. La mortalidad de huevos por efecto de las cepas vari&oacute; de 9.9 a 32.3% en laboratorio y de 18.7 a 30.7% en invernadero (<a href="#t3">Tabla 3</a>). Skrobek (2001), quien evalu&oacute; en laboratorio la mortalidad de huevos de <i>B. tabaci</i> biotipo B por efecto de <i>M. anisopliae</i> var. <i>anisopliae,</i> encontr&oacute; 33% de mortalidad a los 6 d&iacute;as despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n, este valor es ligeramente superior a los observados en el presente ensayo.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmm/v33/a3t3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para otras especies de insectos, existen reportes que <i>M. anisopliae</i> presenta buen potencial patog&eacute;nico en huevos, como en la polilla del tomate <i>Tuta absoluta</i> (Lepid&oacute;ptera: Gelechiidae), <i>Diabrotica undecimpunctata</i> (Coleoptera: Chrysomelidae), <i>Haematobia irritans</i> (Diptera: Muscidae) y <i>Blissus antillus</i> (Hemiptera: Lygaeidae) (Tallamy <i>et al.,</i> 1998; Coracini y Samuels, 2002; Sahag&uacute;n <i>et al.,</i> 2005; Rodr&iacute;guez <i>et al.,</i> 2006). La baja susceptibilidad de huevos de <i>B. tabaci</i> a <i>M. anisopliae</i> podr&iacute;a estar relacionada a las barreras f&iacute;sicas del corium. Probablemente, esta estructura impide la colonizaci&oacute;n del embri&oacute;n durante el per&iacute;odo embrionario, pero no evita la mortalidad de la ninfa despu&eacute;s de su eclosi&oacute;n (Tanada y Kaya, 1993).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo condiciones de laboratorio, no se observ&oacute; diferencia significativa en la mortalidad de ninfas de <i>B. tabaci</i> por efecto de las cepas de <i>Metarhizium,</i> ya que los valores encontrados variaron de 67.7 a 88.2% (<a href="#t4">Tabla 4</a>). En otros trabajos de patogenicidad de <i>M. anisopliae</i> en <i>B. tabaci,</i> se han encontrado valores similares a los observados en el presente estudio. Quisberth <i>et al.</i> (2004) evaluaron la virulencia de cuatro especies de hongos entomopat&oacute;genos en ninfas de <i>B. tabaci</i> en soya obteniendo porcentajes de mortalidad que alcanzaron 89%. De manera similar, Skrobek (2001) hall&oacute; porcentajes de mortalidad entre 80 y 85% en ninfas del primer instar de <i>B. tabaci</i> en algod&oacute;n. Herrera <i>et al.</i> (1999), por su parte, observaron mortalidades de 97% en ninfas de <i>B. tabaci</i> tratadas con esporas de <i>M. anisopliae</i> bajo condiciones controladas (25&plusmn;0,5 &deg;C, 80&plusmn;5% HR y 12:12 L:D).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmm/v33/a3t4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo condiciones de invernadero, la mortalidad de ninfas de <i>B. tabaci</i> por efecto de las cepas de <i>Metarhizium</i> fue menor que lo observado en laboratorio, los valores de mortalidad variaron de 18.3 a 65%. Las cepas MaSan y MaCol causaron significativamente mayor mortalidad con 65 y 50.5%, los cuales fueron significativamente superiores a los observados en las cepas MaQui, MaVer y MaSin (<a href="#t4">Tabla 4</a>). Cabe mencionar que en invernadero se tuvieron temperaturas de 39&plusmn;6 &deg;C, t&iacute;pico de regiones tropicales, que resaltan las buenas caracter&iacute;sticas de las cepas MaSan y MaCol que a&uacute;n bajo &eacute;stas condiciones ambientales fueron altamente virulentos (Amed y Shahsad, 2007). La virulencia de estas cepas podr&iacute;a incrementarse a trav&eacute;s de la formulaci&oacute;n de las esporas en aceite y el uso de algunos aditivos, como lo reportan Malsam <i>et al.</i> (2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen al Comit&eacute; Estatal de Sanidad Vegetal del Estado de Yucat&aacute;n por la b&uacute;squeda y aislamiento de las cepas de <i>Metarhizium,</i> as&iacute; como a Agatha Rosado y Francisco Couoh, alumnos del Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal, por su apoyo en el desarrollo de los experimentos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al&#150;Deghairi, M.A., 2008. Bioassay evaluation of the entomopathogenic fungi, <i>Beuveria bassiana</i> Vuellemin against eggs and nymphs of <i>Bemisia tabaci</i> Gennadius (Homoptera: Aleyrodidae). Pakistan Journal Biological Science 11: 1551&#150;1560.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728527&pid=S0187-3180201100010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahmed, U.A., S. Shahsad, 2007. Pathogenicity of <i>Metarhizium anisopliae</i> var. a<i>cridum</i> strains on pink hibiscus mealy Bug <i>(Maconellicoccus hirsutus)</i> affecting cotton crop. Pakistan Journal Botanic 39: 967&#150;973.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728529&pid=S0187-3180201100010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barnett, H.L., B.B. Hunter, 2003. Illustrated genera of imperfect fungi. Fourth edition. The American Phytopathological Society. 218 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728531&pid=S0187-3180201100010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bautista, G.A., C.C. Gonz&aacute;lez, 2005. Tres dosis de <i>Metarhizium anisopliae</i> sobre la mosca pinta <i>(Aeneolamia</i> spp.) en ca&ntilde;a de az&uacute;car en la regi&oacute;n de los r&iacute;os, estado de Tabasco. Universidad y Ciencia 21(41): 37&#150;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728533&pid=S0187-3180201100010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berlanga&#150;Padilla, A.M., V.M. Hern&aacute;ndez&#150;Vel&aacute;zquez, 2002. Efecto de la temperatura sobre el crecimiento y la virulencia de <i>Metarizhium anisopliae, M. a.</i> var <i>acridum</i> y <i>Beuveria bassiana</i> en <i>Shistocerca piceifrons piceifrons.</i> Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 63: 51&#150;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728535&pid=S0187-3180201100010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castellanos, M.J., B.M. Gonzales, T. Mier, M.R. Reyes, E. Aaranda, C. Toriello, 2007. Virulence testing and extracellular subtilisin&#150;like (Pr1) and trypsin&#150;like (Pr2) activity during propagule production of <i>Paecilomyces fumosoroseus</i> isolates from whiteflies (Homoptera: Aleyrodidae). Revista Iberoamericana de Micolog&iacute;a 24: 62&#150;68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728537&pid=S0187-3180201100010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coracini, D., R. Samuels, 2002. Natural enemies of the Chinch Bug, <i>Blissus antillus</i> Leonard (Hemiptera: Lygaeidae: Blissinae), pasture pest in Rio de Janeiro State, Brazil. Neotropical Entomology 31:165&#150;167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728539&pid=S0187-3180201100010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del Pozo N.M., D. A. Rodr&iacute;guez, 2003. Alternativa para el manejo de <i>Trialeurodes vaporariorum</i> Westwood en tomate org&aacute;nico en Uruguay. Bolet&iacute;n de Sanidad Vegetal: Plagas 29 (2): 211&#150; 218.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728541&pid=S0187-3180201100010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estrada&#150;Valencia, M. N., P. E. V&eacute;lez&#150;Arango, E. C. Montoya&#150;Restrepo. 1997. Caracterizaci&oacute;n de cultivos monoesp&oacute;ricos del hongo <i>Beauveria bassiana.</i> Cenicaf&eacute; 48 (4): 217&#150;224.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728543&pid=S0187-3180201100010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Filho, C.E., J.E. Marques, R. Barros, 2002. Selection of <i>Metarhizium anisopliae</i> (Metsch) and <i>Beauveria bassiana</i> (Huebner) caterpillars. Scientia Agricola 59: 457&#150;462.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728545&pid=S0187-3180201100010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gindin, G., N.U. Geschtovt, B. Raccah, I. Barash, 2000. Pathogenicity of <i>Verticillium lecanii</i> to different developmental stages of the Silverleaf Whitefly, <i>Bemisia argentifolii.</i> Phytoparasitica 28(3):1&#150;11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728547&pid=S0187-3180201100010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&oacute;mez, M., N. Tinti, L. Alves, 1997. Characterization of new biotypes of P157 strain of <i>Metarhizium anisopliae</i> var. <i>anisopliae,</i> got by treatment with gamma radiation. Bolet&iacute;n Micol&oacute;gico 12(2): 41&#150;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728549&pid=S0187-3180201100010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GraphPad InStat, 2000. GraphPad Software. La Joya, California.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728551&pid=S0187-3180201100010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Heale, J.B., J.E. Isaac, D. Chandler, 1989. Prospect for strain improvement in entomopathogenic fungi. Pesticide Science 26: 79&#150;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728553&pid=S0187-3180201100010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez, R.F., F.M. P&eacute;rez, B.N. Ventura, L.N. Real, T.J. Garc&iacute;a, 2007. Efecto del coadyuvante Break&#150;Thru sobre <i>Metarhizium anisopliae</i> (Ascomycota: Hypocreales) y Salivazo <i>Aeneolamia postica</i> (Hemiptera: Cercopidae). En M&eacute;xico. XXX Congreso Nacional de Control Biol&oacute;gico&#150;Simposio del IOBC, M&eacute;rida, Yucat&aacute;n, Noviembre. pp. 489&#150;492.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728555&pid=S0187-3180201100010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez, V.V., M.D. Hunter, L.L. Barrientos, G.R. Lezama, V.F. Reyes, 2003. Susceptibility of <i>Schistocerca piceifrons</i> (Orthoptera: Acrididae) to <i>Metarhizium anisopliae</i> var. <i>acridum</i> (Deuteromycotina: Hyphomycetes): laboratory and field trials. Journal of Orthoptera Research 12:89&#150;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728557&pid=S0187-3180201100010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera, F., M. Carballo, P. Shannon, 1999. Eficacia de cepas nativas de hongos entomopat&oacute;genos sobre <i>Bemisia tabaci,</i> en laboratorio. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 54:37&#150;43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728559&pid=S0187-3180201100010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Humber, R., 1998. Entomopathogenic fungal identification. American Phytopathological Society. Entomological Society of America Workshop, Joint annual meeting 1998. Las Vegas, Nevada, USA. 26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728561&pid=S0187-3180201100010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">James, R.R., 2001. Effects of exogenous nutrients on conidial germination and virulence against silverleaf whitefly for two hyphomycetes. Journal Invertebrate Pathology 77:99&#150;107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728563&pid=S0187-3180201100010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khashaveh, A., M.A. Safaralizade, Y. Ghosta, 2008. Pathogenicity of three Iranian isolates of the fungus, <i>Metarhizium anisopliae</i> (Metsch.) Sorokin (Deuteromycotina: Hyphomycetes) Against Granary Weevil, <i>Sitophilus granarius</i> L. (Coleoptera: Curculionidae). Journal of Biological Science 8: 804&#150;808.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728565&pid=S0187-3180201100010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li, D.P., D.G. Holdom, 1994, Effects of pesticides on growth and sporulation of <i>Metarhizium anisopliae</i> (Deuteromycotina: Hyphomycetes). Journal of Invertebrate Pathology 63: 209&#150;211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728567&pid=S0187-3180201100010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Malsam, O., M. Kilian, E.C. Oerke, H.W. Dehne. 2002. Oils for increased efficacy to control whiteflies. Biocontrol Science and Technology 12: 337&#150;348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728569&pid=S0187-3180201100010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Monz&oacute;n, A., 2001. Producci&oacute;n, uso y control de calidad de hongos entomopat&oacute;genos en Nicaragua. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 63:95&#150;103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728571&pid=S0187-3180201100010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mu&ntilde;iz, M., G. Nombela, 2001. Differential variation in development of the B&#150; and Q&#150; biotypes of <i>Bemisia tabaci</i> on sweet pepper <i>Capsicum annum</i> L. at constant temperatures. Environmental Entomology 30: 720&#150;727.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728573&pid=S0187-3180201100010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ortega, A.D., 2002. Moscas blancas en ornamentales. Manejo fitosanitario de ornamentales. Bautista, N, J. Alvarado, J. Chavar&iacute;a, y H. S&aacute;nchez (eds.), Colegio de Postgraduados. Montecillo, M&eacute;xico. pp 41&#150;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728575&pid=S0187-3180201100010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Quisberth, R.E., A.S. Batista, G.B. Clarice, S.C. Da Costa, 2004. Selecci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos para el control de <i>Bemisia tabaci</i> biotipo B. Manejo Integrado de Plagas y Agroecolog&iacute;a (Costa Rica) 73:21&#150;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728577&pid=S0187-3180201100010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rachappa, V., S. Lingappa, R.K Patil, 2007. Effect of agrochemicals on growth and sporulation of <i>Metarhizium anisopliae</i> (Metschnikoff) Sorokin. Karnataka Journal Agricultural Science 20: 410&#150;413.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728579&pid=S0187-3180201100010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez Dos Santos, A., E. Del Pozo N&uacute;&ntilde;ez, 2003. Aislamiento de hongos entomopat&oacute;genos en Uruguay y su virulencia sobre Trialeurodes vaporariorum West. Agrociencia (Cuba) 2:71&#150;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728581&pid=S0187-3180201100010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez, S.M., M. Gerding, I.A. France, 2006. Selecci&oacute;n de aislamientos de hongos entomopat&oacute;genos para el control de huevos de la polilla del tomate, <i>Tuta absoluta</i> Meyrick (Lepid&oacute;ptera: Gelechiidae). Agricultura T&eacute;cnica 66:151&#150;158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728583&pid=S0187-3180201100010000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sahag&uacute;n, A.C., L.R. Guti&eacute;rrez, M.J. Ochoa, G.E. Velasco, L.M. Edwards, R.O. Dom&iacute;nguez, C. V&aacute;zquez, R.W. Vel&aacute;zquez, S.R. Skoda, J.E. Foster, 2005. Susceptibility of biological stages of the horn fly, <i>Haematobia irritans,</i> to entomopathogenic fungi (Hyphomycetes). Journal Insect Science 50:1&#150;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728585&pid=S0187-3180201100010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Skrobek, A., 2001. Investigations on the effect of entomopathogenic fungi on whiteflies. Dissertation, Institut f&uuml;r Pflanzenkrankheiten der Rheinischen Friedrich&#150;Wilhelms&#150;Universit&aacute;t Bonn. Doktorw&uuml;rde der Agrarwissenschaften. 114 pp. &lt;<a href="http://hss.ulb.uniborm.de/diss_online/landw_fak/2001/skrobek_anke/text.pdf" target="_blank">http://hss.ulb.uniborm.de/diss_online/landw_fak/2001/skrobek_anke/text.pdf</a>&gt; Consultado: noviembre de 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728587&pid=S0187-3180201100010000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tallamy, D., D. Whittington, F. Defurio, D. Fontaine, P. Gorski, P. Gothro, 1998. Sequestered cucurbitacins and pathogenicity of <i>Metarhizium anisopliae</i> (Moniliales: Moniliaceae) on spotted cucumber beetle eggs and larvae (Coleoptera: Chrysomelidae). Environmental Entomology 27:366&#150;372.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728589&pid=S0187-3180201100010000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tanada, L., H. Kaya, 1993. Insect Pathology. Academic Press. San Diego, California.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728591&pid=S0187-3180201100010000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ujjan, A.A., S. Shahzad, 2007. Pathogenicity of <i>Metarhizium anisopliae</i> var. a<i>cridum</i> strain on pink hibiscus mealy bug <i>(Maconellicoccus hirsutus)</i> affecting cotton crop. Pakistan Journal Botanic 39:967&#150;973.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728593&pid=S0187-3180201100010000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vidal, C., J. Fargues, L.A. Lacey, 1997. Intraspecific variability of <i>Paecilomyces fumosoroseus:</i> effect of temperature on vegetative growth. Journal of Invertebrate Pathology 70:18&#150;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8728595&pid=S0187-3180201100010000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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