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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Metales pesados y biomarcadores relacionados en Perna viridis (Bivalvia: Mytilidae) recolectado en las costas del estado Sucre, Venezuela]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Heavy metals and related biomarkers in Perna viridis (Bivalvia: Mytilidae) collected on the coast of Sucre State, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The green mussel Perna viridis has been used as a sentinel organism in marine and coastal ecosystem health assessments. In this study the degree of contamination at three sites on the coast of Sucre State (Venezuela) was analyzed using molecular, cellular, and immunological biomarkers in P. viridis. Specimens were collected from Chacopata-Guayacán (CG, Araya Peninsula), Río Caribe (RC, Paria Peninsula), and San Antonio del Golfo (SAG, southern Gulf of Cariaco). We determined the concentration of heavy metals in the soft tissue of each individual, as well as the total number, viability, phagocytosis, and stability of the lysosomal membranes in hemocytes. The oxidative damage to lipids (TBARS), sulfhydryl group levels, total proteins, and lysozyme activity were quantified in the digestive gland. The results revealed high concentrations of Zn, Cr, and Cd in the organisms from CG. The total hemolymph cell count was lower in organisms from RC and CG. A slight increase in the number of phagocytes was observed in the organisms from RC and CG relative to those from SAG. The highest percentage of hemocytes with destabilized lysosomal membranes was recorded for the organisms from CG, followed by RC, indicating a weak association with the content of peroxidized lipids (TBARS); these values could be associated with the body loads of heavy metals. According to the results, the mussels from CG show slight signs of contamination by heavy metals, likely originated by human activities. The use of biological markers to estimate the effect of heavy metals on sentinel organisms is recommended.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Metales pesados y biomarcadores relacionados en <i>Perna viridis</i> (Bivalvia: Mytilidae) recolectado en las costas del estado Sucre, Venezuela</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Heavy metals and related biomarkers in <i>Perna viridis</i> (Bivalvia: Mytilidae) collected on the coast of Sucre State, Venezuela</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>E Zapata&#45;V&iacute;venes<sup>1</sup>*, L Rojas de Astudillo<sup>2</sup>, G S&aacute;nchez<sup>3</sup>, M Barreto<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Departamento de Biolog&iacute;a, Escuela de Ciencias, N&uacute;cleo de Sucre, Universidad de Oriente, Cerro Colorado, Cuman&aacute;, Venezuela.</i></font> <font face="verdana" size="2"><i>*Corresponding author. E&#45;mail:</i> <a href="mailto:edzapata2002@yahoo.com">edzapata2002@yahoo.com</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Qu&iacute;mica, Escuela de Ciencias, N&uacute;cleo de Sucre, Universidad de Oriente, Venezuela.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Postgrado en Biolog&iacute;a Aplicada, Escuela de Ciencias, N&uacute;cleo de Sucre, Universidad de Oriente, Venezuela.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Received August 2011,    <br> 	Received in revisedform April 2012,    <br> 	Accepted June 2012.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mejill&oacute;n verde <i>Perna viridis</i> ha sido usado como organismo biosensor de la salud de ecosistemas marino&#45;costeros. Por tal motivo se procedi&oacute; a evaluar el grado de contaminaci&oacute;n de tres localidades costeras del estado Sucre (Venezuela) determinando biomarcadores a nivel molecular, celular e inmunol&oacute;gico en <i>P. viridis.</i> Los ejemplares fueron recolectados en las localidades de Chacopata&#45;Guayac&aacute;n (CG, pen&iacute;nsula de Araya), R&iacute;o Caribe (RC, pen&iacute;nsula de Paria) y San Antonio del Golfo (SAG, regi&oacute;n sur del golfo de Cariaco). Se determin&oacute; la carga de metales pesados en el tejido blando de cada individuo. Adem&aacute;s, se valor&oacute; el n&uacute;mero total, la viabilidad, la fagocitosis y la estabilidad de las membranas lisosomales en los hemocitos. El da&ntilde;o oxidativo de l&iacute;pidos (TBARS), los niveles de grupos sulfh&iacute;drilos, las prote&iacute;nas totales y la actividad de la lisozima fueron cuantificados en la gl&aacute;ndula digestiva. Los resultados evidencian altas concentraciones de Zn, Cr y Cd en organismos provenientes de CG. El n&uacute;mero de c&eacute;lulas totales en hemolinfa fue menor en los organismos de RC y CG. En estas &uacute;ltimas zonas los mejillones presentaron un ligero incremento en n&uacute;mero de fagocitos con respecto a SAG. El mayor porcentaje de hemocitos con membranas lisosomales desestabilizadas fue encontrado en los organismos de CG, seguido de RC, evidenci&aacute;ndose una d&eacute;bil asociaci&oacute;n con el contenido de l&iacute;pidos peroxidados (TBARS); estos valores podr&iacute;an tener correspondencia con la acumulaci&oacute;n corporal de metales pesados. Los resultados revelan que los mejillones de CG muestran ligeros indicios de contaminaci&oacute;n por metales pesados, originados presumiblemente por actividades antropog&eacute;nicas. Esta investigaci&oacute;n sugiere la utilidad de marcadores biol&oacute;gicos destinados a estimar el impacto de metales pesados en organismos centinelas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> defensas antioxidantes, hemocitos, lisozimas, metales pesados, <i>Perna viridis.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The green mussel <i>Perna viridis</i> has been used as a sentinel organism in marine and coastal ecosystem health assessments. In this study the degree of contamination at three sites on the coast of Sucre State (Venezuela) was analyzed using molecular, cellular, and immunological biomarkers in <i>P. viridis.</i> Specimens were collected from Chacopata&#45;Guayac&aacute;n (CG, Araya Peninsula), R&iacute;o Caribe (RC, Paria Peninsula), and San Antonio del Golfo (SAG, southern Gulf of Cariaco). We determined the concentration of heavy metals in the soft tissue of each individual, as well as the total number, viability, phagocytosis, and stability of the lysosomal membranes in hemocytes. The oxidative damage to lipids (TBARS), sulfhydryl group levels, total proteins, and lysozyme activity were quantified in the digestive gland. The results revealed high concentrations of Zn, Cr, and Cd in the organisms from CG. The total hemolymph cell count was lower in organisms from RC and CG. A slight increase in the number of phagocytes was observed in the organisms from RC and CG relative to those from SAG. The highest percentage of hemocytes with destabilized lysosomal membranes was recorded for the organisms from CG, followed by RC, indicating a weak association with the content of peroxidized lipids (TBARS); these values could be associated with the body loads of heavy metals. According to the results, the mussels from CG show slight signs of contamination by heavy metals, likely originated by human activities. The use of biological markers to estimate the effect of heavy metals on sentinel organisms is recommended.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> antioxidant defenses, hemocytes, lysozymes, heavy metals, <i>Perna viridis.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles de metales pesados en algunas zonas costeras del estado Sucre (Venezuela) han incrementado recientemente a causa antropog&eacute;nica (Mart&iacute;nez 2002). Las posibles fuentes son los efluentes urbanos e industriales, inclusive las descargas l&iacute;mnicas que transportan dichos metales desde sitios de intensa actividad industrial y minera hasta los sedimentos de ecosistemas locales. Para evaluar el estado de salud de estas zonas, se ha seleccionado al mejill&oacute;n verde <i>Perna viridis</i> como especie biosensora para estimar el nivel de contaminaci&oacute;n. Este mit&iacute;lido posee marcadores biol&oacute;gicos sensibles que son modulados bajo exposici&oacute;n subletal a metales pesados (Zapata&#45;V&iacute;venes y Nusetti 2007, Nusetti <i>et al.</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las respuestas inmunol&oacute;gicas, moleculares y celulares en bivalvos constituyen biomarcadores importantes en las evaluaciones de efectos inducidos por la exposici&oacute;n a contaminantes qu&iacute;micos. El ingreso y posterior metabolismo de tales xenobi&oacute;ticos puede alterar las funciones y el balance del sistema inmune, resultando en efectos perjudiciales, que incluyen inmunosupresi&oacute;n, proliferaci&oacute;n anormal celular y alteraci&oacute;n de los mecanismos de defensa del hospedero contra pat&oacute;genos (Cheng 1988, Cheung <i>et al.</i> 2001). El sistema de defensa inmunol&oacute;gico en bivalvos est&aacute; constituido por hemocitos, mol&eacute;culas bacteriol&iacute;ticas y degradaci&oacute;n a nivel lisosomal (Sminia 1980).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De igual forma, los efectos de los metales pesados a nivel celular pueden ser detectados por alteraciones de la estabilidad de membranas lisosomales (Lowe 1995). La determinaci&oacute;n de la integridad de la membrana lisosomal indica posibles condiciones delet&eacute;reas ante cambios dr&aacute;sticos e irreversibles que ocurren en el ambiente y puede ser una alternativa en la toma de decisiones preventivas. Este par&aacute;metro de da&ntilde;o celular puede estimarse mediante la capacidad de retenci&oacute;n de colorantes, tal como el rojo neutro, lo cual puede indicar una relaci&oacute;n proporcional entre la reducci&oacute;n del tiempo de retenci&oacute;n del colorante en c&eacute;lulas de organismos que habitan zonas impactadas por xenobi&oacute;ticos (Fang <i>et al.</i> 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las mol&eacute;culas antioxidantes y los da&ntilde;os oxidativos a nivel de l&iacute;pidos de membrana han sido utilizados frecuentemente como biomarcadores moleculares de estr&eacute;s qu&iacute;mico, especialmente por agentes pro&#45;oxidantes como algunos metales pesados. El uso de respuestas a diferentes niveles de organizaci&oacute;n biol&oacute;gica, desde el nivel molecular hasta el celular, origina informaci&oacute;n relevante sobre las condiciones del organismo en estudio y provee los datos necesarios para el entendimiento del modo de acci&oacute;n, intoxicaci&oacute;n y depuraci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mejill&oacute;n verde <i>P. viridis</i> es una especie abundante en las costas del estado Sucre, la cual habita en bancos naturales, particularmente en las zonas de Chacopata&#45;Guayac&aacute;n y R&iacute;o Caribe. Adicionalmente, un sector interesado en el cultivo suspendido de la especie ha iniciado peque&ntilde;os sembrados experimentales en la franja costera sur del golfo de Cariaco, especialmente en la localidad de San Antonio del Golfo. En tal motivo, en esta investigaci&oacute;n se contrastan diversos biomarcadores, que incluyen respuestas inmunol&oacute;gicas, bioqu&iacute;micas y celulares, en <i>P. viridis</i> recolectado en las costas del estado Sucre con el fin de establecer la salud de los organismos y su relaci&oacute;n con la carga corporal de metales pesados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;rea de estudio</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ejemplares del mejill&oacute;n verde <i>P. viridis</i> fueron recolectados en tres localidades costeras del estado Sucre, situadas al noreste de Venezuela (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a4f1.jpg" target="_blank">fig. 1</a>): Chacopata&#45;Guayac&aacute;n (CG, 10&deg;43'25" N, 64&deg;52'6" O), en la regi&oacute;n norte de la pen&iacute;nsula de Araya; R&iacute;o Caribe (RC, 10&deg;42'34" N, 63&deg;06'54" O), al noreste de la pen&iacute;nsula de Paria; y San Antonio del Golfo (SAG, 10&deg;27'5" N, 63&deg;46'23" O), en el sureste del Golfo de Cariaco. Las zonas CG y RC constituyen bancos naturales extensamente explotables de la especie, y SAG es un &aacute;rea de cultivo de mejillones de baja escala.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La recolecci&oacute;n de los bivalvos se realiz&oacute; manualmente mediante buceo a profundidades de 1 a 2 m. En cada estaci&oacute;n de muestreo, se seleccionaron entre 60 y 80 organismos sexualmente maduros (en estadio II, no desovados) (Sreenivasan <i>et al.</i> 1989), sin distinci&oacute;n de sexo y con tallas entre 7.5 y 9.2 cm. Los animales fueron recolectados entre febrero y marzo en condiciones ambientales homog&eacute;neas: temperatura, 26.50&#45;27.01 &deg;C; salinidad, 36.0&#45;37.0; y pH, 7.55&#45;8.10. Antes de los an&aacute;lisis, los ejemplares fueron trasportados al laboratorio y mantenidos durante tres d&iacute;as en acuarios bajo condiciones controladas (temperatura, 25 &#177; 2&deg;C; salinidad, 36 &#177; 0.1; pH, 7.7 &#177; 0.2; oxigenaci&oacute;n, 90&#45;95%) y alimentados <i>ad libitum</i> con la microalga <i>Chaetoceros gracilis.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de metales pesados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de metales pesados se realiz&oacute; con un espectrofot&oacute;metro de emisi&oacute;n &oacute;ptica con fuente de plasma de inducci&oacute;n (ICP&#45;OES, por sus siglas en ingl&eacute;s), marca Perkin Elmer modelo 5300. Las muestras de tejido blando fueron deshidratadas a 60 &deg;C durante 3 d&iacute;as, pesadas y predigeridas en 10 mL de &aacute;cido n&iacute;trico concentrado a temperatura ambiente durante 24 h. Seguidamente, las muestras fueron digeridas a 60 &deg;C por 4 h y luego a 80 &deg;C por 2 h. Se dejaron enfriar y se adicionaron 10 mL de agua desionizada; la soluci&oacute;n se filtr&oacute; a trav&eacute;s de papel Whatman No. 42 y se complet&oacute; con agua desionizada hasta un volumen final de 25 mL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de los metales con el ICP&#45;OES, las siguientes condiciones fueron utilizadas: flujo de gas exterior de arg&oacute;n de 15 L min<sup>&#45;1</sup>, flujo de gas al nebulizador de 0.5 L min<sup>&#45;1</sup>, flujo de gas auxiliar de 0.2 L min<sup>&#45;1</sup>, radio frecuencia de 1300 W y flujo de la bomba perist&aacute;ltica de 1.5 L min<sup>&#45;1</sup>. Cada metal se midi&oacute; a una longitud de onda caracter&iacute;stica y sus l&iacute;mites de detecci&oacute;n se determinaron por medio de una curva de calibraci&oacute;n (Meier y Z&uuml;nd 1993). Para cada metal, la longitud de onda (nm) y el l&iacute;mite de detecci&oacute;n (&#956;g g<sup>&#45;1</sup>) fueron, respectivamente, 206,200 y 0.10 para Zn; 327,393 y 0.05 para Cu; 228,802 y 0.04 para Cd; 267,716 y 0.05 para Cr; 238,204 y 0.08 para Fe; y 220,353 y 0.01 para Pb.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de la hemolinfa</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La hemolinfa fue extra&iacute;da por punci&oacute;n directa al pie y seno venoso con una jeringa hipod&eacute;rmica de 1 mL de capacidad con aguja calibre 20 que conten&iacute;a 0.5 mL agua de mar est&eacute;ril, filtrada a miliporo (45 &#956;m). El volumen de hemolinfa extra&iacute;do (&#8764;0.5 mL) fue mantenido a 10 &deg;C. Luego se centrifug&oacute; a 900 <i>g</i> durante 10 min a 10 &deg;C. Se tom&oacute; la fracci&oacute;n precipitada y finalmente se resuspendi&oacute; en 1 mL de agua de mar con &aacute;cido etilendiaminotetraac&eacute;tico (EDTA, 4 &#956;mol L<sup>&#45;1</sup>). Esta fracci&oacute;n fue usada para determinar los par&aacute;metros citol&oacute;gicos y las funciones inmunol&oacute;gicas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Viabilidad celular y n&uacute;mero total de hemocitos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos par&aacute;metros fueron determinados por tinci&oacute;n diferencial con eosina amarilla (0.1%) en agua de mar filtrada y est&eacute;ril. Se tomaron 100 &#956;L de la suspensi&oacute;n final de hemocitos y se mezclaron con un volumen igual del colorante; se resuspendi&oacute; la mezcla y luego se tom&oacute; una al&iacute;cuota de 10 &#956;L para hacer el conteo celular en un hemocit&oacute;metro por microscop&iacute;a de luz (magnificaci&oacute;n de 400 x) (Goven <i>et al.</i> 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fagocitosis</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero total de hemocitos se ajust&oacute; a &#8764;2 x 10<sup>6</sup> c&eacute;lulas mL<sup>&#45;1</sup>. Se emple&oacute; la levadura <i>Saccharomyces cerevisiae,</i> inactivada por calor (5 mg mL<sup>&#45;1</sup> en agua de mar est&eacute;ril), como ant&iacute;geno (Zapata&#45;V&iacute;venes <i>et al.</i> 2005). Se tomaron 200 &#956;L de las levaduras y se diluyeron en 3 mL de agua de mar filtrada. Se mezclaron suavemente 100 &#956;L de la suspensi&oacute;n de hemocitos con un volumen igual de la suspensi&oacute;n final de levaduras y luego se centrifugaron a 1000 <i>g</i> por 5 min. Las muestras centrifugadas se incubaron por un periodo de 24 h a 8 &deg;C. Al precipitado celular se le a&ntilde;adieron 100 &#956;L de azul de tripano (0.4% m/v). Una al&iacute;cuota de 10 &#956;L se coloc&oacute; en un hemocit&oacute;metro para conteo en microscopio de luz (400 x de magnificaci&oacute;n).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Lisozimas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El protocolo empleado para evaluar la actividad de la lisozima en la gl&aacute;ndula digestiva de <i>P. viridis</i> fue basado en la lisis de la pared celular de <i>Micrococcus lysodeikticus,</i> empleando lisoplacas de agarosa (Goven <i>et al.</i> 1994). El gel se prepar&oacute; con 67 mmol L<sup>&#45;1</sup> de una soluci&oacute;n amortiguadora de fosfato de potasio (KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>, pH 6.0), agarosa (tipo II) al 1%, cloruro de sodio (NaCl) al 0.1% y 0.4 mg mL<sup>&#45;1</sup> de <i>M. lysodeikticus.</i> Se extrajeron las gl&aacute;ndulas digestivas de 12 bivalvos de cada localidad y, seguidamente, se homogeneizaron en 100 mmol L<sup>&#45;1</sup> de una soluci&oacute;n amortiguadora de KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> (pH 6.24) a 4 &deg;C (20% m/v). El homogeneizado resultante se centrifug&oacute; a 2000 <i>g</i> por 10 min, y el sobrenadante obtenido se emple&oacute; como fuente de lisozima. Un volumen equivalente a 40 &#956;L del extracto se sembr&oacute;, bajo condiciones est&eacute;riles, en cada orificio de la lisoplaca. Las lisoplacas fueron incubadas a 37 &deg;C en una estufa durante 48 h. Los di&aacute;metros de los halos de inhibici&oacute;n fueron medidos y contrastados con lisozima de clara de huevo (HEL) est&aacute;ndar.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estabilidad lisosomal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La hemolinfa recolectada se transfiri&oacute; a un tubo siliconizado y se conserv&oacute; por un m&aacute;ximo de 3&#45;5 min. Se transfirieron 40 &#956;L del contenido del tubo a la l&aacute;mina y se mezclaron con 40 &#956;L de rojo neutro disuelto en dimetil sulf&oacute;xido en la l&aacute;mina por 15 min en c&aacute;mara h&uacute;meda y oscura (Lowe <i>et al.</i> 1992). Las observaciones se realizaron con un microscopio de luz (magnificaci&oacute;n de 400 x) durante 15, 30, 45, 60, 90 y 120 min, y se cuantific&oacute; el porcentaje de c&eacute;lulas da&ntilde;adas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Peroxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La lipoperoxidaci&oacute;n se determin&oacute; por el revelado de sustancias que reaccionan al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico (TBARS) (Ohkawa <i>et al.</i> 1979). Las gl&aacute;ndulas digestivas fueron homogeneizadas en 50 mmol L<sup>&#45;1</sup> de imidazol&#45;HCl a 15 &deg;C y centrifugadas a 1000 <i>g</i> durante 20 min. El homogeneizado se incub&oacute; durante 10 min a 37 &deg;C con agitaci&oacute;n constante, y posteriormente se le adicion&oacute; &aacute;cido tricloroac&eacute;tico al 12.5%, 0.8 mol L<sup>&#45;1</sup> de HCl y &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico al 1% en un ba&ntilde;o de agua a 90 &deg;C con agitaci&oacute;n constante durante 30 min. Cada muestra fue colocada en ba&ntilde;o de hielo durante 10 min y luego centrifugada a 1500 <i>g</i> durante 10 min a 4 &deg;C. La absorbancia de las muestras se midi&oacute; a 535 nm. La concentraci&oacute;n de TBARS se calcul&oacute; con 1,1,3,3&#45;tetraetoxipropano como est&aacute;ndar. Los valores se expresaron en nanomoles de TBARS por miligramos de prote&iacute;nas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grupos sulfihidrilos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de los grupos tioles (&#45;SH), se aplic&oacute; el m&eacute;todo desarrollado por Ellman (1958), fundamentado en la cuantificaci&oacute;n de tioles libres o asociados a prote&iacute;nas mediante la reacci&oacute;n del &aacute;cido 5,5'&#45;ditiobis&#45;2&#45;nitrobenzoico (DTNB), hasta formar el ani&oacute;n 2&#45;nitro&#45;5&#45;benzoato. Para ello, se prepar&oacute; una soluci&oacute;n amortiguadora compuesta por Tris HCl&#45;EDTA 30 mmol L<sup>&#45;1</sup> y se ajust&oacute; el pH a 8.2. A cada tubo de ensayo se le adicionaron 50 &#956;L de extracto, 150 &#956;L de la soluci&oacute;n amortiguadora, 800 &#956;L de metanol y 50 &#956;L de DTNB, luego se mezcl&oacute; y se dej&oacute; reposar por 5 min a temperatura ambiente. Transcurrido este tiempo se centrifugaron las muestras a 1000 <i>g</i> durante 5 min. Finalmente, se tom&oacute; el sobrenadante para medir la absorbancia a 412 nm. La concentraci&oacute;n de &#45;SH se calcul&oacute; por medio de una curva de calibraci&oacute;n preparada con glutationa reducida (GSH) como est&aacute;ndar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Prote&iacute;nas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cuantificaci&oacute;n de prote&iacute;nas totales se realiz&oacute; siguiendo la metodolog&iacute;a propuesta por Lowry <i>et al.</i> (1951), usando como est&aacute;ndar alb&uacute;mina de suero bovino.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;sticos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; un an&aacute;lisis de varianza sencillo con r&eacute;plica, cumpli&eacute;ndose todos los supuestos. Se aplic&oacute; una prueba de contraste m&uacute;ltiple de Tukey (Sokal y Rohlf 1981). En adici&oacute;n, se estim&oacute; la asociaci&oacute;n entre los par&aacute;metros moleculares y celulares y el contenido corporal de metales pesados mediante un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n de Pearson.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles de los metales esenciales presentaron variaciones entre los organismos recolectados. Los mayores niveles promedio de Cu y Fe se observaron en los ejemplares provenientes de las balsas de cultivos de SAG, mientras que los niveles de Zn y Cr se incrementaron en los mejillones de CG. Del mismo modo, las concentraciones de los metales no esenciales como Cd y Pb fueron superiores en los ejemplares recolectados en las costas de CG (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a4t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La viabilidad celular en hemocitos no present&oacute; variaci&oacute;n estad&iacute;stica entre los organismos recolectados entre localidades (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a4t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>), con un intervalo de 70% a 100% y promedios que oscilaron entre 78.50% y 89.40%. Con respecto al n&uacute;mero total de hemocitos los menores registros se observaron en los mejillones de CG y RC en comparaci&oacute;n con los de SAG (2.02 x 10<sup>5</sup> c&eacute;lulas mL<sup>&#45;1</sup>). El porcentaje de fagocitos fue significativamente mayor en los organismos provenientes de CG y RC con respecto a la estaci&oacute;n referencial (SAG). Adicionalmente, una ligera elevaci&oacute;n en la actividad de la lisozima en la gl&aacute;ndula digestiva fue observada en los organismos de RC, pero sin ninguna significanci&oacute;n estad&iacute;stica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los biomarcadores moleculares examinados muestran concentraciones elevadas de prote&iacute;nas totales y grupos &#45;SH en los mejillones cultivados en SAG, lo que demuestra su estado nutricional y sus niveles de antioxidantes (tioles). Contrariamente, se observ&oacute; que los niveles de sustancias que reaccionan con el TBARS (un marcador de da&ntilde;o oxidativo) se incrementaron en los mejillones de CG y RC (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a4t3.jpg" target="_blank">tabla 3</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de c&eacute;lulas con reducida capacidad de retener en sus compartimientos lisosomales el rojo neutro fue significativamente alta en los organismos colectados en CG <i>(Fs</i> = 3.59; <i>P</i> &lt; 0,05); se observaron efectos celulares en los primeros 15 min de ensayo, con el 25.60% de los hemocitos afectados (<a href="#f2">fig. 2</a>), que continuaron incrementando hasta alcanzar un 37.70% de hemocitos da&ntilde;ados a los 90 min. Los valores promedio m&aacute;ximos (26.60%) para los organismos recolectados en RC fueron alcanzados en los 120 min. La mayor estabilidad lisosomal fue encontrada en los organismos de SAG, con un intervalo de estabilidad de 86.80% a 95.40% durante el trascurso del ensayo.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n3/a4f2.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los siguientes coeficientes de correlaci&oacute;n entre metales pesados y marcadores biol&oacute;gicos cuantificados presentaron asociaciones ligeramente d&eacute;biles: Cu/viabilidad celular (&#45;0.60), Zn/grupos tioles (+0.51), Cd/grupos tioles (&#45;0.45), Cr/TBARS (+0.58) y Cd/desestabilizaci&oacute;n lisosomal (&#45;0.40).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de Cu y Fe encontrados en <i>P. viridis</i> en SAG posiblemente se encuentran asociados a la disponibilidad del metal en el &aacute;rea de cultivo, aunado a los requerimientos metab&oacute;licos del organismo para mantener su tasa de crecimiento, reproducci&oacute;n y desove en siembras de suspensi&oacute;n. Concentraciones similares de Cu y Fe han sido se&ntilde;aladas para <i>Perna perna,</i> una especie af&iacute;n cultivada en el golfo de Cariaco (Castillo <i>et al.</i> 2005). A pesar de que el Cu y Fe son elementos esenciales eficientemente regulados, existen evidencias experimentales que demuestran que un considerable n&uacute;mero de especies de bivalvos presentan sensibilidad a bajas concentraciones (Sze y Lee 2000, Zapata&#45;V&iacute;venes y Nusetti 2007, Aanand <i>et al.</i> 2010), ya que permiten la formaci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno mediante la reacci&oacute;n de Fenton y Haber&#45;Weiss (Fridovich 1998). Estos radicales libres son responsables de alteraciones moleculares y estructurales de macromol&eacute;culas de importancia biol&oacute;gica que incluyen la peroxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos de membrana, degradaci&oacute;n de prote&iacute;nas y oxidaci&oacute;n de bases nitrogenadas (Winston y Di Gi&uuml;lio 1991).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aumento en las concentraciones de Zn, Cr y Cd en <i>P. viridis</i> de CG posiblemente se deben a las actividades humanas y no a causas naturales. La mayor&iacute;a del Zn es adicionado durante actividades industriales como la miner&iacute;a, la combusti&oacute;n de carb&oacute;n y residuos, y el procesado del acero. En algunas especies parece existir una relaci&oacute;n entre los valores de Zn y el tama&ntilde;o del animal, lo que puede significar requerimientos metab&oacute;licos diferentes entre individuos j&oacute;venes y adultos (Kennish 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones de Cd y Cr encontradas en el tejido blando de <i>P. viridis</i> en las localidades evaluadas sugieren que tales organismos poseen mecanismos eficaces para evitar toxicidad y letalidad. Se conoce que la toxicidad del Cr y Cd puede ser alcanzada a concentraciones relativamente bajas. En ensayos est&aacute;ticos se ha determinado que la concentraci&oacute;n letal media de Cr y Cd para <i>P. viridis,</i> en el agua, es de 2.27 &#956;g L<sup>&#45;1</sup> (1.94&#45;2.70 &#956;g L<sup>&#45;1</sup>) a las 96 h (Vijayavel <i>et al.</i> 2007) y 6.24 &#956;g L<sup>&#45;1</sup> a las 48 h (Meena y Balakrishnan 1993), respectivamente. Existen numerosas referencias que establecen una relaci&oacute;n estrecha entre los niveles de metales y el estr&eacute;s oxidativo, que conlleva a consecuencias moleculares graves como da&ntilde;os directos sobre el ADN y posterior perturbaci&oacute;n de la expresi&oacute;n gen&eacute;tica (Roling <i>et al.</i> 2006). De igual manera, se ha demostrado que niveles subletales de Cd pueden alterar las funciones de enzimas relacionadas con el metabolismo de carbohidratos, la respiraci&oacute;n mitocondrial y la actividad antioxidante (Nusetti <i>et al.</i> 2010) y la tolerancia a la anoxia (Zapata&#45;V&iacute;venes y Nusetti 2007), as&iacute; como causar cambios negativos en la tasa de respiraci&oacute;n y crecimiento de <i>P. viridis</i> (Narv&aacute;ez <i>et al.</i> 2005), limitando su supervivencia en el ambiente.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones corporales de Cd y Pb en los mejillones de CG pueden atribuirse a los continuos derrames de combustibles, aceites hidr&aacute;ulicos y de motores de embarcaciones pesqueras, frecuentemente observados en estaciones de servicios aleda&ntilde;as al sitio de recolecci&oacute;n. Se conoce que estos derivados del petr&oacute;leo poseen elevadas concentraciones de metales pesados (Nusetti <i>et al.</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los menores registros en el n&uacute;mero total de hemocitos fueron observados en los mejillones de CG y RC en comparaci&oacute;n con los de SAG. A pesar de que no se han planteado intervalos referenciales para los par&aacute;metros que discriminen a organismos sanos de contaminados, se tiene informaci&oacute;n que una gran variedad de agentes contaminantes pueden modular las funciones normales del sistema inmunol&oacute;gico en moluscos bivalvos (Pipe <i>et al.</i> 1999, Livingstone <i>et al.</i> 2000, Nusetti <i>et al.</i> 2004). Se han observado algunos cambios en los par&aacute;metros inmunol&oacute;gicos en el mejill&oacute;n <i>Mytilus edulis</i> trasplantado a una zona impactada por petr&oacute;leo crudo (Dyrynda <i>et al.</i> 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se observaron variaciones en la actividad de la lisozima en los mejillones entre las distintas localidades, lo que demuestra la efectividad de esta respuesta humoral a pesar de las concentraciones de metales acumulados. La actividad de la lisozima ha sido usada como biomarcador en inmunoensayos de biotoxicidad de xenobi&oacute;ticos. Su acci&oacute;n bacteriol&iacute;tica ha sido ampliamente examinada en moluscos expuestos a concentraciones subletales de diversos compuestos xenobi&oacute;ticos, incluyendo metales pesados. Muchos autores han encontrado efectos t&oacute;xicos agudos de distintos metales (Cu, Zn, Hg) sobre la actividad de la enzima en mejillones (Pipe y Coles 1995, Pipe <i>et al.</i> 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los organismos de CG presentaron los mayores promedios de TBARS por miligramo de prote&iacute;nas. Estos valores est&aacute;n relacionados con la formaci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno, tales como el ani&oacute;n super&oacute;xido y el radical hidroxilo, que pueden perturbar la eficiencia antioxidante y causar alteraciones oxidativas (peroxidaci&oacute;n) de las membranas biol&oacute;gicas. Diversas investigaciones han demostrado el papel de estos radicales libres como intermediarios en la toxicidad de contaminantes org&aacute;nicos en bivalvos marinos: <i>M. edulis</i> (Livingstone <i>et al.</i> 2000), <i>Mytilus galloprovincialis</i> (Livingstone 2001) y <i>P. viridis</i> (Cheung <i>et al.</i> 2001, 2002). Las consecuencias citot&oacute;xicas pueden ser evidenciadas por inactivaci&oacute;n enzim&aacute;tica, lipoperoxidaci&oacute;n de membranas celulares, deterioro del ADN y muerte celular; tales respuestas pueden ser inducidas por metales pesados (Rand y Petrocelli 1985).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones de grupos sulfhidrilos (&#45;SH) en organismos provenientes de CG y RC posiblemente correspondan a un desajuste de las respuestas moleculares en compensaci&oacute;n antioxidante contra la producci&oacute;n de intermediarios reactivos, experimentada por el ingreso y la acumulaci&oacute;n excesiva de metales pesados en los organismos que habitan dicha zona. La determinaci&oacute;n &#45;SH totales ha sido utilizada como un marcador de contaminaci&oacute;n por metales pesados en distintos sistemas biol&oacute;gicos (Hern&aacute;ndez 2006). Se han registrado incrementos en la concentraci&oacute;n de GSH como respuesta antioxidante en <i>P. viridis</i> sometida a bifenilos policlorados, un fuerte inductor de da&ntilde;o oxidativo (Cheung <i>et al.</i> 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tiempo en el cual se observa da&ntilde;o en el 50% de las c&eacute;lulas circundantes no pudo ser alcanzado durante 120 min, lo que sugiere un buen estado de salud aparente, al menos en los mejillones recolectados en RC y SAG. El mayor porcentaje de c&eacute;lulas con lisosomas incapaces de retener el rojo neutro fue observado en los organismos recolectados en CG. Se ha demostrado que mejillones que habitan &aacute;reas potencialmente impactadas presentan frecuentes anormalidades y un menor tiempo de retenci&oacute;n de rojo neutro en sus compartimientos lisosomales. En &aacute;reas con severa contaminaci&oacute;n antropog&eacute;nica, los lisosomas de los hemocitos evidencian da&ntilde;os de sus membranas despu&eacute;s de 30 a 60 min de la acci&oacute;n del colorante (Lowe y Pipe 1994, Harding <i>et al.</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En estudios de campo, Talet <i>et al.</i> (2009) mostraron un decrecimiento en retenci&oacute;n del rojo neutro en lisosomas de hemocitos en <i>M. galloprovincialis</i> trasplantados a zonas con altos niveles de poluci&oacute;n org&aacute;nica. Esta misma respuesta ha sido correlacionada con altos niveles de exposici&oacute;n de hidrocarburos polic&iacute;clicos en <i>M. galloprovincialis</i> y <i>P. perna</i> (Francione <i>et al.</i> 2007, Pereira <i>et al.</i> 2007), <i>P. viridis</i> (Nicholson y Szefer 2003), y ensayos est&aacute;ticos con Cu (Nicholson 2003). El porcentaje de hemocitos con lisosomas da&ntilde;ados y su relaci&oacute;n con organismos con elevados niveles de Cd, aunque es d&eacute;bil, permite inferir sobre la calidad ambiental en esta localidad costera y refleja una se&ntilde;al de alerta temprana de contaminaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta investigaci&oacute;n sugiere el uso de biomarcadores a nivel celular o bioqu&iacute;mico en organismos biomonitores para complementar los estudios ambientales y as&iacute; revelar cambios inducidos por xenobi&oacute;ticos met&aacute;licos en la fisiolog&iacute;a de los organismos que habitan ecosistemas marino&#45;costeros. Las concentraciones de metales pesados (en especial Cd, Cr y Pb) acumuladas en los tejidos blandos de los mejillones de CG, junto con la reducida estabilidad lisosomal en hemocitos, permiten evidenciar la disponibilidad de tales elementos en las localidades de muestreo y sus efectos celulares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aanand S, Puroshothaman C, Pal A, Rejendran K. 2010. Toxicological studies on the effect of copper, lead and zinc on selected enzymes in adductor muscle and intestinal diverticula of the green mussel <i>Perna viridis.</i> Indian J. Mar. Sci. 39: 299&#45;302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946238&pid=S0185-3880201200040000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castillo I, Acosta V, Mart&iacute;nez G. 2005. Niveles de metales pesados en g&oacute;nadas y m&uacute;sculo aductor del mejill&oacute;n marr&oacute;n, <i>Perna perna,</i> cultivado en la ensenada de Turpialito, golfo de Cariaco, estado Sucre, Venezuela. Zootecnia Trop. 23: 141&#45;154.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946240&pid=S0185-3880201200040000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cheng T. 1988. <i>In vivo</i> effects of heavy metals on cellular defenses mechanism of <i>Crassostrea virginica:</i> Total and differential haemocyte counts. J. Invertebr. Pathol. 51: 207&#45;214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946242&pid=S0185-3880201200040000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cheung C, Zheng G, Li A, Richardson B, Lam P. 2001. Relationships between tissue concentrations of polycyclic aromatic hydrocarbons and antioxidative responses of marine mussels, <i>Perna viridis.</i> Aquat. Toxicol. 52: 189&#45;203.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946244&pid=S0185-3880201200040000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cheung C, Zheng G, Lam P, Richardson B. 2002. Relationship between tissue concentrations of chlorinated hydrocarbon (polychlorinated biphenyl and chlorinated pesticides) and antioxidant responses of marine mussel, <i>Perna viridis.</i> Mar. Pollut. Bull. 45: 181&#45;191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946246&pid=S0185-3880201200040000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dyrynda E, Law R, Dyrynda P, Kelly C, Pipe R, Ratcliffe N. 2000. Changes in immune parameter of natural <i>Mytilus edilus</i> populations following a major oil spill <i>(Sea Empress,</i> Wales, UK). Mar. Ecol. Prog. Ser. 206: 155&#45;170.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946248&pid=S0185-3880201200040000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ellman G. 1958. A colorimetric method for determining low concentrations of mercaptans. Arch. Biochem. Biophys. 74: 443&#45;450.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946250&pid=S0185-3880201200040000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fang J, Wu R, Zheng G, Lam P, Shin P. 2008. Induction, adaptation and recovery of lysosomal integrity in green&#45;lipped mussel <i>Perna viridis.</i> Mar. Pollut. Bull. 57: 467&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946252&pid=S0185-3880201200040000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Francione E, Wagener A, Scofield A, Depledge M, Cavalier B. 2007. Evaluation of the mussel <i>Perna perna</i> as a biomonitor of polycyclic aromatic hydrocarbon (PAH) exposure and effects, Mar. Pollut. Bull. 54: 329&#45;338.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946254&pid=S0185-3880201200040000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fridovich I. 1998. Oxygen toxicity: A radical explanation. J. Exp. Biol. 201: 1203&#45;1209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946256&pid=S0185-3880201200040000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goven A, Chen S, Fitzpatrick LY, Venables B. 1994. Lysozyme activity in earthworm <i>(Lumbricus terrestris)</i> celomic and celomocytes: Enzyme assay for immunotoxicity of xenobiotics. Environ. Toxicol. Chem. 3: 607&#45;613.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946258&pid=S0185-3880201200040000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goven A, Fitzpatrick L, Venable B. 1996. Chemical toxicity and host defence in earthworm. Ann. NY Acad. Sci. 712: 280&#45;299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946260&pid=S0185-3880201200040000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --> Harding J, Couturier C, Parsons G, Roos N. 2004. Evaluation of the neutral red retention assay as stress response indicator in cultivated mussels <i>(Mytilus</i> spp.) in relation to seasonal and environmental conditions. J. Shellfish Res. 23: 745&#45;751.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946261&pid=S0185-3880201200040000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez A. 2006. Metalotione&iacute;nas y lipoperoxidaci&oacute;n en la lombriz de tierra <i>Eisenia foetida</i> expuesta a cadmio. BSc thesis, Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad de Oriente. Cuman&aacute;. Venezuela.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946263&pid=S0185-3880201200040000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kennish M. 1997. Practical Handbook of Estuarine and Marine Pollution. CRC Press, Boca Rat&oacute;n, Florida, 524 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946265&pid=S0185-3880201200040000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Livingstone D. 2001. Contaminant&#45;stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms. Mar. Pollut. Bull. 42: 656&#45;666.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946267&pid=S0185-3880201200040000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Livingstone D, Chipman J, Lowe D, Minier C, Michelmore M, Peters L, Pipe R. 2000. Development of biomarkers to detect the effects of organic pollution on aquatic invertebrates: Recent molecular, genotoxic, cellular and immunological studies on the common mussel <i>(Mytilus edulis)</i> and others mytilids. Int. J. Environ. Pollut. 13: 56&#45;91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946269&pid=S0185-3880201200040000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lowe D. 1995. Lysosomal membrane impairment in blood cells of <i>Perna viridis:</i> An <i>in vitro</i> marker of contaminant induced damage. Res. Bull. Phuket Mar. Biol. Cent. 60: 79&#45;82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946271&pid=S0185-3880201200040000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lowe D, Pipe R. 1994. Contaminant induced lysosomal membrane damage in marine mussel digestive cells: An <i>in vitro</i> study. Aquat. Toxicol. 30: 357&#45;365.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946273&pid=S0185-3880201200040000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lowe D, Moore M, Evans B. 1992. Contaminant impact on interactions of molecular probes with lysosomes in living hepatocytes from dab, <i>Limanda limanda.</i> Mar. Ecol. Prog. Ser. 91: 131&#45;140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946275&pid=S0185-3880201200040000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randal RJ. 1951. Protein measurement with folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 193: 265&#45;275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946277&pid=S0185-3880201200040000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez G. 2002. Algunos metales pesados en sedimentos del golfo de Cariaco, edo. Sucre, Venezuela. Bol. Inst. Oceanogr. Venezuela (Univ. Oriente) 41: 83&#45;93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946279&pid=S0185-3880201200040000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meena KB, Balakrishnan NN. 1993. Effect of certain heavy metals on the survival of mussel <i>Perna viridis.</i> Indian J. Environ. Toxicol. 31: 11&#45;3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946281&pid=S0185-3880201200040000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meier P, Z&uuml;nd R. 1993. Statistical Methods in Analytical Chemistry. Wiley, New York, 321 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946283&pid=S0185-3880201200040000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Narv&aacute;ez N, Lodeiros C, Nusetti O, Lemus M, Maeda&#45;Mart&iacute;nez A. 2005. Incorporaci&oacute;n, depuraci&oacute;n y efecto del cadmio en el mejill&oacute;n verde <i>Perna viridis</i> (L. 1758) (Mollusca: Bivalvia). Cienc. Mar. 31: 91&#45;102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946285&pid=S0185-3880201200040000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nicholson S. 2003. Lysosomal membrane stability phagocytosis and tolerance to emersion in the mussel <i>Perna viridis</i> (Bivalvia: Mytilidae) following exposure to acute, sublethal copper. Chemosphere 52: 1147&#45;1151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946287&pid=S0185-3880201200040000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nicholson S, Szefer P. 2003. Accumulation of metals in the soft tissues, byssus and shell of the mytilid mussel <i>Perna viridis</i> (Bivalvia: Mytilidae) from polluted and uncontaminated locations in Hong Kong coastal waters. Mar. Pollut. Bull. 46:1040&#45;1043.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946289&pid=S0185-3880201200040000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti O, Marcano L, Zapata E, Esclap&eacute;s M, Nusetti S, Lodeiros C. 2004. Respuestas inmunol&oacute;gicas y de enzimas antioxidantes en la ostra perla <i>Pinctada imbricata</i> (Mollusca: Pteridae) expuesta a niveles subletales de fuel oil No. 6. Interciencia 29: 324&#45;329.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946291&pid=S0185-3880201200040000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti O, Zapata&#45;V&iacute;venes E, Esclap&eacute;s MM, Rojas A. 2005. Antioxidant enzymes and tissue regeneration in <i>Eurythoe complanata</i> (Polychaeta: Amphinomidae) exposed to used vehicle crankcase oil. Environ. Contam. Toxicol. 48: 1&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946293&pid=S0185-3880201200040000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti O, Tovar M, Zapata&#45;V&iacute;venes E. 2010. Pyruvate kinase, phosphoenolpyruvate carboxykinase, cytochrome c oxidase and catalase activities in cadmium exposed <i>Perna viridis</i> subjected to anoxic and aerobic conditions. J. Shellfish Res. 29: 203&#45;208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946295&pid=S0185-3880201200040000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. 1979. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal. Biochem. 95: 351&#45;358.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946297&pid=S0185-3880201200040000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pereira C, Abessa D, Bainy A, Zaroni L, Gasparro M, Bicego M, Taniguchi S, Furley T, Sousa E. 2007. Integrated assessment of multilevel biomarker responses and chemical analysis in mussels from Sao Pablo, Brazil. Environ. Toxicol. Chem. 26:462&#45;469.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946299&pid=S0185-3880201200040000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pipe R, Coles J. 1995. Environmental contaminants influencing immune function in marine bivalve molluscs. Fish Shellfish Immunol. 5: 581&#45;595.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946301&pid=S0185-3880201200040000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pipe R, Coles F, Ramanathan K. 1999. Copper induced immunomodulation in the marine mussel <i>Mytilus edulis.</i> Aquat. Toxicol. 46: 43&#45;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946303&pid=S0185-3880201200040000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rand G, Petrocelli S. 1985. Fundamentals of Aquatic Toxicology. Hemisphere Corporation, Washington DC, 665 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946305&pid=S0185-3880201200040000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roling J, Bain L, Gardea&#45;Torresdey J, Bader J, Baldwin W. 2006. Hexavalent chromium reduces larvae growth and alters gene expression in mummichog <i>(Fundulus heteroclitus).</i> Environ. Toxicol. Chem. 25: 2725&#45;2733.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946307&pid=S0185-3880201200040000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sze y Lee 2000. Effects of chronic copper exposure on the green mussel <i>Perna viridis.</i> Mar. Biol. 137: 379&#45;392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946309&pid=S0185-3880201200040000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sminia J. 1980. Phagocytic cells in molluscs. In: Solomon JB (ed.), Aspects of Developmental and Comparative Immunology. Pergamon, London, pp. 125&#45;132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946311&pid=S0185-3880201200040000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sokal R, Rohlf J. 1981. Biometry: The Principles and Practice of Statistics in Biological Reasearch. 2nd ed. WH Freeman, New York, 859 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946313&pid=S0185-3880201200040000400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sreenivasan P, Thangavelu R, Poovannan P. 1989. Biology of the green mussel, <i>Perna viridis</i> (Linnaeus), cultured in Muttukadu Lagoon, Madras. Indian J. Fish. 36: 149&#45;155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946315&pid=S0185-3880201200040000400040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Talet Z, Behali I, Gherros H, Ykhlef&#45;Allal A, Bachir&#45;Bouia B, Amiar J, Boutibaz B. 2009. Monitoring of environmental pollution an the Alegrian west cost using caged mussels <i>Mytilus edilus.</i> Oceanologia 51: 63&#45;84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946317&pid=S0185-3880201200040000400041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vijayavel K, Gopalakrishnan S, Balasubramanian M. 2007. Sublethal effect of silver and chromium in the green mussel <i>Perna viridis</i> with reference to alterations in oxygen uptake, filtration rate and membrane bound ATPase system as biomarkers. Chemosphere 69: 979&#45;986.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946319&pid=S0185-3880201200040000400042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Winston G, Di Gi&uuml;lio R. 1991. Prooxidant and antioxidant mechanisms in aquatic organisms. Aquat. Toxicol. 19: 137&#45;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946321&pid=S0185-3880201200040000400043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zapata&#45;V&iacute;venes E, Nusetti O. 2007. Protection of glycolytic enzymes by metallothioneins from oxidative damage in the digestive gland of green lipped mussel <i>Perna viridis.</i> J. Shellfish Res. 26: 1&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946323&pid=S0185-3880201200040000400044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zapata&#45;V&iacute;venes E, Nusetti O, Marcano L, Esclap&eacute;s MM, Arredondo L. 2005. Immunological responses and wound healing in the polychaete <i>Eurythoe complanata</i> (Annelida: Amphinomidae) exposed to copper. Cienc. Mar. 31: 1&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1946325&pid=S0185-3880201200040000400045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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