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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de los exudados orgánicos de Phaeodactylum tricornutum en la constante de velocidad de oxidación del Fe(II)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Fe(II) oxidation kinetics were studied in seawater and in seawater enriched with exudates excreted by Phaeodactylum tricornutum as an organic ligand model. The exudates produced after 2, 4, and 8 days of culture at 6.21 x 10(7), 2.29 x 10(8), and 4.98 x 10(8) cell L-1 were selected. The effects of pH (7.2-8.2), temperature (5-35 °C), and salinity (10-36.72) on the Fe(II) oxidation rate were studied. All the data were compared with the results for seawater without exudates (control). The Fe(II) rate constant decreased as a function of culture time and cell concentration in the culture at different pH, temperature, and salinity. All the experimental data obtained in this study were fitted to a polynomial function in order to quantify the fractional contribution of the organic exudates from the diatoms to the Fe(II) oxidation rate in natural seawater. Experimental results showed that the organic exudates excreted by P. tricornutum affect Fe(II) oxidation, increasing the lifetime of Fe(II) in seawater. A kinetic model approach was carried out to account for the speciation of each Fe(II) type together with its contribution to the overall rate.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de los exudados org&aacute;nicos de <i>Phaeodactylum tricornutum</i> en la constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II)</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of organic exudates of <i>Phaeodactylum tricornutum</i> on the Fe(II) oxidation rate constant</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>AG Gonz&aacute;lez, JM Santana&#45;Casiano*, M Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila, N P&eacute;rez</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Universidad de Las Palmas de Gran Canaria, Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias del Mar, Campus de Tafira, 35017 Las Palmas, Spain</i>. * Corresponding author. E&#45;mail: <a href="mailto:jmsantana@dqui.ulpgc.es">jmsantana@dqui.ulpgc.es</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Received June 2010    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Received in revised form May 2011    <br> Accepted May 2011.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Se estudi&oacute; la cin&eacute;tica de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en agua de mar y en agua de mar enriquecida con exudados excretados por <i>Phaeodactylum tricornutum</i> como modelo de ligando org&aacute;nico. Se seleccionaron los exudados producidos despu&eacute;s de 2, 4 y 8 d&iacute;as de cultivo, correspondientes a 6.21 x 10<sup>7</sup>, 2.29 x 10<sup>8</sup> y 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;lulas L<sup>&#45;1</sup>. Se estudi&oacute; el efecto del pH (7.2&#45;8.2), la temperatura (5&#45;35 &deg;C) y la salinidad (10&#45;36.72) en la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II). Todos los datos se compararon con los resultados obtenidos en agua de mar sin exudados (control). La constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) disminuy&oacute; en funci&oacute;n del tiempo de cultivo y la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas a diferentes valores de pH, temperatura y salinidad. Todos los datos experimentales obtenidos en este estudio se ajustaron a una funci&oacute;n polin&oacute;mica con el objetivo de cuantificar la contribuci&oacute;n parcial de los exudados org&aacute;nicos de diatomeas a la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en agua de mar. Los resultados experimentales mostraron que los exudados org&aacute;nicos excretados por <i>P. tricornutum</i> afectan a la oxidaci&oacute;n del Fe(II) incrementando su tiempo de vida media en agua de mar. Se aplic&oacute; un modelo cin&eacute;tico para calcular la especiaci&oacute;n de Fe(II) y la contribuci&oacute;n de cada especie a la velocidad total del proceso de oxidaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Fe(II), oxidaci&oacute;n, exudados org&aacute;nicos, diatomeas, ox&iacute;geno.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Fe(II) oxidation kinetics were studied in seawater and in seawater enriched with exudates excreted by <i>Phaeodactylum tricornutum</i> as an organic ligand model. The exudates produced after 2, 4, and 8 days of culture at 6.21 x 10<sup>7</sup>, 2.29 x 10<sup>8</sup>, and 4.98 x 10<sup>8</sup> cell L<sup>&#45;1</sup> were selected. The effects of pH (7.2&#45;8.2), temperature (5&#45;35 &deg;C), and salinity (10&#45;36.72) on the Fe(II) oxidation rate were studied. All the data were compared with the results for seawater without exudates (control). The Fe(II) rate constant decreased as a function of culture time and cell concentration in the culture at different pH, temperature, and salinity. All the experimental data obtained in this study were fitted to a polynomial function in order to quantify the fractional contribution of the organic exudates from the diatoms to the Fe(II) oxidation rate in natural seawater. Experimental results showed that the organic exudates excreted by <i>P. tricornutum</i> affect Fe(II) oxidation, increasing the lifetime of Fe(II) in seawater. A kinetic model approach was carried out to account for the speciation of each Fe(II) type together with its contribution to the overall rate.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Fe(II), oxidation, organic exudates, diatom, oxygen.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El hierro es un elemento esencial en las aguas naturales debido a su utilizaci&oacute;n como micronutriente por los microorganismos y al papel fundamental que desempe&ntilde;a en la asimilaci&oacute;n del nitr&oacute;geno (Sunda y Huntsman 1997). El ciclo biogeoqu&iacute;mico del hierro a&uacute;n no se ha definido totalmente, especialmente en el caso del Fe(II). El Fe(II) puede llegar al oc&eacute;ano desde diferentes fuentes: deposici&oacute;n h&uacute;meda (Faust y Zeep 1993, Millero <i>et al.</i> 1995, Kieber <i>et al.</i> 2001), reducci&oacute;n fotoqu&iacute;mica (Wells <i>et al.</i> 1991, Johnson <i>et al.</i> 1994) y producci&oacute;n biol&oacute;gica directa (Maldonado y Price 2001, Kustka <i>et al.</i> 2005, Rose <i>et al.</i> 2005). Una vez que se encuentra en aguas superficiales, el Fe(II) deber&iacute;a oxidarse r&aacute;pida&#45;mente a Fe(III). Trabajos previos han estudiado la oxidaci&oacute;n del Fe(II) (Stumm y Lee 1961; Ghost 1974; Kester <i>et al.</i> 1975; Tamura <i>et al.</i> 1976; Sung y Morgan 1980; Davison y Seed 1983; Millero <i>et al.</i> 1987; Millero y Sotolongo 1989; King <i>et al.</i> 1995; Emennegger <i>et al.</i> 1998; Santana&#45;Casiano <i>et al. </i>2000, 2004, 2005; Gunnars <i>et al.</i> 2002; Rose y Waite 2002; Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila <i>et al.</i> 2005, 2006; Roy <i>et al.</i> 2008) para caracterizar la qu&iacute;mica del Fe(II) en aguas naturales. El mecanismo de oxidaci&oacute;n del Fe(II) m&aacute;s aceptado en aguas naturales es el de Haber&#45;Weiss:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde las especies de Fe(II), FeOH<sup>+</sup> y Fe(OH)<sub>2</sub> son las que m&aacute;s contribuyen al proceso de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en funci&oacute;n del pH (Millero <i>et al.</i> 1987). Adem&aacute;s, los carbonatos presentes en el agua de mar reaccionan con el Fe(II) formando FeCO<sub>3</sub>, FeHCO<sub>3</sub><sup>+</sup>, Fe(CO<sub>3</sub>)<sub>2</sub><sup>2&#45;</sup> (Millero e Izaguirre 1989). La velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) est&aacute; fuertemente afectada por la formaci&oacute;n de Fe(CO<sub>3</sub>)<sub>2</sub><sup>2&#45;</sup> (King 1998). Tambi&eacute;n se ha estudiado el efecto del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en la constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) a concentraciones micro&#45;molares (Millero y Sotolongo 1989, Millero <i>et al.</i> 1991) y nanomolares (Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila <i>et al.</i> 2005, 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de material org&aacute;nico afecta a la cin&eacute;tica de oxidaci&oacute;n del Fe(II), acelerando o retardando la velocidad de oxidaci&oacute;n (Theis y Singer 1974; Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2000, 2004; Rose y Waite 2003). Existen evidencias de la presencia de complejos org&aacute;nicos de Fe(II) en aguas oce&aacute;nicas (Rue y Bruland 1997, Croot <i>et al.</i> 2001). Monitoreando concentraciones nanomolares de Fe(II) en aguas superficiales, se han medido concentraciones persistentes de esta especie en aguas superficiales (Croot <i>et al.</i> 2001, 2005) varios d&iacute;as despu&eacute;s de experimentos de enriquecimiento con hierro en el oc&eacute;ano del Sur (SOIREX y EisenEX). Roy <i>et al.</i> (2008), en el Pac&iacute;fico sub&aacute;rtico, midieron un m&aacute;ximo superficial de Fe(II) de 40 pM. En estos estudios la presencia de Fe(II) se atribuy&oacute; a las reacciones con ligandos org&aacute;nicos, posiblemente originados por microalgas. En este sentido, la especiaci&oacute;n de los metales traza, como el hierro, en el agua de mar est&aacute; controlada por la presencia de ligandos org&aacute;nicos (Gledhill y van den Berg 1994, Rue y Bruland 1995, van den Berg 1995, Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2000, Vasconcelos <i>et al.</i> 2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de los trabajos relacionados con la complejaci&oacute;n de hierro en el oc&eacute;ano se han llevado a cabo para el Fe(III) (Rue y Bruland 1995, Kuma <i>et al.</i> 1996, Witter y Luther 1998, Vasconcelos <i>et al.</i> 2002, Chen <i>et al.</i> 2003, Gerringa <i>et al.</i> 2007, Hirose 2007, Laglera y van den Berg 2007, Fujii <i>et al.</i> 2008, Rijkenberg <i>et al.</i> 2008). Sin embargo, pocos trabajos han considerado el efecto de los exudados en la oxidaci&oacute;n del Fe(II) (Steigenberger <i>et al.</i> 2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En aguas naturales existe una mezcla de compuestos org&aacute;nicos producidos por microorganismos y diferentes microalgas. Para elucidar la influencia de los diferentes ligandos org&aacute;nicos excretados por estos organismos se requieren estudios con especies individuales de microalgas. En este trabajo se estudi&oacute; el efecto de los exudados producidos por una especie en particular, la diatomea <i>Phaeodactylum tricornutum,</i> en la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II), en funci&oacute;n del pH (7.2&#45;8.2), la temperatura (5&#45;35 &deg;C) y la salinidad (10&#45;36.72). Los experimentos se llevaron a cabo para distintas fases de crecimiento. Se ha seleccionado esta especie de diatomea debido a su amplia variedad de h&aacute;bitats y porque es considerada uno de los organismos fotosint&eacute;ticos m&aacute;s abundantes en el medio marino.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reactivos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agua de mar utilizada en este estudio procede de una zona frente a la costa de Gran Canaria (septiembre de 2009). La disoluci&oacute;n patr&oacute;n de Fe(II) (4 x 10<sup>&#45;4</sup> M) se prepar&oacute; a partir de sulfato de Fe(II) am&oacute;nico hexahidratado (Sigma), acidificado a pH 2 con HCl Suprapuro (Sigma) en NaCl (0.7 M). La concentraci&oacute;n inicial de Fe(II) en los estudios fue 25 nM. Todas las disoluciones fueron preparadas con agua Milli&#45;Q (18 MQ) y filtradas por 0.1 &#956;m. Los reactivos empleados para la determinaci&oacute;n de Fe(II) eran de grado anal&iacute;tico traza. Los nutrientes del medio de cultivo f/2 se prepararon de acuerdo con Guillard (1975). Las disoluciones est&aacute;ndares de nutrientes se prepararon a partir de nitrato de sodio (Sigma) (0.88 M), hidr&oacute;geno fosfato de potasio (Sigma) (0.03 M) y silicato de sodio (Sigma) (0.14 M). Para las diversas condiciones fisicoqu&iacute;micas de este estudio, la concentraci&oacute;n de NO<sub>3</sub><sup>&#45;</sup>, HPO<sub>4</sub><sup>2&#45;</sup> y SiO<sub>3</sub><sup>2&#45;</sup> se mantuvo constante en 8.83 x 10<sup>&#45;4</sup>, 2.93 x 10<sup>&#45;5</sup> y 1.42 x 10<sup>&#45;4</sup> M, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Medidas de pH</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El pH se midi&oacute; en escala libre de i&oacute;n hidr&oacute;geno, pH<sub>F</sub> = &#45;log&#91;H<sup>+</sup>&#93;, haciendo uso de un potenci&oacute;metro Orion y calibrando el electrodo combinado (ROSS Combination, glass body) con la disoluci&oacute;n tamp&oacute;n Tris&#45;(hidroximetil)aminometano(Tris)&#45;agua de mar artificial (Millero 1986). La disoluci&oacute;n tamp&oacute;n se prepar&oacute; en 0.005 mol kg<sup>&#45;1</sup> Tris y Tris&#45;HCl en agua de mar artificial. En este estudio se consider&oacute; el efecto de la temperatura y la salinidad en el pK* del Tris de agua de mar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cultivos de algas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se seleccion&oacute; <i>P. tricornutum</i> como la especie de fitoplancton para estudiar el efecto de los exudados en la constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II). Esta diatomea fue suministrada por el Banco Espa&ntilde;ol de Algas (BEA) de Taliarte (Gran Canaria). Los cultivos ax&eacute;nicos se mantuvieron con el medio f/2 (Guillard 1975) en una c&aacute;mara de cultivo (Friocell, FC111). Las c&eacute;lulas fueron contadas diariamente haciendo uso de un microscopio (MicroBioTests Inc.) con un hemocit&oacute;metro y midiendo la absorbancia (640 nm) con un espectrofot&oacute;metro (USB4000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las algas se cultivaron en agua de mar (filtrada por 0.45 &#181;m) enriquecida con los nutrientes del medio de cultivo f/2. La concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas inicial siempre fue 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>. La temperatura se mantuvo constante a 24 &deg;C, bajo iluminaci&oacute;n permanente (24 h). Los cultivos alcanzaron la fase estacionaria a una densidad de 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>, despu&eacute;s de 8 d&iacute;as de crecimiento (<a href="#f1">fig. 1</a>). Antes de cada experimento, los cultivos se filtraron en dos etapas, la primera por gravedad, con un filtro de 1.2 &#181;m, y la segunda al vac&iacute;o, utilizando un filtro de 0.1 &#181;m para evitar la ruptura de c&eacute;lulas. Todos los filtros utilizados en este estudio fueron previamente lavados con HCl (10% en agua Milli&#45;Q). El agua de mar control se prepar&oacute; a partir de agua de mar con la misma concentraci&oacute;n de nutrientes f/2, tambi&eacute;n filtrada por 0.1 &#124;am. El m&eacute;todo se resume en la <a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f2.jpg" target="_blank">figura 2</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f1.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Experimentos de oxidaci&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estudios de oxidaci&oacute;n del Fe(II) se llevaron a cabo en un matraz de reacci&oacute;n de vidrio de doble camisa, termostatizado (250 mL) usando un ba&ntilde;o AG&#45;2 (&#177;0.02 &deg;C), para un rango de temperatura entre 5 y 35 &deg;C. Las muestras fueron agitadas con un agitador magn&eacute;tico recubierto de tefl&oacute;n. La velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) se estudi&oacute; en el agua de mar control y en el agua de mar enriquecida con exudados org&aacute;nicos en condiciones de saturaci&oacute;n de aire, burbujeando la disoluci&oacute;n con aire puro durante una hora, antes del estudio y durante el mismo. El pH se ajust&oacute; al valor deseado (&#177;0.01) con peque&ntilde;as adiciones de HCl suprapuro 0.1 M, a trav&eacute;s de un sistema valorador autom&aacute;tico (Titrino 719S, Methrom). La adici&oacute;n de Fe(II) (25 nM) a la muestra correspondi&oacute; con el tiempo cero de reacci&oacute;n. La salinidad del agua de mar, 36.72, se determin&oacute; con un salin&oacute;metro (Portasal 8410A). El efecto de la salinidad se estudi&oacute; diluyendo la muestra original con agua Milli&#45;Q y el efecto del bicarbonato se corrigi&oacute; de acuerdo con Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> (2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis del Fe(II)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n del Fe(II) se determin&oacute; espectrofotom&eacute;&#45;tricamente con el m&eacute;todo de la ferrozina (Violler <i>et al.</i> 2000). La ferrozina y el Fe(II) muestran un m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a 562 nm. Cada 30 segundos se a&ntilde;adieron 10 mL de muestra a un matraz de vidrio de 25 mL que conten&iacute;a ferrozina (50 &#181;L de 0.01 M), disoluci&oacute;n tamp&oacute;n de acetato (2 mL, pH 5.5) y NaF (50 &#181;<i>L</i> de 7.1 x 10<sup>&#45;4</sup> M). Cuando el NaF se emplea con una disoluci&oacute;n tamp&oacute;n de acetato y ferrozina, la absorbancia permanece estable despu&eacute;s de 30 min (Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila <i>et al. </i>2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; una columna capilar de 5 m de paso de luz (World Precision Instruments) conectada a un detector UV&#45;Vis USB2000 (Ocean Optics) que permite medir concentraciones nanomolares de Fe(II). La luz empleada fue de una fuente hal&oacute;gena (HL&#45;2000&#45;FHSA de Mikropack). La cubeta de flujo y el detector UV&#45;Vis estaban conectados con fibra &oacute;ptica. El espectro se registr&oacute; directamente a trav&eacute;s del programa OOIBase32 de Ocean Optics. La muestra se introdujo en la cubeta con una bomba perist&aacute;ltica (EXPETEC Perimax 12) a un flujo de 1 mL min<sup>&#45;1</sup>. La constante aparente de velocidad de oxidaci&oacute;n, <i>k<sub>app</sub></i> (kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>), se determin&oacute; considerando</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde, en condiciones saturadas de aire, <i>k<sub>app</sub></i> = <i>k<sup>'</sup></i> /&#91;O<sub>2</sub>&#93;. Los valores de &#91;O2&#93; se determinaron a partir de la ecuaci&oacute;n de solubilidad (Benson y Krause 1984). La constante de velocidad de pseudo&#45;primer orden, <i>k<sup>'</sup>,</i> se determin&oacute; a partir de la regresi&oacute;n lineal del ln&#91;Fe(II)&#93; frente al tiempo, para tiempos superiores al tiempo de vida medio <i>(t</i><sub>1/2</sub>), y el coeficiente de regresi&oacute;n <i>R<sup>2</sup></i> siempre fue <u>&gt;</u> 0.98. A concentraciones micromo&#45;lares de Fe(II) se consider&oacute; una estequiometr&iacute;a de ox&iacute;daci&oacute;n de 4:1 para esta especie por el ox&iacute;geno, pero a niveles nano&#45;molares &eacute;sta proporci&oacute;n ya no es valida (Santana&#45;Casiano <i>et el.</i> 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#f1">figura 1</a> muestra que en el agua de mar donde s&oacute;lo se a&ntilde;adieron nutrientes del medio de cultivo f/2, <i>P. tricornutum</i> creci&oacute; con una fase exponencial (2&deg; d&iacute;a = 6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>, 4&deg; d&iacute;a = 2.29 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) y una estacionaria (8&deg; d&iacute;a = 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>), de manera similar a resultados obtenidos previamente (Vasconcelos <i>et al.</i> 2002, Vasconcelos y Leal 2008).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estudi&oacute; el efecto de los exudados org&aacute;nicos excretados por <i>P. tricornutum</i> cultivada en diferentes fases de crecimiento y diversas concentraciones de c&eacute;lulas (10<sup>7</sup> &#45; 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f3.jpg" target="_blank">fig. 3</a>). La constante aparente de oxidaci&oacute;n del Fe(II) disminuy&oacute; en el medio con exudados al aumentar la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas productoras o el tiempo de crecimiento (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f3.jpg" target="_blank">fig. 3</a>). Las mayores diferencias se observaron en los casos de exudados correspondientes a 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>. El log <i>k<sub>app</sub></i> para 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> fue 2.82 &#177; 0.02 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>, 0.22 unidades menor que en agua de mar enriquecida con nutrientes del medio f/2 (log <i>k<sub>app</sub></i> = 3.04 &#177; 0.01 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>), una diferencia total de 436 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup> en<i> k<sub>app</sub>.</i> Por lo tanto, la diferencia m&aacute;xima en t&eacute;rminos de<i> k<sub>app</sub></i> entre el agua de mar control y el agua de mar con exudados org&aacute;nicos a&ntilde;adidos de cultivos de <i>P. tricornutum,</i> a pH = 8.0 y T = 25 &deg;C, fue un 60% menor. Los resultados experimentales se ajustaron a una ecuaci&oacute;n polin&oacute;mica (ecuaci&oacute;n 6) en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas (&#91;c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>&#93;), donde R<sup>2</sup> = 0.99.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e3.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disminuci&oacute;n de la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en presencia de exudados org&aacute;nicos de <i>P. tricornutum</i> increment&oacute; el tiempo de vida media (t<sub>1/2</sub>) de 3.0 min (agua de mar) a 3.4 min (6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>), 4.0 min (2.29 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) y 5.1 min (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>), a pH 8.0 y T = 25 &deg;C (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). El hecho de que t<sub>1/2</sub> fuese casi el doble cuando el agua de mar se enriqueci&oacute; con exudados org&aacute;nicos excretados por 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> de <i>P. tricornutum,</i> permite que el Fe(II) permanezca en disoluci&oacute;n por m&aacute;s tiempo. El decrecimiento lineal de log <i>k</i><sub><i>app</i></sub> en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas del cultivo indic&oacute; que el tipo de ligandos org&aacute;nicos que interact&uacute;an con Fe(II), o bien no cambiaron en el tiempo, o si cambiaron, se comportaron de la misma manera.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto observado y presentado en este trabajo es debido al amplio espectro de exudados excretados por <i>P. tricornutum.</i> Algunos trabajos recientes han estudiado los exudados producidos por <i>P. tricornutum</i> en agua de mar enriquecida con nutrientes (Vasconcelos <i>et al.</i> 2002, Vasconcelos y Leal 2008) bajo condiciones similares de crecimiento. As&iacute;, se estableci&oacute; que los compuestos ti&oacute;licos eran los mayores contribuyentes a los ligandos org&aacute;nicos liberados por algas eucariotas como <i>P. tricornutum.</i> La concentraci&oacute;n de ciste&iacute;na y glutati&oacute;n (como compuestos ti&oacute;licos) incrementa con la concentraci&oacute;n celular en los cultivos. Se encontr&oacute; que la ciste&iacute;na es el ligando excretado m&aacute;s importante. Por otra parte, tambi&eacute;n se ha demostrado la regeneraci&oacute;n de Fe(II) en presencia de ciste&iacute;na (Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2000). Adem&aacute;s, en agua de mar natural se han encontrado ciste&iacute;na libre y compuestos identificados como glutati&oacute;n (c&#45;glutamilcisteinil&#45;glicina) (van den Berg <i>et al.</i> 1988, Le Gall y van den Berg 1993). Por lo tanto, considerando la mezcla de exudados excretados por <i>P. tricornutum,</i> los compuestos ti&oacute;licos podr&iacute;an ser responsables de la oxidaci&oacute;n del Fe(II). Se han planificado m&aacute;s estudios para conocer este comportamiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del pH, la temperatura y la salinidad</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estudi&oacute; el efecto del pH, en un rango entre 7.2 y 8.2, en la constante de oxidaci&oacute;n del Fe(II) (<a href="#f4">fig. 4</a>) en agua de mar enriquecida con exudados de cultivos de <i>P. tricornutum,</i> considerando las tres fases de crecimiento que se muestran en la <a href="#f1">figura 1</a>. El log <i>k</i><sub><i>app</i></sub> depende del pH y de la densidad celular en los cultivos. Las diferencias entre el log <i>k</i><sub><i>app</i></sub> obtenido en agua de mar enriquecida con nutrientes y agua de mar enriquecida con exudados org&aacute;nicos fueron m&aacute;s significativas a pHs bajos. Adem&aacute;s, estas diferencias fueron m&aacute;s pronunciadas cuando los cultivos se encontraban en la fase estacionaria (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>). Aqu&iacute;, &#916;log <i>k</i> result&oacute; igual a 0.41 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup> a pH = 7.2; de hecho, la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) a este pH (7.2) fue 60.2% menor en presencia de exudados, siendo despreciable a un pH de 8.2.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disminuci&oacute;n de log<i> k</i><sub><i>app </i></sub>en funci&oacute;n del pH, para las distintas fases de crecimiento, mostr&oacute; que el <i>t</i><sub>1/2</sub> del Fe(II) aument&oacute; de 19.9 min (agua de mar enriquecida con nutrientes) a 50.6 min (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) a pH 7.2, confirmando el importante papel que juegan los exudados org&aacute;nicos de <i>P. tricornutum</i> en la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en agua de mar en funci&oacute;n del pH.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en funci&oacute;n del pH (<a href="#f4">fig. 4</a>) se ajust&oacute; a una ecuaci&oacute;n polin&oacute;mica de segundo orden (ecuaci&oacute;n 7), como se ha hecho en trabajos previos (Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2004, 2005; Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila <i>et al.</i> 2006):</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e4.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>R<sup>2</sup></i> fue 0.99 y el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n en log<i> k</i><sub><i>app</i></sub> fue 0.08. Adem&aacute;s, el efecto de los exudados org&aacute;nicos de <i>P. tricornutum</i> se estim&oacute; sustrayendo la dependencia del pH en agua de mar control y el agua de mar enriquecida con exudados (ecuaci&oacute;n 8), donde <i>R<sup>2</sup></i> fue 0.98 y el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n en log<i> k</i><sub><i>app</i></sub> fue 0.12.</font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e5.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto del pH en la oxidaci&oacute;n del Fe(II) es significativo debido a que puede controlar la contribuci&oacute;n de cada especie a la constante global de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en aguas naturales (Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2005) y la especiaci&oacute;n de ambos, Fe(II) y ligandos org&aacute;nicos presentes en la soluci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la temperatura en la constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) se estudi&oacute; entre 5 y 35 &deg;C (<a href="#f5">fig. 5</a>) en presencia de exudados org&aacute;nicos. La constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) aument&oacute; con la temperatura y disminuy&oacute; con el incremento en la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas. Los resultados experimentales se ajustaron a una ecuaci&oacute;n lineal:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>R<sup>2</sup></i> fue 0.99, el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n en log<i> k</i><sub><i>app</i></sub> fue 0.059 y <i>T</i> la temperatura en grados Kelvin. El efecto debido s&oacute;lo a los exudados tambi&eacute;n fue estimado en funci&oacute;n de la temperatura, sustrayendo el efecto en el agua de mar control (ecuaci&oacute;n 10), dando como resultado un <i>R<sup>2</sup></i> de 0.99 y un error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n de 0.12 en log <i>k<sub>app</sub>.</i></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f5.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e7.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La energ&iacute;a de activaci&oacute;n <i>(E<sub>a</sub>)</i> fue 79 kJ mol<sup>&#45;1</sup> (6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>), 92 kJ mol<sup>&#45;1</sup> (2.29 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) y 88 kJ mol<sup>&#45;1</sup> (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>). La <i>E<sub>a</sub></i> para agua de mar, con nutrientes del medio f/2, fue 86 kJ mol<sup>&#45;1</sup>. Estos valores son comparables con resultados previos en agua de mar de la corriente del Golfo (104 kJ mol<sup>&#45;1</sup>, Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2005) y del Pac&iacute;fico sub&aacute;rtico (97 y 109 kJ mol<sup>&#45;1</sup>, Roy <i>et al.</i> 2008). Las diferencias en log<i> k</i><sub><i>app</i></sub> entre el agua de mar de control y el agua de mar enriquecida con exudados procedentes de la fase estacionaria (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) permanecieron constantes a 58 &#177; 6%, en <i>k</i><sub><i>app</i></sub><i>,</i> en el rango de temperatura considerado. De acuerdo con los resultados experimentales, el Fe(II) puede persistir en aguas superficiales entre 27.6 min (agua de mar control) y 44.2 min (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) a 5 &deg;C (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>), lo cual podr&iacute;a explicar la presencia de Fe(II) en aguas fr&iacute;as (e.g., oc&eacute;ano Sur, aguas del Pac&iacute;fico sub&aacute;rtico) (Roy <i>et al.</i> 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la salinidad (10.0&#45;36.72) en la constante de oxidaci&oacute;n del Fe(II) (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f6.jpg" target="_blank">fig. 6</a>) se estudi&oacute; en presencia de exudados org&aacute;nicos procedentes de cultivos de <i>P. tricornutum,</i> donde la concentraci&oacute;n de bicarbonato se consider&oacute; constante a 2 mM. La constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) disminuy&oacute; al aumentar la salinidad <i>(S),</i> obedeciendo a una ecuaci&oacute;n polin&oacute;mica de segundo orden:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e8.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>R<sup>2</sup></i> fue 0.98 y el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n en log k<sub>app</sub> fue 0.02; <i>S</i> corresponde a la salinidad. El efecto de los exudados en funci&oacute;n de la salinidad tambi&eacute;n se estim&oacute; sustrayendo su efecto en el agua de mar control (ecuaci&oacute;n 12), donde <i>R<sup>2</sup></i> fue 0.96 y el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n fue 0.13.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e9.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la salinidad en la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) fue menos significativo en presencia de exudados org&aacute;nicos que en su ausencia (agua de mar con nutrientes f/2). La diferencia en log <i>k</i><sub><i>app</i></sub> entre <i>S</i> = 10 y <i>S</i> = 36.72 fue 0.30 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup> en agua de mar control. En presencia de exudados, la diferencia en log<i> k</i><sub><i>app</i></sub> para el rango de <i>S</i> estudiado se redujo a 0.17 &#177; 0.05 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>. No obstante, los ligandos org&aacute;nicos juegan un rol crucial en la oxidaci&oacute;n del Fe(II) si se compara con agua de mar sin ellos, con mayor control de la oxidaci&oacute;n por las especies i&oacute;nicas mayoritarias. La variaci&oacute;n de la velocidad de oxidaci&oacute;n respecto al agua de mar sin exudados es mayor a bajas salinidades, lo que est&aacute; relacionado con el efecto de los iones mayoritarios del agua de mar tanto en capacidad como en fuerza complejante de los ligandos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los resultados experimentales obtenidos en este estudio fueron ajustados a una funci&oacute;n polin&oacute;mica (ecuaci&oacute;n 13) (k en kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>) en funci&oacute;n del pH (escala de i&oacute;n libre), la temperatura (K), la salinidad y la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas (c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>):</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e10.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde R<sup>2</sup> fue 0.98 y el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n 0.08.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de los ligandos org&aacute;nicos de <i>P. tricornutum</i> en la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) se puede determinar a partir de la diferencia entre la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en agua de mar control (log <i>k<sub>app,</sub><sub>SWcontrol</sub>)</i> y en presencia de exudados org&aacute;nicos (log <i>k<sub>app, c&eacute;lulas</sub> ):</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e11.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>R<sup>2</sup></i> fue 0.99 y el error est&aacute;ndar de determinaci&oacute;n 0.001.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados indican que existe un retardo en la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) debido al conjunto total de compuestos que componen los exudados de <i>P. tricornutum,</i> entre los que algunos pueden acelerar y otros ralentizar la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II). Debido a la compleja mezcla de compuestos encontrados en el oc&eacute;ano, cualquier extrapolaci&oacute;n debe realizarse con precauci&oacute;n. Si el comportamiento observado en este estudio en los exudados org&aacute;nicos de <i>P. tricornutum</i> se considera como modelo para otros cultivos de diatomeas, la ecuaci&oacute;n 15 permitir&aacute; calcular la constante de velocidad aparente de oxidaci&oacute;n del Fe(II) en diversas condiciones experimentales. La ecuaci&oacute;n 15 permite cuantificar la cantidad equivalente de c&eacute;lulas de <i>P. tricornutum</i> que producen un efecto similar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se deben llevar a cabo m&aacute;s estudios para acrecentar nuestro conocimiento sobre los exudados y su especiaci&oacute;n. Dichos estudios nos permitir&aacute;n identificar el tipo de exudados org&aacute;nicos que aceleran o retardan la velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Especiaci&oacute;n y contribuci&oacute;n parcial a la constante de oxidaci&oacute;n global</b></font> </p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para estimar los efectos de los ligandos org&aacute;nicos producidos por <i>P. tricornutum</i> (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f7.jpg" target="_blank">fig. 7</a>) y la contribuci&oacute;n parcial de cada especie de Fe(II) a la constante de oxidaci&oacute;n global (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f8.jpg" target="_blank">fig. 8</a>) se aplic&oacute; un modelo cin&eacute;tico para agua de mar y agua de mar con altas concentraciones de nutrientes (Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2005, Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila <i>et al.</i> 2006, Gonz&aacute;lez <i>et al.</i> 2010). El efecto de los nutrientes se consider&oacute; ya que el agua de mar control estaba compuesta por agua de mar y nutrientes f/2. Adem&aacute;s, el modelo consider&oacute; el efecto de los exudados org&aacute;nicos en soluci&oacute;n, suponiendo que los complejos de Fe(II)&#45;exudados y el Fe(II) libre se oxidan a distintas velocidades. Se ha considerado que los exudados org&aacute;nicos son un ligando simple (L + <i>H</i> = LH; <i>K<sub>a</sub></i> = 10<sup>4</sup> &#45; 10<sup>5</sup>, resultado del ajuste). La contribuci&oacute;n individual de cada especie de Fe(II) a la constante cin&eacute;tica global se estim&oacute; a partir de los resultados del modelo cin&eacute;tico y la especiaci&oacute;n de Fe(II).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8e12.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>&#945;<sub>i</sub></i> = <i>&#91;FeX<sub>i</sub>&#93;/&#91;Fe(II)&#93;<sub>T</sub></i> es la fracci&oacute;n molar de cada especie de Fe(II) presente en la soluci&oacute;n, <i>k</i><sub><i>app</i></sub> es la constante global de oxidaci&oacute;n (kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>), y k<sub>i</sub> son las constantes de velocidad individuales para cada especie de Fe(II). Fe(II)&#45;L representa los complejos Fe(II)&#45;exudados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ligandos org&aacute;nicos presentes en aguas naturales pueden acelerar o desacelerar la oxidaci&oacute;n del Fe(II), dependiendo de su estructura (Santana&#45;Casiano <i>et al.</i> 2000, Rose y Waite 2003). El modelo cin&eacute;tico permite calcular la concentraci&oacute;n de exudados en disoluci&oacute;n, sus constantes de equilibrio y la constante de velocidad de oxidaci&oacute;n de los complejos Fe(II)&#45;exudados. El mejor ajuste para todos los experimentos que se llevaron a cabo indic&oacute; que <i>K<sub>Fe(II)&#45;L</sub></i> =10<sup>7</sup> y log <i>k<sub>Fe(II)&#45;L</sub></i>= 1.08 &#177; 0.43 kg mol<sup>&#45;1</sup> min<sup>&#45;1</sup>. La concentraci&oacute;n total de exudados calculada fue de 11 &#177; 1 nM (6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>), 113 &#177; 4 nM (2.29 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) y 170 &#177; 10 nM (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>). La concentraci&oacute;n total de ligan&#45;dos fue similar a la medida por otros autores para el octavo d&iacute;a de cultivo (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) (Vasconcelos <i>et al.</i> 2002, Vasconcelos y Leal 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f7.jpg" target="_blank">figura 7</a> se muestra la especiaci&oacute;n de todas las variedades de Fe(II) presentes en estos cultivos. Cuando la concentraci&oacute;n de exudados aument&oacute; en la disoluci&oacute;n, el Fe(II)&#45;L lleg&oacute; a ser la especie m&aacute;s importante. La especie Fe(II)&#45;L fue despreciable a 6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> (5%) y fue la especie m&aacute;s abundante a 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> (50%), mientras que el Fe<sup>2</sup>+ vari&oacute; desde 58% en el agua de mar de referencia hasta 29% en el agua de mar con exudados producidos por 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> de <i>P. tricornutum,</i> a pH 7.2. A pH 8.5, el Fe(II)&#45;L abarca del 2% (6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) al 20% (4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>). La especiaci&oacute;n del Fe(II) para 6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> a pH 8.0 sigui&oacute; la secuencia: Fe<sup>2+</sup> &gt; FeCO<sub>3</sub> &gt; Fe(H<sub>3</sub>SiO<sub>4</sub>)<sup>+</sup> &gt; FeCl<sup>+</sup> &gt; Fe(SO<sub>4</sub>) &gt; Fe(II)&#45;L &gt; Fe(CO<sub>3</sub>)(OH)<sup>&#45;</sup>. A 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>, las especies de Fe(II) siguen la siguiente secuencia: Fe(II)&#45;L &gt; Fe<sup>2+</sup> &gt; FeCO<sub>3</sub> &gt; Fe(H<sub>3</sub>SiO<sub>4</sub>)<sup>+</sup> &gt; FeCl<sup>+</sup> &gt; Fe(SO<sub>4</sub>) &gt; Fe(CO<sub>3</sub>)(OH)<sup>&#45;</sup>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contribuci&oacute;n de cada especie a la constante global de oxidaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n1b/a8f8.jpg" target="_blank">fig. 8</a>) resultante del modelo cin&eacute;tico mostr&oacute; que la contribuci&oacute;n de Fe(II)&#45;L fue m&aacute;s importante a bajos pHs. La contribuci&oacute;n de Fe(II)&#45;L fue despreciable para el segundo d&iacute;a de cultivo (6.21 x 10<sup>7</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup>) (1%) pero fue el segundo mayor contribuyente en presencia de exudados producidos por 4.98 x 10<sup>8</sup> c&eacute;l L<sup>&#45;1</sup> (16%), a pH 6. A pH 8.0 la contribuci&oacute;n de la especie Fe(II)&#45;L a la constante global del proceso fue inferior al 0.3% en cada caso. Mientras que los complejos de Fe(II) disminuyen la velocidad de oxidaci&oacute;n, la relaci&oacute;n entre las constantes de velocidad del resto de especies era pr&aacute;cticamente constante en el agua de mar de referencia y el agua de mar enriquecida con exudados a pH <u>&gt;</u> 8.0.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) fue siempre menor en presencia de exudados org&aacute;nicos de <i>P. tricornutum</i> que en agua de mar sin ligandos. La velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) se relacion&oacute; linealmente con la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas y el tiempo de cultivo. La constante de velocidad disminuy&oacute; en funci&oacute;n de las fases de cultivo, al igual que con el tiempo de cultivo, en funci&oacute;n del pH, la temperatura y la salinidad. El efecto de la salinidad en log <i>k</i><sub><i>app</i></sub> para agua de mar enriquecida con exudados org&aacute;nicos fue menos importante que para el agua de mar sin ellos. Sin embargo, a bajas fuerzas i&oacute;nicas los ligandos org&aacute;nicos inter&#45;accionan con el Fe(II) de forma m&aacute;s efectiva, permitiendo que esta especie sea estable por m&aacute;s tiempo. Los resultados confirman que el Fe(II) puede estar m&aacute;s tiempo presente en aguas superficiales naturales en presencia de ligandos producidos por c&eacute;lulas fitoplanct&oacute;nicas. La ecuaci&oacute;n global (ecuaci&oacute;n 15) permite calcular la fracci&oacute;n de la constante de velocidad de oxidaci&oacute;n del Fe(II) que corresponde a los exudados org&aacute;nicos excretados por diatomeas en aguas naturales. El modelo cin&eacute;tico confirma que los exudados de <i>P. tricornutum</i> interaccionan significativamente con el Fe(II), afectando tanto a la especiaci&oacute;n como a la contribuci&oacute;n de cada especie de Fe(II) a la constante global de este proceso en el agua de mar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio fue realizado con fondos de los proyectos CTM2006&#45;09857, EFECO2 CTM2009&#45;12526 y ECOFEMA CTM2010&#45;19517&#45;MAR, del Ministerio de Ciencia e Innovaci&oacute;n de Espa&ntilde;a. La participaci&oacute;n de AGG fue apoyada por la beca BES&#45;2007&#45;15776 del Ministerio de Ciencia e Innovaci&oacute;n. Se agradece a Margaret Hart por la revisi&oacute;n del manuscrito en ingl&eacute;s.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Benson B, Krause D. 1984. The concentration and isotopic fractionation of oxygen dissolved in fresh water and seawater in equilibrium with the atmosphere. Limnol. Oceanogr. 29: 620&#45;632.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941756&pid=S0185-3880201200020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen M, Dei RCH, Wang WX, Guo L. 2003. Marine diatom uptake of iron bound with natural colloids of different origins. Mar. Chem. 81: 177&#45;189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941758&pid=S0185-3880201200020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Croot PL, Bowie AR, Frew RD, Maldonado MT, Hall JA, Safi KA, La Roche J, Boyd PW, Law CS. 2001. Retention of dissolved iron and Fe(II) in an iron induced Southern Ocean phytoplankton bloom. Geophys. Res. Lett. 28: 3425&#45;3428.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941760&pid=S0185-3880201200020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Croot PL, Laan P, Nishioka J, Strass V, Cisewski B, Boye M, Timmermans KR, Bellerby RG, Goldson L, Nightingale P,  Baar HJW de. 2005. Spatial and temporal distribution of Fe(II) and H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> during EisenEx, an open ocean mesoscale iron enrichment. Mar. Chem. 95: 65&#45;88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941762&pid=S0185-3880201200020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Davison W, Seed G. 1983. The kinetics of the oxidation of ferrous iron in synthetic and natural waters. Geochim. Cosmochim. Acta 47: 67&#45;79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941764&pid=S0185-3880201200020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Emennegger L, King DW, Sigg L, Sulzberger B. 1998. Oxidation kinetics of Fe(II) in a eutrophic Swiss lake. Environ. Sci. Technol. 32: 2990&#45;2996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941766&pid=S0185-3880201200020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Faust BC, Zeep RG. 1993. Photochemistry of aqueous iron(III)&#45;polycarboxylate complexes: Roles in the chemistry of atmospheric and surface waters. Environ. Sci. Technol. 27: 2517&#45;2522.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941768&pid=S0185-3880201200020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fujii M, Rose AL, Waite TD, Omura T. 2008. Effect of divalent cations on the kinetics of Fe(III) complexation by organic ligands in natural waters. Geochim. Cosmochim. Acta 72: 1335&#45;1349.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941770&pid=S0185-3880201200020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gerringa LJA, Rijkenberg MJA, Wolterbeek HT, Verburg TG, Boye M,  Baar HJW de. 2007. Kinetic study reveals weak Fe&#45;binding ligand, which affects the solubility of Fe in the Scheldt estuary. Mar. Chem. 103: 30&#45;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941772&pid=S0185-3880201200020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ghost MM. 1974. Oxygenation of ferrous iron(II) in highly buffered waters. In: Rubin AJ (ed.), Aqueous Environmental Chemistry of Metals. Ann Arbor Science, Ann Arbor, MI, pp. 193&#45;217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941774&pid=S0185-3880201200020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gledhill M, van den Berg CMG. 1994. Determination of complexation of iron(III) with natural organic complexing ligands in seawater using cathodic stripping voltammetry. Mar. Chem. 47: 41&#45;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941776&pid=S0185-3880201200020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez AG, Santana&#45;Casiano JM, P&eacute;rez N, Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M. 2010. Oxidation of Fe(II) in natural waters at high nutrient concentrations. Environ. Sci. Technol. 44: 8095&#45;8101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941778&pid=S0185-3880201200020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M, Santana&#45;Casiano JM, Millero FJ. 2005. Oxidation of nanomolar levels of iron(II) with H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> in Seawater. Geochim. Cosmochim. Acta 69: 83&#45;93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941780&pid=S0185-3880201200020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M, Santana&#45;Casiano JM, Millero FJ. 2006. Competition between O<sub>2</sub> and H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> in the oxidation of Fe(II) in natural waters. J. Solution Chem. 35: 95&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941782&pid=S0185-3880201200020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guillard RRL. 1975. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. In: Smith WL, Chanley MH (eds.), Culture of Marine Invertebrate Animals. Plenum Press, New York, pp. 29&#45;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941784&pid=S0185-3880201200020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gunnars A, Blomqvist S, Johansson P, Andersson C. 2002. Formation of Fe(III) oxyhydroxide colloids in freshwater and brackish seawater, with incorporation of phosphate and calcium. Geochim. Cosmochim. Acta 66: 746&#45;758.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941786&pid=S0185-3880201200020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hirose K. 2007. Metal&#45;organic matter interaction: Ecological roles of ligands in oceanic DOM. Appl. Geochem. 22: 1636&#45;1645.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941788&pid=S0185-3880201200020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Johnson KS, Coale KH, Elrod VA, Tindale NW. 1994. Iron photochemistry in seawater from equatorial Pacific. Mar. Chem. 46: 319&#45;334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941790&pid=S0185-3880201200020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kester DR, Byrne RH Jr, Liang Y. 1975. Redox reactions and solution complexes of iron in marine systems. In: Chuch IM (ed.), Marine Chemistry of the Coastal Environment. ACS Symposium Series 18, American Chemical Society, Washington, DC, pp. 56&#45;79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941792&pid=S0185-3880201200020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kieber RJ, Williams K, Willey JD, Skrabal S, Avery GB. 2001. Iron speciation in coastal rainwater: Concentration and deposition to seawater. Mar. Chem. 73: 83&#45;95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941794&pid=S0185-3880201200020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">King DW. 1998. Role of carbonate speciation on the oxidation rate of Fe(II) in aquatic systems. Environ. Sci. Technol. 32: 2997&#45;3003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941796&pid=S0185-3880201200020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">King DW, Lounsbury HA, Millero, FJ. 1995. Rates and mechanism of Fe(II) oxidation at nanomolar total iron concentration. Environ. Sci. Technol. 29: 818&#45;824.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941798&pid=S0185-3880201200020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuma K, Nishioka J, Matsunaga K. 1996. Controls on iron(III) hydroxide solubility in seawater: The influence of pH and natural organic chelators. Limnol. Oceanogr. 41: 396&#45;407.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941800&pid=S0185-3880201200020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kustka AB, Shaked Y, Milligan AJ, King DW, Morel FMM. 2005. Extracellular production of superoxide by marine diatoms: Contrasting effects on iron redox chemistry and bioavailability. Limnol. Oceanogr. 50: 1172&#45;1180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941802&pid=S0185-3880201200020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Laglera LM, van den Berg CMG. 2007. Wavelength dependence of the photochemical reduction of iron in Arctic seawater. Environ. Sci. Tech. 41: 2296&#45;2302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941804&pid=S0185-3880201200020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Le Gall A, van den Berg CMG. 1993. Cathodic stripping voltammetry of glutathione in natural waters. Analyst 118: 1411&#45;1415.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941806&pid=S0185-3880201200020000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maldonado MT, Price NM. 2001. Reduction and transport of organically bound iron by <i>Thalassiosira oceanica </i>(Bacillariophyceae). J. Phycol. 37: 298&#45;309.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941808&pid=S0185-3880201200020000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millero FJ. 1986. The pH of estuarine waters. Limnol. Oceanogr. 31: 839&#45;847.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941810&pid=S0185-3880201200020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millero FJ, Izaguirre M. 1989. Effect of ionic strength and ionic interactions on the oxidation of Fe(II). J. Solution Chem. 18: 585&#45;599.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941812&pid=S0185-3880201200020000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millero FJ, Sotolongo S. 1989. The oxidation of Fe(II) with H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> in seawater. Mar. Chem. 53: 1867&#45;1873.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941814&pid=S0185-3880201200020000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millero FJ, Sotolongo S, Izaguirre M. 1987. The oxidation kinetics of Fe(II) in seawater. Geochim. Cosmochim. Acta 51: 793&#45;801.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941816&pid=S0185-3880201200020000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millero FJ, Sotolongo S, Stade DJ, Vega CA. 1991. Effect of ionic interactions on the oxidation of Fe(II) with H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> in aqueous solutions. J. Solution Chem. 20: 1079&#45;1092.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941818&pid=S0185-3880201200020000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millero FJ, Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M, Santana&#45;Casiano JM. 1995. Reduction of Fe(III) with sulfite in natural waters. J. Geophys. Res. 100: 7235&#45;7244.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941820&pid=S0185-3880201200020000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rijkenberg MJA, Gerringa LJA, Timmermans KR, Fischer AC, Kroon KJ, Buma AGJ, Wolterbeek BT,  Baar HJW de. 2008. Enhancement of the reactive pool by marine diatoms. Mar. Chem.109: 29&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941822&pid=S0185-3880201200020000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rose AL, Waite TD. 2002. Kinetic model for Fe(II) oxidation in seawater in the absence and presence of natural organic matter. Environ. Sci. Technol. 36: 433&#45;444.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941824&pid=S0185-3880201200020000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rose AL, Waite TD. 2003. Effect of dissolved natural organic matter on the kinetics of ferrous iron oxygenation in seawater. Environ. Sci. Technol. 37: 4877&#45;4886.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941826&pid=S0185-3880201200020000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rose AL, Salmon TP, Lukondeh T, Neilan BA, Waite TD. 2005. Use of superoxide as an electron shuttle for iron acquisition by the marine cyanobaterium <i>Lyngbya majuscule.</i> Environ. Sci. Technol. 39: 3708&#45;3715.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941828&pid=S0185-3880201200020000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roy EG, Wells ML, King W. 2008. Persistence of iron(II) in surface waters of the western subarctic Pacific. Limnol. Oceanogr. 53: 89&#45;98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941830&pid=S0185-3880201200020000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rue EL, Bruland KW. 1995. Complexation of iron(III) by natural organic ligands in the central North Pacific as determined by a new competitive ligand equilibration adsorptive cathodic stripping voltammetric method. Mar. Chem. 50: 117&#45;138.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941832&pid=S0185-3880201200020000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rue EL, Bruland KW. 1997. The role of organic complexation on ambient iron chemistry in the equatorial Pacific Ocean and the response of a mesoscale iron addition experiment. Limnol. Oceanogr. 42: 901&#45;910.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941834&pid=S0185-3880201200020000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Santana&#45;Casiano JM, Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M, Rodr&iacute;guez MJ, Millero FJ. 2000. The effect of organic compounds on the oxidation kinetics of Fe(II). Mar. Chem. 70: 211&#45;222.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941836&pid=S0185-3880201200020000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Santana&#45;Casiano JM, Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M, Millero FJ. 2004. The oxidation of Fe(II) in NaCl&#45;HCO<sub>3</sub><sup>&#45;</sup> and seawater solutions in the presence of phthalate and salicylate ions: A kinetic model. Mar. Chem. 85: 27&#45;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941838&pid=S0185-3880201200020000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Santana&#45;Casiano JM, Gonz&aacute;lez&#45;D&aacute;vila M, Millero FJ. 2005. Oxidation of nanomolar levels of Fe(II) with oxygen in natural waters. Environ. Sci. Technol. 39: 2073&#45;2079.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941840&pid=S0185-3880201200020000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Steigenberger S, Stathman PJ, Volker C, Passow U. 2010. The role of polysaccharides and diatom exudates in the redox cycling of Fe and the photoreduction of hydrogen peroxide in coastal seawaters. Biogeosciences 7: 109&#45;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941842&pid=S0185-3880201200020000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stumm W, Lee GF. 1961. Kinetic product of ferrous iron. Ind. Eng. Chem. 53: 143&#45;146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941844&pid=S0185-3880201200020000800045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sunda WG, Huntsman SA. 1997. Interrelated influence of iron, light and cell size on marine phytoplankton growth. Nature 390: 389&#45;392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941846&pid=S0185-3880201200020000800046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sung W, Morgan JJ. 1980. Kinetics and product of ferrous iron oxygenation in aqueous solutions. Environ. Sci. Technol. 14: 561&#45;568.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941848&pid=S0185-3880201200020000800047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tamura H, Goto K, Nagayama M. 1976. Effects of anions of the oxygenation of ferrous iron in neutral solutions. J. Inorg. Nucl. Chem. 38: 113&#45;117.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941850&pid=S0185-3880201200020000800048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Theis TL, Singer PC. 1974. Complexation of iron(II) by organic matter and its effect on iron(II) oxygenation. Environ. Sci. Technol. 8: 569&#45;573.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941852&pid=S0185-3880201200020000800049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Van den Berg CMG. 1995. Evidence for organic complexation of iron in seawater. Mar. Chem. 50: 139&#45;157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941854&pid=S0185-3880201200020000800050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Van den Berg CMG, Househam BC, Riley JP. 1988. Determination of cystine and cysteine in seawater using cathodic stripping voltammetry in the presence of Cu(I). J. Electroanal. Chem. 239: 137&#45; 148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941856&pid=S0185-3880201200020000800051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vasconcelos MTSD, Leal MFC. 2008. Exudates of different marine algae promote growth and mediate trace metal binding in <i>P. tricornutum.</i> Mar. Environ. Res. 66: 499&#45;507.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941858&pid=S0185-3880201200020000800052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vasconcelos MTSD, Leal MFC, van den Berg CMG. 2002. Influence of the nature of the exudates released by different marine algae on the growth, trace metal uptake and exudation of <i>Emiliania huxleyi</i> in natural seawater. Mar. Chem. 77: 187&#45;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941860&pid=S0185-3880201200020000800053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Violler E, Inglett PW, Hunter K, Roychuodhury AN, Cappellen P. 2000. The ferrozine method revisited: Fe(II)/Fe(III) determination in natural waters. Appl. Geochem. 15: 785&#45;790.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941862&pid=S0185-3880201200020000800054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wells ML, Mayer LM, Donard OFX, De Souza Sierra MM, Ackelson SG. 1991. The photolysis of colloidal iron in the oceans. Nature 353: 248&#45;250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941864&pid=S0185-3880201200020000800055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Witter AE, Luther GW. 1998. Variation in Fe&#45;organic complexation with depth in the northwestern Atlantic Ocean as determined using a kinetic approach. Mar. Chem. 62: 241&#45;258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1941866&pid=S0185-3880201200020000800056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NOTA</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* <a href="/pdf/ciemar/v38n1b/v38n1ba8.pdf" target="_blank">Descargar versi&oacute;n biling&uuml;e (Ingl&eacute;s&#45;Espa&ntilde;ol) en formato PDF</a>.</font></p>      ]]></body><back>
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