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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antagónista in vitro de aislados de la clase Bacilli de la península de Yucatán contra cuatro hongos fitopatógenos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Bacterial strains of the Bacilli class were isolated from soil of the Yucatán Peninsula. The antagonist activity was evaluated by direct confrontation against the phytopathogenic fungi Macrophomina phaseolina, Colletotrichum gloeosporioides, Helminthosporium sp and Alternaria sp. The isolates caused a 42 to 86 % inhibition of fungal colony growth. The isolate CBCK47 generated an inhibition zone of 0.30 to 0.72 cm in three of the four phytopathogenic fungi.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="Verdana" size="4">Notas cient&iacute;ficas</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Actividad antag&oacute;nista <i>in vitro</i> de aislados de la clase Bacilli de la pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n contra cuatro hongos fitopat&oacute;genos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b><i>In vitro</i> antagonistic activity of Bacilli class isolates from the Yucat&aacute;n peninsula against four phythopathogenic fungi</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>M Sosa&#45;Pech<sup>1</sup>, E Ruiz&#45;S&aacute;nchez<sup>1</sup>, M Mej&iacute;a&#45;Bautista<sup>1</sup>, A Reyes&#45;Ram&iacute;rez<sup>1</sup>*, J Crist&oacute;bal&#45;Alejo<sup>1</sup>, A Valencia&#45;Bot&iacute;n<sup>2</sup>, O Guti&eacute;rrez&#45;Alonzo<sup>3</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal. Divisi&oacute;n de Estudios de Posgrado e Investigaci&oacute;n. Km. 16.3 antigua carretera M&eacute;rida&#45;Motul. Conkal 97345 Yucat&aacute;n, M&eacute;xico.</i> Correo Electr&oacute;nico: <a href="mailto:areyes.itconkal@gmail.com">areyes.itconkal@gmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Centro Universitario de la Ci&eacute;nega, Universidad de Guadalajara</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> INIFAP Campo experimental Mococh&aacute;</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 21 de junio de 2012    <br>Aceptado: 6 de diciembre de 2012</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas de la clase Bacilli se aislaron en suelos de la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n. La actividad antagonista fue evaluada por la confrontaci&oacute;n directa contra los hongos fitopat&oacute;genos <i>Macrophomina phaseolina</i>, <i>Colletotrichum gloeosporioides</i>, <i>Helminthosporium</i> sp. y <i>Alternaria</i> sp. Los aislados causaron entre 42 y 86 % de inhibici&oacute;n de crecimiento de la colonia de hongos. El aislado CBCK47 produjo una zona de inhibici&oacute;n entre 0.30 y 0.72 cm en tres de los cuatro hongos fitopat&oacute;genos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Antagonistas, <i>Macrophomina phaseolina</i>, <i>Colletotrichum gloeosporioides</i>, <i>Helminthosporium</i> sp., <i>Alternaria</i> sp.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bacterial strains of the Bacilli class were isolated from soil of the Yucat&aacute;n Peninsula. The antagonist activity was evaluated by direct confrontation against the phytopathogenic fungi <i>Macrophomina phaseolina</i>, <i>Colletotrichum gloeosporioides</i>, <i>Helminthosporium</i> sp and <i>Alternaria</i> sp. The isolates caused a 42 to 86 % inhibition of fungal colony growth. The isolate CBCK47 generated an inhibition zone of 0.30 to 0.72 cm in three of the four phytopathogenic fungi.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Antagonists, <i>Macrophomina phaseolina</i>, <i>Colletotrichum gloeosporioides</i>, <i>Helminthosporium</i> sp., <i>Alternaria</i> sp.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos fitopat&oacute;genos son los principales causantes de enfermedades en las plantas, con p&eacute;rdidas a nivel mundial que ascienden a miles de millones de d&oacute;lares al a&ntilde;o (Agrios G 1998 Fitopatolog&iacute;a. Editorial Limusa, M&eacute;xico). El uso indiscriminado de fungicidas qu&iacute;micos ha tra&iacute;do grandes consecuencias negativas, entre las que destacan el incremento de los costos de producci&oacute;n, contaminaci&oacute;n al ambiente, residualidad en productos cosechados y desarrollo de resistencia de las poblaciones de pat&oacute;genos (Lewis JH, Papavizas GC 1991. Crop Protection 10: 95&#45;105).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La utilizaci&oacute;n de microorganismos en el control biol&oacute;gico de fitopat&oacute;genos constituye una alternativa eficiente y ecol&oacute;gica que contribuye al desarrollo de una agricultura sostenible, ya que disminuye los efectos inherentes al uso de plaguicidas qu&iacute;micos (Killani AS, Abaidoo RC, Akintokun AK, Abiala MA 2011. Research 3(3): 11&#45;18). La utilizaci&oacute;n de bacterias del g&eacute;nero Bacillus es una excelente alternativa, debido a la capacidad que presentan estas bacterias para ejercer actividad antag&oacute;nica mediante la producci&oacute;n de lipop&eacute;ptidos (Zhang DJ, Liu RF, Li YG, Tao LM, Tai L 2010. Chem, Pharm. Bull. 2010. 58(12): 1630&#45;7634), producci&oacute;n de enzimas l&iacute;ticas como quitinasas (Rodas&#45;Junco BA, Maga&ntilde;a&#45;Sevilla HF, Tun&#45;Suarez JM, Reyes&#45;Ram&iacute;rez A 2009. Research Journal of Biological Sciences 4(9):985&#45;989) y competencia por el espacio y los nutrientes (Rovira AD 1965. Annual Review of Microbiology 19:241&#45;266). El g&eacute;nero <i>Bacillus</i> es el grupo bacteriano m&aacute;s utilizado para el control de pat&oacute;genos del suelo y de ra&iacute;ces (Killani AS, Abaidoo RC, Akintokun AK, Abiala MA 2011. Research 3(3): 11&#45;18), pero hay pocas investigaciones sobre control de fitopat&oacute;genos de follaje. Entre los estudios sobre la actividad de <i>Bacillus</i> sobre hongos que afectan follaje se encuentran los de Fravel y Spurr (1977. Phytopathology 67: 930&#45;932), quienes informaron que el uso de <i>Bacillus cereus</i> inhibi&oacute; la germinaci&oacute;n y desarrollo del tubo germinativo de <i>Alternaria alternata</i>. Carissimi <i>et al.</i> (2009. Biociencias 17(1): 48&#45;58) demostraron que el uso de <i>Bacillus</i> spp. produce inhibici&oacute;n eficiente contra <i>Bipolaris sorokiniana</i>. Por su parte, Saleem y Ulaganathan (2002. Current Science 82 (12): 55&#45;62) encontraron que la cepa <i>Bacillus</i> FC121, aislada de la rizosfera de sorgo, mostr&oacute; alta actividad antag&oacute;nica contra <i>Curvularia lunata</i>, produciendo una zona de inhibici&oacute;n de 0.5&#45;1 cm.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos de los g&eacute;neros de pat&oacute;genos m&aacute;s importantes que afectan follaje en zonas tropicales son <i>Macrophomina</i>, <i>Colletotrichum</i>, <i>Helminthosporium</i> y <i>Alternaria</i>. <i>Macrophomina</i> spp. que es un hongo que provoca la pudrici&oacute;n e infecta las ra&iacute;ces y la parte inferior del tallo de m&aacute;s de 500 especies de plantas (Beas&#45;Fern&aacute;ndez R, Santiago de Santiago A, Hern&aacute;ndez&#45;Delgado S, Mayek&#45;P&eacute;rez N 2006. Journal of Plant Pathology 88(1): 53&#45;60). La pudrici&oacute;n carbonosa es una enfermedad importante durante el tiempo caluroso y seco, o cuando las condiciones ambientales son desfavorables para la planta, siendo la enfermedad m&aacute;s importante del sorgo en el Norte de Tamaulipas, M&eacute;xico (Williams&#45;Alan&iacute;s H, Pecina&#45;Quintero V, Montes Garc&iacute;a N, Palacios&#45;Velarde O, Arcos&#45;Cavazos G, Vidal&#45;Mart&iacute;nez A 2009. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 27:148&#45;155). El hongo <i>Colletotrichum</i> es uno de los pat&oacute;genos de plantas de mayor distribuci&oacute;n mundial y de gran importancia, causa antracnosis en el follaje, el tallo y el fruto en una amplia variedad de plantas como soya, algod&oacute;n, frijol, tomate, as&iacute; como cucurbit&aacute;ceas entre otras. Mientras que <i>Helminthosporium</i> causa severas enfermedades en gram&iacute;neas y en algunos frutales, y la sintomatolog&iacute;a t&iacute;pica son manchas foliares y pudrici&oacute;n del cuello de la planta y la ra&iacute;z (Agrios G 1998. Fitopatolog&iacute;a, Editorial Limusa, M&eacute;xico). El g&eacute;nero <i>Alternaria</i> afecta principalmente las hojas, los tallos, las flores y frutos de plantas anuales, en particular de hortalizas y plantas de ornato. Afecta tambi&eacute;n &aacute;rboles como los de los c&iacute;tricos y el manzano. El hongo causa manchas y tizones foliares, inclusive ocasiona ahogamiento de pl&aacute;ntulas y pudriciones de cuello (Agrios G 1998 Fitopatolog&iacute;a, Editorial Limusa, M&eacute;xico). Por lo anterior el objetivo del presente trabajo fue es aislar cepas nativas de la clase <i>Bacilli</i> con potencial en el control biol&oacute;gico de cuatro hongos fitopat&oacute;genos mediante ensayos <i>in vitro</i>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Establecimiento de las colonias de hongos fitopat&oacute;genos utilizados</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron cuatro cepas de hongos fitopat&oacute;genos, las cuales fueron: <i>Macrophomina phaseolina</i> (Tassi) Goid., donado por el Dr. Ram&iacute;rez&#45;Lepe del Instituto Tecnol&oacute;gico de Veracruz., M&eacute;xico, <i>Colletotrichum gloeosporioides</i> Penz. que se obtuvo de frutos de papaya (<i>Carica papaya</i> L.), <i>Helminthosporium</i> sp. y <i>Alternaria</i> sp. que se obtuvieron de palma kerpis (<i>Adonidia Merrilli</i> Becc.). Los hongos fueron aislados por medio de siembra de cortes de tejido infectado y sano en medio PDA e incubados a 28 &deg;C (Herrera&#45;Parra <i>et al.</i> 2011. Fitosanidad 15(4): 231&#45;236). Los hongos se resembraron y se mantuvieron en agar papa dextrosa (PDA) en el laboratorio de fitopatolog&iacute;a del Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de cepas de la clase Bacilli</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se tomaron muestras de diferentes suelos de los estados de Yucat&aacute;n y Campeche. Las muestras de suelo se tomaron como lo indica Escobar <i>et al.</i> (Escobar <i>et al.</i> 2004. Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a 6(2): 43&#45;53). Se tomaron las muestras de suelo a una profundidad de 10 cm aproximadamente, cerca de la rizosfera de plantas en diferentes zonas de cultivos y malezas. El procesamiento de las muestras se realiz&oacute; de la siguiente manera: 1 g de la muestra de suelo se mezcl&oacute; con 10 ml de agua destilada esterilizada, se agit&oacute; con intensidad por aproximadamente 1 min, despu&eacute;s se pasteuriz&oacute; en ba&ntilde;o Mar&iacute;a a 80 &deg;C por 30 min y se enfri&oacute; en hielo por 30 min. Se tom&oacute; una al&iacute;cuota de 20 <i>&micro;</i>l que se diluy&oacute; 1:10 en agua destilada est&eacute;ril en un tubo de microcentrifuga de 1.5 ml. De esta mezcla se tom&oacute; una muestra de 50 <i>&micro;</i>l y se sembr&oacute; en Agar Nutritivo (AN) (Artiom, 2002. Bioagro 14 (1): 3&#45;10).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n de cepas de la clase Bacilli</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; descripci&oacute;n morfol&oacute;gica de la colonia de cada uno de los aislados seleccionados en AN con base en la apariencia, forma del borde y color, esta descripci&oacute;n se realiz&oacute; despu&eacute;s de 48 h de crecimiento en AN, incubado a 28 &deg;C. A las 24 h de incubaci&oacute;n se realizaron pruebas de catalasa y de tinci&oacute;n de Gram (Koneman 2003. Diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico. Editorial m&eacute;dica panamericana. Argentina). A las 72 h de incubaci&oacute;n se les determin&oacute; la presencia de espora por observaci&oacute;n microsc&oacute;pica. Las cepas con caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas similares a la clase Bacilli se conservaron en AN para su uso posterior.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la actividad antag&oacute;nica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de la actividad antag&oacute;nica de las cepas se realiz&oacute; con el procedimiento de Sosa&#45;L&oacute;pez <i>et al.</i> (Sosa&#45;L&oacute;pez <i>et al.</i> 2011. Fitosanidad 15(1): 39&#45;43). Un disco de 4 mm de di&aacute;metro de la zona de crecimiento de las colonias de los hongos fitopat&oacute;genos se colocaron en el centro de cajas Petri de 100 mm de di&aacute;metro con PDA. Los antagonistas se inocularon mediante la adici&oacute;n de 6 <i>&micro;</i>l de las suspensiones bacterianas (1 &times; 107 UFC ml<sup>&minus;1</sup>) de cada aislado, cada uno de los hongos fitopat&oacute;genos fue probado con todos los aislados bacterianos en confrontaci&oacute;n 1 a 4, distribuidos a 2 cm de distancia del disco con micelio del hongo fitopat&oacute;geno, esto se realizo con cinco replicas. Las cajas Petri se sellaron e incubaron a 28 &deg;C. Se estableci&oacute; un testigo para cada hongo fitopat&oacute;geno, el cual consisti&oacute; en la siembra de la colonia f&uacute;ngica sin la presencia de los aislados bacterianos. Se realizaron cinco repeticiones por unidad experimental y los datos fueron tomados a los 7 y 10 d de incubaci&oacute;n. Se seleccionaron las cepas que mostraron mayor inhibici&oacute;n en el crecimiento micelial en por lo menos dos de los cuatro hongos fitopat&oacute;genos utilizados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables evaluadas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inhibici&oacute;n de crecimiento de los hongos.</b> Se evalu&oacute; el crecimiento radial de las colonias f&uacute;ngicas en presencia y ausencia de los aislados bacterianos. El porcentaje de inhibici&oacute;n de crecimiento f&uacute;ngico se evalu&oacute; mediante la f&oacute;rmula descrita por Orber&aacute; <i>et al.</i> (Orber&aacute; <i>et al.</i> 2009. Fitosanidad 13(2): 95&#45;100).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><i>PICR</i> = (<i>R</i>1 &minus; <i>R</i>2/<i>R</i>1) &times; 100</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde: <i>PICR</i> es el porcentaje de inhibici&oacute;n del crecimiento radial, <i>R</i>1 representa el valor promedio del radio de la colonia control y <i>R</i>2 es el valor promedio del radio de la colonia inhibida por las bacterias.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Halo de inhibici&oacute;n de crecimiento.</b> Se midi&oacute; en cm la zona de inhibici&oacute;n de crecimiento (sin crecimiento micelial del hongo) entre el borde de la colonia bacteriana y el borde la colonia f&uacute;ngica. Para <i>Macrophomina phaseolina</i> se tomo el dato del s&eacute;ptimo d&iacute;a, mientras que para <i>Colletotrichum gloeosporioides</i>, <i>Helminthosporium</i> sp. y <i>Alternaria</i> sp. se tomaron los datos a los 10 d despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de datos.</b> Se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza y comparaci&oacute;n de medias de Tukey (p <i>&le;</i> 0.05), al porcentaje de inhibici&oacute;n de los crecimientos f&uacute;ngicos y al halo de inhibici&oacute;n de crecimiento. El an&aacute;lisis se llev&oacute; a cabo en el paquete estad&iacute;stico SAS versi&oacute;n 8.1 para Windows. El agrupamiento de las cepas se realiz&oacute; mediante un an&aacute;lisis de conglomerado aplicando la distancia Euclidiana utilizando el paquete estad&iacute;stico MINITAB v 13.20 para Windows.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de cepas de la clase Bacilli</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron un total de 40 cepas bacterianas de los estados de Yucat&aacute;n y Campeche, por medio de en ensayos preliminares se pre seleccionaron 13 cepas para el presente trabajo, con base a los aislados que inhibieron el crecimiento de las colonias f&uacute;ngicas en por lo menos dos de los cuatro hongos fitopat&oacute;genos utilizados, con porcentajes de inhibici&oacute;n iguales o mayores al 70 %. De acuerdo a las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de las colonias, forma bacteriana bacilar Gram positiva, prueba de catalasa positiva y producci&oacute;n de esporas, los aislados se identificaron como pertenecientes a la clase Bacilli. Las cepas seleccionadas se codificaron y agruparon de acuerdo con la localidad de donde se tom&oacute; la muestra, las cuales son: CBRF6, CBRF8, CBRF12, CBRF15, CBRM9, CBRM14 de Conkal, CBCC2 de Cansahcab y CBSN67 de San Crisanto, municipios de Yucat&aacute;n; CBCK36, CBCK41, CBCK44, CBCK46 y CBCK47 de Calakmul, Campeche.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porcentaje de inhibici&oacute;n de crecimiento</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observ&oacute; diferencia significativa en la actividad antag&oacute;nica de las cepas bacterianas en los cuatro hongos fitopat&oacute;genos. Para <i>Macrophomina phaseolina</i> cinco cepas mostraron mayor inhibici&oacute;n del crecimiento, que se encontr&oacute; entre 71 y 73 % (p = 0.0001) (<a href="/img/revistas/uc/v28n3/a7c1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). En <i>Colletotrichum gloeosporioides</i>, todas las cepas indujeron un porcentaje de inhibici&oacute;n entre 70 y 86 %, lo cual indica que este hongo en particular fue el m&aacute;s susceptible al efecto de los antagonistas, por otro lado, en el caso de <i>Helminthosporium</i> sp., las cepas antag&oacute;nicas mostraron un rango de inhibici&oacute;n m&aacute;s amplio, entre 39 y 79 % en donde seis aislados mostraron porcentajes iguales o mayores al 70 % (<a href="/img/revistas/uc/v28n3/a7c1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). Finalmente, en <i>Alternaria</i> sp., con excepci&oacute;n de dos aislados, indujeron porcentajes de inhibici&oacute;n entre 71 % y 80 % (p = 0.0001) (<a href="/img/revistas/uc/v28n3/a7c1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). Los resultados del presente trabajo son similares a los informados por Ben&iacute;tez <i>et al.</i> (Ben&iacute;tez <i>et al.</i> 2007. NOVA &#45; publicaci&oacute;n cient&iacute;fica en ciencias biom&eacute;dicas 5(8): 101&#45;212) quienes encontraron cinco cepas de <i>Bacillus</i> sp. que inhib&iacute;an el crecimiento <i>in vitro</i> de <i>Botrytis cinerea</i> y <i>Sclerotina sclerotiorum</i>, con porcentajes de inhibici&oacute;n de 83 a 87 %. De la misma manera Orber&aacute; <i>et al.</i> (Orber&aacute; <i>et al.</i> 2009. Fitosanidad 13(2): 95&#45;100) evaluaron bacterias formadoras de endosporas contra <i>Curvularia lunata</i>, <i>Fusarium oxysporum</i> y <i>Colletotrichum</i> sp., y observaron que las mejores cinco cepas bacterianas produjeron entre 52 y 72 % de inhibici&oacute;n de crecimiento de los hongos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Halo de inhibici&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En su actividad antag&oacute;nica el 77 % de las cepas formaron una zona de inhibici&oacute;n entre la colonia del antagonista y la de los hongos fitopat&oacute;genos en los cuatro hongos utilizados entre 0.02 y 0.76 cm, solo la cepa CBK46 no mostr&oacute; formaci&oacute;n de halo de inhibici&oacute;n en ninguno de los cuatro hongos (<a href="/img/revistas/uc/v28n3/a7c2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Durante la interacci&oacute;n entre un antagonista y el pat&oacute;geno en muchas ocasiones se genera una zona clara entre ambos denominada halo de inhibici&oacute;n, la cual se genera por el microorganismo antagonista (Rodgers PB 1989. Pesticide Science 27: 155&#45;164). Los resultados del presente trabajo indican que las cepas CBK36 y CBCK47, forman halos de inhibici&oacute;n de 0.04 a 0.72 cm en los cuatro hongos (<a href="/img/revistas/uc/v28n3/a7c2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>), lo cual indica que tienen un amplio espectro de actividad antif&uacute;ngica, probablemente debido a la presencia de metabolitos extracelulares que afectan el crecimiento micelial de los hongos. En estudios previos de Saleem &amp; Ulaganathan (Saleem &amp; Ulaganathan 2002. Current Science 82 (12): 55&#45;62), informaron que cepas de <i>Bacillus</i> spp. aisladas de la rizosfera tuvieron alta actividad antag&oacute;nica frente a <i>Curvularia lunata</i>, observ&aacute;ndose una zona de inhibici&oacute;n de 0.5 a 1 cm despu&eacute;s de 10 d de inoculaci&oacute;n. Especies de <i>Bacillus</i> producen componentes bioactivos como lipop&eacute;ptidos c&iacute;clicos entre ellos surfactina, iturina y fengicina (Arguelles&#45;Arias A, Ongena M, Halimi B, Lara Y, Brans A, Joris B, Fickers P 2009. Microbial Cell Factories 8:63) estos compuesto son producidos durante el crecimiento bacteriano de manera extracelular por lo que se mantienen en el medio de cultivo y son responsables de la formaci&oacute;n de los halos de inhibici&oacute;n en los bioensayos de confrontaci&oacute;n directa entre los fitopat&oacute;genos y los antagonistas. Fracciones de Iturina A y fengicina producidas por <i>Bacillus subtilis</i> CMB32 producen halos de inhibici&oacute;n en <i>Colletotrichum gloeosporioides</i> (Kim <i>et al.</i> 2010. Journal of Microbiology and Biotechnology 20(1):138&#45;145).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, las cepas CBCK41, CBCK44 y CBCK 46 que mostraron porcentajes de inhibici&oacute;n mayores al 70 % de crecimiento micelial no produjeron un halo de inhibici&oacute;n o los valores fueron menores a 0.05 cm entre la colonia del antagonista y los hongos fitopat&oacute;genos. Al respecto se sugiere que algunas cepas bacterianas no forman halo de inhibici&oacute;n debido probablemente a que pueden competir directamente con el hongo pat&oacute;geno por espacio o por nutrientes (Rovira 1965. Annual Review of Microbiology 19:241&#45;266).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la selecci&oacute;n de las cepas con mayor porcentaje de inhibici&oacute;n se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de conglomerado (<a href="/img/revistas/uc/v28n3/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Considerando un corte de un valor de 1.0 (Distancia euclidiana) se observ&oacute; un grupo definido que incluye al testigo positivo formado por la cepas CBRF15, CBCK36, CBCK41, CBK44 y CBCK46. Por lo que estas cinco cepas deben de ser consideradas en ensayos <i>in vivo</i> a nivel de campo para evaluar su potencial como control de hongos fitopat&oacute;genos, as&iacute; como la necesidad de su identificaci&oacute;n a nivel de especie para fines de manejo y uso en la agricultura.</font></p>      ]]></body>
</article>
