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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Viabilidad del cultivo del misidáceo Gastrosaccus roscoffensis (Peracarida, Mysida): Crecimiento, supervivencia, capacidad depredadora y composición lipídica]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effects of culture conditions on growth, survival, predation, and nutritional composition of the mysid Gastrosaccus roscoffensis were studied. Light had a negative effect on the predation rates of G. roscoffensis and predator size was important to prey on Artemia nauplii and rotifers (Brachionus plicatilis). Growth rates were higher in the first three weeks and measured individuals increased almost 7 mm in length in six weeks. Mortality rate was not constant, but it peaked during the first 10 days and after the 40th day of culture. Lipid class composition of cultured G. roscoffensis juveniles showed differences compared to wild G. roscoffensis and other mysid species, with a high proportion of neutral lipids (72.04% total lipids) mainly triacylglycerol (41.74%). Fatty acid composition was characterized by high levels of 18:3n-3 (23.16% total lipids) and monoenes in cultured G. roscoffensis. The experiments demonstrated the feasibility of the culturing conditions assayed for G. roscoffensis, although further experiments should be carried out to test this mysid as a prey for new species of commercial interest, including fish and cephalopods.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Viabilidad del cultivo del misid&aacute;ceo <i>Gastrosaccus roscoffensis</i> (Peracarida, Mysida): Crecimiento, supervivencia, capacidad depredadora y composici&oacute;n lip&iacute;dica</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>A general survey of the feasibility of culturing the mysid <i>Gastrosaccus roscoffensis</i> (Peracarida, Mysida): Growth, survival, predatory skills, and lipid composition</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>A Esc&aacute;nez<sup>1,5</sup>, R Riera<sup>2</sup>, L M&aacute;rquez<sup>3</sup>, A Skalli<sup>1,4</sup>, BC Felipe<sup>1</sup>, I Garc&iacute;a&#45;Herrero<sup>1,5</sup>, D Reis<sup>1,5,6</sup>, C Rodr&iacute;guez<sup>5</sup>, E Almansa<sup>1*</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Instituto Espa&ntilde;ol de Oceanograf&iacute;a, Centro Oceanogr&aacute;fico de Canarias, Avenida 3 de Mayo 73, Apdo. 1373, 38005, Santa Cruz de Tenerife, Canary Islands, Spain.</i></font> <font face="verdana" size="2"><i>*Corresponding author. E&#45;mail:</i> <a href="mailto:eduardo.almansa@oceanografia.es">eduardo.almansa@oceanografia.es</a></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Centro de Investigaciones Medioambientales del Atl&aacute;ntico (CIMA SL), Arzobispo El&iacute;as Yanes 44, 38206 La Laguna, Santa Cruz de Tenerife, Canary Islands, Spain.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Departamento de Biolog&iacute;a Aplicada, Universidad de Almer&iacute;a, Ctra. Sacramento s/n, La Ca&ntilde;ada de San Urbano, 04120, Almer&iacute;a, Spain.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4</sup> Unitat de Cultius Aquatics, Institut de Recerca i Tecnolog&iacute;a Agroaliment&aacute;rias (IRTA), Crta. Poble Nou km 5.5, Sant Carles de la R&aacute;pita, 43540 Tarragona, Spain.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>5</sup> Departamento de Biolog&iacute;a Animal, Universidad de La Laguna, Avenida Astrof&iacute;sico Francisco S&aacute;nchez, 38206 La Laguna, Santa Cruz de Tenerife, Canary Islands, Spain.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>6</sup> CCMar, Campus de Gambelas, Faculdade de Ci&ecirc;ncias e Tecnologia, Universidade do Algarve, 8005&#45;139, Faro, Portugal.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Received April 2011,    <br> 	Received in revised form April 2012,    <br> 	Accepted May 2012.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio se analizaron los efectos de las condiciones de cultivo sobre el crecimiento, la supervivencia, la depredaci&oacute;n y la composici&oacute;n nutricional del misid&aacute;ceo <i>Gastrosaccus roscoffensis.</i> La luminosidad afect&oacute; de forma negativa a las tasas de predaci&oacute;n de <i>G. roscoffensis</i> y la talla del depredador fue importante cuando depredaba sobre nauplios de <i>Artemia</i> y rot&iacute;feros <i>(Brachionus plicatilis).</i> El crecimiento fue superior en las primeras tres semanas; los individuos aumentaron en 7 mm su longitud en seis semanas. La tasa de mortalidad no fue constante, con dos picos de mortalidad a los 10 d&iacute;as y a los 40 d&iacute;as de cultivo. La composici&oacute;n de clases lip&iacute;dicas de los misid&aacute;ceos juveniles cultivados difiri&oacute; de los misid&aacute;ceos salvajes y de otras especies de misid&aacute;ceos, con una alta proporci&oacute;n de l&iacute;pidos neutros (72.04% l&iacute;pido total), en los cuales predominaron los triglic&eacute;ridos (41.74%). La composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos se caracteriz&oacute; por altos niveles de 18:3n&#45;3 (23.16% l&iacute;pido total) y monoenos en individuos cultivados de <i>G roscoffensis</i>. Los experimentos realizados demuestran la viabilidad de las condiciones ensayadas para el cultivo de <i>G. roscoffensis,</i> aunque en el futuro son necesarios m&aacute;s experimentos para probar la efectividad de este misid&aacute;ceo como presa alternativa en la alimentaci&oacute;n de nuevas especies de inter&eacute;s comercial, incluyendo peces y cefal&oacute;podos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Gastrosaccus roscoffensis,</i> cultivo, depredaci&oacute;n, composici&oacute;n nutricional.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The effects of culture conditions on growth, survival, predation, and nutritional composition of the mysid <i>Gastrosaccus roscoffensis</i> were studied. Light had a negative effect on the predation rates of <i>G. roscoffensis</i> and predator size was important to prey on <i>Artemia</i> nauplii and rotifers <i>(Brachionus plicatilis).</i> Growth rates were higher in the first three weeks and measured individuals increased almost 7 mm in length in six weeks. Mortality rate was not constant, but it peaked during the first 10 days and after the 40th day of culture. Lipid class composition of cultured <i>G. roscoffensis</i> juveniles showed differences compared to wild <i>G. roscoffensis</i> and other mysid species, with a high proportion of neutral lipids (72.04% total lipids) mainly triacylglycerol (41.74%). Fatty acid composition was characterized by high levels of 18:3n&#45;3 (23.16% total lipids) and monoenes in cultured <i>G. roscoffensis.</i> The experiments demonstrated the feasibility of the culturing conditions assayed for <i>G. roscoffensis,</i> although further experiments should be carried out to test this mysid as a prey for new species of commercial interest, including fish and cephalopods.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Gastrosaccus roscoffensis,</i> culture, predation, nutritional composition.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El g&eacute;nero de misid&aacute;ceos <i>Gastrosaccus</i> constituye un grupo de especies t&iacute;picamente ner&iacute;ticas, una de las cuales, <i>Gastrosaccus roscoffensis,</i> es parcialmente epibent&oacute;nica (McQuart&#45;Moulin y Ribera&#45;Maycas 1995). Esta especie se entierra en los primeros cent&iacute;metros del fondo, en las playas arenosas intermareales cerca del l&iacute;mite superior de la zona de rompiente de las olas (Bacescu 1970). Observaciones preliminares realizadas por Fischelson y Loya (1968) sobre especies del g&eacute;nero <i>Gastrosaccus (G. sanctus)</i> en las playas arenosas de Israel mostraron que en ocasiones estos crust&aacute;ceos abandonaban la arena y avanzaban con las olas volvi&eacute;ndose a enterrar en la arena cuando la ola se retra&iacute;a.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, la mayor&iacute;a de los misid&aacute;ceos son considerados omn&iacute;voros que se alimentan de detritus y peque&ntilde;os organismos por filtraci&oacute;n (Johnston y Lasenby 1982). Los misid&aacute;ceos trituran completamente los alimentos (Mauchline 1980), pero en contenidos estomacales de <i>Gastrosaccus psammodytes</i> alimentados con <i>Anaulus birostratus</i> se encontraron fragmentos reconocibles de esta diatomea junto con detritos amorfos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hasta ahora, no existen estudios detallados sobre la ecolog&iacute;a de la especie G. <i>roscoffensis,</i> un habitante com&uacute;n de la zona intermareal de las playas arenosas del archipi&eacute;lago Canario (Witman <i>et al.</i> 2010), as&iacute; como de las costas atl&aacute;nticas de Europa (Bacescu 1970). Durante el d&iacute;a, los individuos de <i>Gastrosaccus</i> permanecen enterrados en las capas superiores del sedimento y durante la noche nadan en la columna de agua para alimentarse de fitoplancton, zooplancton y detritus (Suau y Vives 1957).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La nutrici&oacute;n de los organismos marinos es una de las &aacute;reas de investigaci&oacute;n m&aacute;s importantes en acuicultura, debido a que representa uno de los aspectos m&aacute;s significativos en los costes y es esencial para el &eacute;xito de la producci&oacute;n de organismos acu&aacute;ticos. El principal cuello de botella de la acuicultura intensiva se presenta en las etapas larvarias, principalmente de peces, crust&aacute;ceos y moluscos. La alta mortalidad larvaria hace que muchos cultivos no sean rentables o produzcan un bajo beneficio econ&oacute;mico en la industria acu&iacute;cola (Le Francois <i>et al.</i> 2009). Los macroinvertebrados m&aacute;s extensamente utilizados como presas vivas en acuicultura son los rot&iacute;feros (e.g., <i>Brachionus plicatillis)</i> y <i>Artemia</i> sp. (Stottrup y McEvoy 2003). Sin embargo, estas presas no proporcionan todos los requerimientos nutricionales de las etapas larvarias y se necesita enriquecer a los rot&iacute;feros y a la <i>Artemia,</i> especialmente con &aacute;cidos grasos poliinsaturados de cadena larga (LC&#45;PUFA, por sus siglas en ingl&eacute;s). Numerosas t&eacute;cnicas han sido desarrolladas para resolver este problema; se ha enriquecido a las presas con l&iacute;pidos ricos en estos &aacute;cidos grasos y prote&iacute;nas, usando microalgas y emulsiones de aceite. Otros factores a tener en cuenta a la hora de utilizar presas alternativas, como el misid&aacute;ceo <i>G. roscoffensis,</i> son su tama&ntilde;o, movilidad y palatabilidad, entre otros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os los investigadores han buscado presas alternativas para sustituir a las utilizadas tradicionalmente en acuicultura. Los misid&aacute;ceos han sido considerados previamente como presas alternativas para algunas especies de inter&eacute;s comercial (principalmente cefal&oacute;podos) (Domingues <i>et al.</i> 2001a) y pueden ser una importante fuente de alimento para muchas especies de peces y crust&aacute;ceos. (Kuhn <i>et al.</i> 1991). Con este objetivo varios autores han utilizado diferentes especies de misid&aacute;ceos, como <i>Mysidopsis almira</i> (Domingues <i>et al.</i> 1998, 1999, 2001b), <i>Mysis mixta</i> (Gorokhova y Hansson 2000), <i>Mysis relicta</i> (Viherluoto <i>et al.</i> 2000) y <i>Neomysis integer</i> (Gorokhova 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo principal de este trabajo fue estudiar la viabilidad del cultivo del misid&aacute;ceo <i>G. roscoffensis</i> en instalaciones acu&iacute;colas, mediante el an&aacute;lisis de su crecimiento, supervivencia, capacidad depredadora y composici&oacute;n nutricional (fundamentalmente, composici&oacute;n lip&iacute;dica) para evaluar su idoneidad como presa alternativa en el cultivo de especies comerciales. Adem&aacute;s, se analizaron ejemplares salvajes para comparar su composici&oacute;n con la de los ejemplares cultivados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ejemplares de <i>G. roscoffensis</i> empleados en el presente estudio fueron recogidos en la playa de Las Gaviotas (noroeste de Tenerife, islas Canarias; 28&deg;30'47" N, 16&deg;10'31" O) mediante redes de arrastre de fondo. Los individuos recolectados fueron transportados al laboratorio, donde se muestrearon en fr&iacute;o, separ&aacute;ndolos en tubos Eppendorf, previamente etiquetados, para posteriormente colocarlos en hielo seco hasta su almacenamiento a &#45;80 &deg;C. De esta manera se conservaron para futuros an&aacute;lisis. El cultivo de <i>G. roscoffensis</i> se realiz&oacute; en tanques de 100 L, en oscuridad, conectados a un sistema de flujo (con renovaci&oacute;n 200% por d&iacute;a) y con una densidad de 5 ind L<sup>&#45;1</sup>. La alimentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo <i>ad libitum</i> con 100 artemias por misid&aacute;ceo por d&iacute;a, 200 rot&iacute;feros por misid&aacute;ceo por d&iacute;a y 10<sup>5</sup> c&eacute;lulas mL<sup>&#45;1</sup> de fitoplancton <i>(Chorella</i> sp.). Los experimentos se efectuaron en las instalaciones del Instituto Espa&ntilde;ol de Oceanograf&iacute;a (IEO de Canarias).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo experimental de misid&aacute;ceos se llev&oacute; a cabo en tanques de 4 L en oscuridad o bajo iluminaci&oacute;n (fotoperiodo natural, 100&#45;200 lux), con aireaci&oacute;n continua y renovaci&oacute;n de agua cada 5 d&iacute;as. La densidad inicial de juveniles de misid&aacute;ceos fue de 5 ind L<sup>&#45;1</sup> y la alimentaci&oacute;n se realiz&oacute; <i>ad libitum</i> con 100 nauplios de Artemia por misid&aacute;ceo por d&iacute;a, 200 rot&iacute;feros por misid&aacute;ceo por d&iacute;a y 4 x 10<sup>5</sup> c&eacute;lulas mL<sup>&#45;1</sup> de fitoplancton <i>(Chorella</i> sp.). Los experimentos se realizaron por duplicado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante el experimento, se observaron diferencias con relaci&oacute;n al tama&ntilde;o de los individuos, por lo que se estableci&oacute; un umbral para distinguir entre los ejemplares peque&ntilde;os (juveniles) y grandes (adultos). El umbral fue de 9 mm. De este modo, los individuos de entre 2 mm (0 d&iacute;as) y 9 mm se consideraron juveniles, ya que eran notables las diferencias anat&oacute;micas con respecto a los espec&iacute;menes m&aacute;s grandes (9&#45;10.2 mm).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de supervivencia se determin&oacute; contabilizando los adultos, los juveniles y los ejemplares reci&eacute;n eclosionados cada nueve d&iacute;as. Todos los misid&aacute;ceos fueron trasvasados cuidadosamente del tanque a una jarra y fueron contados. El porcentaje de supervivencia se expres&oacute; como el porcentaje de misid&aacute;ceos iniciales, seg&uacute;n la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los d&iacute;as 29, 39 y 46, los individuos fueron tabulados de acuerdo con las variables "iluminaci&oacute;n" (dos niveles: luz, oscuridad) y "supervivencia" (dos niveles: muertos, vivos). Las tablas de contingencia 2 x 2 obtenidas se analizaron por la prueba exacta de Fisher (2 colas).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de crecimiento se basaron en la longitud del cuerpo (desde el rostro hasta el final del &uacute;ltimo segmento abdominal) de los ejemplares de misid&aacute;ceos medidos bajo lupa (Nikon SMZ&#45;10A), a cinco aumentos. Las medidas de longitud se tomaron los d&iacute;as 0, 6, 13, 20, 42, 49 y 57. Se midieron cinco misid&aacute;ceos al d&iacute;a. Las observaciones longitud&#45;edad se describieron mediante la funci&oacute;n de crecimiento de von Bertalanffy, de acuerdo con la ecuaci&oacute;n</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1e2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>L<sub>t</sub></i> es la longitud del cuerpo (en mm) para una determinada edad <i>t</i> (en d&iacute;as), <i>L</i> es la longitud m&aacute;xima del cuerpo (en mm), <i>k</i> es la constante de crecimiento y <i>t<sub>0</sub></i> es un par&aacute;metro relacionado con la longitud en la edad cero (en d&iacute;as) (von Bertalanffy 1938).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CULTIVO DE PRESAS VIVAS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los nauplios de <i>Artemia</i> sp. empleados como presa viva se obtuvieron por eclosi&oacute;n de los quistes de la empresa INVE Aquaculture (Dendermonde, B&eacute;lgica), despu&eacute;s de un proceso de descapsulaci&oacute;n e incubaci&oacute;n. Los rot&iacute;feros <i>(B. plicatilis)</i> se cultivaron en tanques de 1000 L y se alimentaron con levadura <i>(Saccharomyces cerevisiae),</i> bajo condiciones de luz continua, agua con temperatura de 21&#45;22 &deg;C y salinidad de 28. El fitoplancton <i>(Chlorella</i> sp.) se cultiv&oacute; en agua de mar fertilizada con el medio de cultivo F2 Prolina (Aquatic EcoSystems) en tanques de 40 L continuamente iluminados, con temperatura del agua a 19 &deg;C y salinidad de 25.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISE&Ntilde;O Y AN&Aacute;LISIS DE LOS ENSAYOS DE DEPREDACI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se dise&ntilde;aron dos experimentos para investigar la eficiencia de <i>G. roscoffensis</i> como depredador: (1) un experimento multifactorial (4 factores) de baja replicaci&oacute;n (x 3)y (2) un experimento bifactorial con mayor n&uacute;mero de r&eacute;plicas (x 7). En ambos experimentos, la variable dependiente fue el n&uacute;mero de presas consumidas. El montaje experimental general implic&oacute; el ensayo de depredadores individuales en cajas de Petri que conten&iacute;an 30 mL de agua de mar a 25 &deg;C y ten&iacute;an el fondo transparente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los factores probados en el experimento multifactorial fueron la iluminaci&oacute;n (120 lx <i>vs</i> 0 lx), la especie de presa (nauplios de <i>Artemia</i> sp. <i>vs Brachionus</i> sp.), el tama&ntilde;o del depredador (juveniles <i>vs</i> adultos) y el n&uacute;mero inicial de presas (de 9 a 21 por caja de Petri) como co&#45;variable; el tiempo de ensayo fue de 2 h. Los factores probados en el experimento bifactorial fueron la iluminaci&oacute;n (120 1x <i>vs</i> 0 1x) y el tama&ntilde;o del depredador (juveniles <i>vs</i> adultos); el n&uacute;mero inicial de presas se fij&oacute; en 10 nauplios de <i>Artemia</i> por caja de Petri y el tiempo de ensayo en 4 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ambos experimentos fueron analizados mediante modelos lineales generalizados (GLM) (Agresti 2007). En una primera aproximaci&oacute;n, se eligi&oacute; un GLM con distribuci&oacute;n de Poisson y funci&oacute;n de enlace logar&iacute;tmica y se revis&oacute; el cociente (verosimilitud)/(grados de libertad) para detectar la posibilidad de sobredispersi&oacute;n; en tal caso, los datos fueron reanalizados mediante un GLM con binomial negativa y funci&oacute;n de enlace logar&iacute;tmica con diferentes par&aacute;metros de escala dentro del intervalo 0.25&#45;2.0. El modelo con mayor verosimilitud fue seleccionado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El algoritmo estad&iacute;stico utilizado mostr&oacute; un mensaje de matriz hessiana singular durante el an&aacute;lisis de los datos del experimento bifactorial. Dado que la raz&oacute;n probable para este mensaje era la nula tasa de consumo de todos los misid&aacute;ceos juveniles que depredaban nauplios de <i>Artemia</i> bajo iluminaci&oacute;n (lo que implicaba una varianza nula), se decidi&oacute; modificar m&iacute;nimamente los datos mediante el reemplazo de uno de los ceros por un uno. Cuando los datos as&iacute; modificados fueron reanalizados no se produjeron m&aacute;s mensajes de error.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variable independiente "numero inicial de presas" en el ensayo multifactorial no estaba fijada, por lo tanto fue incluida como una variable de normalizaci&oacute;n para estandarizar el n&uacute;mero de eventos de depredaci&oacute;n con respecto al n&uacute;mero de presas expuestas al riesgo de depredaci&oacute;n; en este caso, hay que resaltar que la variable dependiente bajo an&aacute;lisis fue el consumo proporcional.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AN&Aacute;LISIS BIOQU&Iacute;MICOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Recolecci&oacute;n de muestras y conservaci&oacute;n</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras de juveniles de misid&aacute;ceos, alimentados con la mezcla anteriormente mencionada de fitoplancton <i>(Chlorella</i> sp.), nauplios de <i>Artemia,</i> y <i>Brachionus,</i> se obtuvieron mediante el filtrado del flujo de agua saliente de los tanques de puesta de 100 L a trav&eacute;s de un filtro de 100 &micro;m. Los ejemplares salvajes se recogieron en la playa de Las Gaviotas directamente con redes de arrastre de fondo. Las muestras se lavaron con agua corriente para retirar el agua salada y posteriormente se secaron con papel secante. A continuaci&oacute;n, las muestras se colocaron en hielo seco y, por &uacute;ltimo, se conservaron a &#45;80&deg; C hasta su utilizaci&oacute;n para los an&aacute;lisis bioqu&iacute;micos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis bioqu&iacute;micos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero de r&eacute;plicas empleado en los an&aacute;lisis bioqu&iacute;micos fue de tres. El contenido de humedad se determin&oacute; manteniendo las muestras a 110&deg; C hasta obtener un peso constante, de acuerdo con el M&eacute;todo Oficial de An&aacute;lisis de la Asociaci&oacute;n Oficial de Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica (AOAC 2006), que es una adaptaci&oacute;n del m&eacute;todo de Horwirtz (1980).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El l&iacute;pido total se obtuvo siguiendo el protocolo descrito por Christie (1982). El contenido de l&iacute;pido total se determin&oacute; gravim&eacute;tricamente, usando cloroformo: metanol (2:1) como solvente para la extracci&oacute;n y butilhidroxitolueno como antioxidante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las clases lip&iacute;dicas se separaron por cromatograf&iacute;a en capa fina de alta resoluci&oacute;n y se determinaron por densitometr&iacute;a (dual&#45;wavelength flying spot scanner CS&#45;9001PC, Shimadzu), seg&uacute;n el m&eacute;todo de Olsen y Henderson (1989).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los &aacute;cidos grasos se obtuvieron a partir del l&iacute;pido total por transesterificaci&oacute;n met&iacute;lica y posterior purificaci&oacute;n, conforme al m&eacute;todo de Christie (1982). Una vez purificados, los &eacute;steres met&iacute;licos de &aacute;cidos grasos (FAME) se separaron y cuantificaron mediante el cromat&oacute;grafo de gases TRACE GC Ultra (Thermo Scientific), con un detector de ionizaci&oacute;n a la llama a 240&deg; C y una columna de s&iacute;lice Supelcowax 10 (30 m longitud, 0.32 mm di&aacute;metro y 0.25 &#956;m anchura). El gas portador fue helio. La temperatura inicial del horno fue de 50&deg; C, seguida de un incremento de temperatura a diferentes tasas: de 40 &deg;C min<sup>&#45;1</sup> hasta alcanzar 150 &deg;C, 2 &deg;C min<sup>&#45;1</sup> hasta 200 &deg;C, 1 &deg;C min<sup>&#45;1</sup> hasta 214 &deg;C y, por &uacute;ltimo, de 40 &deg;C min<sup>&#45;1</sup> hasta 230 &deg;C. Finalmente, el horno permaneci&oacute; a 230&deg; C durante 5 min. El tiempo total transcurrido fue de 46.90 min. Para confirmar la identidad de los FAME individualmente, se emple&oacute; un espect&oacute;metro de masas cuadrupolo (Thermo Scientific) con ionizaci&oacute;n electr&oacute;nica (fuente i&oacute;nica a 250 &deg;C). Los intervalos de incremento de temperatura del horno fueron los mismos que los usados en la cromatograf&iacute;a de gases. De nuevo, el gas portador fue helio, con un flujo constante de 1.5 mL min<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n del contenido de prote&iacute;na total se llev&oacute; a cabo mediante una modificaci&oacute;n del m&eacute;todo de Kjeldahl (AOAC 2006). El contenido proteico se calcul&oacute; a partir del contenido de nitr&oacute;geno total de las muestras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de composici&oacute;n bioqu&iacute;mica se presentan como la media &#177; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. Se comprob&oacute; la normalidad de los datos con la prueba de Kolmogorov&#45;Smirrnov para una muestra, as&iacute; como la homogeneidad de las varianzas con la prueba de Levene. Cuando fue necesario, se realiz&oacute; la transformaci&oacute;n de los datos a arcoseno. Para aquellos datos expresados como porcentaje, se aplic&oacute; directamente la transformaci&oacute;n a arcoseno (Fowler <i>et al.</i> 2002). La comparaci&oacute;n entre ejemplares de misid&aacute;ceos salvajes y cultivados se llev&oacute; a cabo mediante la prueba <i>t</i> de Student (Zar 1984). En todas las pruebas estad&iacute;sticas se consider&oacute; diferencia significativa para <i>P &#60;</i> 0.05. Todos los an&aacute;lisis se realizaron mediante el paquete estad&iacute;stico SPSS (versi&oacute;n 13.0).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ensayos de depredaci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto general de la luz fue negativo; el consumo proporcional medio se redujo aproximadamente a la mitad bajo iluminaci&oacute;n cuando los misid&aacute;ceos (los dos tama&ntilde;os agrupados) depredaban nauplios de <i>Artemia</i> y hasta en tres cuartas partes cuando depredaban <i>Brachionus plicatilis</i> (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). Contrariamente, el efecto general del tama&ntilde;o del predador fue positivo en los experimentos con luz, m&aacute;s claramente cuando los misid&aacute;ceos depredaban nauplios de <i>Artemia</i> (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). En cualquier caso, la interpretaci&oacute;n de estos dos factores se vio oscurecida por el t&eacute;rmino de interacci&oacute;n triple, que pareci&oacute; deberse a un debilitamiento del efecto inhibidor de la luz en adultos que deprendan <i>Artemia.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los efectos de la luz en la tasa de depredaci&oacute;n de <i>G. roscoffensis</i> fueron significativos en ambos experimentos (experimento multifactorial, Wald = 13.65, <i>P</i> = 0.000; experimento bifactorial, Wald = 4.164, <i>P</i> = 0.041), particularmente en el experimento multifactorial; el tama&ntilde;o del misid&aacute;ceo s&oacute;lo fue significativo en el experimento bifactorial (Wald = 4.764, <i>P</i> = 0.029), en condiciones de alta replicaci&oacute;n. Finalmente, el t&eacute;rmino de triple interacci&oacute;n (presa x tama&ntilde;o x luz) mostr&oacute; significaci&oacute;n estad&iacute;stica en el experimento multifactorial (Wald = 6.215, <i>P</i> = 0.013) (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Supervivencia y crecimiento</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La supervivencia de los ejemplares de G. <i>roscoffensis</i> mostr&oacute; dos importantes descensos durante el periodo de cultivo. El primero ocurri&oacute; durante los d&iacute;as 9&#45;10, con una tasa de mortalidad de entre 20% y 60%. El segundo episodio de mortalidad tuvo lugar el d&iacute;a 28 en experimentos sin supervivientes en el d&iacute;a 55, o durante los d&iacute;as 40&#45;43 en experiencias con poblaci&oacute;n viable despu&eacute;s del d&iacute;a 50. En relaci&oacute;n al efecto de la iluminaci&oacute;n en la supervivencia, pareci&oacute; registrarse una posible asociaci&oacute;n positiva entre oscuridad y supervivencia en los d&iacute;as 29, 39 y 46 (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t3.jpg" target="_blank">tabla 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento de los misid&aacute;ceos se muestra en la <a href="#f1">figura 1</a>. La longitud inicial del cuerpo de los misid&aacute;ceos fue de 2.7 &#177; 0.2 mm. Se observ&oacute; un pico importante de crecimiento durante las tres primeras semanas, mientras que en la cuarta semana no hubo incremento de tama&ntilde;o. Los ejemplares de misid&aacute;ceos alcanzaron los 9.6 &#177; 0.7 mm de longitud en la sexta semana, aumentando 7 &#177; 0.8 mm a lo largo de todo el experimento (65 d&iacute;as). Las tasas de crecimiento fueron similares a las observadas en otras especies de misid&aacute;ceos (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t4.jpg" target="_blank">tabla 4</a>). Los par&aacute;metros estimados tras ajustar los datos de longitud a una funci&oacute;n de crecimiento de von Bertalanffy (R = 0.967) fueron los siguientes: L&#8734; = 12.1 mm, <i>k</i> = 0.03 d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> y t<sub>0</sub> = &#45;7.2 d&iacute;a.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente experimento, se complet&oacute; el ciclo de vida de <i>G. roscoffensis</i> y se obtuvieron individuos adultos a partir de los juveniles cultivados. Se realizaron observaciones sobre la fecundidad de las hembras en un solo tanque: cuatro adultos produjeron un total de 40 juveniles despu&eacute;s de 54&#45;66 d&iacute;as, obteni&eacute;ndose el mayor n&uacute;mero de juveniles tras 61 d&iacute;as de cultivo. La inspecci&oacute;n visual de hembras ov&iacute;geras de G. <i>roscoffensis</i> indic&oacute; la presencia de 10&#45;14 juveniles por hembra durante el periodo de estudio (obs. pers. A Esc&aacute;nez y E Almansa), pero no se llev&oacute; a cabo un estudio sistem&aacute;tico de los par&aacute;metros de fecundidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>COMPOSICI&Oacute;N NUTRICIONAL</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analiz&oacute; tanto la composici&oacute;n nutricional de los ejemplares salvajes como la de los juveniles nacidos en cautividad y alimentados con la mezcla de <i>Artemia, Brachionus</i> y fitoplancton. Los datos de humedad, prote&iacute;na total, l&iacute;pido total (LT) y clases lip&iacute;dicas de ambos grupos de <i>G. roscoffensis</i> (cultivados y salvajes) se muestran en la <a href="#t5">tabla 5</a>. La prote&iacute;na total (porcentaje en peso seco, incluyendo nitr&oacute;geno no prot&eacute;ico) represent&oacute; el 60.61 &#177; 2.60 y 69.87 &#177; 7.66 en misid&aacute;ceos salvajes y cultivados, respectivamente. El porcentaje de LT fue menor en individuos salvajes (8.10 &#177; 0.71) que en los cultivados (17.47 &#177; 1.72). La composici&oacute;n de clases lip&iacute;dicas (expresada como porcentaje de LT) de ambos grupos present&oacute; diferencias con relaci&oacute;n a los l&iacute;pidos polares y neutros. Entre los l&iacute;pidos polares, las diferencias m&aacute;s notables se observaron en la fosfatidilcolina (PC) y fosfatidiletanolamina (PE), que mostraron valores de 17.42 &#177; 1.00 y 18.64 &#177; 2.50, respectivamente, en individuos salvajes y 9.23 &#177; 0.23 y 7.88 &#177; 0.60, respectivamente, en individuos cultivados. Con relaci&oacute;n a los l&iacute;pidos neutros, los misid&aacute;ceos cultivados revelaron un mayor contenido respecto a los animales salvajes en &aacute;cidos grasos libres (14.13 &#177; 2.5 <i>vs</i> 1.80 &#177; 0.2) y triglic&eacute;ridos (TG) (42.76 &#177; 2.90 <i>vs</i> 28.89 &#177; 0.40).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t5.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#t6">tabla 6</a> muestra la composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos de LT (expresados como porcentaje del total de &aacute;cidos grasos) de <i>G. roscoffensis.</i> Se detectaron diferencias entre misid&aacute;ceos salvajes y cultivados para la mayor&iacute;a de &aacute;cidos grasos analizados. Los &aacute;cidos grasos poliinsaturados (PUFA) y los &aacute;cidos grasos monoinsaturados (MUFA) fueron los grupos mayoritarios de &aacute;cidos grasos en los misid&aacute;ceos cultivados, con 44.21 &#177; 1.84 y 31.77 &#177; 1.38 de LT, respectivamente; mientras que los PUFA, con 50.39 &#177; 0.6, y los &aacute;cidos grasos saturados (SFA), con 32.45 &#177; 0.49, predominan en los animales salvajes. Los &aacute;cidos grasos altamente insaturados de la serie n&#45;3 (n&#45;3 HUFA) fueron claramente m&aacute;s abundantes en los ejemplares salvajes que en los cultivados (39.28 &#177; 0.91 <i>vs</i> 11.21 &#177; 0.88), debido principalmente al 20:5n&#45;3 (&aacute;cido eicosapentaenoico, EPA; 20.43 &#177; 0.35 <i>vs</i> 5.51 &#177; 0.90) y 22:6n&#45;3 (&aacute;cido docosahexanoico, DHA; 17.30 &#177; 1.12 <i>vs</i> 3.48 &#177; 0.27). La relaci&oacute;n DHA:EPA, aunque menor que 1 en ambos casos, fue ligeramente mayor en los individuos salvajes (0.85 <i>vs</i> 0.64). Finalmente, el porcentaje de 20:4n&#45;6 (&aacute;cido araquidonico, ARA) represent&oacute; s&oacute;lo 2.31 &#177; 0.05 y 1.14 &#177; 0.24 del porcentaje de LT en los animales salvajes y cultivados, respectivamente. Las relaciones DHA:ARA y EPA:ARA fueron aproximadamente el doble en ejemplares cultivados que en salvajes.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t6"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t6.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La gesti&oacute;n del cultivo es el factor m&aacute;s importante para conseguir cultivos altamente productivos de misid&aacute;ceos (Lussier <i>et al.</i> 1988). En el presente estudio se utiliz&oacute; un sistema abierto de renovaci&oacute;n, al contrario que en experimentos previos con misid&aacute;ceos (Domingues <i>et al.</i> 1998, 1999). Este sistema de cultivo ten&iacute;a como objetivo mejorar la calidad del agua, ya que se ha observado que las altas concentraciones de amonio, nitratos y nitritos, junto con niveles bajos de ox&iacute;geno disuelto, incrementan la mortalidad de los misid&aacute;ceos (Brandt <i>et al.</i> 1993).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha documentado que la luz inhibe las tasas de alimentaci&oacute;n en misid&aacute;ceos pel&aacute;gicos con migraci&oacute;n vertical como consecuencia de la necesidad de evitar los predadores visuales, pero no en misid&aacute;ceos litorales que pueden ocultarse en la vegetaci&oacute;n de macroalgas, siendo el efecto mayor en animales juveniles (Viherluoto y Viitasalo 2001a). Estos resultados previos no pueden aplicarse directamente a los datos aqu&iacute; presentados, ya que <i>G. roscoffensis</i> muestra inhibici&oacute;n por luz a pesar de ser una especie litoral; de todas formas, esta especie efect&uacute;a una migraci&oacute;n diaria entre los fondos arenosos y la columna del agua, donde puede ser encontrada durante la noche, como ocurre en otras especies de <i>Gastrosaccus</i> (Suau y Vives 1957). Por lo tanto, todav&iacute;a es viable hipotetizar una soluci&oacute;n de compromiso entre la evitaci&oacute;n de los predadores visuales y la necesidad de alimentaci&oacute;n. Sea como fuere, el efecto de la luz aqu&iacute; presentado es de gran importancia en el dise&ntilde;o de protocolos de alimentaci&oacute;n para esta especie.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un segundo hecho de inter&eacute;s es la homogeneidad en las tasas de alimentaci&oacute;n entre juveniles y adultos cuando depredaron rot&iacute;feros, lo que sugiere diferentes mecanismos de captura de acuerdo con las caracter&iacute;sticas de la presa. A este respecto, los rot&iacute;feros del g&eacute;nero <i>Brachionus,</i> nadadores menos poderosos y m&aacute;s transparentes que los nauplios de <i>Artemia,</i> podr&iacute;an ser m&aacute;s propensos a ser capturados mediante mecanismos de filtraci&oacute;n mientras que los nauplios de <i>Artemia</i> lo ser&iacute;an mediante un mecanismo de presa (Viherluoto y Viitasalo 2001b); ambos mecanismos est&aacute;n presentes en otras especies de misid&aacute;ceos, tales como <i>Neomysis integer</i> (Fockedey 2005) y <i>Praunus flexuosus</i> (Viitasalo y Rautio 1998).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, las tasas de depredaci&oacute;n de nauplios de <i>Artemia</i> m&aacute;s peque&ntilde;as que se registraron en el experimento bifactorial pueden ser parcialmente explicadas por la conocida bajada de las tasas de consumo a lo largo del tiempo, lo que implica menores tasas para los ensayos m&aacute;s largos (Gorokhova y Hansson 1997), sin que se pueda excluir un efecto de las diferencias en el grado de repleci&oacute;n digestiva.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio, se utiliz&oacute; una densidad inicial de misid&aacute;ceos de 5 ind L<sup>&#45;1</sup>, ya que los misid&aacute;ceos depredan con mayor probabilidad sobre sus juveniles si la comida es limitante (Reistema y Neff 1980, Lussier <i>et al.</i> 1988, Domingues <i>et al.</i> 1998). La subalimentaci&oacute;n, causante del canibalismo, y la sobrealimentaci&oacute;n, causante de baja calidad del agua, pueden ocurrir con frecuencia. Adem&aacute;s, la densidad de poblaci&oacute;n puede afectar al comportamiento reproductivo; una poblaci&oacute;n muy densa muestra una mayor proporci&oacute;n de hembras con sacos ov&iacute;geros vac&iacute;os (Lussier <i>et al.</i> 1988).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los experimentos de supervivencia llevados a cabo en el presente estudio duraron 55 d&iacute;as, un periodo m&aacute;s largo comparado con los experimentos realizados con <i>Leptomysis</i> sp. (Domingues <i>et al.</i> 2000). Las tasas de supervivencia de los juveniles fueron bajas (40&#45;80%) en los 10 primeros d&iacute;as de cultivo, en consonancia con experiencias anteriores (Domingues <i>et al.</i> 2000, 2001b). Sin embargo, dos eventos de importante mortalidad fueron observados m&aacute;s tarde (d&iacute;a 28 y d&iacute;as 40&#45;43), hecho no recogido por otros autores con otras especies de misid&aacute;ceos. La asociaci&oacute;n aparente entre oscuridad y supervivencia coincide con el tambi&eacute;n efecto positivo de la oscuridad en la tasa de predaci&oacute;n, lo que sugiere una relaci&oacute;n causal entre ingesti&oacute;n y tasa de supervivencia.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En t&eacute;rminos de tasa de crecimiento, <i>G. roscoffensis</i> manifest&oacute; valores similares a los ya obtenidos para otras especies <i>(Leptomysis</i> sp., <i>Mysidopsis almira</i> y <i>Neomysis intermedia)</i> (Domingues <i>et al.</i> 1999, 2000, 2001b). La especie estudiada creci&oacute; 6.8 mm en 42 d&iacute;as, un periodo m&aacute;s largo comparado con el de estudios previos (15&#45;34 d&iacute;as) (Domingues <i>et al.</i> 1999, 2000, 2001b), probablemente debido a la temperatura del cultivo (22&#45;27 &deg;C <i>vs</i> 20 &deg;C en experimentos con <i>G. roscoffensis).</i> Finalmente, Toda <i>et al.</i> (1984) registr&oacute; una alta variaci&oacute;n en las tasas de crecimiento de <i>N. intermedia</i> dependiendo de la dieta, 0.03 mm d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> cuando la alimentaci&oacute;n constaba de nauplios de <i>Artemia</i> enriquecida, rot&iacute;feros y <i>Daphnia,</i> y 0.32 mm d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> cuando la alimentaci&oacute;n se basaba en rot&iacute;feros y <i>Daphnia</i> (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a1t3.jpg" target="_blank">tabla 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n a la composici&oacute;n bioqu&iacute;mica, los porcentajes (porcentaje en peso seco) de prote&iacute;na total de los ejemplares salvajes y cultivados de <i>G. roscoffensis</i> (60.61 &#177; 2.60 y 69.87 &#177; 7.66, respectivamente) fueron similares a los valores obtenidos en otras especies de misid&aacute;ceos (salvajes y/o cultivados), tales como <i>Metamysidopsis insularis</i> (Guevara <i>etal.</i> 2005), <i>Mesopodopsis orientalis</i> (Eusebio <i>et al.</i> 2010), <i>Paramysis nouveli</i> y <i>Leptomysis lingvura</i> (Herrera <i>et al.</i> 2009). De la misma manera, el porcentaje de LT de los individuos de <i>G. roscoffensis</i> cultivados fue similar a los valores de las especies anteriormente mencionadas. En cambio, el LT de los ejemplares salvajes de <i>G. roscoffensis</i> (8.10 &#177; 0.71) fue aproximadamente la mitad de los valores presentados en los art&iacute;culos ya mencionados; &uacute;nicamente los ejemplares salvajes de <i>M. orientalis</i> muestran un valor semejante de LT (10.60 &#177; 0.10).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La composici&oacute;n de clases lip&iacute;dicas reflej&oacute; diferencias significativas cuando se compararon los datos con los obtenidos para ejemplares cultivados de <i>N. intermedia</i> (Ando y Nozaki 2007). En los misid&aacute;ceos cultivados de <i>G. roscoffensis,</i> los l&iacute;pidos neutros representaron la fracci&oacute;n principal (74.18% de LT), con un alto porcentaje de TG (42.76%), pero en <i>N. intermedia</i> los l&iacute;pidos polares (principalmente PE, PC y fosfatidilinositol (PI)) fueron claramente predominantes (63.8 %), representando los TG &uacute;nicamente el 6.8% de LT (Ando y Nozaki 2007). Otro dato relevante es el porcentaje de &aacute;cidos grasos libres encontrado en ejemplares de <i>G. roscoffensis</i> cultivados (14.13% de LT). Este valor tan elevado de esta clase lip&iacute;dica no es usual en los organismos marinos, pero el dato concuerda con los valores de &aacute;cidos grasos libres observados en <i>N. intermedia</i> (Ando y Nozaki 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos de los ejemplares salvajes recolectados en el presente estudio reflej&oacute; la composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos de otras especies de misid&aacute;ceos previamente estudiadas, como <i>Amblyops kempy</i> (Woods y Valentino 2003) y <i>M. orientalis</i> (Eusebio <i>et al.</i> 2010), as&iacute; como de otras especies marinas componentes del zooplancton (Brett <i>et al.</i> 2009), en las cuales los &aacute;cidos grasos m&aacute;s importantes fueron 16:0, 20:5n&#45;3 y 22:6n&#45;3. Por otro lado, la especie <i>M. insularis</i> salvaje present&oacute; bajos niveles de estos dos &uacute;ltimos &aacute;cidos grasos (Guevara <i>et al.</i> 2005). Tras el periodo de cultivo, <i>G. roscoffensis</i> mostr&oacute; diferencias con los ejemplares salvajes. Los niveles de DHA y EPA descendieron significativamente y la composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos de <i>G. roscoffensis</i> cultivado pas&oacute; a ser caracterizada por una predominancia de 18C&#45;PUFA y monoenos, siendo el 18:3n&#45;3 (&aacute;cido linoleico) el &aacute;cido graso principal de LT (22.34% de LT), seguido por el 18:1n&#45;9 (&aacute;cido oleico).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es llamativo el hecho de que la composici&oacute;n lip&iacute;dica de los ejemplares cultivados de <i>G. roscoffensis</i> obtenida en este estudio refleja la composici&oacute;n lip&iacute;dica de la <i>Artemia</i> comercial (Coutteau y Mourente 1997) empleada como presa, en especial los altos niveles de TG y 18:3n&#45;3, as&iacute; como los bajos niveles de n&#45;3 HUFA. No obstante, la relaci&oacute;n DHA:EPA se ve disminuida en s&oacute;lo un 25% (de 0.85 a 0.63), a pesar de la relaci&oacute;n DHA:EPA cercana a cero detectada en la <i>Artemia</i> reci&eacute;n eclosionada, sin enriquecer (Coutteau y Mourente 1997). Una posible explicaci&oacute;n a esta semejanza con el perfil de &aacute;cidos grasos de <i>Artemia</i> podr&iacute;a ser la alta ingesti&oacute;n de esta presa por parte de los misid&aacute;ceos, como fue ya descrito por Domingues <i>et al.</i> (2001b). Las diferencias en la composici&oacute;n nutricional entre especies de misid&aacute;ceos pueden estar ocasionadas por las diferencias entre ejemplares salvajes y cultivados, e incluso por los diferentes h&aacute;bitats de alimentaci&oacute;n entre especies epib&eacute;nticas y planct&oacute;nicas (i.e., <i>Leptomysis</i> spp. y <i>Mysidium</i> spp.). De hecho, las especies de agua dulce se caracterizan por altos niveles de 18:3n&#45;3, y una especie de <i>Gastrosaccus (G. sanctus)</i> se ha descrito asimismo en el r&iacute;o Ebro, lo cual podr&iacute;a explicar la composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos descrita en estas especies. Tomados en su conjunto, estos datos nutricionales sugieren que la composici&oacute;n lip&iacute;dica de <i>G. roscoffensis</i> cultivado podr&iacute;a ser pobre en t&eacute;rminos de calidad lip&iacute;dica. Sin embargo, las altas tasas de predaci&oacute;n hacia la <i>Artemia</i> indican que los protocolos habituales de enriquecimiento de <i>Artemia</i> con n&#45;3 HUFA podr&iacute;an emplearse para transferir estos nutrientes a <i>G. roscoffensis</i> y convertirlo en un tipo de presa alternativa y/o complementaria. Otra posibilidad de mejorar el perfil de &aacute;cidos grasos del misid&aacute;ceo es enriquecer a los ejemplares con emulsiones lip&iacute;dicas, tal y como fue estudiado anteriormente por Ando y Nozaki (2007) para el misid&aacute;ceo <i>N. intermedia.</i> Tras el periodo de cultivo, los niveles de DHA oscilaron entre 23.3 y 14.3 (porcentaje del total de &aacute;cidos grasos).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, convendr&iacute;a tener en consideraci&oacute;n otros nutrientes, como amino&aacute;cidos, carbohidratos, oligoelementos, vitaminas y carotenoides. Igualmente, para profundizar en todos los aspectos mencionados, son necesarias m&aacute;s investigaciones y estudios acerca de la calidad nutricional de <i>G. roscoffensis</i> bajo diferentes protocolos de cultivo, incluyendo diversas presas o dieta inerte.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, los misid&aacute;ceos han demostrado ser una buena presa por su accesibilidad en el mar, pudiendo ser capturados con medios sencillos y econ&oacute;micos. De hecho, algunas especies han sido masivamente producidas y vendidas como presas. La especie del presente estudio, <i>G. roscoffensis,</i> podr&iacute;a ser una buena candidata como presa complementaria para estadios larvarios de especies con inter&eacute;s comercial. Aunque <i>G. roscoffensis</i> no puede sustituir todav&iacute;a a los nauplios de <i>Artemia</i> en los protocolos de cultivo y, por tanto, no puede ser considerada estrictamente como presa alternativa, nos gustar&iacute;a llamar la atenci&oacute;n en el hecho de que los misid&aacute;ceos pueden mejorar la ingesti&oacute;n y las tasas de supervivencia en aquellas especies que requieren de presas de mayor tama&ntilde;o en los primeros estadios, tales como los cefal&oacute;podos. Las zoeas de ciertos dec&aacute;podos han sido empleadas como presa complementaria, pero tambi&eacute;n necesaria, para mejorar la supervivencia de las paralarvas de <i>Octopus vulgaris,</i> y muchos autores han apoyado la investigaci&oacute;n con misid&aacute;ceos en dicho contexto (Iglesias <i>et al.</i> 2007). De manera similar, los juveniles de <i>Sepia officinalis</i> no crecen de forma adecuada con una dieta que incluya solo <i>Artemia</i> adulta (Domingues <i>et al.</i> 2001a). Las condiciones de alimentaci&oacute;n y el cultivo de ambas especies, <i>O. vulgaris</i> y <i>S. officinalis,</i> est&aacute;n siendo ampliamente investigadas con fines productivos en la actualidad tanto en Espa&ntilde;a como en Portugal. El tama&ntilde;o, la palatabilidad, la tasas de crecimiento y supervivencia, y la reproducci&oacute;n en cautividad deber&iacute;an ser tomadas en cuenta para futuras experiencias de cultivo con <i>G. roscoffensis.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el objetivo de considerar al misid&aacute;ceo <i>G. roscoffensis</i> como una presa viva en acuicultura, sugerimos el uso de tanques aireados en oscuridad con densidades de 5 ind L<sup>&#45;1</sup>y la alimentaci&oacute;n <i>ad libitum</i> con una mezcla de fitoplancton <i>(Chlorella</i> sp.), <i>Brachionus,</i> y nauplios de <i>Artemia</i> enriquecida con n&#45;3 HUFA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo ha sido en parte desarrollado por el proyecto de investigaci&oacute;n PRESAPUL ("Uso de presas alternativas para el crecimiento de paralarvas de pulpo com&uacute;n <i>(Octopus vulgaris)</i> (2009&#45;2011) referencia, PI SolsubC200801000162"), financiado por el Gobierno de Canarias (ACIISI), as&iacute; como el proyecto de investigaci&oacute;n NUTRIPULPO, financiado por JACUMAR (Gobierno de Espa&ntilde;a). Los autores agradecen a G Guerao (Institut de Recerca i Tenolog&iacute;a Agroalimentarias, Espa&ntilde;a) y C San Vicente (Universidad Aut&oacute;noma de Barcelona, Espa&ntilde;a) la confirmaci&oacute;n taxon&oacute;mica de <i>G. roscoffensis,</i> y a V Mart&iacute;n (Instituto Espa&ntilde;ol de Oceanograf&iacute;a, Canarias) por sus comentarios constructivos en la versi&oacute;n preliminar del manuscrito.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Agresti A. 2007. An Introduction to Categorical Data Analysis. 2nd ed. Wiley, Hoboken, New Jersey, 372 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944291&pid=S0185-3880201200040000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ando Y, Nozaki M. 2007. Lipid profile of mysid <i>Neomysis</i> <i>intermedia</i> and its changes by feeding DHA&#45;rich marine lipids. J. Oleo Sci. 56: 471&#45;478.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944293&pid=S0185-3880201200040000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AOAC. 2006. Analysis of the Association of Official Analytical Chemistry. Official method 942.05. 2590 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944295&pid=S0185-3880201200040000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bacescu M. 1970. Contributions &aacute; l'&eacute;tude morpho&eacute;cologique des Gastrosaccinae (Crustacea, Mysidacea) du versant est de l'Atlantique et de la M&eacute;diterran&eacute;e. Description de <i>G.</i> <i>mediterraneus</i> n.sp., <i>G. olivae</i> n.sp. et <i>G. roscoffensis</i> n.sp. Rev. Roum. Biol. Zool. 15: 217&#45;234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944297&pid=S0185-3880201200040000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brandt OM, Fujimura RW, Finlayson B. 1993. Use of <i>Neomysis mercedis</i> (Crustacea: Mysidacea) for estuarine toxicity test. Trans. Am. Fish Soc. 122: 279&#45;288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944299&pid=S0185-3880201200040000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brett MT, M&uuml;ller&#45;Navarra DC, Persson J. 2009. Crustacean zooplankton fatty acid composition. In: Arts MT, Brett MT, Kainz MJ. (eds.), Lipids in Aquatic Ecosystems. Springer, New York, 377 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944301&pid=S0185-3880201200040000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Christie W. 1982. Lipid Analysis. Isolation, Separation, Identification, and Structural Analysis of Lipids. 2nd ed. Pergamon Press, New York, 207 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944303&pid=S0185-3880201200040000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coutteau P, Mourente G. 1997. Lipid classes and their contents of n3 highly unsaturated fatty acids (HUFA) in <i>Artemia franciscana</i> after hatching, HUFA&#45;enrichment and subsequent starvation. Mar. Biol. 130: 81&#45;91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944305&pid=S0185-3880201200040000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domingues P, Turk PE, Andrade JP, Lee PG. 1998. Pilot&#45;scale production of mysid shrimp in a static water system. Aquacult. Int. 6 : 3 87&#45;402.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944307&pid=S0185-3880201200040000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domingues PM, Turk PE, Andrade JP, Lee PG. 1999. Culture of the mysid, <i>Mysidopsis almyra</i> (Bowman) (Crustacea: Mysidacea), in a static water system: Effects of density and temperature on production, survival and growth. Aquacult. Res. 30: 135&#45;143.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944309&pid=S0185-3880201200040000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domingues PM, Fores F, Turk PE, Lee PG, Andrade JP. 2000. Mysid culture: Lowering costs with alternative diets. Aquacult. Res. 31: 719&#45;728.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944311&pid=S0185-3880201200040000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domingues PM, Sykes AV, Andrade JP. 2001a. The use of <i>Artemia</i> sp. or mysids as food source for hatchlings of the cuttlefish <i>(Sepia officinalis</i> L.); effects on growth and survival throughout the life cycle. Aquacult. Int. 4: 319&#45;331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944313&pid=S0185-3880201200040000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domingues PM, Turk PE, Andrade JP, Lee PG. 2001b. Effects of different food items on the culture of the mysid shrimp <i>Mysidopsis almyra</i> (Crustacea: Pericaridea) in a static water system. Aquacult. Int. 9: 393&#45;400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944315&pid=S0185-3880201200040000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eusebio PS, Coloso RM, Gapasin RSJ. 2010. Nutritional evaluation of mysids <i>Mesopodopsis orientalis</i> (Crustacea: Mysida) as live food for grouper <i>Epinephelus fuscoguttatus</i> larvae. Aquaculture 306(1/4): 289&#45;294.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944317&pid=S0185-3880201200040000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fischelson L, Loya Y. 1968. Preliminary observations on a population of <i>Gastrosaccus sanctus</i> (Van Beneden) (Mysidacea, Gastrosaccinae) on a Mediterranean sand beach of Israel. Crustaceana 15: 149&#45;152.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944319&pid=S0185-3880201200040000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fockedey N. 2005. Diet and growth of <i>Neomysis integer</i> (Leach 1814) (Crustacea, Mysidacea). PhD thesis, University of Ghent.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944321&pid=S0185-3880201200040000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fowler J, Cohen L, Jarvis P. 2002. Practical Statistics for Field Biology. 2nd ed. Wiley and Sons, West Sussex, UK, 259 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944323&pid=S0185-3880201200040000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gorokhova E. 2002. Moult cycle and its chronology in <i>Mysis mixta</i> and <i>Neomysis integer</i> (Crustacea: Mysidacea): Implications for growth assessment. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 278: 179&#45;194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944325&pid=S0185-3880201200040000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gorokhova E, Hansson S. 1997. Effects of experimental conditions on the feeding rates of <i>Mysis mixta</i> (Crustacea, Mysidacea). Hydrobiologia 355: 167&#45;172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944327&pid=S0185-3880201200040000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gorokhova E, Hansson S. 2000. Elemental composition of <i>Mysis mixta</i> (Crustacea: Mysidacea) and energy costs of reproduction and embryogenesis under laboratory conditions. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 246: 103&#45;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944329&pid=S0185-3880201200040000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guevara M, Lodeiros C, Donato MD, Graciani C, Freites L. 2005. Nutritional quality of <i>Metamysidopsis insularis</i> Brattegard (Crustacea: Mysidacea). Aquacult. Nutr. 11: 315&#45;319.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944331&pid=S0185-3880201200040000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera A, G&oacute;mez M, Molina L, Otero F, Packard T. 2009. Advances in rearing techniques and analysis of nutritional quality of two mysid species present in Gran Canaria. Eur. Aquacult. Soc. Spec. Publ. 38: 171&#45;174.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944333&pid=S0185-3880201200040000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Horwitz W. 1980. Methods of Analysis. 13th ed. Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC, 1038 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944335&pid=S0185-3880201200040000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Iglesias J, S&aacute;nchez JL, Bersano JGF, Carrasco JF, Dhont J, Fuentes L, Linares L, Mu&ntilde;oz JL, Okumura S, Roo J, van der Meeren T, Vidal EAG, Villanueva R. 2007. Rearing of <i>Octopus vulgaris</i> paralarvae: Present status, bottlenecks and trends. Aquaculture 266: 1&#45;15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944337&pid=S0185-3880201200040000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Johnston NT, Lasenby DC. 1982. Diet and feeding of <i>Neomysis mercedis</i> Holmes (Crustacea, Mysidacea) from the Fraser River Estuary, British Columbia. Can. J. Zool. 60: 813&#45;824.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944339&pid=S0185-3880201200040000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuhn AH, Bengtson DD, Simpson KL. 1991. Increased reproduction by mysids <i>(Mysidopsis bahia)</i> fed with enriched <i>Artemia</i> sp. nauplii. Am. Fish. Soc. Symp. 9: 192&#45;199.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944341&pid=S0185-3880201200040000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Le Francois N, Jobling M, Carter C, Blier P. 2009. Finfish aquaculture: Species selection for diversification. CABI International, Oxforshire, UK, 640 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944343&pid=S0185-3880201200040000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lussier SM, Kuhn A, Chammas MJ, Sewall J. 1988. Techniques for the laboratory culture of <i>Mysidopsis</i> species (Crustacea: Mysidacea). Environ. Toxicol. Chem. 7: 969&#45;977.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944345&pid=S0185-3880201200040000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mauchline J. 1980. The biology of mysids and euphausiids. Adv. Mar. Biol. 18: 1&#45;681.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944347&pid=S0185-3880201200040000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McQuart&#45;Moulin C, Ribera&#45;Maycas E. 1995. Inshore and offshore diel migrations in European benthopelagic mysids, genera <i>Gastrosaccus, Anchialina</i> and <i>Haplostylus</i> (Crustacea, Mysidacea). J. Plankton Res. 17: 531&#45;555.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944349&pid=S0185-3880201200040000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Olsen RE, Henderson RJ. 1989. The rapid analysis on neutral and polar marine lipids using double development HPTLC and scanning densitometry. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 129: 189&#45;197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944351&pid=S0185-3880201200040000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reistema L, Neff JM. 1980. A recirculating artificial seawater system for the laboratory culture of <i>Mysidopsis almyra</i> (Crustacea: Pericaridea). Estuaries 3: 321&#45;323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944353&pid=S0185-3880201200040000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stottrup J, McEvoy LA. 2003. Live Feeds in Marine Aquaculture. Blackwell, Oxford, 318 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944355&pid=S0185-3880201200040000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Suau P, Vives F. 1957. Sobre la presencia de <i>Gastrosaccus sanctus</i> (van Beneden) en la desembocadura del r&iacute;o Ebro. Invest. Pesq. 8: 121&#45;126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944357&pid=S0185-3880201200040000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toda H, Takahashi M, Ichumura S. 1984. The effect of temperature on the post&#45;embryonic growth of <i>Neomysis intermedia</i> Czerniawsky (Crustacea, Mysidacea) under laboratory conditions. J. Plankton Res. 6: 647&#45;662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944359&pid=S0185-3880201200040000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Viherluoto M, Viitasalo M. 2001a. Effect of light in the feeding rates of pelagic and littoral mysid shrimps: A trade&#45;off between feeding success and predation avoidance. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 261: 237&#45;241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944361&pid=S0185-3880201200040000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Viherluoto M, Viitasalo M. 2001b. Temporal variability in functional responses and prey selectivity of the pelagic mysid, <i>Mysis mixta,</i> in natural prey assemblages. Mar. Biol. 138:575&#45;583.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944363&pid=S0185-3880201200040000100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Viherluoto M, Kuosa H, Flinkman J, Viitasalo M. 2000. Food utilisation of pelagic mysids, <i>Mysis mixta</i> and <i>M. relicta,</i> during their growing season in the northen Baltic Sea. Mar. Biol. 136:553&#45;559.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944365&pid=S0185-3880201200040000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Viitasalo M, Rautio M. 1998. Zooplanktivory by <i>Praunus flexuosus</i> (Crustacea: Mysidacea): Functional responses and prey selection in relation to prey escape responses. Mar. Ecol. Prog. Ser. 174: 77&#45;87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944367&pid=S0185-3880201200040000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Von Bertalanffy L. 1938. A quantitave theory of organic growth (inquiries on growth laws). Hum. Biol. 10: 181&#45;213.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944369&pid=S0185-3880201200040000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wittmann K, Moro L, Riera R. 2010. Sobre la distribuci&oacute;n de <i>Gastrosaccus roscoffensis</i> (Crustacea: Mysida) en el Atl&aacute;ntico nororiental y primer registro para las islas canarias. Rev. Acad. Canar. Cienc. XXII(4): 91&#45;101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944371&pid=S0185-3880201200040000100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Woods CMC, Valentino F. 2003. Frozen mysids as an alternative to live <i>Artemia</i> in culturing seahorses <i>Hippocampus abdominalis.</i> Aquacult. Res. 34: 757&#45;763.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944373&pid=S0185-3880201200040000100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zar JH. 1984. Biostatistical Analysis. Prentice&#45;Hall, Englewood Cliffs, New Jersey, 619 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1944375&pid=S0185-3880201200040000100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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