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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la concentración del sulfuro, pH y anoxia sobre la fotosíntesis y respiración de Zostera marina]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Sulfide produced in marine sediments by sulfate reduction is toxic for several macrophytes, and high sediment sulfide concentrations have been associated with seagrass die-off events. Sulfide has been shown to reduce growth in a number of seagrasses, but little is known about its effect on the photosynthetic and respiratory metabolism. Consequently, the aim of this research was to evaluate the effect of sulfide on photosynthesis and respiration of the seagrass Zostera marina. Photosynthetic oxygen evolution and respiration were determined polarographically, while the optimum quantum yield was used as a measure of the photosynthetic performance of photosystem II in the leaves of Z. marina. The results showed that sulfide concentrations of approximately 1000 &#956;M could be considered an upper threshold limit for the survival of Z. marina in the coastal lagoons of Baja California (Mexico) studied. Respiration was not inhibited by sulfide concentrations up to 1000 &#956;M during 48-h incubations, while photosynthetic performance was reduced by short exposure to sulfide concentrations of 25 &#956;M but also by long exposure to concentrations as low as 50 &#956;M. This is the first study that shows that the photosynthetic capacity of Z. marina is not recovered once the sulfide-free conditions have been re-established.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de la concentraci&oacute;n del sulfuro, pH y anoxia sobre la fotos&iacute;ntesis y respiraci&oacute;n de <i>Zostera marina</i></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effects of sulfide concentration, pH, and anoxia on photosynthesis and respiration of <i>Zostera marina</i></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>LK Korhonen<sup>1</sup>, V Mac&iacute;as&#45;Carranza<sup>1</sup>, R Abdala<sup>2</sup>, FL Figueroa<sup>2</sup>, A Cabello&#45;Pasini<sup>1</sup>*</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Instituto de Investigaciones Oceanol&oacute;gicas, Universidad Aut&oacute;noma de Baja California, apartado postal 453, Ensenada 22800, Baja California, M&eacute;xico.</i> * Corresponding author. E&#45;mail: <a href="mailto:acabello@uabc.edu.mx">acabello@uabc.edu.mx</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Ecolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad de M&aacute;laga, E&#45;29071, M&aacute;laga, Spain.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Received July 2011,    <br> 	received in revisedform July 2012,    <br> </font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sulfuro producido en los sedimentos a consecuencia de la reducci&oacute;n del sulfato es t&oacute;xico para algunas macr&oacute;fitas. De la misma manera, altas concentraciones de sulfuro en el sedimento han sido asociadas con eventos de mortalidad en pastos marinos. Se ha observado que la presencia de sulfuro reduce el crecimiento en algunos pastos marinos; sin embargo, el efecto sobre el metabolismo fotosint&eacute;tico y respiratorio es poco conocido. En consecuencia, el objetivo de esta investigaci&oacute;n fue evaluar el efecto de sulfuro sobre la fotos&iacute;ntesis y la respiraci&oacute;n de la faner&oacute;gama marina <i>Zostera marina.</i> La evoluci&oacute;n del ox&iacute;geno fotosint&eacute;tico y la respiraci&oacute;n fueron determinados polarogr&aacute;ficamente, en tanto que el rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo fue utilizado como una medida del desempe&ntilde;o fotosint&eacute;tico del fotosistema II en las hojas de <i>Z. marina.</i> Los resultados mostraron que las concentraciones de sulfuro cercanas a 1000 &#956;M pueden ser consideradas como el l&iacute;mite superior para la supervivencia de <i>Z. marina</i> en las lagunas costeras de Baja California (M&eacute;xico) consideradas en este estudio. La respiraci&oacute;n no present&oacute; inhibici&oacute;n cuando las plantas fueron expuestas a concentraciones de sulfuro de 1000 &#956;M durante incubaciones de 48 h, mientras que el desempe&ntilde;o fotosint&eacute;tico disminuy&oacute; al ser expuestas a concentraciones de 25 &#956;M por cortos periodos de tiempo, pero tambi&eacute;n a exposiciones prolongadas en concentraciones de tan solo 50 &#956;M. Este es el primer estudio que muestra que la capacidad fotosint&eacute;tica de <i>Z. marina</i> no se recupera una vez que las condiciones libres de sulfuro son restablecidas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> respiraci&oacute;n aer&oacute;bica, rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo, sulfuro, fotos&iacute;ntesis, <i>Zostera marina.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sulfide produced in marine sediments by sulfate reduction is toxic for several macrophytes, and high sediment sulfide concentrations have been associated with seagrass die&#45;off events. Sulfide has been shown to reduce growth in a number of seagrasses, but little is known about its effect on the photosynthetic and respiratory metabolism. Consequently, the aim of this research was to evaluate the effect of sulfide on photosynthesis and respiration of the seagrass <i>Zostera marina.</i> Photosynthetic oxygen evolution and respiration were determined polarographically, while the optimum quantum yield was used as a measure of the photosynthetic performance of photosystem II in the leaves of <i>Z. marina.</i> The results showed that sulfide concentrations of approximately 1000 &#956;M could be considered an upper threshold limit for the survival of <i>Z. marina</i> in the coastal lagoons of Baja California (Mexico) studied. Respiration was not inhibited by sulfide concentrations up to 1000 &#956;M during 48&#45;h incubations, while photosynthetic performance was reduced by short exposure to sulfide concentrations of 25 &#956;M but also by long exposure to concentrations as low as 50 &#956;M. This is the first study that shows that the photosynthetic capacity of <i>Z. marina</i> is not recovered once the sulfide&#45;free conditions have been re&#45;established.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> aerobic respiration, optimum quantum yield, sulfide, photosynthesis, <i>Zostera marina.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reducci&oacute;n del sulfato es la principal fuente de remineralizaci&oacute;n de carbono en los sedimentos marinos (Jorgensen y Revsbech 1983, Canfield <i>et al.</i> 1993). La reducci&oacute;n del sulfato por bacterias genera sulfuro como producto final, el cual se disocia y mantiene un equilibrio qu&iacute;mico entre S<sup>2&#45;</sup>, HS<sup>&#45;</sup> y H<sub>2</sub>S, controlados principalmente por el pH. A pH 6, el 90% del sulfuro estar&aacute; presente como H<sub>2</sub>S, mientras que a pH 8, el 80% del sulfuro estar&aacute; presente como HS<sup>&#45;</sup> y s&oacute;lo el 20% como H<sub>2</sub>S. Se ha encontrado que el sulfuro producido por estas bacterias en el sedimento impactan las funciones fisiol&oacute;gicas de otros organismos acu&aacute;ticos (Bagarinao 1992).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por ejemplo, concentraciones de sulfuro entre 1 y 10 en c&eacute;lulas eucariotas inhiben el citocromo c oxidasa (Fenchel y Finlay 1995). Por otra parte, se ha encontrado que concentraciones en el sedimento menores que 5000 &#956;M limitan el crecimiento de las macr&oacute;fitas en los humedales (Koch y Mendelssohn 1989, Koch <i>et al.</i> 1990, Erskine y Koch 2000) y tambi&eacute;n, al unirse a las m&eacute;talo&#45;enzimas en las ra&iacute;ces del arroz, reducen su capacidad respiratoria aer&oacute;bica (Allam y Hollis 1972).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha sugerido que el aumento repentino de los niveles de sulfuro en el sedimento o el agua pueden afectar negativamente la fotos&iacute;ntesis de los pastos marinos (Holmer y Bondgaard 2001). Por ejemplo, se ha demostrado que concentraciones entre 50 y 100 &#956;M de sulfuro en el agua, reduce tres veces las tasas fotosint&eacute;ticas en <i>Zostera marina</i> (Holmer y Bondgaard 2001). Por otra parte, este estudio demostr&oacute; que las concentraciones de sulfuro por arriba de 100 &#956;M detienen toda la actividad fotosint&eacute;tica en este pasto marino. Tambi&eacute;n se observ&oacute; que en condiciones de hipoxia y presencia de sulfuro en la columna de agua existe una reducci&oacute;n de las tasas de crecimiento en los pastos marinos (Holmer y Bondgaard 2001). Por otra parte, numerosos estudios relacionan las altas concentraciones de sulfuro en el sedimento con eventos de muerte y, por consecuencia, la disminuci&oacute;n en la distribuci&oacute;n de pastos marinos (Carlson <i>et al.</i> 1994). Estos estudios sugieren que el sulfuro no inicia el evento de muerte en los pastos, sino que act&uacute;a sin&eacute;rgicamente con otros factores de estr&eacute;s tales como la reducci&oacute;n de la luz, la anoxia, hipersalinidad o las altas temperaturas (Carlson <i>et al.</i> 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las lagunas costeras est&aacute;n expuestas a periodos de aumento de la temperatura, la anoxia, la salinidad y/o reducci&oacute;n de la luz causada por la resuspensi&oacute;n de sedimentos o el crecimiento del fitoplancton en los sistemas eutr&oacute;ficos. Estas condiciones pueden producir una disminuci&oacute;n del ox&iacute;geno interno de <i>Z. marina,</i> permitiendo la intrusi&oacute;n de sulfuro (Pedersen <i>et al.</i> 2004). De este modo, las praderas de <i>Z. marina</i> en las lagunas costeras de poca profundidad son m&aacute;s vulnerables a la intrusi&oacute;n de sulfuro y a los posibles eventos de muerte. <i>Zostera marina</i> es la vegetaci&oacute;n acu&aacute;tica sumergida dominante en las lagunas costeras de Baja California (M&eacute;xico) donde se ha encontrado la presencia de anoxia y altos niveles de sulfuro. Si bien una reducci&oacute;n de las praderas de <i>Z. marina</i> en las lagunas costeras de Baja California se ha asociado a la disminuci&oacute;n de los niveles de luz (Cabello&#45;Pasini <i>et al.</i> 2002, 2003), tambi&eacute;n es posible que los altos niveles de sulfuro en el sedimento y agua de mar podr&iacute;an regular la disminuci&oacute;n en el metabolismo fotosint&eacute;tico y respiratorio de los pastos marinos en estas lagunas; sin embargo, esto a&uacute;n se desconoce. En consecuencia, el objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de sulfuro en la fotos&iacute;ntesis y la respiraci&oacute;n de la faner&oacute;gama marina <i>Z. marina.</i> Este estudio describe el mecanismo b&aacute;sico de la tolerancia fotosint&eacute;tica de <i>Z. marina</i> al sulfuro en una laguna costera fuertemente impactada por la acuicultura de osti&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Haces de <i>Z. marina</i> fueron recolectados en Bah&iacute;a San Quint&iacute;n (30&deg;30' N, 116&deg;01' O) y transportados en hieleras con agua de mar a las instalaciones del laboratorio en Ensenada, Baja California, M&eacute;xico. Los haces se trasplantaron en contenedores de 2 L y se colocaron en tanques de 1.2 m<sup>3</sup> con un flujo de agua de mar (aproximadamente 1 vol d<sup>&#45;1</sup>). La temperatura del agua fluctu&oacute; entre 19 y 2 &deg;C y la salinidad se mantuvo constante a 35 durante todo el periodo experimental. Los niveles de irradiancia y el fotoperiodo tambi&eacute;n se determinaron durante el estudio.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fotos&iacute;ntesis y respiraci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las tasas m&aacute;ximas de fotos&iacute;ntesis en las hojas de <i>Z. marina</i> fueron evaluadas mediante la evoluci&oacute;n de ox&iacute;geno determinada polarograficamente. Aproximadamente 0.1 g de tejido <i>(n</i> = 6) de la hoja #2 (hoja m&aacute;s joven = # 1) se incub&oacute; en agua de mar filtrada (0.45 |am, 2.1 &#956;M DIC) a 20 &deg;C en c&aacute;maras de 5 mL con doble pared conectadas a un termocirculador. Las tasas m&aacute;ximas de fotos&iacute;ntesis (P<sub>max</sub>) se determinaron despu&eacute;s de irradiar las muestra con luz para llegar a la saturaci&oacute;n fotosint&eacute;tica (300 mol quanta m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup>, E<sub>k</sub> = 96 &plusmn; 12 |amol quanta m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup>). L&aacute;mparas hal&oacute;genas de cuarzo (300 W) fueron utilizadas como fuente de luz.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo <i>(F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub>) del aparato fotosint&eacute;tico se determin&oacute; mediante la medici&oacute;n de la fluorescencia de la clorofila <i>in vivo</i> con un fluor&oacute;metro de pulso de amplitud modulada (PAM&#45;210, Walz, Effeltrich, Alemania). La fluorescencia intr&iacute;nseca <i>(F</i><sub>o</sub>) se determin&oacute; en la hoja #2 despu&eacute;s de mantener el tejido (aproximadamente 3 cm) en la oscuridad durante 1&#45;2 h al pH experimental. Un pulso de saturaci&oacute;n de luz act&iacute;nica (3000 &#956;mol fotones m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup>, 800 ms) se aplic&oacute; para obtener la fluorescencia m&aacute;xima <i>(F</i><sub>m</sub>) en las muestras aclimatadas a la obscuridad. La fluorescencia variable <i>(F</i><sub>v</sub>) se determin&oacute; como la diferencia entre <i>F</i><sub>m</sub> y <i>F</i><sub>o</sub>, y el desempe&ntilde;o &oacute;ptimo cu&aacute;ntico fue calculado como la raz&oacute;n de F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub> (Schreiber <i>et al.</i> 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Dise&ntilde;o experimental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto del pH y la concentraci&oacute;n de sulfuro en la raz&oacute;n fotosint&eacute;tica <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> se evalu&oacute; incubando tejido de la hoja de <i>Z. marina</i> en agua de mar filtrada con sulfuro (en un intervalo de 0 (control) a 1000 &#956;M) a pH 6 y pH 8 en oscuridad. El rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo fue evaluado como se describi&oacute; anteriormente cada 20 min por 135 min (n = 3). Despu&eacute;s del periodo de incubaci&oacute;n, el tejido foliar se lav&oacute; varias veces en agua de mar libre de sulfuro y en la oscuridad. Despu&eacute;s del tratamiento de sulfuro, se evalu&oacute; la recuperaci&oacute;n de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> incubando el tejido en agua de mar libre de sulfuro, en la oscuridad y al mismo pH del tratamiento durante 24 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la anoxia y de la concentraci&oacute;n de sulfuro (25 &#956;M de sulfuro) en la fotos&iacute;ntesis se evalu&oacute; mediante la incubaci&oacute;n de tejido de la parte media de la hoja #2 en agua de mar libre de ox&iacute;geno a pH 6 y pH 8 en la oscuridad. Como se demostr&oacute; polarograficamente en experimentos anteriores, el agua de mar libre de ox&iacute;geno se obtuvo por burbujeo con nitr&oacute;geno durante 10 min. El rendimiento &oacute;ptico cu&aacute;ntico en el tejido de la hoja <i>(n</i> = 7) se evalu&oacute; cada hora durante 3 h como se ha descrito anteriormente. La recuperaci&oacute;n de <i>F</i>v<i>/F</i>m despu&eacute;s del tratamiento de sulfuro se evalu&oacute; incubando el tejido en agua de mar libre de sulfuro al mismo pH del tratamiento en condiciones an&oacute;xicas y en la oscuridad. La recuperaci&oacute;n de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> se evalu&oacute; durante 24 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la concentraci&oacute;n de sulfuro sobre la evoluci&oacute;n m&aacute;xima de ox&iacute;geno <i>(P</i><sub>max</sub>) y la respiraci&oacute;n se evalu&oacute; mediante la incubaci&oacute;n de los haces de pasto marino <i>(n</i> = 5) en agua de mar filtrada con sulfuro (0 &#91;control&#93; a 1000 &#956;M) durante 24 h en agua de mar a pH 6 y pH 8. Los haces se incubaron a 20 &deg;C, con una irradiancia de 100 &#956;mol photon m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup> y con burbujeo ligero para mantener la circulaci&oacute;n del agua. Despu&eacute;s del periodo de incubaci&oacute;n, la fotos&iacute;ntesis m&aacute;xima y la respiraci&oacute;n se determinaron a partir de aproximadamente 0.1 g de tejido tomado de la mitad de la segunda hoja como se describi&oacute; anteriormente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diferencia en <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub>, <i>P</i><sub>max</sub> y la respiraci&oacute;n de las hojas en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de sulfuro fueron evaluados mediante un an&aacute;lisis de la varianza despu&eacute;s de la prueba de normalidad y homocedasticidad de los datos (Sokal y Rohlf 1995). Todas las comparaciones m&uacute;ltiples por pares se llevaron a cabo con la prueba de Tukey. Los niveles m&iacute;nimos de significancia se establecieron en <i>P</i> &lt; 0.05.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observaron diferencias significativas en <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> cuando los haces se incubaron a diferentes concentraciones de sulfato y entre los tratamientos de pH (<a href="#f1">fig. 1</a>). En haces incubados a pH 6, el rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo se redujo linealmente <i>(P</i> &lt; 0.05) a valores inferiores a 0.3 en 90 min, y cuando los haces se incubaron a concentraciones de 1000 &#956;M de sulfuro, los valores disminuyeron (P &lt; 0.05) a 0.196 en 15 min. Los haces incubados con sulfuro a pH 6 no mostraron ninguna recuperaci&oacute;n despu&eacute;s de incubarse durante 24 h en agua de mar libre de sulfuro. Por el contrario, los haces incubados a pH 8 y 50 &#956;M de sulfuro no mostraron una disminuci&oacute;n significativa en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub><i>(P</i> &gt; 0.05). A pH 8, se produjo una disminuci&oacute;n del 25% <i>(P</i> &lt; 0.05) en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> cuando los haces se incubaron a concentraciones mayores que 50 &#956;M de sulfuro. No se present&oacute; recuperaci&oacute;n de los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> cuando los haces se incubaron a pH 8 y a concentraciones de sulfuro de 250 mM o m&aacute;s.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n4/a4f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los haces que se incubaron a pH 6 y 10 &#956;M de sulfuro no mostraron una disminuci&oacute;n en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> (P &gt; 0.05) con respecto al control; sin embargo, se present&oacute; una reducci&oacute;n del 22% <i>(P</i> &lt; 0.05) en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub>, en relaci&oacute;n con los controles, cuando los haces se incubaron a 25 &#956;M (<a href="#f2">fig. 2</a>). No hubo recuperaci&oacute;n en los valores de F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub> despu&eacute;s de que los haces fueron incubados durante 24 h en agua de mar libre de sulfuro. En contraste con los haces incubados a pH 6, los haces incubados a pH 8 no mostraron una disminuci&oacute;n significativa (P &gt; 0.05) en los valores de F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub> relativo a los observados en los controles cuando se incubaron a 10 &oacute; 25 &#956;M de sulfuro.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n4/a4f2.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores del rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo en los haces de <i>Z. marina</i> incubados a 25 &#956;M de sulfuro vari&oacute; con respecto a la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno en el medio (<a href="#f3">fig. 3</a>). A pH 6 y 8, hubo una disminuci&oacute;n significativa <i>(P</i> &lt; 0.05) en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> en las hojas de <i>Z. marina</i> despu&eacute;s de que los haces se incubaron en condiciones de anoxia a una concentraci&oacute;n de 25 &#956;M de sulfuro. En contraste, los haces incubados en condiciones &oacute;xicas (control) no mostraron ninguna disminuci&oacute;n en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub>. Algunos valores del rendimiento cu&aacute;ntico &oacute;ptimo no se recuperaron en los haces que se incubaron durante 20 h a un pH de 6. En contraste, hubo una recuperaci&oacute;n del 60% en los valores de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> cuando los haces se incubaron a pH 8.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n4/a4f3.jpg"></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La m&aacute;xima evoluci&oacute;n de ox&iacute;geno a luz de saturaci&oacute;n <i>(P<sub>max</sub></i>) y la respiraci&oacute;n en las hojas de <i>Z. marina</i> mostraron una respuesta diferencial como resultado del pH y la concentraci&oacute;n de sulfuro del agua de mar (<a href="#f4">fig. 4</a>). A un pH de 6, los valores de <i>P<sub>max</sub></i> en las hojas disminuyeron de tres veces <i>(P</i> &lt; 0.05) durante el aumento en la concentraci&oacute;n de sulfuro de 0 a 250 &#956;M. Por el contrario, a un pH de 8, los valores de P<sub>max</sub> se mantuvieron constantes (P &gt; 0.05) en todas las concentraciones de sulfuro. La respiraci&oacute;n en las hojas de <i>Z. marina</i> no fluctu&oacute; (P &gt; 0.05) como funci&oacute;n del aumento en las concentraciones de sulfuro o en funci&oacute;n del pH del agua de mar.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n4/a4f4.jpg"></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la alta concentraci&oacute;n de sulfuro del agua de poro en el crecimiento y supervivencia de algas marinas ha sido documentado en numerosos de estudios (Carlson <i>et al.</i> 1994, Borum <i>et al.</i> 2005, Calleja <i>et al.</i> 2007). Las praderas marinas por lo general crecen en ambientes con alta reducci&oacute;n en los sedimentos. Bajo condiciones de anoxia, sulfuro de hidr&oacute;geno (&aacute;cido sulfh&iacute;drico) puede acumularse como un producto final de la respiraci&oacute;n anaerobia a niveles que pueden ser t&oacute;xicos para hal&oacute;fitas. En este estudio demostramos que <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> en <i>Z. marina</i> se vi&oacute; afectado negativamente por las altas concentraciones sulf&uacute;ricas y los bajos niveles de ox&iacute;geno. Adem&aacute;s, se demuestra que el pH del agua de mar desempe&ntilde;a un papel cr&iacute;tico que controla la especiaci&oacute;n de los sulfuros y que finalmente impacta el metabolismo foto&#45;sint&eacute;tico y respiratorio en las hojas de <i>Z. marina.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado que el sulfuro es fitot&oacute;xico y en consecuencia puede afectar los procesos metab&oacute;licos que pueden reducir el crecimiento y la supervivencia de aut&oacute;trofos marinos. Las fuentes de sulfuro est&aacute;n determinas por el pH del agua de mar, donde la mayor&iacute;a se encuentra como H<sub>2</sub>S (pK1 = 6.9) y HS (pK2 = 11.9). Esto indica que la relaci&oacute;n de H<sub>2</sub>S: HS es de aproximadamente 50% a pH 7; sin embargo, a pH 6 los niveles de sulfuro se incrementan a aproximadamente 90%, mientras que a pH 8 se reduce a aproximadamente 10%. El pH del agua de mar en las lagunas costeras de Baja California oscila entre 7 y 8 (&Aacute;lvarez&#45;Borrego <i>et al.</i> 1975); sin embargo, los niveles de pH podr&iacute;an caer por debajo de 7 en la interfaz sedimento&#45;agua por la liberaci&oacute;n del agua de poro fuera del sedimento. Bajo estas circunstancias, la concentraci&oacute;n de sulfuro puede fluctuar ampliamente y afectar la fisiolog&iacute;a de las plantas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las praderas marinas suelen mostrar valores de <i>F</i><sub>m</sub><i>/F</i><sub>m</sub> de alrededor de 0.7 (Durako y Kunzelman 2002), y una reducci&oacute;n de estos valores suele indicar alg&uacute;n tipo de estr&eacute;s foto&#45;qu&iacute;mico. En este estudio, los haces de <i>Z. marina</i> que se incubaron a niveles de sulfuro por encima de 25 y pH 6 mostraron una reducci&oacute;n en los valores de <i>F</i>v<i>/F</i>m. A este pH la especie dominante es el sulfuro y probablemente es responsable de reducir el potencial fotosint&eacute;tico. La fotos&iacute;ntesis oxig&eacute;nica se basa en el flujo de electrones a trav&eacute;s de la luz mediado por el fotosistema II (PSII) y PSI. La repoblaci&oacute;n de los electrones en los centros de reacci&oacute;n PSII se reduce en presencia de sulfuro, que finalmente inhibe la fotos&iacute;ntesis oxig&eacute;nica en el sitio donante de PSII (Miller y Bebout 2004). Estudios anteriores tambi&eacute;n han encontrado una reducci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> en <i>Thalassia testudinum</i> cuando se incubaron en presencia de sulfuro (Goodman <i>et al.</i> 1995, Koch <i>et al.</i> 2007). El aumento en las temperaturas y los niveles bajos de ox&iacute;geno en la columna de agua parecen agravar los efectos de sulfuro sobre el metabolismo fotosint&eacute;tico. Por ejemplo, los valores de <i>P</i>max se redujeron 40% despu&eacute;s de que los haces de pasto marino se incubaron en concentraciones de sulfuro de entre 50 y 100 |j.M (Holmer y Bondgaard 2001). El mismo tejido mostr&oacute; una reducci&oacute;n del 80% cuando la concentraci&oacute;n de sulfuro se present&oacute; en un intervalo de 100 a 1000 &#956;M en condiciones de hipoxia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La vida media de la reacci&oacute;n espont&aacute;nea entre el sulfuro y el ox&iacute;geno es del orden de 1 h (Almgren y Hagstr&oacute;m 1974). As&iacute;, aunque el tejido se enjuag&oacute; varias veces despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n en sulfuro, la mayor captaci&oacute;n de ox&iacute;geno observado en el experimento a pH 8 podr&iacute;a estar relacionada con los procesos de oxidaci&oacute;n de sulfuro que tienen lugar dentro de las hojas. A pH 6, el consumo de ox&iacute;geno se redujo en todos los tratamientos, incluyendo el control, lo que indica un factor distinto al sulfuro que afect&oacute; las tasas de consumo de ox&iacute;geno. La raz&oacute;n por la cual el incremento en el consumo de ox&iacute;geno que se present&oacute; en el tratamiento a pH 8 no se observ&oacute; en el de pH 6 podr&iacute;a ser la tasa inicial espec&iacute;fica de la oxidaci&oacute;n de los sulfuros, la cual es dependiente del pH. En soluciones &aacute;cidas (pH &lt; 6) la tasa es muy lenta, lo que aumenta a un m&aacute;ximo en torno a un pH 8 (Chen y Morris 1972).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nuestros experimentos muestran un efecto perjudicial del sulfuro en la capacidad fotosint&eacute;tica de las hojas de <i>Z. marina.</i> Noventa minutos de exposici&oacute;n a concentraciones de sulfuro de 250 y 1000 &#956;M (a pH 8) redujo la raz&oacute;n F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub> en un 32% y 35%, respectivamente. Cuando las incubaciones a las mismas concentraciones de sulfuro se ensayaron a un pH 6, la reducci&oacute;n de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> fue mayor y m&aacute;s r&aacute;pida, ya que la proporci&oacute;n de sulfuro como H<sub>2</sub>S total es nueve veces mayor. La reducci&oacute;n en los valores de <i>P</i>max como resultado de altos niveles de sulfuro, finalmente se refleja en una reducci&oacute;n de las tasas de crecimiento de los haces.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Zostera marina</i> es el aut&oacute;trofo m&aacute;s importante en la bah&iacute;a de San Quint&iacute;n, donde cubre aproximadamente el 40% de la superficie de la bah&iacute;a (Ward <i>et al.</i> 2004). Por otro lado, el cultivo de moluscos es una de las actividades m&aacute;s importantes en la bah&iacute;a de San Quint&iacute;n, donde se cultivan los ostiones con los sistemas de bastidores (Aguirre&#45;Mu&ntilde;oz <i>et al.</i> 2001). Praderas de pastos marinos por debajo de estos bastidores se han reducido significativamente (obs. pers.) y se ha atribuido a una disminuci&oacute;n de la luz debido a la sombra de los bastidores o un aumento de materia org&aacute;nica producida por las heces de ostras. Por otro lado, el aumento de materia org&aacute;nica directamente debajo de bastidores de ostras es responsable del aumento en la concentraci&oacute;n de sulfuro debido a la reducci&oacute;n de la materia org&aacute;nica (Ito e Imai 1955). As&iacute;, es posible que la disminuci&oacute;n de <i>Z. marina</i> bajo los bastidores podr&iacute;a ser el resultado de niveles crecientes de sulfuro que a su vez disminuyen la fotos&iacute;ntesis de los pastos marinos, y esto eventualmente resulta en su descenso.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de este estudio muestran por primera vez c&oacute;mo la capacidad fotosint&eacute;tica no se recupera a los valores iniciales de <i>F</i><sub>v</sub><i>/F</i><sub>m</sub> una vez que las condiciones libres de sulfuro han sido restablecidas. Noventa minutos de exposici&oacute;n a una concentraci&oacute;n de sulfuro de 250 &#956;M redujo en un 32% la capacidad fotosint&eacute;tica de pastos marinos a un pH 8, cuando el H<sub>2</sub>S es un 10% de la concentraci&oacute;n del sulfuro. Concentraciones de hasta 325 &#956;M se han medido en el interior del tejido meristem&aacute;tico de pastos marinos (Pedersen <i>et al.</i> 2004). Este hallazgo pone de relieve los posibles efectos a largo plazo de eventos de intrusi&oacute;n de sulfuro en <i>Z. marina,</i> eventos en que, por diferentes combinaciones de factores de estr&eacute;s, el sulfuro de hidr&oacute;geno llega al tejido fotosint&eacute;tico y puede causar da&ntilde;o permanente a la actividad fotosint&eacute;tica de la planta. Los bajos niveles de fotos&iacute;ntesis podr&iacute;an reducir la capacidad de oxidaci&oacute;n de la planta, por lo que es propensa a nuevos eventos de intrusi&oacute;n de sulfuro. Esta hip&oacute;tesis est&aacute; de acuerdo con las observaciones que sugieren que el sulfuro juega un papel en los eventos de mortandad de T. <i>testudinum</i> (Borum <i>et al.</i> 2005, Koch <i>et al.</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La primera autora fue apoyada en M&eacute;xico por una beca Erasmus Mundus.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>References</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aguirre&#45;Mu&ntilde;oz A, Buddemeir R, Camacho&#45;Ibar VF, Carriquiry JD, Ibarra Obando SE, Massey B, Smith S, Wulff F. 2001. Sustainability of coastal resource use in San Quint&iacute;n, Mexico. Amibo 30: 142&#45;149.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946591&pid=S0185-3880201200050000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allam AI, Hollis JP. 1972. Sulfide inhibition of oxidases in riceroots. Phytopathology 62: 634&#45;639.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946593&pid=S0185-3880201200050000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Almgren T, Hagstr&oacute;m I. 1974. The oxidation rate of sulphide in sea water. Water Res. 8: 395&#45;400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946595&pid=S0185-3880201200050000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;lvarez&#45;Borrego S, Ballesteros&#45;Grijalva G, Chee&#45;Barrag&aacute;n A. 1975. Estudio de algunas variables fisicoqu&iacute;micas superficiales en Bah&iacute;a San Quint&iacute;n, en verano, oto&ntilde;o e invierno. Cienc. Mar. 2: 1&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946597&pid=S0185-3880201200050000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bagarinao T. 1992. Sulfide as an environmental factor and toxicant: Tolerance and adaptation in aquatic organisms. Aquat. Toxicol. 24: 21&#45;62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946599&pid=S0185-3880201200050000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Borum J, Pedersen O, Greve TM, Frankovich TA, Zieman JC, Fourqurean JW, Madden CJ. 2005. The potential role of plant oxygen and sulphide dynamics in die&#45;off events of the tropical seagrass, <i>Thalassia testudinum.</i> J. Ecol. 93:148&#45;158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946601&pid=S0185-3880201200050000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabello&#45;Pasini A, Lara&#45;Turrent C, Zimmerman RC. 2002. Effect of storms on photosynthesis, carbohydrate content and survival of eelgrass populations in a coastal lagoon and the adjacent open ocean. Aquat. Bot. 74: 149&#45;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946603&pid=S0185-3880201200050000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabello&#45;Pasini A, Mu&ntilde;iz&#45;Salazar R, Ward DH. 2003. Annual variations of biomass and photosynthesis in <i>Zostera marina</i> L. along the Pacific coast of Baja California, Mexico. Aquat. Bot. 76: 31&#45;47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946605&pid=S0185-3880201200050000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Calleja ML, Marb&aacute; N, Duarte CM. 2007. The relationship between seagrass <i>(Posidonia oceanica)</i> decline and sulfide porewater concentration in carbonate sediments. Estuar. Coast. Shelf Sci. 73: 583&#45;588.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946607&pid=S0185-3880201200050000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Canfield DE, Thamdrup B, Hansen JW. 1993. The anaerobic degradation of organic matter in Danish coastal sediments: Iron reduction, manganese reduction, and sulfate reduction. Geochim. Cosmochim. Acta 57: 3867&#45;3883.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946609&pid=S0185-3880201200050000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carlson PR, Yarbro L, Barber T. 1994. Relationship of sediment sulfide to mortality of <i>Thalassia testudinum</i> in Florida Bay. Bull. Mar. Sci. 54: 733&#45;746.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946611&pid=S0185-3880201200050000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen KY, Morris J. 1972. Kinetics of oxidation of aqueous sulfide by O<sub>2</sub>. Environ. Sci. Technol. 6: 529&#45;537.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946613&pid=S0185-3880201200050000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durako M, Kunzelman J. 2002. Photosynthetic characteristics of <i>Thalassia testudinum</i> measured <i>in situ</i> by pulse&#45;amplitude modulated (PAM) fluorometry: Methodological and scale&#45;based considerations. Aquat. Bot. 73: 173&#45;185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946615&pid=S0185-3880201200050000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Erskine JM, Koch M. 2000. Sulfide effects on <i>Thalassia testudinum</i> carbon balance and adenylate energy charge. Aquat. Bot. 67: 275&#45;285.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946617&pid=S0185-3880201200050000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fenchel T, Finlay B. 1995. Ecology and Evolution in Anoxic Worlds. Oxford University Press, Oxford, UK, 288pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946619&pid=S0185-3880201200050000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goodman JL, Moore K, Dennison W. 1995. Photosynthetic responses of eelgrass <i>(Zostera marina</i> L.) to light and sediment sulphide in a shallow barrier island lagoon. Aquat. Bot. 50: 37&#45;47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946621&pid=S0185-3880201200050000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Holmer M, Bondgaard E. 2001. Photosynthetic and growth response of eelgrass to low oxygen and high sulfide concentrations during hypoxic events. Aquat. Bot. 70: 29&#45;38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946623&pid=S0185-3880201200050000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ito S, Imai T. 1955. Ecology of oyster bed. I. On the decline of productivity due to repeated culture. Tohoku J. Agric. Res. 5: 251&#45;268.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946625&pid=S0185-3880201200050000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jorgensen BB, Revsbech NP. 1983. Colorless sulfur bacteria, <i>Beggiatoa</i> spp. and <i>Thiovulum</i> spp., in O<sub>2</sub> and H<sub>2</sub>S microgradients. Appl. Environ. Microbiol. 45: 1261&#45;1270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946627&pid=S0185-3880201200050000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koch MS, Mendelssohn IA. 1989. Sulfide as a soil phytotoxin: Differential responses in two marsh species. J. Ecol. 77: 565&#45;578.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946629&pid=S0185-3880201200050000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koch MS, Mendelssohn I, McKee K. 1990. Mechanism for the hydrogen sulfide&#45;induced growth limitation in wetland macrophytes. Limnol. Oceanogr. 35: 399&#45;408.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946631&pid=S0185-3880201200050000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koch MS, Schopmeyer SA, Kyhn&#45;Hansen C, Madden CJ. 2007. Synergistic effects of high temperature and sulfide on tropical seagrass. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 341: 91&#45;101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946633&pid=S0185-3880201200050000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Miller SR, Bebout BM. 2004. Variation in sulfide tolerance of photosystem II in phylogenetically diverse cyanobacteria from sulfidic habitats. Appl. Environ. Microbiol. 70: 736&#45;744.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946635&pid=S0185-3880201200050000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedersen O, Binzer T, Borum J. 2004. Sulphide intrusion in eelgrass <i>(Zostera marina</i> L.). Plant Cell Environ. 27: 595&#45;602.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946637&pid=S0185-3880201200050000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schreiber U, Bilger W, Neubauer C. 1994. Chlorophyll fluorescence as a nonintrusive indicator for rapid assessment of in vivo photosynthesis. In: Schulze E, Caldwell M (eds.), Ecophysiology of Photosynthesis. Springer, Berlin, pp. 49&#45;70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946639&pid=S0185-3880201200050000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sokal RR, Rohlf FJ. 1995. Biometry. WH Freeman, New York, 887 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946641&pid=S0185-3880201200050000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ward DH, Tibbitts T, Morton A, Carrera&#45;Gonz&aacute;lez E, Kempka R. 2004. Use of airborne remote sensing techniques to assess seagrass distribution in San Quint&iacute;n Bay, Baja California, Mexico. Cienc. Mar. 30: 47&#45;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946643&pid=S0185-3880201200050000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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